SU615087A1 - Способ получени иммобилизованных никотинамидадениндинуклеотид (над)-зависимых ферментов - Google Patents

Способ получени иммобилизованных никотинамидадениндинуклеотид (над)-зависимых ферментов

Info

Publication number
SU615087A1
SU615087A1 SU752304911A SU2304911A SU615087A1 SU 615087 A1 SU615087 A1 SU 615087A1 SU 752304911 A SU752304911 A SU 752304911A SU 2304911 A SU2304911 A SU 2304911A SU 615087 A1 SU615087 A1 SU 615087A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
coenzyme
enzyme
solution
nad
column
Prior art date
Application number
SU752304911A
Other languages
English (en)
Inventor
Павел Павлович Гладышев
Михаил Иванович Горяев
Юрий Александрович Шаповалов
Original Assignee
Ордена Трудового Красного Знамени Институт Химических Наук Ан Казахской Сср
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ордена Трудового Красного Знамени Институт Химических Наук Ан Казахской Сср filed Critical Ордена Трудового Красного Знамени Институт Химических Наук Ан Казахской Сср
Priority to SU752304911A priority Critical patent/SU615087A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU615087A1 publication Critical patent/SU615087A1/ru

Links

Landscapes

  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

(54) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ИММОБИЛИЗОВАННЫХ НИКОТИНАМИДАДЕНИНДИНУКЛЕОТИД (НАД)-ЗАВИСИМЫХ ФЕРМЕНТОВ

Claims (2)

  1. 2 с сохранением активности исходного фермента. .Поставпенна  цеш Достигаетс  тем, 4to при попученни иммобилизованных НА завйсимых ферментов св зывание НАД .с носителем осушествп ют путем сорбции. В качестве носител  исцодьзуетс  целлюлоз и ее производные. В качестве НАД-аависимо го фермента используют алкогольдегидроге зу. В качестве производных це люпозм используют гуанидоэтилцеллюлозу. Сущность изобретени  {заключаетс  в сорбции на носителе кофермента НАД (в окисленной ипИ востааовленной фор ме) с цюследуклиим присоеданением фермента к спою сорбированного кофермента Предпочтительно процесс провод т следующим образом. Производ т сорбцию кофер мента (НАД или НАД сорбента обеспечивающих прочное ср зьгеание кофермента с последующим св зыванием ферментов со споем сорбированного коферцента за счет специфического взаимо действи  фермент-кофермент, а также взаимодействи  фермента с носителем. Дн  замены инактивированных в процессе работы фермента и кофермента на новые предпагаетсл осуществл ть их десорбцию в услови х, отличных от усло вий, в которых работает система фермен кофермент. ОписыЁаемый способ испытан в систем когольдегидрогеназа-никотинамидеденинн леотид (НАД). Дл  этого кофермент НАД сорбируют, например, на целлюлозе из водного О,О15 М буферного раствора фосфата кани  при рН 7,7 и ввод т в систему фермент - а когольдегидрогеназу . При Эгом происходит самосборка иммобилизоеаывой фермеит-кофермектной системы - цеилюдоэа-НЛД-а когольдегнд геназа, котора  в усдови х проведени  ферментативного процесса восстановлени  лактапьдегида в 1,2-пропандиол (О,015 .М буфернь й раствор фосфата капи  при рН 7,7, температура ) прочно удерживаетс  на сорбенте. В случае потери активности фермент коферментной системы проводитс  ее д&сорбци  непосредственно в ферментативном реакторе (например, проточной колонке ) водно-спиртовой смесью 3:.1 при рН-10 с последукндей иммобилизацией активных койлонент по описьюае- мому способу. П р и- М е р 1. Из исходного раство ра восстановленноцх никотинамидаденин-.динуклеотила I НАЛ кпшюитпочмоЛ фосфата кали  рН 7,7 берут апЬ|«шоту, родержашую примерло 260 «Ю НАД-Нд в 2 мл буферного раствора (ко 11«ество вз того дл  србции НАДН- провер ют спектрофотометрическим методом при 340 ммк в 1 см. кювете, учитыва , что коэффициенч 1светопогашеии : дл  НАИ Hg/Ej 6,2),.Приготрвленный раствор кофермента приливают к 0,1 г гуанидоЭ7илцefллюлозы . Сорбцию кофермента провод т, в течение 1 ч при и перио дическом перемешивании. После сорбции целлюлозу отдел ют от раствора и последний спектрофотометрируют. По разности исходных и конечных количеств НАД Н.определ ют величину сорбции. Дл  гуанидоэтилделлюлозы она сооТ ветствует 59,6%. Слабо св занный с сорбентом НАДН.д отмывают буфер ,ным раствором. Количественное определение иммобипизовацного на гуанидоэтилцеплюпозе НАД Н осуществл ют по нингидрин-сер х нокислотной методике. Дл  этого готов т раствор, содержащий следующие компоненты; О 15 ммоль/мд буфера фосфата кали  (рН 7,7),, 5О мкмоль/мл этанола , 17 мкмопь/мл лактальдегида и 0,16 мг/мл алкоголь.дегидрогеназы (все компоненть реакционной смеси добавл ют при ),,0,2 МП полученной смеси приливают в пробирки/со стандартными растворами, содержащими из1вестное количество НАДНдИ с 0,1 г целлюлозы с сорбированным НАДН„. Реакционные смеси инкубируют в термостате при 37 С в течение 45 мин. После чего фер ментативную реакцию в стандартных растворах прекращают добавлением 1 мл серной кис оты. В сдучае, иммобилизованной системы реакци  останавпиваетс ( отделением раствора субстрата от иммо- бипизованной ферМерт-коферментной сиотемы фильтрованием в центрифуге. Дл  стандартизации условий,в фильтрат добавл ют 1 мл серной кислоты. Растворы тщательно перемещивают и снова инку- бирую;г при 70 С в течение 10 мин; Реакционную CMetb охлаждают до комнатной температуры и при тщательном перемешивании добавп ют 4О мкл свежеприготовленного раствора нингидрина (3% нингидрина и 5% бисульфита натри ). Раствор оставл ют сто ть при комнатной температуре в течение 60 миН)) затем в смесь припивают еще 1 мл концентрированной серной кислоты и оставл ют сто ть При комнатной темпера- , туое в течение 5 мин. Опгич(чпку1п nnmv. Активность сорбированного коферментб определ ют по калибровочной криэой в зависимости от величины оптической ппотноств Подучают копичественное значение активности сорбированного НАД Н прО11Вл$ио1аего физиологическую активность В иммобилизованном состо нии. Оно ока за лось равным 56,3% от о&пего количест ва кофермента, сорбированного на матри ..«У-, . . ..: .. Приме р 2. Колонку размером О,3 X 1О см заполн ют 0,5 г ryaifHAo дтилцёллюлозы, уравновешивают 0,015 М буферным раствором фосфата кали  (рН 7 Через колонку пропускают до насыщени  ,0,ОО5 моль/л раствор 1уосотннамидаденйндинуклеотида () Осуществл ют спектрофотометрическай контроль элюата на выходе из колонки при,340 мм. Слабо св занный НАД-Н отмывают буферным раствором. Пропускают через колонку раствор фермента с концентрацией 2 1 моль/л в Ь,О15. М буферном растворе фосфата кали  (рН 7,7) до насьпцени  сор бента, алюат на выходе спектрофотометри руют при 28р ммк. Избыток фермента отмыва1рт, 9Л|онру  буферный раствор через колонку. Работу полученной фермент-коферментной системы провер ют; следу кадим образом . Через колонку с фермент-коферментной систем6й эгаоируюг: со скоростью 2 мл/ч раствор, содержащий следующие компоненты; 0,15 ммодь/ма буфера фоофата кали  с рН 7,6 50 мкмопь/мп этанола и 17 мкмопь/мп пактапьдегида. Смесь после прохождени  через колонку фракционируют на коллекторе фракций. Количество образующегос  в результате ферментативной реакции 1,2-пропандиола определ ют по нингидрнн-сернркнслотной методике. Дл  удалени  инактивированной систе Ы провод т десорбцию в динамических слови х смесью вода-спирт в соотношеии 3:1 при рН 10. Элюат на выхода из колонки спектрофотометрируют при 880 ммк. Сорбент промывают буферным раствором и заново провод т иммобилизааию кофермента и фермента по onHcaiiой выше методике. При этом получают активность, равную исходной. . Формула изобретенин 1,Способ получени  иммобшшзованных ннкотинамидадениндинуклеотнд (НАЛ)зависймых ферментов, вкпючакадий СВЯЗЬЕванне кофермента НАД в окиспенной и пи восстановленной форме с носителем и после юшее присоедннение фермента к коферменту на носителе, отличающийс  тем, что с целью упрощени  процесса с сохранением активности ио;ходного фермента, св зывание НАД с iio сителем осуществл ют путем сорбции h в качестве носителей используют целлюлозу и ее производные. 2.Способ по п. 1, о т л и ч а ющ и и с   тем, что в качестве HA/L-. зависимого фермента используют алкогопьдеги/фогеназу . 3. Способ по п. 1, отличающий с   тем, что в качестве производных целлюлозы используют гуанидоэтипцеплк лоау . Источники информации прин тые во внимание при экспертизе; 1. Иммобилизованные ферменты Современное состо ние и перспективь. Том П.Под ред.. И. В. Березина, р. К. Антонова , К. Мартинена.. Изд. 1976.
  2. 2.M.K.weit3e,H.w.v/eetae,t,H,i-BHgiit Bbciiem.Biop-bvs.Res-Comt-nunn TI 43, 347.
SU752304911A 1975-12-22 1975-12-22 Способ получени иммобилизованных никотинамидадениндинуклеотид (над)-зависимых ферментов SU615087A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU752304911A SU615087A1 (ru) 1975-12-22 1975-12-22 Способ получени иммобилизованных никотинамидадениндинуклеотид (над)-зависимых ферментов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU752304911A SU615087A1 (ru) 1975-12-22 1975-12-22 Способ получени иммобилизованных никотинамидадениндинуклеотид (над)-зависимых ферментов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU615087A1 true SU615087A1 (ru) 1978-07-15

Family

ID=20642464

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU752304911A SU615087A1 (ru) 1975-12-22 1975-12-22 Способ получени иммобилизованных никотинамидадениндинуклеотид (над)-зависимых ферментов

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU615087A1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4481292A (en) * 1980-07-01 1984-11-06 The Coca-Cola Company Process for the generation of acetaldehyde from ethanol
GB2276170A (en) * 1993-02-17 1994-09-21 British Tech Group Polymeric compounds

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4481292A (en) * 1980-07-01 1984-11-06 The Coca-Cola Company Process for the generation of acetaldehyde from ethanol
GB2276170A (en) * 1993-02-17 1994-09-21 British Tech Group Polymeric compounds
GB2276170B (en) * 1993-02-17 1997-04-16 British Tech Group Polymers containing guanidine groups for use in therapy
US5698190A (en) * 1993-02-17 1997-12-16 British Technology Group Ltd. Polymeric compounds
US5851518A (en) * 1993-02-17 1998-12-22 British Technology Group Limited Polymeric compositions
US5880208A (en) * 1993-02-17 1999-03-09 Btg International Limited Polymer compounds

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Passon et al. Soluble cytochrome b5 reductase from human erythrocytes
Mincey et al. Mechanism of action of methoxatin-dependent alcohol dehydrogenase
Cousineau et al. Formation of amino acid from urea and ammonia by sequential enzyme reaction using a microencapsulated multi-enzyme system
Wessels Mechanism of the reduction of organic nitro compounds by chloroplasts
Hatfield et al. Threonine Deaminase from Bacillus subtilis: I. PURIFICATION OF THE ENZYME
Mattiasson et al. Calorimetric analysis of sugars and sugar derivatives with aid of an enzyme thermistor
Yamanaka et al. Purification, crystallization and properties of primary alcohol dehydrogenase from a methanol-oxidizing Pseudomonas sp. no. 2941
SU615087A1 (ru) Способ получени иммобилизованных никотинамидадениндинуклеотид (над)-зависимых ферментов
Takahashi et al. Purification and some properties of D-glucono-γ-lactone dehydrogenase: D-Erythorbic acid producing enzyme of Penicillium cyaneo-fulvum
JPH0472520B2 (ru)
Muth et al. Ornithine cyclase (deaminating): III. Mechanism of the conversion of ornithine to proline
Gangloff et al. Studies on aspartyl-tRNA synthetase from baker's yeast I. Purification and properties of the enzyme
Tsuda et al. Ornithine Metabolism by Clostridium sticklandii: OXIDATION OF ORNITHINE TO 2-AMINO-4-KETOPENTANOIC ACID VIA 2, 4-DIAMINOPENTANOIC ACID; PARTICIPATION OF B12 COENZYME, PYRIDOXAL PHOSPHATE, AND PYRIDINE NUCLEOTIDE
Davis et al. Glyoxaiase I, a lyase or an oxidoreductiye isomerase?
Chang et al. D-Glucaric acid and galactaric acid catabolism by Agrobacterium tumefaciens
May et al. Cofactor recycling in liquid membrane-enzyme systems
Tabata et al. Automated assay of creatinine in serum as simplified by the use of immobilized enzymes, creatinine deiminase, and glutamate dehydrogenase
Kohn et al. Tartaric Acid Metabolism: VI. Crystalline Oxaloglycolate Reductive Decarboxylase
US3951744A (en) Purification of dehydrogenases
Tsai et al. Carbon-13 NMR studies and purification of gluconate pathway enzymes from Schizosaccharomyces pombe
Klibanov et al. Thermal stabilities of membrane-bound, solubilized, and artificially immobilized hydrogenase from Chromatium vinosum
Cañizares et al. Enzymatic interference-free assay for oxalate in urine
Englard et al. 5-Keto-D-fructose: VI. A specific reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate-linked reductase from yeast
US3810823A (en) Method for isolation of enzymes
Misono et al. L-Lysine-α-Ketoglutarate ε-Aminotransferase Properties of the Bound Pyridoxal 5'-Phosphate