SU969715A1 - Process for producing activator for autolysis of microorganisms - Google Patents

Process for producing activator for autolysis of microorganisms Download PDF

Info

Publication number
SU969715A1
SU969715A1 SU813278265A SU3278265A SU969715A1 SU 969715 A1 SU969715 A1 SU 969715A1 SU 813278265 A SU813278265 A SU 813278265A SU 3278265 A SU3278265 A SU 3278265A SU 969715 A1 SU969715 A1 SU 969715A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
autolysis
activator
microorganisms
hydrolysis
enzyme
Prior art date
Application number
SU813278265A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ольга Владимировна Кислухина
Татьяна Александровна Кузнецова
Калуст Акопович Калунянц
Акоп Казарович Бандоян
Original Assignee
Всесоюзный Научно-Исследовательский Биотехнический Институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный Научно-Исследовательский Биотехнический Институт filed Critical Всесоюзный Научно-Исследовательский Биотехнический Институт
Priority to SU813278265A priority Critical patent/SU969715A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU969715A1 publication Critical patent/SU969715A1/en

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

(St) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АКТИВАТОРА АВТОЛИЗА Изобретение относитс  к микробиоло гической и медицинской пррмышленности в частности к способам получени  акти ватора автолиза микроорганизмов. Наиболее близким к предлагаемому по технической сущности и достигаемому эффекту  вл етс  способ получени  активатора автолиза микроорганизмов, предусматривающий гидролиз исходного сырь  трипсином. Согласно известному способу регул торы автолиза выдел ют из ферментолизата биомассы микроорганизмов путем экстракции 5 10%-ной трихлоруксусной кислотой с последую1цим осаждением из экстракта объемами органических растворителей. Ферментативному лизису подвергают суспензии биомассы с концентрацией сухих веществ . Дл  лизиса используют на первой стадии (врмент литимеского действи , на второй стадии - фермент протеолитического действи , например трипсин. МИКРООРГАНИЗМОВ при соотношении фермент ; субстрат 1:500 С1. К недостаткам известного способа относитс  то, что регул тор автолиза ; может Использоватьс  как дл  активации , так и дл  торможени  автолиза. Характер действи  регул торов зависит от субстрата (автолизирующейс  бактерииJ, Поэтому дл  выбора регул тора заданного характера действи  на данный микроорганизм требуетс  проверка действи  серии регул торов, чтр осложн ет проблему применени  регул торов автолиза на практике. Кроме того, недостатками известного способа  вл ютс  также сложность процедуры выделени  регул торов и необходимость специального оборудовани , устойчивого к действию трихлоруксусной кислоты. Цель изобретени  - .упрощение способа , а также повышение эффективности действи  активатора автолиза. 396 Поставленна  цель достигаетс  тем, что согласно способу получени  активатора автолиза микроорганизмов, предусматривающему гидролиз исходного сырь  трипсином, гидролизу подвергают казеин или казеинат натри , а гидролиз ведут в течение 0, ч при соотношении фермент : субстрат равном 1:1000 - 1:5000. Способ осуществл ют следующим образом . Казеин или казеинат натри  раствор ют в воде, концентраци  белка - от 1 до 5%. При необходимости дл  улучшени  растворени  суспензию белка подогревают до 60-8()-С. По окончании процесса растворени  температуру раст JBOpa снижают до и устанавлиеают рН 8-9 с помощью раствора NaOH. Затем в раствор внос т фермент трипсин , соотношение фермента к субстрату от 1:1000 да 1:50.00. Ферментативный гидролиз провод т при в течение , 0,5-2 ч, предпочтительно 2 ч. По окончании гидролиза температуру гидролизата повышают до 90 100°С и выдержи.вают при этой температуре 1530 мин дл  инактивации фермента. Затем гидролйзат охлаждают и высушивают лиофильно или на распылительной сушилке. При этом в качестве наполнителей могут быть использованы соли например поваренна  соль, сульфат аммони  и др.- (в зависимости от целевого назначени  препарата), количество вносимых при сушке солей 50-150 к сухой массе гидролизованного белка. В качестве гидролизуемого субстрата можно использовать не только казеин или казеинат, но и другие белки, например молочный альбумин, бычий сывороточный альбумин, желатину, но получаемый при этом активатор автолиза обладает менее выраженным действием, Универсальность активирующего действи  на автолиз различных микроорганиз мов сохран етс . Наиболее активна  фракци  активато ра, получаемого из казеина или казеината натри , содержит пептиды с моле кул рной массой 800-1000 дальтон. С целью повышени  эффективности активатора эта фракци  может быть выделена из гидролизата методом гельфильтрации на сефадексе или акрилексе. Пример 1.50г казеината нат ри  раствор ют в 1 л воды при , охлаждают раствор до , устанавливают рН 8,6 с помощью 1 -ного раствора NaOH и добавл ют 0,01 г трипсина в виде водного раствора в объеме 0,01 л (соотношение фермента к субстрату 1 :soon ). Гидролиз ведут при и посто нном перемешивании в течение 2ч. Затем гидролйзат нагревают до киПени  и выдерживают в кип щей вод ной бане 15 мин, после чего охлаждают и лиофилизируют. Полученный препарат используют дл  активации автолиза микроорганизмов. Дл  определени  степени активации автолиза приготавливают однородные водные суспензии биомассы различных микроорганизмов со стандартной оптической плотностью 0,951,05 при измерении на ФЭК-56М при длине волны 5tO нм в кювете толщиной 5 мм. Затем составл ют реакционные смеси из равных объемов стандартной суспензии и водного раствора активатора концентрации t мг/мл. В контроле к стандартной суспензии приливают рав|1ый объем воды. Измер ют исходную on-j тическую плотность реакционной смеси DO и оптическую плотность после инкубации в течение часа при 37°С - . Вычисл ют интенсивность автолиза 3 3 , 100. Полученные результаты приведены в таблице, варианты 1-10 (.при продолжительности гидррлиза 2 ч и соотношении фермент : субстрат 1 : 5000), Из таблицы видно, что в вариантах интенсивность автолиза микроорганизмов возростает в 2,9-15 раз по сравнению с контролем, а в вариантах 1 и 2 наблюдаетс  высока  интенсивность автолиза у микроорганизмов, которые в отсутствие активатора не лизировались . Это может объ сн тьс  переходом латентной формы автолитических ферментов в активную в присутствии активатора автолиза. Пример 2. 100 г казеина раствор ют в 2 л воды при 75°С,охлаждают раствор до , устанавливают рН 9,0 с помощью 1 -ного раствора NaOH и добавл ют 0,10 г трипсина в виде водного раствора в 0,10 л воды (соотношение фермент : субстрат 1:1000} Гидролиз ведут при в течение 0,5 ч. Затем гидролйзат выдерживают в кип щей вод ной бане в течение 30 мин, после чего охлаждают и лиофилизируют . Полученный препарат используют дл  активации автолиза микроорганизмов . Определение степени активации провод т так, как описано в примере 1.(St) METHOD FOR OBTAINING AN AUTOLYSIS ACTIVATOR The invention relates to microbiological and medical industry, in particular, to methods for producing an autolysis activator of microorganisms. Closest to the proposed technical essence and the achieved effect is a method of obtaining an activator of autolysis of microorganisms, involving the hydrolysis of the raw material with trypsin. According to a known method, autolysis regulators are isolated from the fermentolysate of the biomass of microorganisms by extraction with 5 to 10% trichloroacetic acid, followed by precipitation from the extract with volumes of organic solvents. Enzymatic lysis is subjected to suspension of biomass with a concentration of dry substances. For lysis, the first stage is used (the lithium action procedure, in the second stage, the enzyme of proteolytic action, for example trypsin. MICROORGANISMS with an enzyme ratio; substrate 1: 500 C1. The disadvantages of this method are that the autolysis controller can be used as activation and inhibition of autolysis. The nature of the effect of the regulators depends on the substrate (autolytic bacteriaJ). Therefore, to select a regulator of a given nature of action on this microorganism, it is necessary to check the and regulators, which complicates the use of autolysis regulators in practice.In addition, the disadvantages of this method are also the complexity of the procedure for isolating regulators and the need for special equipment that is resistant to trichloroacetic acid. the effectiveness of the action of autolysis activator. 396 The goal is achieved by the fact that according to the method of obtaining the activator of autolysis of microorganisms, involving the hydrolysis of the feedstock thrips otherwise, casein or sodium caseinate is subjected to hydrolysis, and hydrolysis is carried out for 0, h with an enzyme: substrate ratio of 1: 1000 - 1: 5000. The method is carried out as follows. Casein or sodium caseinate is dissolved in water, the protein concentration is from 1 to 5%. If necessary, to improve the dissolution of the protein suspension is heated to 60-8 () - C. At the end of the dissolution process, the temperature of the JBOpa plant is reduced to and adjusted to pH 8-9 with NaOH solution. Then the enzyme trypsin is introduced into the solution, the ratio of the enzyme to the substrate is from 1: 1000 and 1: 50.00. The enzymatic hydrolysis is carried out for a period of 0.5-2 hours, preferably 2 hours. After the end of the hydrolysis, the temperature of the hydrolyzate is raised to 90-100 ° C and kept at this temperature for 1530 minutes to inactivate the enzyme. The hydrolyzate is then cooled and freeze-dried or spray-dried. In this case, as fillers, salts such as table salt, ammonium sulfate, etc. can be used (depending on the intended purpose of the preparation), the amount of 50-150 salts added to the dry weight of hydrolyzed protein when drying. As a hydrolyzable substrate, not only casein or caseinate can be used, but also other proteins, such as milk albumin, bovine serum albumin, gelatin, but the resulting autolysis activator has a less pronounced effect. The universality of the activating effect on the autolysis of various microorganisms is preserved. The most active fraction of the activator, derived from casein or sodium caseinate, contains peptides with a molecular weight of 800-1000 daltons. In order to increase the effectiveness of the activator, this fraction can be isolated from the hydrolyzate by gel filtration on sephadex or acrylex. Example 1.50 g of sodium caseinate is dissolved in 1 l of water while the solution is cooled to a pH of 8.6 with 1% NaOH solution and 0.01 g of trypsin is added as an aqueous solution in a volume of 0.01 l (ratio: enzyme to substrate 1: soon). The hydrolysis is carried out at constant stirring for 2 hours. Then the hydrolyzate is heated to cyPenia and kept in a boiling water bath for 15 minutes, then cooled and lyophilized. The resulting preparation is used to activate the autolysis of microorganisms. To determine the degree of autolysis activation, homogeneous aqueous suspensions of biomass of various microorganisms are prepared with a standard optical density of 0.951.05 when measured at FEK-56M at a wavelength of 5tO nm in a 5 mm thick cuvette. Then the reaction mixtures are made up of equal volumes of a standard suspension and an aqueous solution of an activator with a concentration of t mg / ml. In the control, equal to the first volume of water is added to the standard suspension. The initial on-tus density of the reaction mixture DO and the optical density after incubation for one hour at 37 ° C are measured. Calculate the intensity of autolysis 3 3, 100. The results are shown in the table, options 1-10 (. With a hydrolysis duration of 2 h and the ratio of enzyme: substrate 1: 5000). From the table it is seen that in variants the autolysis intensity of microorganisms will increase to 2, 9-15 times in comparison with the control, and in variants 1 and 2, the intensity of autolysis is high in microorganisms that have not been lysed in the absence of an activator. This can be explained by the transition of the latent form of autolytic enzymes to the active one in the presence of an autolysis activator. Example 2. 100 g of casein is dissolved in 2 l of water at 75 ° C, the solution is cooled to pH 9.0 with 1% NaOH solution and 0.10 g of trypsin as an aqueous solution in 0.10 l is added water (enzyme: substrate ratio 1: 1000} Hydrolysis is carried out for 0.5 h. Then the hydrolysis is kept in a boiling water bath for 30 min, then cooled and lyophilized. The resulting preparation is used to activate the autolysis of microorganisms. Determination of the degree activation is carried out as described in example 1.

Полученные результаты приведены 5 в таблице, варианты 1Т-13 (при продолжительности гидролиза 0,5 м и соотношении фермент : субстрат 1:1000). Под действием активатора интенсивность автолиза метаноокисл юцих бактерий, to культура 170, повышаетс  в А,2 раза, Е. соП Н 17 в 6,П раз, а у актиномицета Streptomyces albogrlseotus - от О до 52,8%. The results are shown in table 5, options 1T-13 (with a duration of hydrolysis of 0.5 m and the ratio of enzyme: substrate 1: 1000). Under the action of the activator, the intensity of the autolysis of methanoic acid bacteria, to culture 170, increases by A, 2 times, E. coPH 17 by 6, P times, and in actinomycete Streptomyces albogrlseotus, from O to 52.8%.

Пример 3. 50 г казеината натри  раствор ют в 2 л воды при ., охла чдают раствор до k2°C, устанавливают pti 8,6 и добавл ют 0,02 г трипсина в виде водного раствора в объеме Example 3. 50 g of sodium caseinate are dissolved in 2 l of water at., The solution is cooled to k2 ° C, set to pti 8.6 and 0.02 g of trypsin is added as an aqueous solution in volume

Вли ние активатора на интенсивность автолиза Effect of activator on autolysis intensity

0,02 л. Соотношение фермент ; субстрат равно 1:2500. Гидролиз ведут при 37°( в течение ч. Затем гидролиза нагревают до кипени  и выдерживают в таком состо нии 20 мин. По охлаждении гидролизат лиоЛилизируют.0.02 l. Enzyme ratio; the substrate is 1: 2500. The hydrolysis is carried out at 37 ° (for an hour. Then the hydrolysis is heated to boiling and kept in this state for 20 minutes. Upon cooling, the hydrolyzate is lylated.

Испытание активирующего дейст ви  препарата наавтолиз микроорганизмов провод т так же, .как в примере 1. , Результаты приведены в таблице, арианты (при продолжительност гидролиза Л ч и соотношении фермент : субстрат 1:2500). Степень активации автолиза составл ет дл  метаноокисл юцих бактерий, культуры 122 и 170, соответственно 2,7 и 4,3 раза, дл  Е. сЫ I MRF.-бОО - И,5 раза, у 8. nesentericus 1 интенсивность автолиза повышаетс  от О до 18,7-5. микроорганизмовThe test of the activating drug on the autotolysis of microorganisms was carried out in the same way as in example 1. The results are shown in the table, ariants (with a duration of hydrolysis of Lh and an enzyme: substrate ratio of 1: 2500). The degree of activation of autolysis is for methanol acids of bacteria, cultures 122 and 170, respectively 2.7 and 4.3 times, for E. sY I MRF.-BLO - I, 5 times, for 8. nesentericus 1, the intensity of autolysis increases from 0 to 18.7-5. microorganisms

Streptonyces a1bogriseolusStreptonyces a1bogriseolus

В. Mesentericus 1V. Mesentericus 1

Bif fdobacteruin E.coli MRE-600Bif fdobacteruin E.coli MRE-600

P.. соП M17P .. coP M17

Метаноокисл ю1чие бактерии, культура 122Methanooxide acid bacteria culture culture 122

Метаноокисл юцие бактерии, культура 170Methanooxide acid bacteria culture 170

Lactobact.plantsrunLactobact.plantsrun

Candida tropical is ВСБ-909Candida tropical is VSB-909

Rhdotorula aurant iacaRhdotorula aurant iaca

16,2 2,916.2 2.9

i, i,

27,3 20,9 3,0 14,1 2,9 25,0 3,027.3 20.9 3.0 14.1 2.9 25.0 3.0

11Метаноокисл ющие бактерии, культура 1706,211Metho-oxidizing bacteria, culture 1706.2

12Е, соП М17 5,112E, comp M17 5.1

13Streptornyc s altjogrlseolusО13Streptornyc s altjogrlseolusО

ИМета нос кйсл ю1циеImeta nose kysl yucci

бактерии, культура 1706,1bacteria culture 1706.1

:.Ш 15Мет аноо ки с л   ю|ди е: .Sh 15Met anoki with yu | di e

Claims (1)

бактерии, культуполучени  активатора автолиза микроо ганизмов обеспечивает получение высо коэффективного активатора автолиза, который, по сравнению с известным способом позвол ет активировать авто лиз представителей всех групп микроорганизмов . Кроме того, достигаетс  упрощение за счет исключени  стадии обработки трихлоруксусной кислотой. Формула изобретени  Способ получени  активатора автолиза микроорганизмов, предусматрива969715bacteria, the cultivation of the activator of autolysis of microorganisms provides a highly efficient activator of autolysis, which, in comparison with the known method, allows to activate the autolysis of representatives of all groups of microorganisms. In addition, simplification is achieved by eliminating the trichloroacetic acid treatment step. The invention The method of obtaining an activator of autolysis of microorganisms, provides 969715 .8 Продолжение таблицы.8 Continuation of the table .2 6,0.2 6.0 26,2 i,3 НОМ, о т л и ч а ю ц и и с   тем, что, с целью упро1чени  способа, а также повышени  эффективности действи  активатора автолиза, гидролизу подвергают казеин или казеинат натри , а гидролиз ведут в течение 0,5-2 ч при соотношении фермент :субстрат равном 1:1ПОО - 1:50ПО. Источники информации, прин тые во внимание пр1 кспертизе 1. Авторское свидетельство СССР Vf 759526, кл. С 07 R 7/0,2, 1978.26,2 i, 3 NOM, in order to simplify the process and increase the efficiency of the activator of autolysis, casein or sodium caseinate is hydrolyzed, and hydrolysis is carried out for 0, 5-2 h when the ratio of enzyme: substrate is 1: 1, 110: 1: 50PO. Sources of information taken into account pr1 examination 1. USSR author's certificate Vf 759526, cl. C 07 R 7 / 0,2, 1978.
SU813278265A 1981-04-24 1981-04-24 Process for producing activator for autolysis of microorganisms SU969715A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU813278265A SU969715A1 (en) 1981-04-24 1981-04-24 Process for producing activator for autolysis of microorganisms

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU813278265A SU969715A1 (en) 1981-04-24 1981-04-24 Process for producing activator for autolysis of microorganisms

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU969715A1 true SU969715A1 (en) 1982-10-30

Family

ID=20954302

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU813278265A SU969715A1 (en) 1981-04-24 1981-04-24 Process for producing activator for autolysis of microorganisms

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU969715A1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4910145A (en) Separation process
IMAJOH et al. Limited Autolysis of Calcium-Activated Neutral Protease (CANP): Reductio of the Ca2+-Requirement Is Due to the NH2-Terminal Processing of the Large Subunit
Gerisch et al. Cyclic AMP phosphodiesterase and its inhibitor in slime mould development
Prescott et al. [44] Aeromonas aminopeptidase
US3930954A (en) Neutral protease useful for animal tissue and cell culture
US4885168A (en) Method for the removal of nucleic acids and/or endotoxin
Rippon Extracellular collagenase from Trichophyton schoenleinii
EP0099871A1 (en) Separation of plasma proteins from cell culture systems
Koser et al. Studies on bacterial nutrition: the utilization of nitrogenous compounds of definite chemical composition
US5192677A (en) Alkali and heat stable protease from thermomonospora fusca
US9593158B2 (en) Process for the preparation of gelatin
SU969715A1 (en) Process for producing activator for autolysis of microorganisms
US3677900A (en) Method of producing collagenase with a species of vibrio
US5569599A (en) Kerainase from fervidobacterium pennavorans DSM 7003
Halevy et al. A microbiological approach to nutritional evaluation of proteins
Dreisbach et al. Induction of collagenase production in Vibrio B-30
Kenney et al. Ribonuclease U1. Physical and chemical characterization of the purified enzyme
Van Heyningen The biochemistry of the gas gangrene toxins: 3. Development of a medium suitable for the large-scale production of the toxins of Clostridium welchii type A
US3345269A (en) Process for the production of proteolytic enzymes
EP0522428A1 (en) Prolyl endopeptidase and production thereof
Butler et al. The action of trypsin on insulin
SU1487817A3 (en) Method of extracting carboxypeptidase b from adrenal gland of mammals
Pardoe The inducible neuraminidase (N-acyl-neuraminyl hydrolase EC 3.2. 1.18) of Klebsiella aerogenes NCIB 9479
US3331751A (en) Protease elaborated by streptomyces moderatus sp.n
JPS6342686A (en) Production of protease