SU810180A1 - Nutrient medium for cultivating beauveria bassianu(bals) vuill - Google Patents
Nutrient medium for cultivating beauveria bassianu(bals) vuill Download PDFInfo
- Publication number
- SU810180A1 SU810180A1 SU792808323A SU2808323A SU810180A1 SU 810180 A1 SU810180 A1 SU 810180A1 SU 792808323 A SU792808323 A SU 792808323A SU 2808323 A SU2808323 A SU 2808323A SU 810180 A1 SU810180 A1 SU 810180A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- nutrient medium
- sugar
- potassium phosphate
- feed
- bals
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
Изобретение относится к области производства энтомопатогенных препаратов, применяемых в сельском и лесном хозяйстве для борьбы с вредными насекомыми. Более точно, объектом изобретения является питательная среда для выращивания несовершенных грибов вида Beauveria bassiana (Bals) Vuili.The invention relates to the production of entomopathogenic preparations used in agriculture and forestry to combat harmful insects. More specifically, an object of the invention is a nutrient medium for growing imperfect fungi of the species Beauveria bassiana (Bals) Vuili.
Известна питательная среда для выращивания энтомопатогенных грибов, которая в качестве источника углеводов содержит сахарозу [1].Known nutrient medium for growing entomopathogenic fungi, which contains sucrose as a source of carbohydrates [1].
Известна также питательная среда для выращивания грибов вида Beauveria bassiaпа, в состав которой входят распределенные в воде глюкоза и минеральные соли, представленные однозамещенным фосфорнокислым калием КН2РО4, сернокислым аммонием (NH4)2SO4 и сернокислым магнием MgSO4 [2].A nutrient medium for growing mushrooms of the Beauveria bassiapa species is also known, which includes glucose and mineral salts distributed in water, which are monosubstituted potassium phosphate KH 2 PO 4 , ammonium sulfate (NH 4 ) 2 SO 4 and magnesium sulfate MgSO 4 [2].
В состав указанной среды входят также дрожжевой автолизат и пептон при следующем содержании компонентов в г/л воды: глюкоза — 20, однозамещенный фосфорнокислый калий КН2РО4 — 2, сернокислый аммоний (NH4)2SO4 — 1, сернокислый магний MgSO4 — 1·, дрожжевой автолизат — 1, пептон — 10.The composition of this medium also includes yeast autolysate and peptone with the following components in g / l of water: glucose - 20, monosubstituted potassium phosphate KN 2 PO 4 - 2, ammonium sulfate (NH 4 ) 2 SO 4 - 1, magnesium sulfate MgSO 4 - 1 ·, yeast autolysate - 1, peptone - 10.
Недостатком известных питательных сред является относительно низкий выход биомассы микроорганизма. Кроме того, глюкоза является дорогим продуктом.A disadvantage of the known nutrient media is the relatively low yield of biomass of the microorganism. In addition, glucose is an expensive product.
Целью изобретения является увеличение выхода биомассы боверин и снижение стои5 мости питательной среды, на которой выращивают этот гриб.The aim of the invention is to increase the yield of boverin biomass and reduce the cost of the nutrient medium on which this fungus is grown.
Цель достигается тем, что в питательной среде, содержащей распределенные в воде источник углеводов и минеральные соли, в Ю качестве источника углеводов использован кормовой гидролизный сахар, имеющий pH 5,5—6 и состоящий в вес. % на абсолютно сухое вещество: гексоз 20—70, пентоз 10— 60, сахаристый остаток 1 —12, зольные ве15 щества 3—7, протеин 1—7, жир^ 1—3, лигнин 1—3, при этом компоненты питательной среды имеют следующее соотношение в г/л воды: кормовой гидролизный сахар 49—51, однозамещенный фосфорнокислый калий 20 1,9—2,1, сернокислый аммоний 0,9—1,1. Эта питательная среда обеспечивает увеличение выхода биомассы Beauveria bassiana по сравнению с известной средой на 60%. Это можно объяснить богатым содержанием 25 различных питательных компонентов в кормовом гидролизном сахаре и отсутствием токсических и других элементов, подавляющих развитие гриба. Увеличение выхода биомассы гриба достигнуто при исключении 30 глюкозы, дрожжевого автолизата и пептона.The goal is achieved by the fact that in a nutrient medium containing a source of carbohydrates and mineral salts distributed in water, fodder hydrolysis sugar, having a pH of 5.5-6 and consisting in weight, is used as a source of carbohydrates. % on absolutely dry matter: hexose 20–70, pentose 10–60, sugar residue 1–12, fly ash 3–7, protein 1–7, fat 1–3, lignin 1–3, while the components of the nutrient medium have the following ratio in g / l of water: feed hydrolysis sugar 49-51, monosubstituted potassium phosphate 20 1.9-2.1, ammonium sulfate 0.9-1.1. This nutrient medium provides a 60% increase in the biomass yield of Beauveria bassiana compared to the known medium. This can be explained by the rich content of 25 different nutrient components in feed hydrolysis sugar and the absence of toxic and other elements that inhibit the development of the fungus. An increase in the yield of fungal biomass was achieved with the exception of 30 glucose, yeast autolysate, and peptone.
Следовательно, изобретение позволяет не только увеличить выход биомассы гриба, но и снизить стоимость питательной среды.Therefore, the invention allows not only to increase the yield of fungal biomass, but also to reduce the cost of the nutrient medium.
Питательная среда в соответствии с основным решением может иметь также следующий состав компонентов в г!л воды: кормовой гидролизный сахар 49—51, КН2РО4 1,9-2,1, (NH4)2SO4 0,9-1,1,The nutrient medium in accordance with the main solution may also have the following composition of components in g! L of water: feed hydrolysis sugar 49-51, KH 2 PO 4 1.9-2.1, (NH 4 ) 2 SO 4 0.9-1 ,1,
MgSO4 0,9—1,1, дрожжевой автолизат 0,9— 1,1, пептон 9—11.MgSO 4 0.9-1.1, yeast autolysate 0.9-1.1, peptone 9-11.
При выращивании гриба поверхностным способом готовят конидиальную суспензию. Исходную культуру выращивают в пробирке на стерильной среде с сусло-агаром в течение 7—10 суток. Затем определяют титр суспензии и производят расчет посевного материала.When growing the fungus by a surface method, a conidial suspension is prepared. The initial culture is grown in vitro on a sterile medium with wort agar for 7-10 days. Then determine the titer of the suspension and calculate the seed.
Одновременно с приготовлением конидиальной суспензии готовят питательную среду, которая содержит воду, кормовой гидролизный сахар, имеющий pH 5,5—6, и минеральные соли: однозамещенный фосфорнокислый калий КН2РО4, сернокислый аммоний (NH4)2SO4 и сернокислый магний MgSO4. Кормовой гидролизный сахар содержит в вес. % на абсолютно сухое вещество: гексоз 20—70, пентоз 10—60, сахаристый остаток 1 —12, зольные вещества 3—7, протеин 1—7, жир 1—3, лигнин 1—3.Simultaneously with the preparation of the conidial suspension, a nutrient medium is prepared that contains water, feed hydrolysis sugar, having a pH of 5.5–6, and mineral salts: monosubstituted potassium phosphate KH 2 PO 4 , ammonium sulfate (NH 4 ) 2 SO 4 and magnesium sulfate MgSO 4 . Hydrolytic feed sugar contains in weight. % of absolutely dry matter: hexose 20–70, pentose 10–60, sugar content 1–12, ash substances 3–7, protein 1–7, fat 1–3, lignin 1–3.
Соотношение компонентов питательной среды в г!л воды составляет: кормовой гидролизный сахар 49—51, однозамещенный фосфорнокислый калий 1,9—2,1, сернокислый аммоний 0,9—1,1. В состав питательной среды могут быть дополнительно введены дрожжевой автолизат 0,9—1,1 г и пептон 9—11 г на 1 л воды.The ratio of the components of the nutrient medium in g! L of water is: feed hydrolysis sugar 49-51, monosubstituted potassium phosphate 1.9-2.1, ammonium sulfate 0.9-1.1. A yeast autolysate of 0.9-1.1 g and peptone 9-11 g per 1 liter of water can be added to the composition of the nutrient medium.
Питательную среду стерилизуют, например автоклавированием ее при давлении 0,75 атм и температуре 120°С в течение 30—40 мин. После охлаждения питательной среды ниже 35° С ее засеивают конидиальной суспензией гриба из расчета 1,5-1,8 млн!см2 и выращивают 10 суток.The nutrient medium is sterilized, for example, by autoclaving it at a pressure of 0.75 atm and a temperature of 120 ° C for 30-40 minutes. After cooling the nutrient medium below 35 ° C, it is inoculated with a conidial suspension of the fungus at the rate of 1.5-1.8 million cm 2 and grown for 10 days.
Пример 1. Культивирование гриба ведут на питательной среде, содержащей 500 мл воды, 10 г глюкозы, 1 г однозамещенного фосфорнокислого калия, 0,5 г сернокислого аммония, 0,5 г сернокислого магния, 0,5 г дрожжевого автолизата и 5 г пептона. Выход биомассы гриба на этой питательной среде составляет 55 г.Example 1. The cultivation of the fungus is carried out on a nutrient medium containing 500 ml of water, 10 g of glucose, 1 g of monosubstituted potassium phosphate, 0.5 g of ammonium sulfate, 0.5 g of magnesium sulfate, 0.5 g of yeast autolysate and 5 g of peptone. The yield of fungal biomass in this nutrient medium is 55 g.
Пример 2. Культивирование гриба ведут на питательной среде, содержащей 500 мл воды, 25 г по сухому веществу кормового гидролизного сахара, 1 г однозамещенного фосфорнокислого калия, 0,β г сернокислого магния. Кормовой гидролизный сахар имеет pH 5,5, содержит по абсолютно сухому веществу в вес. %: гексоз 60, пентоз 25, сахаристый остаток 7, зольные вещества 1,6, протеин 1—8, жир 0,6, лигнин 4.Example 2. Cultivation of the fungus is carried out on a nutrient medium containing 500 ml of water, 25 g of dry matter of feed hydrolysis sugar, 1 g of potassium phosphate monosubstituted, 0, β g of magnesium sulfate. Hydrolytic feed sugar has a pH of 5.5, contains absolutely dry matter in weight. %: hexose 60, pentosis 25, sugar residue 7, ash 1.6, protein 1-8, fat 0.6, lignin 4.
Выход биомассы гриба на этой питательной среде составляет 85 г.The yield of fungal biomass in this nutrient medium is 85 g.
Пример 3. Культивирование гриба ведут на питательной среде, содержащей 500 мл воды, 25 г по сухому веществу кормового гидролизного сахара, 1 г однозамещенного фосфорнокислого калия, 0/5 г сернокислого аммония, 0,5 г сернокислого магния, 0,6 г дрожжевого автолизата и 5 г пептона. Кормовой гидролизный сахар имеет pH 6 и содержит по абсолютно сухому веществу в вес. %: гексоз 65, пентоз 21, сахаристый остаток 6, зольные вещества 1,6, протеин 1,8, жир 0,6, лигнин 4.Example 3. Cultivation of the fungus is carried out on a nutrient medium containing 500 ml of water, 25 g of dry matter of feed hydrolysis sugar, 1 g of monosubstituted potassium phosphate, 0/5 g of ammonium sulfate, 0.5 g of magnesium sulfate, 0.6 g of yeast autolysate and 5 g peptone. Hydrolytic feed sugar has a pH of 6 and contains absolutely dry matter by weight. %: hexose 65, pentosis 21, sugar residue 6, ash 1.6, protein 1.8, fat 0.6, lignin 4.
Выход биомассы гриба на этой питательной среде составляет 102,6 а.The yield of fungal biomass in this nutrient medium is 102.6 A.
Как видно из приведенных примеров, предлагаемая питательная среда позволяет на 60—100% повысить выход биомассы по сравнению с известной средой. Кроме того, за счет замены глюкозы на кормовой гидролизный сахар снижается стоимость предлагаемой питательной среды.As can be seen from the above examples, the proposed nutrient medium allows to increase the yield of biomass by 60-100% in comparison with the known medium. In addition, by replacing glucose with feed hydrolysis sugar, the cost of the proposed nutrient medium is reduced.
Claims (2)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU792808323A SU810180A1 (en) | 1979-08-06 | 1979-08-06 | Nutrient medium for cultivating beauveria bassianu(bals) vuill |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU792808323A SU810180A1 (en) | 1979-08-06 | 1979-08-06 | Nutrient medium for cultivating beauveria bassianu(bals) vuill |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| SU810180A1 true SU810180A1 (en) | 1981-03-07 |
Family
ID=20845749
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU792808323A SU810180A1 (en) | 1979-08-06 | 1979-08-06 | Nutrient medium for cultivating beauveria bassianu(bals) vuill |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| SU (1) | SU810180A1 (en) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| ES2134174A1 (en) * | 1998-01-30 | 1999-09-16 | Univ Alicante | Process for the preparation of entomopathenogenic fungi through the use of almond mesocarp |
| WO2004052103A1 (en) * | 2002-12-12 | 2004-06-24 | Department Of Biotechnology | The process of preparing a biopesticide formulation for use against coffee berry borer (cbb) |
-
1979
- 1979-08-06 SU SU792808323A patent/SU810180A1/en active
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| ES2134174A1 (en) * | 1998-01-30 | 1999-09-16 | Univ Alicante | Process for the preparation of entomopathenogenic fungi through the use of almond mesocarp |
| WO2004052103A1 (en) * | 2002-12-12 | 2004-06-24 | Department Of Biotechnology | The process of preparing a biopesticide formulation for use against coffee berry borer (cbb) |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| KR20010023494A (en) | Rice blast control agent and wheat scab control agent | |
| US3634195A (en) | Production of lipase | |
| US3622463A (en) | Production of extracellular glucose isomerase by streptomyces | |
| EP0051637A1 (en) | Liquid culturing of sporulating, ectomycorrhizal fungi | |
| SU810180A1 (en) | Nutrient medium for cultivating beauveria bassianu(bals) vuill | |
| Janglová et al. | Regulation of biosynthesis of secondary metabolites: VII. Intracellular adenosine-5′-triphosphate concentration in Streptomyces aureofaciens | |
| US4021581A (en) | Culture of sour dough bacteria | |
| AU7879191A (en) | Proteinaceous compositions from filamentous microorganisms, the branching of which is regulated by calcium ion concentration | |
| CA1292962C (en) | Optimized nutrient conditions for producing microorganism secondary metabolites | |
| Strzelczyk et al. | Cellulolytic and pectolytic activity of streptomycetes isolated from root-free soil, rhizosphere and mycorrhizosphere of pine (Pinus sylvestris L.) | |
| Waksman et al. | Lactic Acid Production by Species of Rhizopus1 | |
| Fermor | Agaricus macrosporus: an edible fungus with commercial potential | |
| US3120472A (en) | Production of l-glutamic acid and alpha-ketoglutaric acids | |
| RU2172588C1 (en) | Strain of fungus beauveria bassiana (bals) vuill bkm f-3732d used for entopathogenic preparation preparing | |
| Porter | [1] Cultural conditions for antibiotic-producing microorganisms | |
| US5529927A (en) | "Alga species lobsphaera TM-33 (ATCC 75630) which is useful for preparing trehalase" | |
| Hacskaylo | Researching the potential of forest tree mycorrhizae | |
| KR890001127B1 (en) | Producing method for oligo-fructose | |
| SU439514A1 (en) | Method for producing lytic enzymes | |
| SU727687A1 (en) | Flammulina velutipes ibkf-112 strain as biomass producent | |
| SU861400A1 (en) | Method of culturing tissue culture of highest fungi | |
| SU574471A1 (en) | Trichoderma species mouldy mushroom strain-t-producer of cellolytic enzymes | |
| SU1697627A1 (en) | Nutritional medium for cultivation somatic structures of macroscopic fungus pleurotus ostreatus | |
| SU438683A1 (en) | Method for producing lactate dehydrogenase | |
| SU840099A1 (en) | Method of saccharification of starch raw material in alcohol production |