SU717994A3 - Reagent for determining cholesterin in blood serum - Google Patents
Reagent for determining cholesterin in blood serum Download PDFInfo
- Publication number
- SU717994A3 SU717994A3 SU742064837A SU2064837A SU717994A3 SU 717994 A3 SU717994 A3 SU 717994A3 SU 742064837 A SU742064837 A SU 742064837A SU 2064837 A SU2064837 A SU 2064837A SU 717994 A3 SU717994 A3 SU 717994A3
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- cholesterol
- esterase
- serum
- reagent
- oxidase
- Prior art date
Links
Description
(54) РЕАКТИВ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ОБЩЕГО ХОЛЕСТЕРИНА В СЫВОРОТКЕ КРОВИ но примен ть вместе с другими источ никами углепода. Особенно предпочти тельно применение микроорганизмов, которые получают по многостадийному способу вырагаивани , причем выращив ние в первой стадии пооизвод т на пригодных источниках углерода (глицерин ) и во второй стадии - ни слож ных эфирах холестерина. Применение холестеринэстеразы и Candida rugosa AflCC 14830 в слабо кислой форме, рН 5-6,5 показывает высокую стабильность. Оптимальное рН фермента 7,5. Активность холесте ринэстеразы повышаетс путем добавки поверхностно-активных веществ . Особенно предпочтительна добавка :гидроксиполиэтоксидодекана. Определение холестерина происходит ферментацией при применении хьлесте1 иноксидазы, но можно также примен ть холестериндегидразу или холестерйндёгидрогеназу. Ферментативное определение общего или св занного холестерина бсудествл ют с помощью холестеринок сйдазы, пр едпочтите ль но примен ют холестериноксидазу из Nocardia erythropoeis AMCC 17895, Nocardia erythropoEis AMCC 4277,Nocardia formica AMCC 14811 или Proactinomyc er thrppoCis IB 9158. Предпочтительным реактивом вл етс реактив, состо щий из холёсте рйнйксидаэы , препарата холёстеринэстераз:ы из микроорганизмов, катала зы, ацетилацетона, метанола и содержащего ионы аммони буфера, вз тых по отдельности или в смеси. Реактив также может состо ть из холестериноксидазы, препарата из микроорганизмов с активностью холестёринэЬтеразы , пероксидазы, хромогена и буфера в отдельности или в смеси. В качестве хромогена используют 2,2 -аминобензтиазрлинсульфо .кислоту. . / Реактив также может состо ть из холестериноксидазы, препарата холестеринэстеразы и производного гид разина, реаги)Ьующего с кетогруппами с образованием идразона, атакже буфера. В качестве производного гид Разина используют 2,4-динитрофенилгиДразин . Кроме того, реактив может дополнительно содержать растворители, ст билизаторы и поверхностно-активные вещества. Предпочтительно реактивы содержа следующие компоненты: 1. ХолестеринсЭксидаза13-150 ед./мг Холестерин эстераза из - микрЪбрганизма .. 0,05-0,5 мг . Каталаза 2 10 --5-10 ед. Ацетилацетона 0,05-0,2 мл Метанол 2-10 мл в 100 мл буфена,содержащего ионы аммоии ; рН 5-7. Гидроксиполиэтоксидодекан 0,02-0,3 мл 2.Холестериноксидаза . 3-40 ед./мг Холестеринэстераза из микроорганизма0 ,05-0,5 мг Пероксидаза 2-10 -140 2,2-Аминобензтиазолинсульфокислота 50-200 мг Гидроксиполиэтоксидодекан0 ,05-0,5 мл в 100 мл буфера с рН 6-8 3.Холестерин-; оксидаза 0,1-1,0 ед. Холестёринэстераза из микроорганизма О,О5-0., 5 мг 1 мм раствор 2,4-динитрофенилгидразина 1-5 мл ПАВ0,005-0,1 мл В 10 мл буфера с рН 6-8. 4.Холестериноксидаза 2-100 ед. Холестеринэстераза из микроорганизма 0,05-0,5 мг ПАВ (гидрокси полиэтоксидодекан 0 ,1-2,0 мл в 50 мл буфера с рН 5-9. С помощью предложенного реактива можно осуществл ть быстрое и полное омыленке св занного холестерина. Например, при услови х определени холестерина с помощью холестериноксидазы достигают количественное расщепление св занного холестерина в течение 1-3 мин при добавке сухого порошка из ацетона Candida rugosa AMCC 14830 или AspergiE€us spec. WS .90030 в количестве 0,1-0,3 мг. Пример 1.В сыворотке крови определ ют содержание свободного холестерина до 63% (63 мг. в 100 мл)-.Дл определени св занного холестерина сравнительную пробу сыворотки крови обрабатывают в течение 30 мин спиртовым раствором едкого, кали при 70С. После нейтрализации и нового измерени имеющегос холестерина получают общее содержание холестерина 181 мг%. Получаетс , что 118 мг холестерина/ 100 мл наход тс в св занной форме. Способ с необработанной, сывороткой повтор ют, но в начале определени добавл ют 0,3 мг (по отношению к протеину ) сухого порощка из ацетона Candida rugosa AMCC 14830 в стандартной форме. Через 3 мин пол рографическое определение дает содержание общего холестерина 183 мг %.(54) A REACTIVE FOR DETERMINATION OF TOTAL CHOLESTEROL IN BLOOD SERUM but to be used together with other carbon sources. Especially preferred is the use of microorganisms that are obtained by a multi-stage expression process, with the cultivation in the first stage being produced on suitable carbon sources (glycerol) and in the second stage neither cholesterol esters. The use of cholesterol esterase and Candida rugosa AflCC 14830 in a weakly acidic form, pH 5-6.5 shows high stability. The optimum pH of the enzyme is 7.5. The activity of cholesterol rinesterase is enhanced by the addition of surfactants. Especially preferred additive: hydroxypolyethoxydodecane. Cholesterol is determined by fermentation when using cholester inoxidase, but cholesterol dehydrase or cholesterine dyrogenase can also be used. Enzymatic determination of total or bound cholesterol is metabolized using Sydase cholesterol, for example, Nocardia erythropoeis AMCC 17895, Nocardia erythropoEis AMCC 4277, Nocardia formica AMCC 14811 or Proactin Synthesis, or Nocardia erythropoEis AMCC 4277, Nocardia formica AMCC 14811, or Proactin Synthesis. Cholesterol cholesterol, cholesterol esterase: from microorganisms, catalysis, acetylacetone, methanol and containing ammonium ions taken separately or in a mixture. The reagent may also consist of cholesterol oxidase, a preparation of microorganisms with cholesterol eterase activity, peroxidase, a chromogen, and a buffer individually or in a mixture. 2,2-aminobenzthiazlinsulfonic acid is used as the chromogen. . The reagent may also consist of cholesterol oxidase, a preparation of cholesterol esterase, and a derivative of hydrazine, which reacts with keto groups to form idrazone and a buffer. As a derivative guide Razin use 2,4-dinitrophenylglyrazine. In addition, the reagent may additionally contain solvents, stabilizers and surfactants. Preferably, the reagents contain the following components: 1. Cholesterol oxidase 13-150 units / mg Cholesterol esterase from - microorganism .. 0.05-0.5 mg. Catalase 2 10 --5-10 units. Acetylacetone 0.05-0.2 ml Methanol 2-10 ml in 100 ml of buphene containing ammonium ions; pH 5-7. Hydroxypolyethoxidodecane 0.02-0.3 ml 2. Cholesterol oxidase. 3-40 units / mg Cholesterol esterase from a microorganism, 05-0.5 mg Peroxidase 2-10 -140 2,2-Aminobenzthiazolinesulfonic acid 50-200 mg Hydroxypolyethoxydodecane 0.05-0.5 ml in 100 ml of buffer with pH 6-8 3 .Cholesterol-; oxidase 0.1-1.0 units Cholesterol esterase from the microorganism O, O5-0., 5 mg 1 mm solution of 2,4-dinitrophenylhydrazine 1-5 ml PAV0.005-0.1 ml Per 10 ml of buffer with pH 6-8. 4. Cholesterol oxidase 2-100 units. Cholesterol esterase from microorganism 0.05-0.5 mg surfactant (hydroxy polyethoxydodecane 0, 1-2.0 ml in 50 ml of buffer with pH 5-9. Using the proposed reagent you can quickly and completely wash the bound cholesterol. For example, under cholesterol determination conditions using cholesterol oxidase, quantitative cleavage of bound cholesterol is achieved within 1-3 minutes with the addition of a dry powder from acetone Candida rugosa AMCC 14830 or AspergiE € spec. WS .90030 in an amount of 0.1-0.3 mg. Example 1. In the serum, the content of free cholesterol is determined to 63% (63 100 ml) -. To determine bound cholesterol, a comparative serum sample is treated for 30 minutes with an alcohol solution of caustic, potassium at 70 C. After neutralization and new measurement of existing cholesterol, the total cholesterol content is 181 mg%. cholesterol / 100 ml is in a bound form.The method with the untreated, serum is repeated, but at the beginning of the test, 0.3 mg (relative to protein) of a dry powder from acetone Candida rugosa AMCC 14830 in standard form is added. After 3 minutes, a polar determination gives a total cholesterol content of 183 mg%.
Пример 2. Дл повыизни активности сложных эфиров холестерина стандартный сухой порошок из ацетона Candida rugosa AMCC 14830 раствор ют в буфере из фосфата кали с рН 6,0 и диализуют по отношению к такому же буферу. После удалени лактозы, содержащейс в качестве стабилизатора, получают уделную активность холестеринэстеразы 0,3 ед./мг протеина в диализованном растворе.Example 2. To increase cholesterol ester activity, standard dry powder from acetone Candida rugosa AMCC 14830 is dissolved in potassium phosphate buffer pH 6.0 and dialyzed against the same buffer. After removal of the lactose contained as a stabilizer, a proper cholesterol esterase activity of 0.3 units / mg protein in the dialyzed solution is obtained.
Полученный раствор смешивают с ионитом на основе декстрана, модифицированным диэтиламиноэтанольными груп17ами, ионообменник отдел ют и элюируют О,2 М фосфатным буфером с рН 6,0. В элюате получают удельную активность холестеринэстеразы 1,2 ед./мг. .The resulting solution is mixed with a dextran-based ion exchanger modified with diethylamino-ethanol groups, the ion exchanger is separated and eluted with O, 2 M phosphate buffer pH 6.0. In the eluate, the specific activity of cholesterol esterase 1.2 units / mg is obtained. .
Полученный раствор подвергают фракционированию сульфатом аммони . Выпавшую между 1,8 и 2,4 М сульфата аммони протеиновую фракцию отде- л ют. Она показывает удельную активность холестеринэстеразы 2,5 ед./мгThe resulting solution is subjected to fractionation with ammonium sulphate. The protein fraction that precipitated between 1.8 and 2.4 M ammonium sulfate was separated. It shows the specific activity of cholesterol esterase 2.5 units / mg
Полученный продукт снова раствор ют в фосфатном буфере с рН 6,0, диализуют по отношению к такому же буферу вплоть до обессоливани и затем хроматографируют через колонн котора заполнена таким же анионитом , как указано выше. Оп ть провод т элюирование с помощью 0,2 М фосфатного буфера с рН 6,0. Во фракции удельна активность холестеринэстеразы достигает 7 ед../мг протеинThe product obtained is again dissolved in phosphate buffer with a pH of 6.0, dialyzed against the same buffer until desalting, and then chromatographed over columns that are filled with the same anion exchange resin as indicated above. Again, elution is carried out with 0.2 M phosphate buffer pH 6.0. In the fraction, the specific activity of cholesterol esterase reaches 7 units .. / mg protein
Полученный обогащенный препарат холестеринэстеразы примен ют дл определени холестерина, как описан в примере 1. Примененное количество -составл ет лишь 0,001 мг по отношению к протеину. Результаты соответствуют результату примера 1.The resulting enriched cholesterol esterase preparation is used to determine cholesterol, as described in Example 1. The amount used is only 0.001 mg with respect to protein. The results correspond to the result of example 1.
Холестеринэстеразу и.з Candida rugosa можно очистить обычным способом ТОНКОСЛОЙНОЙ хроматографией. Вместо стадий обогащени можно применить биохимические стадии очистки например, осаждение или фракционирование с помощью полиэтиленимина, органичестсих растворителей или солей, хроматографии через материалы молекул рных сит или более слабые анионообменники с другими функциональными группами, чем диэтиламиноэтанольные группы, оса):Дение с помощью протаминсульфата . . Cholesterol esterase from Candida rugosa can be cleaned in the usual way by thin layer chromatography. Instead of enrichment stages, biochemical purification steps can be applied, for example, precipitation or fractionation using polyethyleneimine, organic solvents or salts, chromatography through molecular sieve materials or weaker anion exchangers with other functional groups than diethylaminoethanol groups, wasp): Deny with protamine sulfate. .
Дример 3. К0,5мл сыворот|ки крови или стандартному холестерину добавл ют 1,0 мл 0,5 М буфера на основе фосфата кали с рН 7,5, KpTdрый содержат 0,4% гидроксиполиэтоксидодекана и 2,5 ед./мг холестеринэстер азы , согласно примеру 2.Drimer 3. K0.5ml of serum or standard cholesterol is added with 1.0 ml of 0.5 M potassium phosphate buffer based on pH 7.5, the KpTdry contains 0.4% hydroxypolyethoxydodecane and 2.5 U / mg cholesterol basics, according to example 2.
Эту реакционную смесь инкубируют в течение 40 мин при З7с. Затем .This reaction mixture is incubated for 40 minutes at 37 ° C. Then.
0,25 мл этого раствора добавл ют к 3 мл реактива на холестерин, который содержит две части уксусной кислоты, три -тасти уксусного ангидрида и одну часть серной кислоты (реактив Либермана-Бурхардта ).0.25 ml of this solution is added to 3 ml of cholesterol reagent, which contains two parts of acetic acid, three parts of acetic anhydride and one part of sulfuric acid (Lieberman-Burchardt reagent).
При использований стандарта в качестве относительной величины дл типичной пробы найдено 170 мг % общего . холестерина. Сравнительное определение при омылении сложных эфиров холестерина спиртовым раствором едкого кали дает 16 5 мг %.When using the standard as a relative value for a typical sample, 170 mg% total was found. cholesterol. A comparative definition in the saponification of cholesterol esters with an alcohol solution of potassium hydroxide gives 16 5 mg%.
Пример 4, 0,02мл сыворотки крови смешивают с 10 мл 0,5 М буфера на основе фосфата кали , который содержит 0,4% гидроксиполиэтоксидодекана и 0,2 ед/мг холестеринэстеразы, по примеру 2.Example 4, 0.02 ml of serum is mixed with 10 ml of 0.5 M potassium phosphate-based buffer, which contains 0.4% hydroxy polyethoxydodecane and 0.2 U / mg cholesterol esterase, according to Example 2.
Реакционный раствор инкубируют 60 мин при . Затем высчитываютThe reaction solution is incubated for 60 minutes at. Then calculate
0 экстинкцию Е при 240 нм в пригодном спектрофотометре и реакци начинаетс с помощью 0,1 ед/мг стериндегидразы из Brevibacterium steirolicum. Через 15 мин снова определ ют экстин5 кцию Eg- Концентраци образовавшегос д -холестенона и вместе с этим холестерина получаетс из разницы между первым и вторым определением0, the extinction of E at 240 nm in a suitable spectrophotometer and the reaction is started with 0.1 U / mg sterine dehydrase from Brevibacterium steirolicum. After 15 minutes, the extinction Eg- is determined again. The concentration of d-cholestenonone formed is formed, and with it cholesterol is obtained from the difference between the first and second definitions.
с учетом мол рного коэффициента экстинкции д-л д -холестенонаtaking into account the molar extinction coefficient dl d-cholestenone
при 240 нм. Измерение типичного образца дает 183 мг % общего холестерина . Сравнительное определение с помощью холестериноксидазы (из Nocardia erythropotis) вместо стериндегидразы дает 181 мг % общего холестерина.at 240 nm. Measuring a typical sample gives 183 mg% total cholesterol. Comparative determination using cholesterol oxidase (from Nocardia erythropotis) instead of sterine dehydrase gives 181 mg% of total cholesterol.
Пример 5. Юг диаммонийгидрофосфата раствор ют в 100 мл воды и с помощью 85%-ной фосфорной кислоты устанавливают рН 7,0. Затем добавл ют 10 ед./мг каталазы. С помощью полученного раствора смесь из 0,2 мл ацетилацетона, 10 мл метанола и 0,1 г гидроксиполиэтоксидо-,Example 5. The south of diammonium hydrogen phosphate is dissolved in 100 ml of water and the pH is adjusted to 7.0 with 85% phosphoric acid. Then 10 U / mg catalase is added. Using the solution obtained, a mixture of 0.2 ml of acetylacetone, 10 ml of methanol and 0.1 g of hydroxypolyethoxydol,
декана довод т до 100 мл. К этому раствору добавл ют 2,5 ед./мг холестеринэстеразы из Rhizopus spec. (WS 90027) , 5 мл полученного раствора смешивают с 0,02 мл сыворотки или 0,02 мл стандартного раствораdean was adjusted to 100 ml. To this solution, 2.5 units / mg of cholesterol esterase from Rhizopus spec. (WS 90027), 5 ml of the resulting solution is mixed with 0.02 ml of serum or 0.02 ml of a standard solution
холестерина с содержанием 200 мг % холестерина . Аликвотные части об- разца, содержащего сыворотку и также стандарт холестерина, смешивают, с О,1 ед/мг холестериноксидазы и инкубируют 60 мин при З7с. Затем полученный краситель измер ют фотометрически при 405 нм с учетом значений контрольных образцов.cholesterol containing 200 mg% cholesterol. Aliquots of the sample containing the serum and also the standard of cholesterol are mixed with O, 1 U / mg of cholesterol oxidase and incubated for 60 minutes at 37 ° C. The resulting dye was then measured photometrically at 405 nm, taking into account the values of the control samples.
Claims (1)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE2315501A DE2315501C3 (en) | 1973-03-28 | 1973-03-28 | Method for the determination of cholesterol |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU717994A3 true SU717994A3 (en) | 1980-02-25 |
Family
ID=5876225
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU742012029A SU1168103A3 (en) | 1973-03-28 | 1974-03-28 | Method of determining total cholesterol in blood serum |
SU742064837A SU717994A3 (en) | 1973-03-28 | 1974-10-07 | Reagent for determining cholesterin in blood serum |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU742012029A SU1168103A3 (en) | 1973-03-28 | 1974-03-28 | Method of determining total cholesterol in blood serum |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6236200A (en) |
SU (2) | SU1168103A3 (en) |
ZA (1) | ZA741993B (en) |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6134800B2 (en) * | 1974-03-28 | 1986-08-09 | Boehringer Mannheim Gmbh |
-
1974
- 1974-03-28 ZA ZA00741993A patent/ZA741993B/en unknown
- 1974-03-28 SU SU742012029A patent/SU1168103A3/en active
- 1974-10-07 SU SU742064837A patent/SU717994A3/en active
-
1986
- 1986-04-01 JP JP7537586A patent/JPS6236200A/en active Pending
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
SU1168103A3 (en) | 1985-07-15 |
ZA741993B (en) | 1975-04-30 |
JPS6236200A (en) | 1987-02-17 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
FI57783B (en) | FOERFARANDE FOER BESTAEMNING AV KOLESTEROL | |
Flegg | Ames award lecture 1972. An investigation of the determination of serum cholesterol by an enzymatic method | |
Moellering et al. | Determination of citrate with citrate lyase | |
US3862009A (en) | Determination of triglycerides | |
Shimizu et al. | Enzymatic microdetermination of serum free fatty acids | |
Bucolo et al. | Quantitative determination of serum triglycerides by the use of enzymes | |
Ochoa | [123] malic dehydrogenase from pig heart: l-malate+ DPN+⇆ Oxalacetate+ DPNH+ H+ | |
Majerus et al. | The acyl carrier protein of fatty acid synthesis: purification, physical properties, and substrate binding site | |
Neilands | [69] Lactic dehydrogenase of heart muscle: l (+)-Lactate+ DPN↔ Pyruvate+ DPNH+ H+ | |
CA1125151A (en) | Triglycerides assay and reagents therefor | |
Ameyama et al. | Method of enzymatic determination of pyrroloquinoline quinone | |
SU664536A3 (en) | Reagent for determining cholesterin | |
EP0010296B1 (en) | Test composition for the determination of triglycerides and its use | |
Williamson et al. | The formation of 5-phosphomevalonate by mevalonate kinase in Hevea brasiliensis latex | |
Cooper et al. | The utilization of itaconate by Pseudomonas sp | |
US4181575A (en) | Composition and method for the determination of cholesterol | |
FI57024B (en) | QUANTITATIVE ASSESSMENT OF AMMONIA IN THE BLOOD | |
US4338395A (en) | Method for the analysis of triglycerides | |
Wieland et al. | Isozymes and heteroenzymes | |
US4134793A (en) | Creatinine desimidase in the quantitative determination of creatinine | |
Fjellstedt et al. | Purification and properties of l-lysine-α-ketoglutarate reductase from human placenta | |
SU717994A3 (en) | Reagent for determining cholesterin in blood serum | |
JPS6134800B2 (en) | ||
SU1431690A3 (en) | Method of analysing glutamat-pyruvate- and glutamat-oxaloacetatetransaminase | |
US4349625A (en) | Method for assaying fatty acids |