SU767090A1 - Method of eliminating sulfenyl groups from n-sulfenyl-aminoacids and n-sulfenylpeptides - Google Patents

Method of eliminating sulfenyl groups from n-sulfenyl-aminoacids and n-sulfenylpeptides Download PDF

Info

Publication number
SU767090A1
SU767090A1 SU782609922A SU2609922A SU767090A1 SU 767090 A1 SU767090 A1 SU 767090A1 SU 782609922 A SU782609922 A SU 782609922A SU 2609922 A SU2609922 A SU 2609922A SU 767090 A1 SU767090 A1 SU 767090A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
solution
nfs
ether
protected
added
Prior art date
Application number
SU782609922A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Роланд Эдуардович Вегнер
Людмила Константиновна Полевая
Гунар Игнатьевич Чипенс
Original Assignee
Ордена Трудового Красного Знамени Институт Органического Синтеза Ан Латвийской Сср
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ордена Трудового Красного Знамени Институт Органического Синтеза Ан Латвийской Сср filed Critical Ордена Трудового Красного Знамени Институт Органического Синтеза Ан Латвийской Сср
Priority to SU782609922A priority Critical patent/SU767090A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU767090A1 publication Critical patent/SU767090A1/en

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Description

(54) СПОСОБ ОТЩЕПЛЕНИЯ СУЛЬФЕНИЛЬНЫХ ГРУПП ОТ N-СУЛЬФЕВИЛАМИЯркиеЛОТ И N-СУЛЬФЕНИЛПЁПТИДОВ(54) METHOD OF SEPARATION OF SULPHENYL GROUPS FROM N-SULPHIVYLIAMYLKYLOTS AND N-SULPHENYL-PYTOPIDES

- . :: -:--:/:, ,- 1 , ; / ; Изобретение ОТНОСИТСЯ к улучшенному сгюсобу отщеплени : сульфёни1пЬ ных защитных Групп у М-сульфенилаМи нокислот и N-сульфёнилпёптйдбв и может; найти примейение в синтезе пеп тидов. . . . В качестве сУльфеНипьных групп в пептидной химий используют о-нитрофенилсульфенильную (Нфс), 2,4-динктрофенйлсульфенильную и пёнтахлор сульфенильНую группы |1 , но наибольшее распространение имеет Нфсэа1ЦиТйа  группа. ,. При отщеплении Нфс-группй кйслрТа ми (или другими соединени ми, обладающими кислым характером) у П1ептйдов , содержащих остатки; $-ацйла.мино метилцистеина, S-тритилцистейна, триптофана и тирозина, наблюдаютс  побочйые реакции, св занные с взаймс действием этих остаткс5в с образующимс  катионом о-нитрофёнилсульфенйЛИЯ . например, при ртщепленйи Йфсгруппы у М-Нфс-5-ацетаминомётилцис теина хлористым.водородом вместо ожи даемого S-ацетаминометилцисТеина получаетс  S-Нфс-цисТеин 12} . Чтобы избежать этого, в насто щее врем  дл  отщеплениЯ сульфенильных групп используют нуклеоЛильные реагенты которые расщепл ют сульфениламидную св зь без образовани  реакцирнноспосЬбного катиона сульфенилй . Дл  препаЕ)аТивного применени  используют тиоамиды. Например тио .ацетамйд, тйобейзамид. Реакцию провод т в оргаНическс 4 растворителе в присутствии кислоты. Н$1 1 моль Нфс-пепТийа или Нфс-аминокислоты (содержащих одну Н с-группу) используют 2 trOf 3 или 4 2} моль тйоацетамида i НйлосТаТкстл известного способа  вл етс  йсйбльэование большого избыткатиодцетамида , что затрудн ет вьщеЛение и очистку деблокированного пептида или аминокислоты прсЛё ртщепЛени  Нфс-Г1руппы. Цель приедлагаемого изобретени  - упрощение процесса удалени  Нфс-защитных f-pynri. Поставленна  цель достигаетс  опиctisaeNttJM способом отщеплени  сульфенильных групп от М-сульфениламинокислот и Н-суЛьфенилпептиДов путем действи  на защищенные по тиольной функции М-сульфениламинокислоты N-сУльфенилпептиды тиоамйдом в среде органического растворител  в присутствии кислоты, заключающийс  в том. что количественно отщепл ют сульФенильную группу действием 0,5-0,6 мо тиоамида на 1 моль М-суль енильног производного.Предпочтительным вариантом спосо 6а  вл етс  использование в качеств сульфенильной группы о-нитрофенилсульфенильной группы в качестве тио амида-тиоацетамида и тиобензамида, дл  защиты тиольных функций использ ют S-тритильную группу. Реакцию провод т в инертном растворителе или смеси инертных раство рителей в присутствии слабой кислоть1 (предпочтительно уксусной) дл  протонировани  аминопёптида, напри .MQf), этанол --уксусна  кислот;а, эта НОЛ - этийацетат - уксусна  кислота Температура проведени  реакции , может/быть в пределах от О до 40°С, но предпочтительна комнатна , врем  проведени  реакции 0,5-24 ч,обычно 2-3 ч. Обработку реакционной смеси после .отщеплени  НФС-группы прово-д т согласно стандартным методам пе тидного синтеза. Способ позвол ет сократить расход тиоамида более чем в два раза (4-8 раз) ПО .сравнению с извес.тнйми спос бами отщеплени - Нфс-группатйоамида ми 1 и .Экономи  реаг.ента облегча етвьщеление целевого продукта и име ет особо важное значение.при отщеплении Ифс-группы и НФС-аминокислот ..после их. разделени  на энантиометрЫ различными .ме.тодами (при получении ог1тиЧескй активных аминокисЛ.от из рацематов). . В качестве примера использовани  тиоамида (тиобензамида).в количестве 0,5-0,6 моль на 1 моль Нфс-соединени  приведена методика синтеза дезамйноокситоцина , высокоактивного аШйЬга пептидйоЬо гормона окситоНсрс-ТирHflg - Ofte. Дцгк, Honip .. (в)Нре- Ttip- jje-one ii) -f muoSeffjaHiff 2)(трт )--omp (  I Мпр (Tpmj - Тчр - Me - О fie ( Sj Hnp{Tpmj--Tup-Hftt-OH Hcpf- Г f Я-. :: -:--:/:, ,- one , ; /; The invention relates to improved cleavage of: the sulfenyl protective groups in M-sulfenylMyno-acids and N-sulfenylpeptine and can; to find an application in the synthesis of peptides. . . . In peptide chemistry, o-nitrophenylsulfenyl (NFS), 2,4-dinktrofenylsulfenyl and pentachlorophenyl group | 1 are used as peptide chemistry, but the Nfse-1CiTya group is most prevalent. , In the process of cleavage of the NFS group, Kylslt mi (or other compounds with an acidic character) in P1yptydy containing residues; Methylcysteine, S-tritylcysteine, tryptophan, and tyrosine are observed, and side reactions are observed associated with the action of these residues 5b with the o-nitrofenylsulfenylLI cation. For example, in the presence of the fatty group of M-Nfs-5-acetaminomethylcyne thein chloride with hydrogen, instead of the expected S-acetaminomethylcyneTine, S-Nfs-cyTein 12 is obtained}. To avoid this, nucleolyl reagents are currently used to cleave the sulfenyl groups, which cleave the sulfenyl amide bond without forming the sulfenyl core. Thioamides are used for the prepaE of the application. For example thio. Acetamid, tyobejamid. The reaction is carried out in an organic solvent in the presence of an acid. H $ 1 1 mole NSF-pepTiya or NSF-amino acid (containing a H c-group) using 2 trOf 3 or 4, 2} mole tyoatsetamida i NylosTaTkstl known method is ysybleovanie large izbytkatiodtsetamida that hinders vscheLenie and purifying the deprotected peptide or amino acid prsLo Mercury Nfs-G1 groups. The purpose of the inventive invention is to simplify the process of removing Nfs protective f-pynri. This goal is achieved by describing the NttJM method by cleaving the sulfenyl groups from the M-sulfenylamino acids and H-bisphenyl peptides by acting on the thiol-protected functions of the M-sulfenylamino acids N-Ulphenyl peptides with thioamide in an organic solvent in the presence of an acid, which consists of: that the sulPhenyl group is quantitatively cleaved by the action of 0.5-0.6 mothioamide per 1 mol of the M-sulfyl derivative. A preferred variant of method 6a is to use the o-nitrophenylsulfenyl group as the thioamide thioacetamide and thiobenzamide as the sulfenyl group, protection of thiol functions use the S-trityl group. The reaction is carried out in an inert solvent or mixture of inert solvents in the presence of a weak acid1 (preferably acetic acid) for the protonation of the aminopeptide, for example .MQf), ethanol is acetic acid, and this NOL is ethylacetate-acetic acid The temperature of the reaction can / can be ranging from 0 to 40 ° C, but room temperature is preferred, the reaction time is 0.5-24 hours, usually 2-3 hours. Treatment of the reaction mixture after cleavage of the NSF group is carried out according to standard methods of synthesis. The method allows to reduce the consumption of thioamide by more than two times (4-8 times) in comparison with the known cleavage method of cleavage - HFC-group-amyamide 1 and. Saving reagent. It facilitates the elimination of the target product and is of particular importance. when splitting off the Ifs group and NFS-amino acids .. after them. separation into enantiomers by different .me.ds (upon receipt of the most active amino amines from racemates). . As an example of the use of thioamide (thiobenzamide). In an amount of 0.5–0.6 mol per 1 mol of the NFS compound, a procedure is presented for the synthesis of desaminooxitocin, a highly active anthrax peptide hormone, oxytoHcc-TyrHflg - Ofte. Dtsgk, Honip .. (c) Hre- Ttip- jje-one ii) -f muoSeffjaHiff 2) (trt) - omp (I Mpr (Tpmj - Tcr - Me - O fie (Sj Hnp {Tpmj - Tup-Hftt -OH Hcpf- G f I

O) Hnp(Tpff)-Tup-Hflt-rnH AcH-T- Цис(Гр/п)- Прв -Лей-Гни- NHiO) Hnp (Tpff) -Tup-Hflt-rnH AcH-T- Cys (Gy / n) - Prv-Leu-Rot-NHi

-f йод /80 % ijKcycHon Kttejtoma (nj Ппр - Tup - пле - rjJH- AcH - цие - Про - Лей - гла нн -f iodine / 80% ijKcycHon Kttejtoma (nj Appr - Tup - ple - rjJH- AcH - qie - Pro - Lei - lead

На 1 моль НФС-пептида израсходовано 0,5-0,6 моль тиобензамида . W цина. Все промежуточные продукты, получаемБ1е после отщеплени  Нфс-группы , могут быть использованы также дл  синтеза окситрцина. или других его аналогов. В качестве S-защиты применена 5 тритильна  группа, однако могут быть использованы также S-ациламинометильные группы, Дезаминоокситоцин синтезирован из двух блоков, N-концевого трипептида и С-концевого гексапептида (3+6) , которые получены поостаточным наращиванием пептидной цепи при помощи пентафторфениловых (Опф) эфиров НФС-аминокислот и Опф-эфира S-тритил.-2-меркаптопропионовой кислоты. Соединени  1-10 (см.схему), Опф-эфиры, получаемыеиз соответствующих кислот, дициклогексилкарбодиимида (ДЦГК) и пентафторфенола, могут быть применены дл  образовани  пептидной св зи также без их выделени  в индивидуальном виде, как в данном примере в случае производных L-глутамина, L-тирозина и..М-концевого трипепт.ида. Активированные эфиры тирозина со свободной гидроксильной группой склонны к межмолекул рнойконденсации , а. активированные эфиры глутамина претерпевают внутримолекул рнуюциклизацию с обр.азованием производных глутаримида. - . Дл  ускорени  завершени  реакции образовани  пептидной св зи (аминолиза пентафторфениловых эфиров) к реакционной смеси добавл ют 0,5-0,7 эквивалентов третичного основани  (N-метилмЬрфолина), которое частично нейтрализует выдел ющийс - в реакции кислый пёнтафторфенол. На последней стадии синтеза разбавленный раствор дитритилдезаминоксицина обрабатывают иодом и полуают Дезаминоокситоцин Про- fJeu-Гли- NH2 I -t-MiDC Цис(Трт) - ОПд (ч) С - (Tpmj - Про - лей- Гми - NHz (z) Jl) -h muoSsHSc iuS г)+- Hipc AcH-0 Hp - Цис(т/}т) - fjfo - Леи - Гли - NHj, /J I il} тиобензанид г)л-Н10С-Гпи-ОП1р «) -цис(грт)npo-Jleu-mu-NHg sj -t- muoffHifffrud Oflip 0.5-0.6 mol of thiobenzamide was consumed per mole of the NSF peptide. W qing. All intermediates obtained after the cleavage of the NFS group can also be used for the synthesis of oxytrcin. or its other analogues. As the S-protection, 5 trityl groups are used, however, S-acylaminomethyl groups can also be used, Desamino-Oxytocin is synthesized from two blocks, the N-terminal tripeptide and the C-terminal hexapeptide (3 + 6), which are obtained by sufficiently increasing the peptide chain using pentafluorophenyl (Opf) esters of NFS-amino acids and Opf-ester of S-trityl.-2-mercaptopropionic acid. Compounds 1-10 (cf. scheme), Opf-esters, obtained from the corresponding acids, dicyclohexylcarbodiimide (DCGC) and pentafluorophenol, can be used to form a peptide bond also without their isolation in an individual form, as in this example in the case of L- derivatives glutamine, L-tyrosine and..M-terminal tripept.ida. Activated tyrosine esters with a free hydroxyl group are prone to intermolecular condensation, a. activated glutamine esters undergo intramolecular cyclization with the formation of glutarimide derivatives. -. In order to accelerate the completion of the peptide bond formation reaction (aminolysis of pentafluorophenyl ethers), 0.5-0.7 equivalents of a tertiary base (N-methylmppholine) is added to the reaction mixture, which partially neutralizes the release of acidic pentafluorophenol in the reaction. At the last stage of the synthesis, the diluted solution of ditrityldeaminamine is treated with iodine and Proam-fJeu-Gly-NH2 I -t-MiDC Desamino-oxytocin Pro-fJeu-Gly-NH2-Cd (h) C - (Tpmj - Pro-leu-Gmi - NHz (z) Jl) is prepared. -h muoSsHSc iuS g) + - Hipc AcH-0 Hp - Cys (t / t) - fjfo - Lei - Gly - NHj, / JI il} thiobenzene d) l-H10C-Gy-OP1p ") -cis (grt ) npo-Jleu-mu-NHg sj -t-muoffHifffrud Oflip

Использованы следующие сокращеи :The following abbreviations are used:

НФС - о-нитрофенилсульфенил, 2-нитрофенилсульфенил, о-нитрофенилти о; (Трт)- S-ТРИТИЯ; ОПф - пентафторфениловый эфир; НОПф- пентафторфенол; ДЦКГ- дициклогексилкарбодиймид; АСН-, Гли-, -Глн-, -Иле-, -Лей-, -Про-, -Тир-, -Цис-, Мпр - соответственно L-аспарагинил, тлицил, 1-глутс1минил, L-изолейцил , L-лейцйл, L-пролил, L-тирозил, L-цистеинил, 2-меркаптопропионил. Синтезированный дезаминоокситоцйн проверен на оптическую чистоту путем анализа летучих производных (N-трифторацетилизопропиловых эфиров) аминокислот гидролизата дезаминоокситоцина газо-жидкостной хроматографией с использованием оптически активной стационарной фазы (циклогексилового эфира Н-трифторацетил-(.-норвалил-1 -норвалина ). Примеси 0-изомеров не превышали 0,5%, включа  производного изолейцина.NFS - o-nitrophenylsulfenyl, 2-nitrophenylsulfenyl, o-nitrophenylthi o; (Trt) - S-TRITIA; OPF - pentafluorophenyl ether; NOPF - pentafluorophenol; DCC - dicyclohexylcarbodiimide; ACH-, Gly-, -Gl-, -Ile, -Ley-, -Pro-, -Tir-, -Cis-, Mpr - respectively L-asparaginyl, tlicyl, 1-glut1-minil, L-isoleucil, L-leucil , L-prolyl, L-tyrosyl, L-cysteinyl, 2-mercaptopropionyl. Synthesized deaminoxytitcin was tested for optical purity by analyzing volatile derivatives (N-trifluoroacetylisopropyl ethers) of the amino acids of the deamino-oxytocine hydrolyzate by gas-liquid chromatography using optically active stationary phase (H-trifluoroacetyl cyclohexyl ester H-trifluoroacetyl-i-3-ch-3-chyro 3-ch-3-chyrometra 3). did not exceed 0.5%, including isoleucine derivative.

При характеристике продуктов температуры плавлени  определ ют в открытых капилл рах без поправки, чистоту продуктов провер ю с помощью тонкослойной хроматографии на силикагеле (пластинки Силуфол,KavaEiег, ЧССР), при этом используют следующие хроматографические системы:When characterizing the products, the melting points were determined in open capillaries without correction, the purity of the products was checked using thin-layer chromatography on silica gel (Silufol, KavaEieg, Czechoslovakia plates), using the following chromatographic systems:

(1)бензол,(1) benzene,

(2),эфир,(2) ether

(3)этилацетат,(3) ethyl acetate,

(4)хлороформ+метанол+уксусна  кислота 85+10+5 (мл),(4) chloroform + methanol + acetic acid 85 + 10 + 5 (ml),

(5)н-бутанол+уксусна  кислота+ +вода 4+1+1 (по объему).(5) n-butanol + acetic acid + water + 4 + 1 + 1 (by volume).

.Дл  .полупрепаративной хроматографии (при очистке веществ дл  элементного анализа) также использован силикагель .Примен емые в синтезе 0,1 М раствор серной кислоты, 0,2 М, раствор гидрогенкарбоната натри , 2 М раствор карбоната натри   вл ютс  водными растворами.For semi-preparative chromatography (for purification of substances for elemental analysis), silica gel is also used. Used in the synthesis is 0.1 M sulfuric acid solution, 0.2 M sodium hydrogen carbonate solution, 2 M sodium carbonate solution are aqueous solutions.

Пример 1. Пентафторфениловый эфир о-нитрофенилсульфенил-5-тритил-1-цистеинаг Нфс-Цис(Трт)-ОПф(1).Example 1. Pentafluorophenyl ether o-nitrophenylsulfenyl-5-trityl-1-cysteinag NFS-Cys (Trt) -Opf (1).

К раствору 12,1 г (23,4 м моль,мм) о-нитрофейилсульфенил-5-тритил-1-цистеина в 30 мл диоксана охлажденному до 15с добавл ют смесь, состо щую из 8,2 мл ЗМ раствора ДЦГК в диоксане и 8,2 мл 3 М раствора пентафторФелола в диоксане. Реакционную смесь перемешивают 3 ч, выпавший ос.адок дициклогексилкарбамида отфильтровывают и промывают его на фильтре диоксаном ( мл). Фильтрат упаривают до маслообразного остатка, который перемешивают с петролейным эфиром ( мм). Растворитель отдел ют де-. кантацией, после последней промывкиTo a solution of 12.1 g (23.4 mol mol, mm) of o-nitrofeylsulfenyl-5-trityl-1-cysteine in 30 ml of dioxane cooled to 15c is added a mixture consisting of 8.2 ml of a ZM solution of DCC in dioxane and 8.2 ml of 3 M solution of pentafluoroello in dioxane. The reaction mixture is stirred for 3 h, the precipitated precipitate is dicyclohexylcarbamide is filtered off and washed on the filter with dioxane (ml). The filtrate is evaporated to an oily residue, which is mixed with petroleum ether (mm). The solvent is separated de. cantation after the last wash

остаток дополнительно сушат в вакууме (40°С,0,1 fvjM рт.ст.) .Выход за . твердевшего пентафторфенилового эфира (Т) 15,1 .г (90%). т.пл.70-72°С; Rf 0,75 (1).. the residue is further dried under vacuum (40 ° C, 0.1 fvjMHg). The yield is over. hardened pentafluorophenyl ether (T) 15.1. g (90%). mp 70-72 ° C; Rf 0.75 (1) ..

Небольшую часть (0,5 г) пентафтор фенилового эфира (I) раствор ют в , -бензоле (2,5 мд)и раствор нанос т на колонку ( см), наполненную силикагелем , и элюируют бензолом. Собирают первую фракцию, окрашенную вA small portion (0.5 g) of pentafluoro phenyl ether (I) was dissolved in α-benzene (2.5 ppm) and the solution was applied to a column (cm) filled with silica gel and eluted with benzene. Collect the first fraction, painted in

О желтый цвет, упаривают (40°С) в вакууме растворитель, остаток растирают с петролейным эфиром ( мл) и сушат в вакууме над п тиокисью фосфора и гидроокисью натри . ВыходAbout yellow color, the solvent is evaporated (40 ° C) in vacuo, the residue is triturated with petroleum ether (ml) and dried in vacuum over phosphorus pentoxide and sodium hydroxide. Output

5 Нфс-Цис(Трт)-ОПф в процессе хроматографии 80%; т.пл. 77-79°С ;о(3 - 12,0 (с 0,5; диоксан).5 NFS-Cis (Trt) -OPF in the process of chromatography 80%; m.p. 77-79 ° C; o (3 - 12.0 (s 0.5; dioxane).

Найдено, % : С 60,10; Н 2,95; N 4,02.Found,%: C 60.10; H 2.95; N 4.02.

0Cj. H2aP5N204Ss 682,69).0Cj. H2aP5N204Ss (682.69).

Вычислено,: С 59,82; Н 3,40;Calculated: C 59,82; H 3.40;

N 4,10.N 4,10.

о-Нитрофенилсульфенил-5-тритил-1-цистеинил-Ь-пролил-И-лейцилглициламид , Нфс-Цис(Урт)-Про-Лей-Гли-МН2(2) .o-Nitrophenylsulphenyl-5-trityl-1-cysteinyl-L-prolyl-I-leucylglycylamide, Nfs-Cys (Urt) -Pro-Leu-Gly-MH2 (2).

5five

К раствору 14,0 г (20,5 мм)Нфс-Цис (Трт)-ОПф (1) в 40 мл диоксана, охл;ажденному до 15°С, добавл ют pacfтвор 5,8 г (20,5 мм) 1-пролил-1-лейцилглициламида в 20 мл диметилАорм0 амида. Смесь перемешивают 0,5 ч, затем по капл м добавл ют 1,6 мл (70%) N-метилморфолина и оставл ют на ночь при комнатной температуре.To a solution of 14.0 g (20.5 mm) of Nfs-Cys (Trt) -Opf (1) in 40 ml of dioxane, cooled down to about 15 ° C, add an extract of 5.8 g (20.5 mm) 1 -prolyl-1-leucylglycylamide in 20 ml of dimethylAorm0 amide. The mixture was stirred for 0.5 h, then 1.6 ml (70%) of N-methylmorpholine was added dropwise and left overnight at room temperature.

Растворители упаривают в вакууме,The solvents are evaporated in vacuo,

5 остаток растирают с этилацетатом (100 мл). Этилацетатный раствор последовательно промывают (3x30 мл) ОД М раствором, серной кислоты, водой , 0,2 М раствором гидрогенкарбо0 ната натри , водой, сушат над сульфатом натри  и упаривают (40°с) этилацетат в вакууме. Оставшеес  масло перемешивают(35°С )с петролейным эфиром ( Mjri) .5 residue is triturated with ethyl acetate (100 ml). The ethyl acetate solution was washed successively (3x30 ml) with an OD M solution, sulfuric acid, water, 0.2 M sodium hydrogen carbonate solution, water, dried over sodium sulfate and evaporated (40 ° C) with ethyl acetate in vacuo. The remaining oil is stirred (35 ° C) with petroleum ether (Mjri).

, Растворитель отдел ют декантацией , а после последней промывки остаток сушат в вакууме. Выход желтого тетрапептида (2) 14,4 г (90%);т.пл. 120-122°C;tc 3 - 62,2 (с 1,0; диокеан ); R 0,55 (4), 0,86 (5).The solvent is separated by decantation, and after the last wash, the residue is dried in vacuo. The yield of yellow tetrapeptide (2) is 14.4 g (90%); mp. 120-122 ° C; tc 3 - 62.2 (s 1.0; diokean); R 0.55 (4), 0.86 (5).

Найдено, % : С 62,54; Н 5,74; Found,%: C 62.54; H 5.74;

N 10,26.N 10.26.

% «46 60652 (782,99). Вычислено,%: С 62,89; Н 5,92;% “46 60652 (782.99). Calculated,%: C, 62.89; H 5.92;

М 10,73.M 10.73.

5 о-Нитрофенилсульфенил-1-аспарагинил-5-тритил-1-цистеинил-1-пролил-1-лейцилглициламид , Нфс-Цис(Трт)-Про-Лей-Гли-NHrj . (3).5 o-Nitrophenylsulfenyl-1-asparaginyl-5-trityl-1-cysteinyl-1-prolyl-1-leucylglycylamide, NFS-Cys (Trt) -Pro-Leu-Gly-NHrj. (3).

К раствору 14,3 г (18,3 мм) Нфс0 -Цис(Трт)-Про-Лей-Гли-ЫН,(2) в 60 мл этанола добавл ют 1,4 г Гю мм)тиобензамида и после растворени  реагента 3. мл уксусной кислоты. Смесь выдерживают при комнатной температуре 5 3 ч, отфильтровывают, выпавший «ел767090 ТЫЙ осадок побочных продукто:э. Фильтрат упаривают в вакууме, остаток раствор ют в смеси, состотцей из 20 мл эфира и 100 мл ОД М раствора серной кислоты. Эфирный слой отдел ют , водный слой, содержащий сульфат аминотетрапептида, экстрагируют эфиром до бесцветного эфирного сло  ( мл) и при 5°С добавл ют 2М, раствор карбоната натри  до рН раствора 9,0. Отдел ют выпавшее масло аминотетрапептида и промывают его водой ( мл). Вод ый слой дополнительно экстрагируют (3x20 мл) смесью , состо щей из хлороформа и этано ла 10+1 (по объему), которую добавл ют к маслу аминотетрапептида.После упаривани  (35°с) органических растворителей к твердому остатку {11 г 16,5 мм, 90%) аминотетрапептида добавл ют 50 мл диоксана, 7,5 г (16,5 мм)пентафторфенилового эфира О-нитрофенилсульфенил-1-аспарагина и после растворени  компонентов при добавл ют 0,9 мл (8 мм)(у метил морфолина. Смесь перемешивают 5ч, упаривают (40°С) растворители. Ост ток раствор ют в 100 мл этилацетата и раствор последов.ательно промывают ( мл) 0,1 М, раствором ..кислоты водой, 0,2 М раствором гидро генкарбоната натри , водой, сушат над сульфатом натри  и упаривают (40с) этилацетат в вакууме. После растирани  остатка с эфиром (2x30 мл выход пентапептида (3) 13,9 г (90% иэ расчета на аминотетрапептид; 85% из расчета на .защищенный тетрапептид т.пл. 133-134 С; Rr О, io (4), 0,60 (5). Небольшую часть .(0,3г) защищенно пентапептида (3) растворпют в-этано ле (3 мл) и раствор нанос т на коло ку (З 12 см) , .наполненную силикаге Лем. Элюируют этанолом, первую фргак цию, О1срашенную в желтый цвет отбра сывают; собирают вторую, основную желтоокрашенную фракцию, упаривают (40°С) растворитель и остаток расти . рают с эфиром ( мл). Выход очищенного защищенного пентапептида 85%; т.пл. 137-139°C;t5 62,9 с 0 диоксан). Найдено, % : С 59,85; Н 5,61; N 12,20; ( 897,09) . c gHgriN-iOeS i Вычислено,%: С 60,25; Н 5,84; N 12,49. 2. о Нитрофенилсуль Пример фенил-1.-глутаминил-1-аспарагинил-5-тритил-L-цистеинил-L-пролил-L-лейцилглициламид , Нфс-Глн-Асн-Цис(трт) -Про-Лей-Гли-МН (5). В 30 МЛ диоксана суспендируют 6,4 г (21,4 мм) о-нитрофенилсульфенил-1-глутамина , суспензию охлаждаю до 15°С и к ней добавл ют смесь, со сто щую из 7,4 мл (22,4 лм) 3 М рас твора диц клогексилкарбодиимида, а в иоксане и 21,4 мл (64,0 мм) М расвора пентафторфекола в диоксане. еакционную смесь перемешивают при 5°С 6 ч, причем желтый осадок о-нирофенилсульфенил-1-глутамина раство етс  и выпадает осадок дициклогекиЛкарбамида , который отфильтровыват , промывают на фильтре диоксаном ( мл) и фильтрат упаривают вакууме до маслообразного остатка. остатку добавл ют эфир (50 мл) , тфильтровывают малор.астворимый в фире осадок (1,0 г). Данные элементарного анализа осада согласуютс  предположением, что садок  вл етс  имидом о-нитрофенилульфенил-1-глутаминовой кислоты. Найдено,% : С 47,48; Н 4,09; N 14,33.. Вычислено дл  имида о-нитрофенилульфенил-1-глутаминовой кислоты. С,Н М.ОдЗ (281,29)%: С 46,97; Н 3,94; N 14,94. , Вычислено дл  Нфс ГлН-ОП H-toFgNVjOsS (465,36) ,%: 1; Н 2,60; N 9,03; аО, Т.пл. 159С (разлож.);Вс 0,35 (2) 0,70 (3). Согласно ИК-спектроскопии нитрильна  группа отсутствует. Эфирный раствор упаривают до небольшого объема и добавл ют петролейный эфир (80 мл). Выпавшее масло растирают с петролейным эфиром (2x30 мл). Растворитель удал ют сливанием , а после второй промывки упариванием (35°с) в вакууме. Выход третье.го пента.фторфенилового эфира р-нитрофенилсульфенил-1-глутамина, Нфс-Глн-ОПф (4) 7 г (70%)1 0,05 (2) 0,45 (3). В.отличие от амида о-нитрофенил-сульфенил-1-глутаминовой кислоты , активированный эфир Нфс-ГлнОПф . подобно остальным активированным эфйрам/ быстро реагирует со спиртовым раствором аммиака. К раствору 13,8 г (15,4 мм)защищенного пентапептида (З) в 60 мл этанола добавл ют 1,2 г (8,5 мм) тиобензамида и после растворени  реагента 3 мл уксусной кислоты. Смесь выдерживают при комнатной температуре 3 ч и отфильтровывают выпавший желтый осадок побочного продукта. Фильтрат упаривают(40°с)в вакууме, остаток раствор ют в смеси, состо щей из 20 мл эфира и 85 мл 0,1 М раствора серной кислоты. Эфирный слой, содержащий бензонитрил, отбрасывают , водный слой промывают эфиром до бесцветного эфирного сло  () потом при 5°С добавл ют 2 М раствор карбоната натри  до рН раствора равным 9,0. Отдел ют выпавшее масло аминопентапептида Асн-Цис(Трт)-ПроЛей-Гли-NHa и промывают его водой ( мл). Объединенный водный слой дополнительно экстрагируют ( мл) смесью, состо щей из хлороформа и этанола 10+1 (по объему), которую добавл ют к маслу аминопентапептида После упаривани  органических раство рителей к твердому остатку (10,7 г, 13,8 мм, 90%) аминопептапептида добавл ют 25 мл диметилформамида, 25 м диоксана и после растворени  6,4 г (13,8 мм) Нфс-Глн-ОПф- (4). Смесь пеоемешивают при комнэ.тной температуре 0,5 ч , потом при 15°С добавл ют 0,8 мл (7,0 мм) М-метилморфолина и перемешивание при комнатной температуре продолжают 5 ч. Упаривают растворители . Остаток раствор ют в 100 этилацетата и раствор последовательно промывают ( 0,1 М раствором серной кислоты, водой, 0,2 М раствором гидрогенкарбоната натри , водой, сушат сульфатом натри  и упаривают (40°с) этилацетат в вакууме. Выпавший во врем  экстракции осадок получаемого защищенного гексапептида ( 5) добавл ют к остатку после упаривани  этилацетата. Остаток растирают с эфиром (50 мл) и сушат в вакууме над п тиокисью фосфора и гидроокисью натри . Выход .защищенного гексапептида (5) 13,4 г. (90% из расчета на аминопентапептид; 85% из расчета на защищенный пентапептид); т.пл. 100-102c cS ° 43,7 (с 1,0; диоксан ) ;Rn 0,03 (4), 0,38 (5) . Найдено, % : С 57Д4; Н 5,69;. N 13,70. СзоНьо оОюЧ (1025,23). Вычислено,%: С 58,58; И 5,-90; N 13,66. Пример 3.Метиловый эфир о-нитрофенилсульфенил-1-тирозил-1 -изолейцина, Нфс-Тир-Иле-ОМе (6). К раствору 7,4. г (22 мм) о-нитр фенилсульфенил-Ь-тирозина в 20 мл диоксана при 15°С добавл ют смесь, состо щую из 8 мл 3 М раствора-дициклогексилкарбодиимида и 24 мл 3 М раствора пентафторфенола в диоксане (избыток пентафторфенола беретс  дл подавлени  побочной реакции фенольной гидроксильной группы тирозина с ДЦГК). -Перемешивают 5 мин, добавл ют раствор 3,5 г (22 мм) свежеприготов ленного метилового эфира L-изолейцина в 15 мл диоксана и реакционную смесь перемешивают 2 ч при комнатной температуре. По капл м добавл ют 5,5.мл (50,,мм) N-метилморфолина и смесь оставл ют на ночь при комнатной температуре. Отфильтровывают выпавший осадок дициклогексилкарбамйда фильтрат упаривают в вакууме до маслообразного остатка, который раствор ют в 100 мл этилацетата, и полученный раствор последовательно промывают ( мл) 0,1 М раствором серной кислоты, водой, 0,2 М раствором гидрогенкарбоната натри , водой сушат сульфатом натри  и упаривают этилацетат в вакууме. Темно-желтое масло перемешивают () с петролейным эфиром ( мл) . Растворитель удал ют сливанием, а после второй промывки осадок дополнительно сушат в вакууме. Выход твердого защищенного дипептида (6) 9,5 г (85%); R 0., 45 (2). Небольшую часть(О,5 г)дипептида раствор ют в бензоле (2 мл)и раствор нанос т на колонку ( см), наполненную силикагелем. Элюируют бензолом до бесцветного элюата,потом эфиром вымывают основную фракцию.Упаривают эфир и желтый остаток растирают с петролейным эфиром ( мл) . Выход защищенного дипептида после хроматографии 82%; т.пл.ЮЭ-ИО С; .f - 3,4° (с 1,0; диоксан). Найдено, % : С 57,35; Н 6,25; N 8,50. . , (461,54) . Вычислено,%: С 57,25; Н 5,90; N 9,10. Пентафторфениловый эфир S-тритил-2-меркаптопропионовой кислоты, МпрТрт)-ОПф (7) . . К суспензии 8 г (23 мм) S-тритил-2-меркаптопроьионовой кислоты (приготовленной при взаимодействии 2-меркаптопропионовой кислоты с трифенилкарбинолом в среде уксусной кислоты) в 50 мл диоксана добавл ют смесь, состо щую ИЗ 8 мл 3 М раствора ДЦГК . в диоксане и 8 f/tn 3 М раствора пентафт .орфенола в диоксане. Реакционную смесь перемешиваю.т 6 ч при комнатной температуре. За это врем  осадок 5-тритил-2-меркаптопропионовой кислоты постепенно раствор етс  и выпадает осадок дициклогексилкарбамйда , который отфильтровывают , и. промывают диоксаном ( мл). Фильтрат упаривают в вакууме до маслообразного остатка, добавл ют 50 мл петролейного эфира и оставл ют при О-С на 24 ч. Отфиль-. тровывают выпавший осадок пентафторфенилового эфира (7) и сушат его в вакууме над п тиокисью фосфора и гидроокисью натри . Выход пентафторфенилового эфира (7) 10,5 г (90%); т.пл. 77-79С; ,85 (1) (желтое п тно после опрыскивани  пластинки трифторуксусной кислотой) .. После перекристаллизации из метанола т.пл. 82-83с. - Найдено, % : С 65,74; Н 3,66; N 0,12. C,j8Hj9 (514-,52) . Вычислено,: С 65,36; Н 3,72; N 0,10. Метиловый эфир 5-тритил-2-меркаптопррпиоиил-1-тирозил-1-изолейцина , Мпр(Тр-г)-Тир-Иле-Омс (8). К раствору 9,2 г (20 мм)защищенного дипептида (6) в 40 мл этанола добавл ют 1,5 г (11 мм) тиобензамида и после растворени  реагента 2 мл уксуснойкислоты. Смесь выдерживают при комнатной температуреTo a solution of 14.3 g (18.3 mm) of Nfc0-Cys (Trt) -Pro-Leu-Gly-HH, (2) in 60 ml of ethanol was added 1.4 g of Guyo mm) thiobenzamide and after dissolving reagent 3. ml of acetic acid. The mixture is kept at room temperature for 5–3 h, filtered, and the precipitated by-product precipitates a 767090 LOW. The filtrate is evaporated in vacuo, the residue is dissolved in a mixture of 20 ml of ether and 100 ml of an OD M solution of sulfuric acid. The ether layer is separated, the aqueous layer containing the aminotetrapeptide sulfate is extracted with ether to the colorless ether layer (ml) and 2M is added at 5 ° C, sodium carbonate solution until the pH of the solution is 9.0. The precipitated aminotetrapeptide oil is separated and washed with water (ml). The water layer is additionally extracted (3x20 ml) with a mixture consisting of chloroform and ethanol 10 + 1 (by volume), which is added to the aminotetrapeptide oil. After evaporation (35 ° C) of organic solvents to the solid residue {11 g 16, 5 mm, 90%) of the aminotetrapeptide are added 50 ml of dioxane, 7.5 g (16.5 mm) of O-nitrophenylsulphenyl-1-asparagine pentafluorophenyl ester and, after dissolving the components, 0.9 ml (8 mm) is added (in methyl morpholine. The mixture is stirred for 5 hours, the solvents are evaporated (40 ° C). The residue is dissolved in 100 ml of ethyl acetate and the solution is successively washed (ml) with 0.1 M solution of acid .. with water, 0.2 M solution of sodium hydrogene carbonate, water, dried over sodium sulfate and ethyl acetate (40c) evaporated in vacuo. After trituration with ether (2x30 ml yield of pentapeptide ( 3) 13.9 g (90% of the calculation for the aminotetrapeptide; 85% based on the protected tetrapeptide, mp 133-134 ° C; Rr 0, io (4), 0.60 (5). A small part. ( 0.3 g) protected Pentapeptide (3) is dissolved in in ethano-le (3 ml) and the solution is applied on a head (C 12 cm) filled with silica gel Lem. Elute with ethanol, the first fraction, O1, which is yellow, is discarded; collect the second, the main yellow colored fraction, evaporated (40 ° C) solvent and the residue grow. live with ether (ml). The yield of purified protected Pentapeptide 85%; m.p. 137-139 ° C; t5 62.9 s 0 dioxane). Found,%: C 59.85; H 5.61; N 12.20; (897.09). c gHgriN-iOeS i Calculated,%: C 60.25; H 5.84; N 12.49. 2. About Nitrophenylsul Example of phenyl-1.-glutaminyl-1-asparaginyl-5-trityl-L-cysteinyl-L-prolyl-L-leucylglycylamide, Nfs-Gln-Asn-Cys (trt) -Pro-Leu-Gly-ML (five). 6.4 g (21.4 mm) of o-nitrophenylsulphenyl-1-glutamine are suspended in 30 ML of dioxane, the suspension is cooled to 15 ° C, and a mixture of 7.4 ml (22.4 lm) is added to it 3 M of solution of clohexylcarbodiimide, and in ioxane and 21.4 ml (64.0 mm) of M of pentafluorofecol solution in dioxane. The reaction mixture is stirred at 5 ° C for 6 h, and the yellow precipitate of o-nyrophenylsulphenyl-1-glutamine dissolves and the dicycloheca L-urea precipitates, which is filtered, washed on the filter with dioxane (ml) and the filtrate is evaporated in vacuo to an oily residue. ether (50 ml) was added to the residue, and a little soluble precipitate (1.0 g) was filtered off. The elementary siege analysis data are consistent with the assumption that the cage is an o-nitrophenylsulfonyl-1-glutamic acid imide. Found,%: With 47.48; H 4.09; N 14.33. Calculated for imide with o-nitrophenylsulfonyl-1-glutamic acid. C, N.M.OdZ (281.29)%: C, 46,97; H 3.94; N 14.94. , Calculated for Nfs GLN-OP H-toFgNVjOsS (465.36),%: 1; H 2.60; N 9.03; AO, m.p. 159С (decomposed); Sun 0.35 (2) 0.70 (3). According to IR spectroscopy, the nitrile group is absent. The ether solution is evaporated to low volume and petroleum ether (80 ml) is added. The precipitated oil is triturated with petroleum ether (2x30 ml). The solvent is removed by draining, and after the second wash by evaporation (35 ° C) in vacuo. The yield of the third ego penta.fluorophenyl ester of p-nitrophenylsulphenyl-1-glutamine, Nfs-Gln-OPF (4) 7 g (70%) 1 0.05 (2) 0.45 (3). B. difference from amide of o-nitrophenyl-sulfenyl-1-glutamic acid, activated ester Nfs-GlnOPf. like the rest of activated efyram / quickly reacts with an alcoholic solution of ammonia. 1.2 g (8.5 mm) of thiobenzamide was added to a solution of 13.8 g (15.4 mm) of protected pentapeptide (G) in 60 ml of ethanol and, after the reagent was dissolved, 3 ml of acetic acid. The mixture is kept at room temperature for 3 hours and the precipitated yellow precipitate is filtered off. The filtrate is evaporated (40 ° C) in vacuo, the residue is dissolved in a mixture of 20 ml of ether and 85 ml of a 0.1 M solution of sulfuric acid. The ether layer containing benzonitrile is discarded, the aqueous layer is washed with ether to a colorless ether layer () and then at 5 ° C, 2 M sodium carbonate solution is added until the pH of the solution is 9.0. The precipitated amino-pentapeptide oil is separated by Asn-Cys (Trt) -ProLay-Gly-NHa and washed with water (ml). The combined aqueous layer was further extracted (ml) with a mixture consisting of chloroform and ethanol 10 + 1 (by volume), which was added to the oil of the aminopentapeptide. After evaporation of the organic solvents to the solid residue (10.7 g, 13.8 mm, 90 %) aminopeptide peptide was added 25 ml of dimethylformamide, 25 m of dioxane and, after dissolving, 6.4 g (13.8 mm) of HPS-Gln-OPF- (4). The mixture was stirred at room temperature for 0.5 h, then 0.8 ml (7.0 mm) of M-methylmorpholine was added at 15 ° C and stirring at room temperature was continued for 5 hours. The solvents were evaporated. The residue was dissolved in ethyl acetate (100) and the solution was washed successively (with 0.1 M sulfuric acid solution, water, 0.2 M sodium hydrogencarbonate solution, water, dried with sodium sulfate, and ethyl acetate was evaporated (40 ° C) in vacuo. A precipitate formed during extraction The resulting protected hexapeptide (5) is added to the residue after evaporation of ethyl acetate. The residue is triturated with ether (50 ml) and dried in vacuo over phosphorus pentoxide and sodium hydroxide. The yield of the protected hexapeptide (5) is 13.4 g (90% of aminopentapeptide; 85% based on protected Pentapeptide), mp 100-102 cS ° 43.7 (s 1.0; dioxane); Rn 0.03 (4), 0.38 (5). Found: C 57 D4; H 5, 69 ;. N 13.70. SzoloNoOUCH (1025.23). Calculated,%: C 58.58; AND 5, -90; N 13.66. Example 3. O-nitrophenylsulphenyl-1-tyrosyl-1 methyl ester -isoleucine, Nfs-Tyr-Ile-OMe (6). To a solution of 7.4 g (22 mm) of phenylsulphenyl-L-tyrosine o-nitr in 20 ml of dioxane at 15 ° C is added a mixture consisting of 8 ml 3 M solution-dicyclohexylcarbodiimide and 24 ml of 3 M solution of pentafluorophenol in dioxane (an excess of pentafluorophenol is taken to suppress the side reaction of the phenolic hydroxyl group of tyrosine with DCGC). - Stir for 5 minutes, add a solution of 3.5 g (22 mm) of freshly prepared L-isoleucine methyl ester in 15 ml of dioxane and stir the reaction mixture for 2 hours at room temperature. 5.5 ml (50,, mm) of N-methylmorpholine is added dropwise and the mixture is left overnight at room temperature. The precipitated dicyclohexylcarbamide precipitate is filtered off and the filtrate is evaporated in vacuo to an oily residue, which is dissolved in 100 ml of ethyl acetate, and the resulting solution is successively washed (ml) with 0.1 M sulfuric acid solution, water, 0.2 M sodium hydrogencarbonate solution, and dried with sodium sulfate and ethyl acetate is evaporated in vacuo. The dark yellow oil is stirred () with petroleum ether (ml). The solvent is removed by draining, and after the second washing, the precipitate is further dried in vacuum. The yield of solid protected dipeptide (6) 9.5 g (85%); R 0., 45 (2). A small part (5 g) of the dipeptide was dissolved in benzene (2 ml) and the solution was applied on a column (cm) filled with silica gel. Elute with benzene to colorless eluate, then the main fraction is washed out with ether. The ether is evaporated and the yellow residue is triturated with petroleum ether (ml). The yield of the protected dipeptide after chromatography is 82%; mp pl.YU-IO S; .f - 3.4 ° (c 1.0; dioxane). Found,%: C 57.35; H 6.25; N 8.50. . , (461.54). Calculated,%: C 57.25; H 5.90; N 9,10. S-trityl-2-mercaptopropionic acid pentafluorophenyl ester, MprTyr) -Opt (7). . To a suspension of 8 g (23 mm) of S-trityl-2-mercaptopropionic acid (prepared by reacting 2-mercaptopropionic acid with triphenylcarbinol in acetic acid) in 50 ml of dioxane is added a mixture consisting of 8 ml of 3 M solution of DCC. in dioxane and 8 f / tn 3 M solution of pentaft .orphenol in dioxane. The reaction mixture is stirred for 6 hours at room temperature. During this time, the 5-trityl-2-mercaptopropionic acid precipitate gradually dissolved and dicyclohexylcarbamide precipitated, which was filtered, and. washed with dioxane (ml). The filtrate is evaporated in vacuo to an oily residue, 50 ml of petroleum ether are added and the mixture is left at O-C for 24 hours. The precipitated pentafluorophenyl ether (7) is precipitated and dried in vacuum over phosphorus pentoxide and sodium hydroxide. The yield of pentafluorophenyl ether (7) is 10.5 g (90%); m.p. 77-79C; , 85 (1) (yellow spot after spraying the plate with trifluoroacetic acid) .. After recrystallization from methanol, m.p. 82-83p. - Found,%: C 65,74; H 3.66; N 0.12. C, j8Hj9 (514-, 52). Calculated: C 65.36; H 3.72; N 0.10. Methyl 5-trityl-2-mercaptopropyl-1-tyrosyl-1-isoleucine, Mpr (Tr-g) -Tir-Ile-Oms (8). To a solution of 9.2 g (20 mm) of the protected dipeptide (6) in 40 ml of ethanol was added 1.5 g (11 mm) of thiobenzamide and, after dissolving the reagent, 2 ml of acetic acid. The mixture is kept at room temperature.

|3 Ч и отфильтровывают выпавший желтый осадок побочных продуктов.Фильт- &ат упаривают в вакууме, остаток раствор ют в смеси, состо щей из 30 мл эфира и 105 мл 0,1 М, раствора серной кислоты. Эфирный слой отдел ют , водный слой раствора сульфата аминодипептида Тир-Иле-ОМе экстрагируют , эфиром до бесцветного эфирного сло  (5)3.0 мл) , потом при добавл ют 2 М раствор карбоната натри  до рН раствора равным 9,0. Выпавшее масло аминодипептида экстрагируют этилацетатом (2x20 мл). Этилацетатный слой промывают водой ( мл), сушат сульфатом натри  и растворитель упаривают в вакууме. Остаток, масла (5,9 г, 18 мм, 90%) раствор ют в 30 мл диоксана и приДБ с к pactBOpy добавл ют 9,3 г (18 мм) Мпр(Трт)-ОПф (7)-: После растворени  активированного эфира прикапывают 1,3 мл (13 мм) М-метилморфолина. Смесь перемешивают 6 ч при комнатной температуре, упаривают растворитель и остаток раствор ют в 100 мл этилацетата. Этилацетатный раствор последовательно промывают ( мл), 0,1 М раствором серной кислоты, водОй , 0,2 М раствором гидрогенкарбоната натри , водой, сушат сульфатом натри  и упаривают этилацетат в вакууме . Маслообразный остаток,перемешивают (35°с) с петролейным эфиром ( мл) . Растворитель удал ют сливанием, а после второй промывки дополнительно упариванием в вакууме. Выход твердого защищенного трипептида Мпр(Трт)-Тир-Иле-ОМе (8) 10,8 г, |90% из расчета на Мпр(Трт)-ОПф; ; 85% из.расчета на Нфс-Тир-Иле-ОМеЗ ; т.пл.108-110°С; Rf. 0,42 (2) (оран .жевоеп тно после опрыскивани  пластинки реактивом Паули) . .После переосаждени  из эфира петролейным эфиром т.пл. 110-111 С; (D° ,2 (с 1,0 диоксан). Найдено, % : С71,0б; Н 6,61; N 4,26.3 hours and the precipitated yellow precipitate is filtered off by-products. The filter is evaporated in vacuo, the residue is dissolved in a mixture of 30 ml of ether and 105 ml of 0.1 M sulfuric acid solution. The ether layer is separated, the aqueous layer of the aminodipeptide sulfate Thir-Ile-OMe is extracted, ether to a colorless ether layer (5) 3.0 ml), then 2 M sodium carbonate solution is added until the pH of the solution is 9.0. The precipitated aminodipeptide oil is extracted with ethyl acetate (2x20 ml). The ethyl acetate layer was washed with water (ml), dried with sodium sulfate, and the solvent was evaporated in vacuo. The residue, oils (5.9 g, 18 mm, 90%) are dissolved in 30 ml of dioxane and 9.3 g (18 mm) of MnR (Trt) -Off (7) - are added to pactBOpy: After dissolving the activated ether is added dropwise with 1.3 ml (13 mm) of M-methylmorpholine. The mixture is stirred for 6 hours at room temperature, the solvent is evaporated and the residue is dissolved in 100 ml of ethyl acetate. The ethyl acetate solution was washed successively (ml) with a 0.1 M solution of sulfuric acid, water, 0.2 M sodium hydrogencarbonate solution, water, dried with sodium sulfate, and ethyl acetate was evaporated in vacuo. The oily residue is stirred (35 ° C) with petroleum ether (ml). The solvent is removed by draining, and after the second washing it is additionally evaporated in vacuo. Yield of solid protected tripeptide Mpr (Trt) -Tir-леle-OMe (8) 10.8 g, | 90% based on Mpr (Trt) -Opf; ; 85% of the calculation for Nfs-Tir-Ile-OMEZ; mp.108-110 ° C; Rf. 0.42 (2) (orange) after spraying the plate with Pauli reagent. . After re-precipitation from ether with petroleum ether so pl. 110-111 ° C; (D °, 2 (s 1.0 dioxane). Found,%: C71.0b; H 6.61; N 4.26.

Сье,Нл2 N0.055 (638,83). Ce, Nl2 N0.055 (638.83).

Вычислено,%: С 71, 45 ; Н 6,63;Calculated,%: C 71, 45; H 6.63;

N 4,38. 5-Тритил-2-меркаптопропионил-1 . -тирозил 1-изолёйцин, Мпр(Трт)-Тир-Иле (9),  N 4.38. 5-trityl-2-mercaptopropionyl-1. -tyrosyl 1-isoleucin, Mpr (Trt) -Tir-Ile (9),

10,7 г (16,7 мм) метилового эфир трипептида (З) раствор ют в 60 мл диоксана и при комнатной температур ( 20°с) при перемешивании добавл ют 33,4 мл 0,5 М раствора гидроокиси HaijpHH, потом по капл м в течение 2 ч еще 37 мл 0,5 М раствора гидро . окиси натри . Смесь перемешивают в течение О,5ч, потом добавлением .1 М раствора серной кислоты довод т реакцию среды до рН равным 7,0 и упаривают (З5с) растворитель до 1/ начсшьного объема раствора. Остаток довод т водой до 60 МП, добавлением10.7 g (16.7 mm) of the tripeptide methyl ester (3) are dissolved in 60 ml of dioxane and at room temperature (20 ° C), with stirring, 33.4 ml of a 0.5 M solution of HaijpHH hydroxide is added, then dropwise m for 2 h, another 37 ml of a 0.5 M solution of hydro. sodium oxide. The mixture is stirred for 0.5 hours, then by adding a .1 M solution of sulfuric acid, the medium is brought to a pH of 7.0 and the solvent is evaporated (C5c) to 1 / initial volume of the solution. The residue is brought to 60 MP with water,

2 М раствора карбоната натри  устанавливают рН 8,0 и этилацетатом (3x15 мл) экстрагируют остатки неомыленного метилового эфира трипептида (8).. Водный слой, содержащий натриевую соль кислоты трипептида Мпр-(Трт -Тир-Иле-ONa , при подкисл ют 1 М раствором серной кислоты до рН 3,0. Выпавшее масло кислоты трипептида (9) экстрагируют этилацетатом ( мл). Этилацетатный слой промывают водой ( мл), сушат над сульфатом натри  .и растворитель упаривают в вакууме. Маслообразный остаток переосаждают из эфира (20 мл) добавлением петролейного эфира (60 мл). Отфильтровывают осадок, промывают его на фильтре петролейным эфиром (2Х.20 мл) и сушат в вакууме (0,1 мм рт.ст.).Выход трипептида (9) 7,4 г (70%) (2); т.пл. 148-150 С , (с 0,5; диоксан) ;R 0,30 (2) (оранжевое п тно после опрыскивани  пластинки реактивом Паули). Найдено,. % : С 70,87; Н 6,37; A 2 M solution of sodium carbonate is adjusted to pH 8.0 and ethyl acetate (3 x 15 ml) is extracted with residues of tripleptide methyl sulfonate (8). The aqueous layer containing the sodium salt of the tripeptide acid Mpr- (Trt-Thyr-Ile-ONa, is acidified with 1 M solution of sulfuric acid to pH 3.0. The tripeptide (9) is extracted with ethyl acetate (ml). The ethyl acetate layer is washed with water (ml), dried over sodium sulfate and the solvent is evaporated in vacuo. The oily residue is precipitated from ether (20 ml a) adding petroleum ether (60 ml). The precipitate is washed, it is washed on the filter with petroleum ether (2Х.20 ml) and dried under vacuum (0.1 mm Hg). Tripeptide yield (9) 7.4 g (70%) (2); 148-150 ° C, (c 0.5; dioxane); R 0.30 (2) (orange spot after the Pauli reagent was sprayed on the plate). Found: C 70.87; H 6.37;

N 4,48. N 4.48.

Сг,7 Ч В (624,81).Cr, 7 × V (624.81).

С 71,13; Н 6,45;. Вь числено,%:C 71.13; H 6.45; Number,%:

N .4,48.N .4,48.

4. . 5-Тритил-2-мерПример каптопропионил-1-тирозил-1-изолейцил-1-глутаминил-1-аспарагинил-5-тритил-1-цистеинил-1-пролил-L-лейцилглициламид ,Мпр(Трт)-Тир-Иле-Глн-Асн-Цис (Трт)-Про-Лей-Гли-МН (10).four. . 5-Trityl-2-mer Example of captopropionyl-1-tyrosyl-1-isoleucyl-1-glutaminyl-1-asparaginyl-5-trityl-1-cysteinyl-1-prolyl-L-leucylglycylamide, Mpr (Trt) -Tyr-Ile Gln-Asn-Tsis (Trt) -Pro-Leu-Gli-MN (10).

Claims (3)

К раствору 13,3 г (13 им)защищенного гексапептида (5) в 60 мл этанола доб.авл ют 0,93 г (6,7 мм) тиобензамида и, после растворени  реагента 3 мл уксусной кислоты. Смесь выдерживают при. комнатной температуре 3ч и отфильтровывают выпавший осадок побочных продуктов. Фильтрат упаривают в вакууме; остаток раствор ют в смеси, состо щей из 20 мл эфира и 75 мл 0,1 М раствора серной кислоты. Водный слой экстрагируют эфиром до бе.сцветного эфирного сло  ( мл), потом при 5°С добавл ют 2 М раствор карбоната .натри  до рН водного сло  9,0. Отдел ют выпавшее масло аминогексапептида Глн-Асн-Цис(Трт)-Про-Лей-Гли-ЫН , и промывают его водой (2.10 мл) . Водные слои дополнительно экстрагируют (3x20 мл) смесью, состо щей из хлороформа и этанола 10+1 (по объему), которую добавл ют к маслу аминогексапептида. Быстро упаривают(30°с)органические растворители , твердый остаток (10,7 г, 11,7 мм, 90%) аминогексапептида- при раствор ют в 30 мл диметилформамида , добавл ют раствор 7,3 г (11,7 мм) кислоты трипептида (9) в 20 мл диоксана и еще смесь, состо щую из 4 мл 3 М раствора ДЦГК в диоксане и 12 мл 3 М раствора пентафторфено .ла в диоксане. Смесь остав л ют при 10с на ночь. Отфильтрорывают выпавший осадок дициклогексилкарбамида, промывают его на фильтре диоксаном (ЗМО мл). Фильтрат упаривают в вакууме до маслообразного остатка, к которому добавл ют 50 мл эфира. Отфильтровывают , осадок защищенного нонапептида (10), промывают его эфиром (3tlO мл) и сушат в вакууме над п тиокисью фосфора и гидроокисью натри .Выход защищенного нонапептида (10) 13,4 г (78% из расчета на кислоту трипептида; 70% из расчета на защищенный гексапептид) ;т.пл. 148-150 С; R, 0,04 (4) 0,67 (5) (обнаружение реактивом Паули и хлорбензидиновым реактивом ). Небольшую часть (0,5 г) защищенного нонапептида (10) растирают гор чим- этанолом (5 мл). После охлаждени  отфильтровывают осадок (0,4 г) и ра1створ ют его в метаноле (5 мл). Метанольный раствор защищенного.нонапептида Нанос т на колонку (3 х х12 см) наполненную силикагелем и элюируют метанолом (50. мл). Фракции, К.оторые, согласно анализу тонкослойной .хроматографией I содержат защищенный нонапептид объедин ют, растворИтел .ь упаривают в вакууме, Остаток ра . стирают с эфиром потом водой и сушат в вакууме над п тиокисью фосфора и гидроокисью натри . Выход защищен-, ного нонапептида при очистке 50% т. пл. 15 4-15 5 С-, 35,.0,5; диоксан). Найдено , % : С 65,58; Н 6,40; N 9,99. Cai Hj5g N1, (1478,86) . . Вычислено,%: G 65,79; Н 6,47 N 10,42. Циклический дисульфид (1-6) - каптопропионил-и-тирозил-1-иэолейцил-1-глутаминил-1 аспарагинил-1цис теинил-L-пролил-1-лейдилглии,иламида дезаминоокситоцин, Мпр-Тир-Иле-Глн-Асн-Цис-Про-Лей-Гли-МН ,2 (11). 2,21 г (1,5 мм) защищенного номапептида (10) раствор ют в 2 л 80%-но го водного раствора уксусной кислоты и в один прием добавл ют раствор - 0,9 г (7,0 мг-атомов) иода в 0,2 л 80%-ного водной уксусной кислоте. Смесь перемешивают при комнатной тем пературе 1 ч. Затем желто-коричневый раствор титруют 0,1 М водным раствором двуокиси серы до обесцвеч вани , .и упаривают () в. вакууме до 1/5 части начального объема. Раствор пропускают через колонку, наполненную анионитом АВ 17x8 в ОН или ацетатной форме (20 мл). Аниони промывают водой ( мл) и объединенный элюат упаривают до небольшого объема (5 мл) и лиофилизируют. Полученный порошок, содержащий дезаминоокситоцин и трифенилдикарбинол растирают с эфиром ( мл) и оста ток (1,1 г) очищают распределительной хроматографией на Сефадексе в системе н-бутанол+бензол+вода содержащей 3,5%-ной уксусной кисло- ты и 1,5% пиридина (1+1+2). Выход дезаминоокситоцина (11) 0,44 г (30% из расчета на защище ный нонапептид) т.пл. 176-182°С;|о(- 90° (с 0,5; 1,0 М. водный раствор уксусной кислоты ) . Утеротоническа  активность у крыс (в отсутствии ионов магни ) 600t70 международных единиц в мг. вещества. Пример 5. Уточнение времени отщеплени  Нфс-группы у Нфс-пептидов . . . - . ЮО MKMOJib соответствующего пептида (см.таблицу) раствор ют в 0,4 мл этанола, добавл ют 8 мг (58 мкмоль) тиобензамида и 0,02 мл уксусной кислоты. Смесь вЬщёрживают при комнатной температуре (20°С)и с интервалами 10 мин берут 1 мкл раствора и провод т хроматографирование на пластинках СЙлуфол. Дл  сравнени  провод т хроматографирование эталонного раствора, содержащего 5 мкмоль пептида в.смеси О,4 мл этанола и 0,02 мл уксусной кислоты. Врем  отщеплени  БФс-группы (не более 95% исходного Нфс-пептида) определ ют сравнением э1 стинкций желтых п тен тех исходных пептидов и эталонного раствора. Сравнение провод т при помощи прибора ,RТ 65 М (ГДР) с фильтром 400 им. НФС-ГЛН-АСН-Цис (Трт)-Про-Лей-Гли-амид Нфс-Асн-Цис (Трт)-Про-Лей-Гли-а .мид Нфс-Цис(Трт)-Про-Лей-ГлиХроматографические системы: 1 - бензол, 2 - эфир, 3 - этилацетат, 4 - хлороформ - метанол - уксусна  кислота 85+10-f5 (мл) ;-Rf тиобензамида желтое п тно 0,5 (1);0,65 (2);0,72 .(3) ;0,83 (4). .7 Пример 6. Отщепление Нфс-группы от НФС-аминокислоты действи ем тиобензамида или тиоацетамида. 28 мг (100 мкмоль) Нфс-1-лейцина раствор ют в 0,4 мл этанола; добавл ют 8 мг (58 мкмоль) тиобензамида и 0,02 мл уксусной кислоты. Врем  . отщеплени  Нфс-группы определ ют,как описано ранее, оно составл ет менее 10 мин.Я Нфс-1-лейцина В еистё.ме (2) 0,8. Опыт бтщёплён й Нфс-группы у Нфс-1-лейдина повтор ют с 4,4 мг ;(59 мкмоль) тиоацетамида. Брем  от щёпленй  НФС-группытakJKe составл ет менее 10 мин. ; .,.. Формула изобретени  .. 1. Способ отщеплени  сульфенильных групп, от N-сульфениламинокислот и М-сульфенилпептИдов путем де1Йствйй на защЩенныё по тйольнoS yTTKции N-сульфеНиламинбкислоты и N-сульфенилпептйды. тиоамйдом и среде 6рганич:еско1 6 растворител  в прйсутс№йи кйсЛотЫ, о /т л и ч а ю щ и и с   тем, что, с Целью упрощени  про цесса. , используют 0,5-0 ,6 моЖ тйоамида на 1 моль М-сульфейЙйьного . производного. .; 2. Способ по п,1, о, т ли чаю Щ и и с Я; Тем, что в качестве сульфенильной группы отщепл ют о-нитрофенилсульфенильную группу. 3.Способ по П.1, о т л и ч а ющ и и с   тем, что в качестве тисамида используют тиоацетамид иди тиобензамид. . . - ... ; -1 4.Способ по П.1, о т ли ч .а ю щ и и с   тем, что используют N-сульфениламинокислоты и М-сульфенилпептиды , защищенные по тиольной функции 1-тритйльной группой. Исто.чвики информации, прин тые во внимание при экспертизе l..Synthese von fepttden . (Hg.E.Wunsh)iTeiГ 1, Methoden der OrganTschen с hem I e, Houben We f I , (Hg.E.), Bd 15/1,G.Th1 erne, Stutaart, 1974, c.203. 0.93 g (6.7 mm) of thiobenzamide and, after dissolving the reagent, 3 ml of acetic acid are added to a solution of 13.3 g (13 of them) of the protected hexapeptide (5) in 60 ml of ethanol. The mixture is kept at. room temperature for 3 hours and filtered precipitated by-products. The filtrate is evaporated in vacuo; the residue is dissolved in a mixture consisting of 20 ml of ether and 75 ml of 0.1 M sulfuric acid solution. The aqueous layer is extracted with ether until the color of the ether layer (ml) is added, then a 2 M carbonate solution is added at 5 ° C. The pH of the aqueous layer is 9.0. The precipitated amino hexapeptide oil Gln-Asn-Cys (Trt) -Pro-Leu-Gly-HH is separated, and washed with water (2.10 ml). The aqueous layers are additionally extracted (3x20 ml) with a mixture consisting of chloroform and ethanol 10 + 1 (by volume), which is added to the aminohexapeptide oil. Organic solvents, solid residue (10.7 g, 11.7 mm, 90%) of amino hexapeptide are quickly evaporated (30 ° C); when dissolved in 30 ml of dimethylformamide, a solution of 7.3 g (11.7 mm) of acid is added the tripeptide (9) in 20 ml of dioxane and another mixture consisting of 4 ml of a 3 M solution of DCC in dioxane and 12 ml of a 3 M solution of pentafluoropheno in dioxane. The mixture was left at 10c overnight. The precipitated dicyclohexylcarbamide precipitate is filtered off and washed on the filter with dioxane (MOT ml). The filtrate is evaporated in vacuo to an oily residue, to which 50 ml of ether are added. The precipitate of the protected nonapeptide (10) is filtered off, washed with ether (3tlO ml) and dried in vacuum over phosphorus pentoxide and sodium hydroxide. The output of the protected nonapeptide (10) is 13.4 g (78% based on tripeptide acid; 70% of calculation on the protected hexapeptide;); 148-150 ° C; R, 0.04 (4) 0.67 (5) (detection by Pauli's reagent and chlorobenzidine reagent). A small portion (0.5 g) of the protected nonapeptide (10) is triturated with hot ethanol (5 ml). After cooling, the precipitate is filtered off (0.4 g) and dissolved in methanol (5 ml). The methanol solution of the protected non-peptide is applied onto a column (3 x 12 cm) filled with silica gel and eluted with methanol (50. ml). The fractions K., which, according to analysis by thin-layer chromatography I, contain the protected nonapeptide, are combined, the solvent is evaporated in vacuum, Residue. they are washed with ether and then with water and dried under vacuum over phosphorus pentoxide and sodium hydroxide. The yield of protected nonapeptide when cleaning 50% so pl. 15 4-15 5 С-, 35, .0,5; dioxane). Found,%: C 65.58; H 6.40; N 9.99. Cai Hj5g N1, (1478.86). . Calculated,%: G 65.79; H 6.47 N 10.42. Cyclic disulfide (1-6) - captopropionyl-and-tyrosyl-1-isoleicill-1-glutaminyl-1 asparaginyl-1cis-teinel-L-prolyl-1-leuidylgly, ilamide desaminooxytocin, Mpr-Ile-Ile-Gln-Asn-bis -Pro-Leu-Gly-MN, 2 (11). 2.21 g (1.5 mm) of the protected nomapeptide (10) are dissolved in 2 liters of an 80% aqueous solution of acetic acid and 0.9 g (7.0 mg-atoms) of iodine is added in one step. in 0.2 l of 80% aqueous acetic acid. The mixture was stirred at room temperature for 1 hour. Then the yellow-brown solution was titrated with a 0.1 M aqueous solution of sulfur dioxide until discolored, and evaporated () c. vacuum to 1/5 of the initial volume. The solution is passed through a column filled with anion exchanger AB 17x8 in OH or acetate form (20 ml). The anions are washed with water (ml) and the combined eluate is evaporated to a small volume (5 ml) and lyophilized. The resulting powder containing desaminooxytocin and triphenyldicarbinol is triturated with ether (ml) and the residue (1.1 g) is purified by partition chromatography on Sephadex in the system n-butanol + benzene + water containing 3.5% acetic acid and 1, 5% pyridine (1 + 1 + 2). The yield of desaminooxytocin (11) is 0.44 g (30% based on the protected nonapeptide), mp. 176-182 ° C; | o (- 90 ° (with 0.5; 1.0 M aqueous solution of acetic acid). Uterotonic activity in rats (in the absence of magnesium ions) is 600t70 international units in mg of the substance. Example 5. Clarification of the time of cleavage of the NFS group in NPS-peptides.... SO MKMOJib of the corresponding peptide (see table) is dissolved in 0.4 ml of ethanol, 8 mg (58 µmol) of thiobenzamide and 0.02 ml of acetic acid are added. The mixture was diluted at room temperature (20 ° C) and at intervals of 10 min, 1 µl of the solution was taken and chromatography was carried out on Sylufol plates. Refining a reference solution containing 5 µmol of peptide in a mixture of O, 4 ml of ethanol and 0.02 ml of acetic acid. The cleavage time of the BFS group (no more than 95% of the initial NSF peptide) is determined by comparing the extracts of yellow spots of those of the original peptide and reference solution. The comparison is carried out using an instrument, RT 65 M (GDR) with a filter 400 named after NFS-GLN-ASN-Cys (Trt) -Pro-Leu-Gly-amide Nfs-Asn-Cys (Trt) -Pro -Ley-Gly-a. Imid NFS-Cys (Trt) -Pro-Leu-GlyChromatographic systems: 1 - benzene, 2 - ether, 3 - ethyl acetate, 4 - chloroform - methanol - acetic acid 85 + 10-f5 (ml) ; -Rf tiob nzamida yellow spot 0.5 (1); 0.65 (2) 0.72 (3). 0.83 (4). .7 Example 6. Cleavage of the NPS group from NFS-amino acids by the action of thiobenzamide or thioacetamide. 28 mg (100 µmol) of Nfs-1-leucine are dissolved in 0.4 ml of ethanol; 8 mg (58 µmol) of thiobenzamide and 0.02 ml of acetic acid are added. Time The removal of the NFS group is determined as previously described; it is less than 10 minutes. I NFs-1-Leucine In system (2) 0.8. The Nfs group in nfs-1-leidine was repeated with 4.4 mg (59 µmol) of thioacetamide. The shredded NFS-gum akJKe is less than 10 min. ; . .. The formula of the invention .. 1. The method of splitting off the sulfenyl groups from N-sulfenyl amino acids and M-sulfenyl peptides by action on the protection by tyrollo S yTTKsii N-sulfa Nylamine acids and N-sulfenyl peptides. thioamdyd and medium 6ganich: esko1 6 solvent in the presence of the liquid, o / tl and h and n and with the fact that, with the Purpose of simplifying the process. , use 0.5-0, 6 mozh of tyoamide per 1 mol of M-sulphate. derivative. ; 2. The method according to p, 1, o, t tea u u and c i; By removing an o-nitrophenylsulfenyl group as the sulfenyl group. 3. The method according to Claim 1, which is based on the fact that thioacetamide or thiobenzamide is used as the tisamide. . . - ...; -1 4. The method according to claim 1, whether or not with the fact that they use N-sulfenyl amino acids and M-sulfenyl peptides that are protected by the thiol function by a 1-trityl group. Information sources taken into account in the examination of l..Synthese von fepttden. (Hg.E.Wunsh) iTeiG 1, Methods der OrganTschen with hem Ie, Houben We f I, (Hg.E.), Bd 15/1, G.Th1 erne, Stutaart, 1974, p.203. 2.Moroder L.,Marchiori F.,Borin G Scoffon e E. Studies on cytochrome C.Partu , Synthesis of the Protected Heptapeptide (Sequence 17-23) of Bakers Jast so-I-cytochromec, Biopolymers, 1973, 12,c.493 (прототип ) . 2. Moroder L., Marchiori F., Borin G Scoffon e. Studies on Cytochrome C.Partu, Synthesis of the Protected Heptapeptide (Sequence 17-23) of Bakers Jast so-I-cytochromec, Biopolymers, 1973, 12, c .493 (prototype). 3.Kessler W.JseUn B.,SeIektive spaltunq subtituier.ter Phenylsylf eny I-Schu tzg ruppen bei Peptidsynthesen , Helv. Chlm . Acta , 1966 ,49, C.1330.3.Kessler W.JseUn B., SeIektive spaltunq subtituier.ter Phenylsylf eny I-Schu tzg ruppen bei Peptidsynthesen, Helv. Chlm. Acta, 1966, 49, C.1330.
SU782609922A 1978-05-03 1978-05-03 Method of eliminating sulfenyl groups from n-sulfenyl-aminoacids and n-sulfenylpeptides SU767090A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU782609922A SU767090A1 (en) 1978-05-03 1978-05-03 Method of eliminating sulfenyl groups from n-sulfenyl-aminoacids and n-sulfenylpeptides

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU782609922A SU767090A1 (en) 1978-05-03 1978-05-03 Method of eliminating sulfenyl groups from n-sulfenyl-aminoacids and n-sulfenylpeptides

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU767090A1 true SU767090A1 (en) 1980-09-30

Family

ID=20762121

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU782609922A SU767090A1 (en) 1978-05-03 1978-05-03 Method of eliminating sulfenyl groups from n-sulfenyl-aminoacids and n-sulfenylpeptides

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU767090A1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
McDermott et al. N-Methylamino acids in peptide synthesis. II. A new synthesis of N-benzyloxycarbonyl, N-methylamino acids
Patchett et al. Studies on hydroxyproline
Bodanszky et al. Side reactions in peptide synthesis. 11. Possible removal of the 9-fluorenylmethyloxycarbonyl group by the amino components during coupling
IE841049L (en) Preparing n-alkylated dipeptides
DK2288615T3 (en) SELECTIVE CASPASE INHIBITORS AND APPLICATIONS THEREOF
Hiskey et al. Sulfur-Containing Polypeptides. I. Use of the N-Benzhydryloxycarbonyl Group and the Benzhydryl Ester1, 2
NO158619B (en) HEAT INSULATING BODY AND PROCEDURE FOR PREPARING THEREOF.
Ramage et al. Phosphinamides: a new class of amino protecting groups in peptide synthesis
Hwang et al. Total synthesis of (+)-sparsomycin. Approaches using cysteine and serine inversion
DK146244B (en) PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF CYSTING GROUP CONTENTS
DK172011B1 (en) Amino Alcohol Peptide Derivatives, Process for Preparation thereof and Pharmaceutical Preparations Containing the Derivatives
EP0292729B1 (en) Process for solid phase peptide synthesis
EP0518299B1 (en) Phosphonic acid derivatives, production and use thereof
CH635571A5 (en) TETRAPEPTIDES AND THERAPEUTIC COMPOSITION CONTAINING THEM.
SU767090A1 (en) Method of eliminating sulfenyl groups from n-sulfenyl-aminoacids and n-sulfenylpeptides
SU882409A3 (en) Method of preparing halogen-substituted mercaptoacylamino acids
US3388113A (en) Protection of the guanidino group of arginine during peptide synthesis by the p-nitrocarbobenzoxy group
SE452318B (en) AMINO ACIDS FOR USE AS INTERMEDIATES IN THE PRODUCTION OF BESTATIN
Tun‐Kyi Selective removal of the o‐nitrophenylsulfenyl protecting group in peptide synthesis
US3035041A (en) Method of preparing amides
Galakatos et al. New S-protection from known N-protection: thio esters of N-urethanyl-N-methyl-. gamma.-aminobutyric acid as a class of protective groups for thiols in peptide synthesis
US2938891A (en) Method of making oxytocin and intermediates thereof
Inouye et al. N (Im)-Carbobenzoxyhistidine Derivatives as Intermediates for the Synthesis of Histidine Peptides1
Elmore et al. Thioesters of amino acid derivatives as thioacylating agents in thiopeptide synthesis
US3891692A (en) N-(cyclopropylalkoxycarbonyl)amino acids