SU913254A1 - Способ выделения нейронов из нервной ткани моллюсков - Google Patents

Способ выделения нейронов из нервной ткани моллюсков Download PDF

Info

Publication number
SU913254A1
SU913254A1 SU792742214A SU2742214A SU913254A1 SU 913254 A1 SU913254 A1 SU 913254A1 SU 792742214 A SU792742214 A SU 792742214A SU 2742214 A SU2742214 A SU 2742214A SU 913254 A1 SU913254 A1 SU 913254A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
neurons
chloride
solution
tissue
nerve
Prior art date
Application number
SU792742214A
Other languages
English (en)
Inventor
Marina A Kostenko
Tatyana I Smolikhina
Original Assignee
Inst Biologicheskoi Fiz
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inst Biologicheskoi Fiz filed Critical Inst Biologicheskoi Fiz
Priority to SU792742214A priority Critical patent/SU913254A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU913254A1 publication Critical patent/SU913254A1/ru

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к нейрофизиологии и нейрофармакологии для исследования действия физиологически активных соединений на различные функциональные и электрофизиологические параметры нейронов.
Известен способ выделения нейронов из нервной ткани моллюсков путем обработки нервной ткани раствором проназы, приготовленном на физиологическом растворе, содержащем хлорис· тый натрий, хлористый калий, хлористый кальций, хлористый магний, с пос
ледующей дезагрегацией ткани на отдельные нейроны ИЗ.
Однако этот способ не обеспечивает высокой жизнеспособности нейронов, что ведет к получению малого количества выделяемых нейронов, пригодных к исследованию.
Целью изобретения является повышение жизнеспособности нейронов.
Цель достигается тем, что при осуществлении способа выделений нейронов из нервной ткани моллюсков путем обработки нервной ткани раствором проназы, приготовленном на фи5 зиологическом растворе, содержащем хлористый натрий, хлористый калий, хлористый кальций, хлористый магний, с последующей дезагрегацией ткани на отдельные нейроны, физиологический
0 раствор для проназы дополнительно содержит кислый углекислый натрий, а компоненты раствора взяты в следующем соотношении, мМ:
Хлористый натрий 90-11 Ι0
Хлористый калий 4 - 6
Хлористый кальций 1,8 - 2; >2
Хлористый ма гний 0,8 - 1, ,5
Кислый углекислый
натрий 3 - 5
при этом перед дезагрегацией ткань выдерживают при рН 7,5 - 7,8 в 4θ°ί~ ном растворе среды Игла, разведенной физиологическим раствором при рН 5,5.
3 913254
4
Способ осуществляют следующим образом.
Окологлоточные нервные кольца моллюсков помещают на 1 ч в физиологический раствор с компонентами в следующем соотношении, мМ:
Хлористый натрий 90 - 110
Хлористый калий 4-6
Хлористый кальций 1,8 - 2,2
Хлористый магний 0,8 - 1,5
Кислый углекислый
натрий 3 “ 5
при рН 7.5 ’ 7,8 среды и содержащий 0,5% проназы из расчета по 2 мл раствора 2 мг нервной ткани при 18-20*С. Затем нервную ткань споласкивают чистым солевым раствором и на 1-2 ч помещают в промежуточный раствор слё-
дующего состава, мМ:
Хлористый натрий 80
Хлористый калий 1
Хлористый кальций 0,5
Хлористый магний 1,5
при рН 5,5 и содержащий 40% амино-
кислот и витаминов среды Игла, но без бикарбоната, фосфатов и других буферов, по 2 мл раствора на одно нервное кольцо. Затем нервную ткань (переносят в бессывороточную питательную среду для культивирования и пипетируют ткань до полной дезагрегации клеток.
,0
15
20
25
30
Пример 1. Для получений изолированных нейронов окологлоточные нервные кольца моллюсков Лутпаеа зРад-35 паПз (прудовик большой)» помещают на 1 ч в солевой раствор следующего ионного состава, мМ: ИаС1 100; КС1 5; СаС1г 2; МдС1г13; КаМСОд 5; рн 7,8, содержащий 0,5% проназы из рас- 40 чета по 2 мл раствора,на 2 мл нервной ткани, при 18-20°С-. Нейроны при этом остаются внутри ганглиев, так как оболочки нервного кольца при действии фермеИта>не разрушаются. Затем 45 нервные кольца споласкивают от фермента чистым солевым раствором и на 1 ч помещают в промежуточный раствор следующего ионного состава, мМ: №аС1 10; КС1 0,5; СаС120,1; М§С12.0,5; рН 50 5,3, содержащий 40% аминокислот и витаминов среды Игла, но без бикарбоната и фосфата, по 2 мл раствора на одно нервное кольцо. После этого нервные кольца переносят в бессывороточ- 55 ную питательную среду для культивирования и пипетируют ткань до полной дезагрегации клеток. Количество выделенных таким образом нейронов составляет 1000 на 1 нервное кольцо.
Пример 2. Выделяют нейроны из окологлоточных нервных колец .Тутпаеа зРадпаНз (прудовик большой) или ПапогЬагриз сотпеиз (катушка роговая), при этом нервные кольца помещают на 1 ч в солевой раствор следующего ионного состава, мМ: МаС1 100; КС1 5; СаС1г2; МдС!^ ,2; МаНСО 4,0; рН 7,70 содержащем 0,5% проназы из расчета по 2 мл на одно нервное кольцо, при 18-20гС. Затем нервные кольца споласкивают от фермента чистым солевым раствором и на 1,5 ч помещают в промежуточный раствор следующего ионного состава, мМ: МаС1 75; КС1 0,75; СаС1х 0,3; МдС1^ 1,0; рН 5,4, содержащий 40% аминокислот и витаминов среды Игла. После этого нервную ткань переносят в бессывороточную питательную среду для культивирования (и пипетированием выделяют нейроны. Количество выделенных нейронов составляет 900 на 1 нервное кольцо.
Пример 3· Выделяют нейроны из окологлоточных нервных колец моллюсков Дутпаеа зРадпаПз (прудовик большой) или Р1алогЬаг1из сотеиз (катушка роговая). Для этого нервные кольца помещают на 1 ч в солевой раст вор следующего ионного состава, мМ: МаС1 110; КС1 6; СаС1^ 2^2; ЧдСХд.
1,5;'Ъ1аНС0з 5,0; рН 7,8, содержащий 0,5% проназы по 2 мл раствора на одно нервное кольцо при 18-20°С. Затем нервные кольца споласкивают от фермента чистым солевым раствором и на 2 ч помещают в промежуточный раствор следующего ионного состава, мМ: ЫаС1 80; КС1 1; СаС12 0,5; МдС1г 1,5; рН 5,5, содержащий 40% аминокислот и витаминов среды’ Игла. После этого нервную ткань переносят в бессывороточную питательную среду для культивирования и пипетированием выделяют нейроны. Количество выделенных нейронов составляет 800 на 1 нервное кольцо.
I
Пример 4. Выделяют нейроны из окологлоточных нервных колец НеНх ротарра (виноградная улитка). У£ловия выделения те же, что и в примере 1. Выход составляет 800 нейронов на 1 нервное кольцо.
Пример 5. Выделяют нейроны из окологлоточных нервных колец Ηεϋχ ротаРРа (виноградная улитка). Условия выделения те же, что в примере 2. Вы5 9
ход составляет 900 нейронов на 1 нервное кольцо»
Пример 6. Выделяют нейроны из окологлоточных нервных колец ίίβΐΐχ рошаНа (виноградная улитка). Условия аналогичные примеру 3. Выход составляет 1000 нейронов на 1 нервное кольцо.
Таким образом, предложенный способ позволяет повысить жизнеспособность нейронов,' что увеличивает количество получаемых нейронов до 800-1000 на одно нервное кольцо, тогда как при использовании известного способа только 100-150 на одно нервное кольцо, 15 при этом время жизни нейронов в культуре увеличивается с 2 недель (известный способ) до 1 ,5-2 месяцев и все жизнеспособные нейроны способны регенерировать аксоны. 20

Claims (1)

  1. Формула изобретения
    Способ выделения нейронов из нервной ткани моллюсков путем обработки
    нервной ткани раствором проназы, при1
    3254 6
    готовленным на физиологическом растворе, содержащем хлористый натрий, хлористый калий, хлористый кальций, хлористый магний с последующей дезаг
    5 регацией ткани на отдельные нейроны, отличающийся тем, что, с целью повышения жизнеспособности нейронов, физиологический раствор для проназы дополнительно содержит ,0 кислый углекислый натрий, а компонен· ты раствора взяты в следующем соотношении , мМ:
    Хлористый натрий 90 " ИО
    Хлористый калий 4-6
    Хлористый кальций 1,8— 2,'2
    Хлористый магний 0,8 - 1,5
    Кислый углекислый
    натрий 3-5
    при этом перед дезагрегацией ткань выдерживают при рН 7,5-7,8 в 40%-ном растворе среды Игла, разведенной физиологическим раствором при рН 5»5.
SU792742214A 1979-03-27 1979-03-27 Способ выделения нейронов из нервной ткани моллюсков SU913254A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU792742214A SU913254A1 (ru) 1979-03-27 1979-03-27 Способ выделения нейронов из нервной ткани моллюсков

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU792742214A SU913254A1 (ru) 1979-03-27 1979-03-27 Способ выделения нейронов из нервной ткани моллюсков

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU913254A1 true SU913254A1 (ru) 1982-03-15

Family

ID=20817599

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU792742214A SU913254A1 (ru) 1979-03-27 1979-03-27 Способ выделения нейронов из нервной ткани моллюсков

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU913254A1 (ru)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KNOWLES et al. Endocrine control in the Crustacea
Spindler et al. Induction of metamorphosis by bacteria and by a lithium-pulse in the larvae of Hydractinia echinata (Hydrozoa)
Roberts Photoreception and entrainment of cockroach activity rhythms
Barrnett et al. Histochemical demonstration of esterases by production of indigo
DE69333874T2 (de) Verwendung von vier K-252a Derivaten
Di Nardo et al. The physiology of homeoprotein transduction
PE28797A1 (es) Derivados del acido arilsulfonilamino hidroxamico
Milsom The phylogeny of central chemoreception
Rothschild Sea‐urchin spermatozoa
CN104479027B (zh) 一种防治老年痴呆的药物
Schlosser et al. Evolution of Nerve Development in Frogs; pp. 94–112: II. Modified Development of the Peripheral Nervous System in the Direct-Developing Frog Eleutherodactylus coqui (Leptodactylidae)
Hunt et al. Specification of positional information in retinal ganglion cells of Xenopus: stability of the specified state
Warren Surgical pathology and therapeutics
Roberts et al. Analysis of mutual circadian pacemaker coupling between the two eyes of Bulla
SU913254A1 (ru) Способ выделения нейронов из нервной ткани моллюсков
ES2219060T3 (es) Utilizacion de diltiazem para el tratamiento de patologias de la retina.
Jacklet Neurobiology of circadian rhythms generators
Rothman Role of bile salts in the biology of tapeworms. I. Effects on the metabolism of Hymenolepis diminuta and Oochoristica symmetrica
Lowe The action of various pharmacological and other chemical agents on the chromatophores of the brook trout Salvelinus fontinalis Mitchill
Hume THE EFFECT OF RADIATION WITH THE MERCURY-VAPOUR QUARTZ LAMP ON THE GROWTH OF RATS FED ON A DIET DEFICIENT IN VITAMIN A.
US5843892A (en) Stimulation of nerve growth and/or vitality
Gomot The organotypic culture of invertebrates other than insects
Dietzel et al. Development of dopamine-containing neurons and dopamine uptake in embryos of Hirudo medicinalis
Frohlich et al. Susceptibility to convulsions in relation to age. II. Influence of bile in rats
DE69838303T2 (de) Derivate hydroxyprolin