SU857145A1 - Method of preparing sorbent for purification of yeast hexokinase - Google Patents
Method of preparing sorbent for purification of yeast hexokinase Download PDFInfo
- Publication number
- SU857145A1 SU857145A1 SU792850072A SU2850072A SU857145A1 SU 857145 A1 SU857145 A1 SU 857145A1 SU 792850072 A SU792850072 A SU 792850072A SU 2850072 A SU2850072 A SU 2850072A SU 857145 A1 SU857145 A1 SU 857145A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- buffer solution
- hexokinase
- sorbent
- specific activity
- yeast
- Prior art date
Links
Landscapes
- Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
- 1 . - one .
Изобретение относитс к энзимологии и. прелназначаетс дл создани легкодоступного способа получени сор бента дл очистки дрожжевой гексоккназы , используемой в качестве важного аналитического реактива дл определени содержани адеиоэинтрифссфата, глюкозы и других гексоз в биологических жидкост х в медицинской и научной практике.This invention relates to enzymology and. It is intended to create an easily accessible method for the preparation of a sorbent for the purification of yeast hexoknase used as an important analytical reagent for determining the content of adeioeintrythrin, glucose and other hexoses in biological fluids in medical and scientific practice.
Дл выделени и очистки дрожжевой гексокиназы известен р д ионообменных сорбентов, среди которых наиболее часто используютс ионообменные целлюлозы (КМ, ДЭАЭ, ТЭАЭ идр.), которые получают после ее соответствующей химической модификации fll .To isolate and purify yeast hexokinase, a number of ion exchange sorbents are known, among which ion exchange celluloses (KM, DEAE, TEAE and others) are most commonly used, which are obtained after its corresponding chemical modification fll.
Однако сорбенты данного типа обладают р дом существенных недостатков: низкой степенью селективности по отношению к определенному классу ферментов , низкой степенью очистки фермента , вследствие чего они приемпею , как правило, только в качестве составных стадий общих схем очистки фермента .However, sorbents of this type have a number of significant drawbacks: a low degree of selectivity with respect to a certain class of enzymes, a low degree of purification of the enzyme, as a result of which they are generally accepted, as a rule, only as part of the general schemes of purification of the enzyme.
Более зффективным методом выделени и очистки ферментов вл етс аффинна хроматографи с использованием биоспецнфических сорбентов. Известны единичные случаи применени биоспецифических сорбентов дл выделени и очистки дрожжевой гексокиназы 12) и З.A more efficient method for the isolation and purification of enzymes is affinity chromatography using biospecific sorbents. Isolated cases of biospecific sorbents for isolating and purifying yeast hexokinase 12) and H. are known.
Однако сорбенты данного типа также обеспечивают лишь частичную очистку фермента и нос т чисто научный характер .. Возможности практического применени сорбентов данного типа ограничены или полностью исключаютс из-за дороговизны продуктов, используе1« х дл синтеза сорбентов, сложности синтеза и низкой рабочей стабильности получаемых сорбентов.However, sorbents of this type also provide only partial purification of the enzyme and are of a purely scientific nature. Possibilities of practical application of sorbents of this type are limited or completely eliminated due to the high cost of products used for the synthesis of sorbents, the complexity of synthesis and the low working stability of the resulting sorbents.
Наибопее близким по технической сущности к предлагаемому вл етс способ получени сорбента дл очистки дрожжевой гексокиназы, который заключаетс в присоединении лигандач- (32Q -г1минопирндин)-адениндинуклеоТ1ша к полисахаридной матрице, в качестве которой используют 6-аминокапроилсефарозу , причем указанное взаимодействие провод т в присутствии водорастворимого гидрохлорида 1-этил-3-(3-ди- метиламинопропил)-карбодиимида при рЯ 4,75 в течение 24 ч 43.The closest in technical essence to the present invention is a method for obtaining a sorbent for purifying yeast hexokinase, which consists in attaching a ligand (-32 Q-aminopyrndine) adenine dinucleotide to the polysaccharide matrix, which is used as a 6-aminocaproyl sepharose, a wire, a wire, a wire, a wire, a wire, a wire, a wire, and a conductor; 1-ethyl-3- (3-di-methylaminopropyl) -carbodiimide hydrochloride with a pL of 4.75 for 24 hours 43.
Однако известный способ получени 30 сорбента дл хроматографической очистки дрожжевой гексокиназы обладает р дом , существенных недостатковHowever, a known method for preparing 30 sorbents for chromatographic purification of yeast hexokinase has a number of significant drawbacks.
Во-первых, исходна матрица, ис полЕ зуема дл получени сорбента вл етс дорогосто щей, низкостабкльной к действию механических и химических факторов, вследствие чего ограничиваетс или полностью исключаетс возможность использовани сорбентов , полученных на ее основе дл препаративного выделени и очистки ферментов .First, the initial matrix used for the preparation of the sorbent is expensive, low-stability to the action of mechanical and chemical factors, as a result of which the possibility of using the sorbents obtained on its basis for the preparative isolation and purification of enzymes is limited or completely eliminated.
Во-вторых, испопьэуе.мыи в качестве лиганда сорбента (З-аминопиридин) адениндикуклеотид вл етс труднодоступным и дорогосто щим веществом, обладакл2;(им недостаточной химической стабильностью, синтез его сложен и многостадиен, что в конечном счете ведет к дороговизне сорбента на его основе в целом и исключает возможность использовани сорбента дл практических целей сSecondly, as a ligand of the sorbent (3-aminopyridine), adenine dicucleotide is difficult to use and expensive to have, 2; (it lacks chemical stability, its synthesis is complex and multistage, which ultimately leads to expensive sorbent based on it as a whole and excludes the possibility of using the sorbent for practical purposes with
В-тратьих, селективность сорбента по OTHODjeHHK) к дрожжевой гексокиназе вл етс невысокой, ибо приводимый общий фактор очистки фер(.ента даже в пиковой фракции составл ет 20 раз и приводит к получению првпарг та фермента с чистотой, с6ставл юи;ей 20%, при этом нет сведений о степени .сохранени актибности десорбированного фермента .In other words, the sorbent selectivity for OTHODjeHHK) to yeast hexokinase is low, because the reducible total purification factor for ferments (even in the peak fraction is 20 times and results in the preparation of enzyme with purity of 6%; it is 20% however, there is no information on the extent to which the susceptibility of the desorbed enzyme is active.
Цель изобретени - упрощение процесса получени сорбента дл очистки дрожжевой гексокинаэы и повышение селективной сорбционной способности сорбента.The purpose of the invention is to simplify the process of obtaining a sorbent for the purification of yeast hexokinae and increase the selective sorption capacity of the sorbent.
Поставленна цель достигаетс согласно способу получени сорбента дл очистки дрожжевой гаксокнназы, заклю чак демус в присоедкнении лиганда к полисахарндной матрице фосфатцеллюлоэе путем обработки последней раствором , содержащим ионы хрома (i И) при мельком соотаошекии ионов хрома (if) и фосфатных остатков (0,):1 в 0,08-0,1 М ацетатном буферном растворе рН 5,4-5,8.The goal is achieved according to the method of obtaining a sorbent for the purification of yeast hyxocnnase, the end of which is the connection of the ligand to the polysaccharide phosphate cellulose matrix by treating the latter with a solution containing chromium ions (i and) with a gleam of chromium ions (if) and phosphate residues with imitation chromium ions (i and I) and with phosphate residues (if) and phosphate residues (0) containing 0 1 in 0.08-0.1 M acetate buffer solution pH 5.4-5.8.
Обработку фосфатцеллюлоэы С г -содержащим раствором обычно осуществл ют при посто нном перемешивании в течение 20-24 ч.Treatment of phosphate-cellulose With g-containing solution is usually carried out with constant stirring for 20-24 hours.
Концентраци ионов хрома (Mi) в сорбенте, полученном предлагаемым способом , составл ет 200-800 мкМ/г сорбента .The concentration of chromium ions (Mi) in the sorbent obtained by the proposed method is 200-800 µM / g of sorbent.
При этом следует отметить, что при снижении концентрации ионов хрома () {ниже 200 мкМ/г сорбента) вплоть до его отсутстви в фосфатцеллюлоэе сорбци дрожжевой гексокиназы снижаетс до полного отсутстви сорбции на незар женной иойами Сг фосФатцеллюлозе . С другой стороны, при Дсшьнеййкгм увеличении концентрации ионов хрома выше 800 мкМ/г сорбента происходит необратима сорбци фермента .It should be noted that with a decrease in the concentration of chromium ions () {below 200 µM / g of sorbent), until it is absent in the phosphate cellulose sorption of yeast hexokinase, it decreases to a complete absence of sorption on uncharged Cr phosphate cellulose. On the other hand, when the concentration of chromium ions is higher than 800 μM / g of sorbent, the sorption of the enzyme is irreversible.
.ПреиГ1 ществом предлагаемого способа вл етс то,.что исключаетс .необходимость использовани сложных химических превращений, дорогосто 1ЧИХ и труднодоступных веществ, упроJ . щаетс в целом методика получени сорбента. При этом, добавлением ионов хрома ((М) к легкодоступной фосфатцеллюлозе в матрицу вводитс необходимое количество иона металла, вл ющегос эффективным сорбционнымThe advantages of the proposed method are that which eliminates the need to use complex chemical transformations, expensive and difficult to access substances, simplified. In general, the sorbent preparation method is used. At the same time, by adding chromium ions ((M) to readily available phosphate cellulose, the required amount of metal ion is introduced into the matrix, which is an effective sorption
центром св зывани данного фермента, что приводит к повышению селективной сорбционной способности сорбента.center of binding of this enzyme, which leads to an increase in the selective sorption capacity of the sorbent.
Дл получени сорбента и его при енени дл очистки дрожжевой гексо5 кинаэы используют следующую основную аппаратуру: лабораторна аппаратура дл получени сорбента, хроматографические колонки, спектрофотометр СФ-16.To obtain the sorbent and its preparation, the following basic equipment is used to purify the yeast hexoin5 kinae: laboratory apparatus for the preparation of the sorbent, chromatographic columns, and an SF-16 spectrophotometer.
Q Материалы фосфатцеллюлоза(производства Олайнского завода химреактивов ) с аналитической емкостью-0,71 ,1 мг-экв/г, С г, (SOj, ),j 6H,Q , нтарна кислота, уксусна кислота, натрий уксуснокислый, дрожжева гексокиназа.Q Phosphate cellulose materials (produced by the Olaine Chemicals Plant) with an analytical capacity of 0.71, 1 mEq / g, C g, (SOj,), j 6H, Q, succinic acid, acetic acid, sodium acetic acid, yeast hexokinase.
пример 1. Получение сорбента .Example 1. Obtaining a sorbent.
В круглодонную колбу, снабженную механической мешалкой, ввод т 5,0 г сульфата хрома ( М ) С гг ( SOi, )з, ,In a round bottom flask equipped with a mechanical stirrer, 5.0 g of chromium sulfate (M) C yr (SOi,) 3,
800 мл ОД М ацетатного буферного раствора рН 5,6 и 10,0 г фосфатцеллюлозы (ОЗХР). Содержимое колбы перемешивают в течение 20-24 ч. По окончании реакции сорбент отфилт тровывают, промывают водой 0,1 М раствором нтарной кислоты дл удалени избыточного хрома { И t ).800 ml of OD M acetate buffer pH 5.6 and 10.0 g of phosphate cellulose (OPR). The contents of the flask are stirred for 20-24 hours. At the end of the reaction, the sorbent is filtered off, washed with water with a 0.1 M solution of succinic acid to remove excess chromium (I).
Концентраций) ионов хрома ( I М ) в сорбенте определ ют из разницы егоThe concentrations of chromium ions (I M) in the sorbent are determined from the difference
концентраций в начальном растворе и растворе после зар дки фосфатцеллюлозы спектрофотометрически с этилендиаминотетрауксусной кислотой (ЭДТА) при 525 нм.The concentrations in the initial solution and the solution after phosphate cellulose charging are spectrophotometrically with ethylene diamine tetraacetic acid (EDTA) at 525 nm.
П р и М а р 2. Очистка дрожжевойPR and M and p 2. Purification of yeast
гексокйназы.Hexocynase.
а) 2,0 г комплекса фосфатцелллюлоэы с ионами хрома (Ml) загружают вa) 2.0 g of phosphate cellulose complex with chromium ions (Ml) is loaded into
хроматографическую колонку (1 к 20 см) уравновешивают 5 мМ сукцннатным буферным раствором рН 6,0, содержащим 0,5 ЭДТА и нанос т 4,0 мм ферментного раствора дрожжевсШ гексокиназыthe chromatographic column (1 to 20 cm) is equilibrated with 5 mM of succinate buffer solution pH 6.0, containing 0.5 EDTA and 4.0 mm of the enzyme solution of yeast hexokinase is applied
Claims (2)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU792850072A SU857145A1 (en) | 1979-10-01 | 1979-10-01 | Method of preparing sorbent for purification of yeast hexokinase |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU792850072A SU857145A1 (en) | 1979-10-01 | 1979-10-01 | Method of preparing sorbent for purification of yeast hexokinase |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU857145A1 true SU857145A1 (en) | 1981-08-23 |
Family
ID=20863779
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU792850072A SU857145A1 (en) | 1979-10-01 | 1979-10-01 | Method of preparing sorbent for purification of yeast hexokinase |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU857145A1 (en) |
-
1979
- 1979-10-01 SU SU792850072A patent/SU857145A1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0153763B1 (en) | Affinity chromatography matrix with built-in reaction indicator | |
Guilford | Chemical aspects of affinity chromatography | |
Lee et al. | Purification of kinases by general ligand affinity chromatography | |
SU857145A1 (en) | Method of preparing sorbent for purification of yeast hexokinase | |
Porath | Development of modern bioaffinity chromatography (a review) | |
Ramseyer et al. | The use of affinity chromatography in purification of cyclic nucleotide receptor proteins | |
Ramadan et al. | α-Aminoacyl hydroxamate adsorbents—a new type of immobilized chelator | |
Grant et al. | Optimisation of Conditions for the Affinity Chromatography of Human Enterokinase on Immobilised p‐Aminobenzamidine: Improvement of the Preparative Procedure by Inclusion of Negative Affinity Chromatography with Glycylglycyl‐aniline | |
Irving et al. | Studies on the interaction between rabbit liver pyruvate kinase and its allosteric effector fructose 1, 6-diphosphate | |
Nishikawa et al. | Design parameters in affinity chromatography | |
US4350767A (en) | Method for isolating and purifying enzymes from a crude enzyme solution | |
SU874754A1 (en) | Method of purifying yeast hexokinase | |
Bering et al. | Purification of Bovine Carbonic Anhydrase by Affinity Chromatography: An Undergraduate Biochemistry Laboratory Experiment | |
US4308204A (en) | Process for preparing the third component of the complement from human blood plasma | |
SU615087A1 (en) | Method of obtaining immobilized nicotineamideadeninedinucleotide (per)-depending ferments | |
Yue et al. | Separation of Heparin into Subtractions by DEAE-Cellulose Chromatography | |
JPS6463378A (en) | Separation of single stranded tpa and double standard tpa | |
CA1130229A (en) | Method for isolating mb creatine kinase | |
JPH0696598B2 (en) | Antibody purification method | |
Hayashi | Application of Affinity Chromatography to Amino-acyl-ribonucleic Acid Synthetase I | |
Clonis et al. | High-performance dye-ligand chromatography | |
SU1655534A1 (en) | Method for obtaining affinic sorbent for fractionating nucleic acids | |
SU1479511A1 (en) | Method of producing affinic sorbent | |
SU1114699A1 (en) | Method for isolating leucineamino peptidase | |
JPS5685298A (en) | Preparation of 7-aminocephem compound |