SU649435A1 - Method of preparing erythrocyte - Google Patents

Method of preparing erythrocyte

Info

Publication number
SU649435A1
SU649435A1 SU772500570A SU2500570A SU649435A1 SU 649435 A1 SU649435 A1 SU 649435A1 SU 772500570 A SU772500570 A SU 772500570A SU 2500570 A SU2500570 A SU 2500570A SU 649435 A1 SU649435 A1 SU 649435A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
erythrocytes
virus
solution
adsorption
washing
Prior art date
Application number
SU772500570A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Галина Николаевна Старухина
Original Assignee
Уфимский Научно-Исследовательский Институт Вакции И Сывороток Им. И.И.Мечникова
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Уфимский Научно-Исследовательский Институт Вакции И Сывороток Им. И.И.Мечникова filed Critical Уфимский Научно-Исследовательский Институт Вакции И Сывороток Им. И.И.Мечникова
Priority to SU772500570A priority Critical patent/SU649435A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU649435A1 publication Critical patent/SU649435A1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

1one

Изобретение относитс  к области медицинской нромьпиленности, а именно к пронзводству вирусных препаратов.FIELD OF THE INVENTION The invention relates to the field of medical criminality, namely to the introduction of viral preparations.

Р1звестен способ приготовлени  эритроцитов дл  адсорбции вируса гриппа путем отмывани  эритропитов кур физиологическим раствором с последующей формалинизацней , пов.орным отмыванием и приготовленнем сусиепзии эритроцитов .A method of preparing erythrocytes for the adsorption of the influenza virus by washing the chicken erythrophytes with physiological saline followed by formalization, routine laundering and prepared erythrocyte susiese is known.

Однако известный снособ не обеспечивает высокой адсорбционно-элюирующей снособностн эритроцитов.However, the known snozob does not provide a high adsorption-eluting erythrocyte capacity.

Целью изобретени   вл етс  новышение адсорбционно-элюирующей способности эритроцитов.The aim of the invention is to increase the adsorption-eluting ability of red blood cells.

Эта цель достигаетс  тем, что формалипизированные эритроциты отмывают двукратно боратно-фосфатпым буферным раствором хлористого натри  при рН 9,0-9,2 и однократно фосфатным буферным раствором хлористого натри  при рН 5,5-5,7 и суспензию эритроцитов готов т в этом же растворе.This goal is achieved by the fact that formally erythrocytes are washed twice with a borate-phosphate buffer solution of sodium chloride at pH 9.0-9.2 and once with a phosphate buffer solution of sodium chloride at pH 5.5-5.7 and the suspension of erythrocytes is prepared in the same way. solution.

Способ осуп1ествл ют следующим образом .The method is described as follows.

Свежие отмытые эритроциты кур, разведенные 1:1 физиологическим раствором, выдерживают с 20% ио объему раствором формалина в течение 3 суток в обычном холодильнике. Затем приетупают к отмывке их па лабораториой рефрижераторной центрифуге ЦЛР- в стекл нных центрифужных стаканах емкостью 250 мл. Центрифугирование на всех этапах провод т соFresh washed chicken erythrocytes, diluted 1: 1 with saline, are incubated with a 20% volume of formalin solution for 3 days in a conventional refrigerator. Then they are applied to washing them in a laboratory using a CLR-refrigeration centrifuge in 250 ml glass centrifuge cups. Centrifugation at all stages is carried out with

скоростью 1000 об/мин не более 4-5 мин. Эти услови  выбирают дл  того, чтобы не дои}стить попадани  в осадок формалинизированных эритроцитов разрушенных клеток и прочих примесей, оседающих ириspeed of 1000 rpm no more than 4-5 minutes. These conditions are chosen in order to prevent the formalinized erythrocytes from destroying cells and other impurities from falling into the sediment.

длительном и скоростном центрифугировании и способных загр знить вируссодержащий материал на этапе элюцнн.long and high-speed centrifugation and capable of contaminating vaccinated material at the stage of the eluted process.

Последовательность промывани  формаЛ1 низированных эритроцитов следующа .The sequence of washing the forma l1 erythrocytes is as follows.

После удалени  формалина эрптроциты дважды промывают физиологическим раствором рП 7,0. Затем дважды их центрифугируют в п;елочном боратно-фосфатномAfter removal of formalin, the erprocytes are washed twice with physiological saline pp 7.0. Then they are centrifuged twice in n; fir-tree borate-phosphate

растворе хлористого натри  рН 9,0. При этом в промывной жидкости методом онределени  белка по Лоури обнаруживаетс  от 0,8 до 1,1 мкг его в 1 мл, тогда как после отмывки эритроцитов обычным физиологнческим раствором рН 7,0 примесей белка ие обиаружено.sodium chloride solution pH 9.0. In this case, in the washing liquid, the method of protein distribution according to Lowry reveals from 0.8 to 1.1 µg of it in 1 ml, whereas after washing the erythrocytes with a usual physiological solution of pH 7.0, protein impurities are not discharged.

Далее осадок формалинизированных эритроцитов промывают на центрифуге ЦЛР-1 однократно фосфатно-буферным растворомNext, the precipitate of formalinized erythrocytes is washed in a CLR-1 centrifuge once with phosphate buffer solution

хлористого натри  рП 5,6 и ресуснендируют их в равтюм количестве того же раствора до по.р.чски  50% по объему взвеси. Дл  получс1 и  очищенного и концептрированного вируссодержащего материала на каждые 100 мл аллангоисной жидкости добавл ют 6 мл 507о-ной сзвееи эритровдтов и оставл ют дл  адсорбции вируса в холодильнике ирн на ночь. На другой день осадок формалинизированных эритроцитов с нагруженным вирусом центрифугируют на ЦЛР-1 цри 1000 об/мин в течение 5 мин, затем однократно иромывают охлал денным до 4-6°С физиологическим раствором рН 7,0 и номещают на элюцню вируса в вод ную баню ири 38°С в физиологическом растворе, объем которого в 10 раз меньше объема исходной аллантоисной жидкости (дес тикратный элюат). Через 4 ч выдерживани  в вод ной бане взвесь эритроцитов центрифугируют на ЦЛР-1 ири 2000 об/мин в течение 15-20 мин, надоеадочную жидкость (1 элюат) сливают и повтор ют цикл элюцпи в течение 3 ч в таком же объеме физиологического раствора . Степень элюции определ ют в реакции гемагглютинации (РГА) с 1%-иой взвесью свелснх эрнтроцитов кур на илекснглазовых дон1,ечках. Объем реакщи; в каждой лунке составл ет 1 мл. Дл  сравнени  ироцесе адсорбции н два цикла элюции того же вируса провод т с формалинизированными эритроцнтадШ, нриготовленнымн общеизвестным способом (без промывани  их щелочным и кислым буферными растворами). Как показали результаты опытов, цри использовании очищенных формалинизированкых эрнтроцитов, приготовленных по нредлагаемому способу, процесс десорбции вируса нроисходнт быстрее. Так, уже через 2 ч выдерживани  в вод ной бане вируса А (Виктори ) 75 элюировало в физиологический раствор от 76 до 81% по сравнению с гемагглютинируюихей активностью в аллантоиеной жидкости с учетом небольших потерь после адсорбции вируса ца эритроцитах . При использовании формалинизированных эритроцитов, ириготовленных общеизвестным способом, за этот период элюнровало от 22 до 30%. Через 4ч (1 цикл элюции) в нервом случае освобождалось от 83 до 85%, аво втором - от 40 до 43%. В конечном итоге за два цикла элюции (7 ч выдерживани  в вод;1ной бане) очищенные формалиннзироваиные эритроциты освобо кдали о7-89% адсорб 1роваццого вируса , а эритроциты, приготовленные но общеизвестному способу, - 43-46% но сравнению е содержаиием гем:-1Г1Лютинииов аллагггоисиой жидкости, вычисленных на обн ,ий объем матер 1ала. Дл  сн ти  оставщегое  вируса во втором случае нотребовалось нроведенне третьего н четвертого этанов элюировани  вируса, т. е. дополнительное выдерживание в вод ной бане 6- 7 ч, что удлин ло нроцесс нриготовлени  очищенного вируесодержащего материала, привод  к потер м гемагглютинируюи1,ей активности на этапах. Использование предлагаемого способа обеспечивает зскорение. ироцееса приготовлени  элюатов вируса гринна е высокой адсорбциоццо-элюирующей способностью, что очень важно дл  сокращени  технологического нроцесса изготовлени  инактивированной грипиозиой вакцины, а также сниж .ение нотерь гемагглютинирующей активиости при очистке вируса методом адсорбции-элюции с эритроцитов кур, что имеет особое значение прп иснользованиц в про;:зводетве вакцины гитаммов с низкой репродуцирующей сиособиостью и низким выходом гемаг1 тют - нинов. Фор м у ,ч а изобретен и   Способ приготовлени  эритроцитов дл  адсорбции вируса гриппа путем отмывани  эритроцитов кур физиологическим раствором с последуЮЩей формалинизацией, повторным отмыванием и приготовлением суспензиц эритроцитов, о т л и чающийс  тем, что, с целью иовыщени  адсорбционно-элюирующей епособностн эритроцитов, формалииизирован)ые эритроциты отмывают двукратно боратно-фосфатным буферным раствором хлориетого натри  при рН ,2 и однократно фосфатным буферным раствором хлористого натри  при рН 5,5--5,7 и суспензию эритроцитов готов т 15 этом же растворе. Источники информации, прин тые во внимание при экспертизе 1. Регламеит производства противогриппозной сыворотки с сульфаниламидами. ЛенНИИВС им. Мечникова, 1966.sodium chloride RP 5.6 and resuspendyd them in equal quantities of the same solution to p. 50 50% by volume of suspension. To obtain 1 and purified and conceptual vaccinated material, for every 100 ml of allangoic fluid, 6 ml of 507 ° C erythrovdts are added and left to adsorb the virus in the fridge for overnight. The next day, the precipitate of formalinized erythrocytes loaded with virus was centrifuged at CLR-1 at 1000 rpm for 5 minutes, then once and spayed with physiological solution pH 7.0 cooled to 4-6 ° C and put into a water bath for elute virus At 38 ° C in physiological solution, the volume of which is 10 times less than the volume of the initial allantoic fluid (tenfold eluate). After 4 hours, the suspension of erythrocytes in a water bath is centrifuged at CLR-1 or 2000 rpm for 15–20 minutes, the supernatant (1 eluate) is drained and the elution cycle is repeated for 3 hours in the same volume of saline. The degree of elution is determined by the haemagglutination reaction (DSA) with a 1% suspension of overweight chicken erntrocytes on the leech eye glands. The volume is reactive; each well is 1 ml. For comparison, the adsorption process and two elution cycles of the same virus are carried out with formalized erythrocytes prepared using a well-known method (without washing them with alkaline and acidic buffer solutions). As shown by the results of the experiments, when using purified formalin erntrocytes prepared according to the proposed method, the desorption process of the virus develops faster. So, already after 2 hours, virus A (Victory) 75 was eluted in a water bath 75 from 81% to 81% in physiological saline as compared with the hemagglutinating activity in the allantoic fluid, taking into account small losses after adsorption of the virus erythrocytes. When using formalized erythrocytes, irifted in a well-known way, eluted from 22 to 30% during this period. After 4 hours (1 elution cycle), in the nerve case, 83 to 85% were released, and the second, from 40 to 43%. In the end, in two elution cycles (7 hours of incubation in water; 1st bath), purified formalin-nizirovanny erythrocytes released about 7–89% of the adsorption of the Rivine virus, and erythrocytes prepared using the well-known method — 43-46% compared to the heme: - 1G1 luginii of alaggoisii liquid, calculated on the basis of the volume of the material, 1a. In order to remove the remaining virus in the second case, the third and fourth ethanol was required to elute the virus, i.e., additional curing in the water bath for 6-7 hours, which lengthened the process of preparation of the purified virus-containing material, leading to loss of hemagglutination and its activity on stages. Using the proposed method provides zkorenie. In order to reduce the technological process of manufacturing the inactivated flu vaccine, as well as reducing the hemagglutinating activity of the viral erythrocytes, as well as reducing the hemagglutinating activity during the purification of the virus by the method of adsorbing erythrocytes to the hemgglutinating activity of the virus in the eryos pro;: zvitetve vaccine gitammy with low reproduction capacity and low yield of hemaglutus - nins. The form for preparing the erythrocytes for the adsorption of the influenza virus by washing the erythrocytes of chickens with physiological saline followed by formalization, rewashing and preparing erythrocyte suspensions, is also invented by us, and it was created by using a cell that was used for the synthesis of the erythrocytes and for the purpose of gaining the use of erythrocytes. Formalized red blood cells are washed twice with sodium phosphate borate buffer solution at pH 2 and once with sodium chloride chloride phosphate buffer solution at pH 5.5-5.7 and erythro suspension Oocytes are prepared 15 of the same solution. Sources of information taken into account in the examination 1. Reglameit anti-influenza serum production with sulfonamides. LenNIIVS them. Mechnikov, 1966.

SU772500570A 1977-06-24 1977-06-24 Method of preparing erythrocyte SU649435A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU772500570A SU649435A1 (en) 1977-06-24 1977-06-24 Method of preparing erythrocyte

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU772500570A SU649435A1 (en) 1977-06-24 1977-06-24 Method of preparing erythrocyte

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU649435A1 true SU649435A1 (en) 1979-02-28

Family

ID=20715112

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU772500570A SU649435A1 (en) 1977-06-24 1977-06-24 Method of preparing erythrocyte

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU649435A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5643577A (en) * 1990-04-24 1997-07-01 The University Of Newcastle Research Associates Limited Oral vaccine comprising antigen surface-associated with red blood cells

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5643577A (en) * 1990-04-24 1997-07-01 The University Of Newcastle Research Associates Limited Oral vaccine comprising antigen surface-associated with red blood cells

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sabin et al. Unique physico-chemical properties of Japanese B encephalitis virus hemagglutinin.
Lerner et al. Hemagglutination with reoviruses
Frommhagen et al. The role of aggregated γ-globulins in the anticomplementary activity of human and animal sera
JPS6147186A (en) Method of purifying influenza virus
Morgan et al. A hemolysin associated with the mumps virus
KR890000165B1 (en) Method of heat treatment of plasma flactions
Burke The purification of interferon
Sekiguchi et al. Participation of spectrin in Sendai virus-induced fusion of human erythrocyte ghosts.
Philipson et al. On the role of virus sulfhydryl groups in the attachment of enteroviruses to erythrocytes
JPS6160614A (en) Pasteurized homogeneous aggulutinin- free viii factor medicine and manufacture
Stecher et al. Studies on chemotaxis: XII. Generation of chemotactic activity for polymorphonuclear leucocytes in sera with complement deficiencies
Lief et al. Studies on the soluble antigen of influenza virus: III. The decreased incorporation of S antigen into elementary bodies of increasing incompleteness
US4322403A (en) Method for the preparation of an immune globulin solution suitable for intravenous use
US4206014A (en) Process for removing detergents from virus-antigen suspensions
SU649435A1 (en) Method of preparing erythrocyte
US5304636A (en) Receptor for the human rhinovirus minor group
Hoyle et al. The use of influenza virus labelled with radio-sulpher in studies of the early stages of the interaction of virus with the host cell
WO1990003791A1 (en) Methods for interfering with hiv multiplication and composition for the treatment of aids
Ulmanen et al. Role of protein synthesis in the assembly of Semliki Forest virus nucleocapsid
US3301842A (en) Process for isolating alpha1-antitrypsin from human or animal humors
Waris et al. Fatal cytomegalovirus disease in a previously healthy adult
Furukawa et al. Studies on Hemagglutination by Rubella Virus.
Liu et al. The incorporation of radioactive phosphorus into influenza virus
NZ224259A (en) Rhinovirus small receptor binding site and monoclonal and polyclonal antibodies thereto
Lerner et al. Enterovirus hemagglutination: inhibition by several enzymes and sugars