SU578335A1 - Способ получени лейцил-глицил-глицин-аминопептидазы - Google Patents
Способ получени лейцил-глицил-глицин-аминопептидазыInfo
- Publication number
- SU578335A1 SU578335A1 SU7602326556A SU2326556A SU578335A1 SU 578335 A1 SU578335 A1 SU 578335A1 SU 7602326556 A SU7602326556 A SU 7602326556A SU 2326556 A SU2326556 A SU 2326556A SU 578335 A1 SU578335 A1 SU 578335A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- enzyme
- leucyl
- proteins
- precipitation
- preparing
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
1
Изобретение относитс к области технической микробиологии и может быть иснользовано дл получени ферментных препаратов, в частности пептидаз из микробиологического сырь .
Известен способ пол}чени лейцил-глицилглицин-аминопептидазы , предусматриваюндий осаждение белков из ферментного сырь , полученного из грибов рода Aspergillus, обессоливание белковой фракции, фракционирование белков кол-оночной хроматографией на сефадексе, диализ пептидазной фракции с выделением целевого продукта и его лиофилизацию в фосфатном буфере.
Однако используемые в известном способе в качестве ферментного сырь штаммы Aspergillus oryzae и aspergillus paraziticus продуцируют токсины, от которых не удаетс освободитьс на последующих этапах очистки.
Цель изобретени - получение фермента, свободного от токсичных примесей, и повышение его стабильности.
Дл этого осаждение белков из ферментного сырь , полученного из грибов рода Aspeigillus , провод т в присутствии ионов кобальта , перед диализом осуществл ют инактивацию протеиназы, а лиофилизацию провод т при рН 7,8-8,0. При этом протеиназу инактивируют нагревом в течение 10-15 мин до 62°С с последующим охлаждением до 20°С.
Сущность предлагаемого способа заключаетс в обработке ферментного сырь из щтамма Aspergilius, осаждении белков сульфатом аммони , обессоливании белкового осадка, фракционировании белков колоночной хроматографией на сефадексе, диализе пептидазной фракции с выделением целевого продукта и его лиофилизации в фосфатном буфере. Концентрированный препарат поверхностной
культуры Aspergillus flavus раствор ют в воде с добавлением 0,001-0,0001 М раствора хлористого кобальта, осаждают низкомолекул рные белковые примеси этанолом. В полученной после дробного осаждени и центрифугировани ферментной фракции инактивирзют протеиназу нагревом в течение 10- 15 мин, обеспечива перепад температур от 62 до 20°С, а очищенную лейцил-глицил-глицин-аминопеитидазу лиофилизуют из кобальтсодержащего раствора при рН 7,8-8,0.
При.мер. 100 г концентрированного препарата поверхностной культуры Aspergillus flavus - флавизина, полученного Украинским научно-исследовательским институтом
пищевой пpOJMЫщлeннocти, обрабатывают семикратным объемом воды, содерйсащей ионы Со+2, в течение 2 час дл извлечени низкомолекул рных веществ и других примесей. Смесь центрифугируют в течение 40 мин при
3000 об/мин. Полученный раствор, содержащий пигменты, примеси углеводородов, протеазы и пептидазы, охлаждают до 2°С и прибавл ют этиловый спирт до конечной концентрации 50% при температуре - 8°С. Выдерживают систему в течение 20 мин, а затем центрифугируют на холоде.
Полученный белковый осадок, содержащий протеазы и нептидаэы с примесью углеводов и пигмента, раствор ют в двойном количестве по отношению к исходной навеске флавизина дистиллированной воды, содержащей ионы . Нерастворившуюс часть удал ют центрифугированием.
К надосадочной жидкости, содержащей протеазы и пептидазы, прибавл ют сухой сульфат аммони до 40% от полного насыщени и выдерживают в течение 15-18 час при комнатной температуре. Белок, вынавщий в осадок, отдел ют центрифугированием, а в полученном растворе провод т повторное насыщение сульфатом аммони до 80% от полного насыщени . Через 6-8 час смесь центрифугируют, а осадок, содержащий протеины и нептидазы, раствор ют в половинном объеме дистиллированной воды, содержащей ионы Со+2. От сульфата аммони освобождаютс диализом против 0,0067 М фосфатного буфера при рН 7,8-8,0.
Дл инактивации нротешшзы полученный диализат подогревают до 62°С в течение 10 мин и сразу же охлаждают на вод ной бане до 20°С. Денатурированный белок, содержащий пептидазы, удал ют центрифугированием , а пептидазную фракцию очищают на колонке с ДЭАЭ-целлюлозой при линейном градиенте 0,1-0,7 М NaCl в 0,02 М фосфатном буфере при рН 7,8-8,0.
Активную фракцию, полученную после обессоливаии диализом, хроматографируют на сефадексе Г-100 в фосфатном буфере и лиофилизуют из кобальтсодержащего раствора при рН 7,8-8,0.
Расчет активности ЛГГ-аминопептидазы провод т по формуле:
Активность лейцил-глицил-глицин-аминоцептидазы
а-1000.103.100
;: Д-
b-c-t-x%
где а - количество очищенной аминокислоты (в перерасчете но оптической плотности), 7;
1000 - перевод j в мг; Ю -перерасчет до целого числа; b - молекул рный вес расщепленного пептида;
с - навеска фермента, 7; t - врем инкубации, мин;
100,,,
- -перерасчет на 1 мг чистого белка;
Х96
х% содержание чистого белка в препарате .
Способ позвол ет получить высокоочищенный препарат лейцил-глицил-глицин-аминопептидазы , гомогенный при электрофорезе в
полиакриламидном геле, а также при исследовании его методом экзимэлектрофореза.
Предлагаемый способ позвол ет получить препарат ЛГГ-аминопептидазы с активностью , составл ющей 24% по сравнению с
активностью концентрированной поверхностной культуры Aspergillus flavus, со степенью очистки в 237 раз и свободный от токсических примесей. Полученный лиофилизированный ферментиый препарат полностью сохран ет исходную активность в течение года при хранении его при 4°С.
Claims (2)
1.Способ получени лейцил-глицил-глицин-а .минопептидазы, предусматривающий осаждение белков из ферментного сырь , полученного из грибов рода Aspergillus, обессолнвание белковой фракции, фракционирование белков колоночной хроматографией на сефадексе, диализ пептидазной фракции с выделением целевого продукта и его лиофилизацию в фосфатном буфере, отличающийс тем, что, с целью получени фермента , свободного от токсичных примесей, и повышени стабильности фермента, осаждение белков из ферментного сырь , полученного из грибов рода Aspergillus, провод т в присутствии ионов кобальта, перед диализом осуществл ют инактивацию протеиназы, а лиофилизацию провод т при рН 7,8-8,0.
2.Способ по п. 1, отличающийс тем, что протеиназу инактивируют нагревом в течение 10-15 мин до 62°С с последующим охлаждением до 20°С.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU7602326556A SU578335A1 (ru) | 1976-02-23 | 1976-02-23 | Способ получени лейцил-глицил-глицин-аминопептидазы |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU7602326556A SU578335A1 (ru) | 1976-02-23 | 1976-02-23 | Способ получени лейцил-глицил-глицин-аминопептидазы |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU578335A1 true SU578335A1 (ru) | 1977-10-30 |
Family
ID=20649597
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU7602326556A SU578335A1 (ru) | 1976-02-23 | 1976-02-23 | Способ получени лейцил-глицил-глицин-аминопептидазы |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU578335A1 (ru) |
-
1976
- 1976-02-23 SU SU7602326556A patent/SU578335A1/ru active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Neumann et al. | Purification and properties of yeast invertase | |
Donoff et al. | Preparation and properties of collagenases from epithelium and mesenchyme of healing mammalian wounds | |
Berg et al. | Affinity column purification of protocollagen proline hydroxylase from chick embryos and further characterization of the enzyme | |
Kusunose et al. | Superoxide dismutase from Mycobacterium tuberculosis | |
Sato et al. | Isolation and crystallization of microbial alkaline protease inhibitor, S-SI | |
Hattori et al. | Keratinolytic proteinase produced by Candida albicans | |
DOI et al. | Purification of Yeast Proteinases Part II. Purification and Some Properties of Yeast Proteinase C | |
Kawakami et al. | Liver plasma membranes and proteoglycan prepared therefrom inhibit the growth of hepatoma cells in vitro | |
EP0027710B1 (en) | Antibiotic substances, a process for the preparation and compositions thereof; a new strain of staphylococcus epidermidis which produces the said antibiotic substance and compositions thereof | |
Noguchi et al. | Purification and properties of a new alkaline protease of rat skeletal muscle | |
Kusunose et al. | Superoxide dismutase from Mycobacterium species, strain Takeo | |
Lee et al. | Isolation, purification and characterization of keratinolytic proteinase from Microsporum canis | |
Wilkinson | Characterization of the chemotactic activity of casein for neutrophil leucocytes and macrophages | |
SU578335A1 (ru) | Способ получени лейцил-глицил-глицин-аминопептидазы | |
Bernheimer et al. | Purification and properties of a toxin from the sea anemone Condylactis gigantea | |
JPH04126079A (ja) | 微生物起源カルボキシペプチダーゼb様酵素 | |
Gill | CULTURE AND METABOLISM OF MYCOPLASMA GLLISEPTICUM | |
Holmes et al. | Amino acid analysis and molecular weight determination of tetanus toxin | |
RU2230325C2 (ru) | Способ приготовления очищенного препарата ботулинического токсина типа а | |
Moroz-Perlmutter et al. | Biochemical and antigenic properties of a purified neurotoxin of Vipera palestinae venom | |
Takahashi et al. | Inhibition of cysteine protease and growth of Staphylococcus aureus V8 and poliovirus by phosphorylated cystatin α conjugate of skin | |
Katsuki et al. | Enzymic hydration of mesaconate by Pseudomonas fluorescens | |
US4062730A (en) | Procedure for producing enzymes | |
US3331751A (en) | Protease elaborated by streptomyces moderatus sp.n | |
Cederblad et al. | Immunological investigation of human γ-globulin degraded by chymotrypsin |