SU492094A3 - Method for preparing live typhoid vaccine - Google Patents
Method for preparing live typhoid vaccineInfo
- Publication number
- SU492094A3 SU492094A3 SU1694985A SU1694985A SU492094A3 SU 492094 A3 SU492094 A3 SU 492094A3 SU 1694985 A SU1694985 A SU 1694985A SU 1694985 A SU1694985 A SU 1694985A SU 492094 A3 SU492094 A3 SU 492094A3
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- vaccine
- bacteria
- mutant
- strain
- block
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/02—Bacterial antigens
- A61K39/025—Enterobacteriales, e.g. Enterobacter
- A61K39/0275—Salmonella
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
(54) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЖИВОЙ БРЮШНОТИФОЗНОЙ(54) METHOD OF OBTAINING A LIVING ABOUT LYNTHYPHOPHIC
ВАКЦИНЫVACCINES
через 10 дней ту же дозу 10 неактивированных путем часового нагревани до 58°С микробов того же штамма, как усилители.after 10 days, the same dose of 10 microbes of the same strain, as amplifiers, which are not activated by hourly heating to 58 ° C.
Определение числа бактерий в печени и селезенке этих животных показали, что аттенюированные бактерии штамма вакцины были элиминированы полностью уже по истечении 20 дней, в то врем как бактерии вирулентного штамма, несмотр на меньшую дозу даже по истечении 4 недель были налицо у мышей в концентраци х 10.Determining the number of bacteria in the liver and spleen of these animals showed that the attenuated bacteria of the vaccine strain were completely eliminated after 20 days, while the bacteria of the virulent strain, despite a lower dose even after 4 weeks, were present in mice at concentrations of 10 .
Через 6 недель после прививки мышам внутрибрюшинно ввели 10 живых бактерий вирулентного штамма Ту 2. В этот момент все животные были свободны от вакцинных бактерий . Путем определени числа бактерий в печени и селезенке мышей наблюдают за развитием бактерий возбудителей.Six weeks after vaccination, 10 live bacteria of the virulent strain Tu 2 were injected intraperitoneally in mice. At this point, all animals were free from vaccine bacteria. By determining the number of bacteria in the liver and spleen of mice, they monitor the development of bacteria pathogens.
Преимушества живой вакцины из эпимиразо-отрицательных мутантов заключаютс в том, что одной оральной дачей можно добитьс надежного, чрезвычайно сильного, специфического иммунитета против патогенных дл человека Salmonella typhi.The advantages of live vaccine from epimyrase-negative mutants are that a single oral dacha can provide reliable, extremely strong, specific immunity against human pathogens Salmonella typhi.
Вирулентный штамм Salmonella typhi вырашиваютв 30мл Brain Heart Infision (Difco) в качалочной колбе емкостью 100 мл при 37°С. По истечении 4 ч отдел ют центрифугированием клетки бактерий и суспендируют их в физиологическом растворе хлористого натри таким образом, чтобы суспензи содержала 10 организмов на 1 мл. Эту суспензию облучают УФ-светом до тех пор, пока не будет достигнуто 80%-ное умершвление бактерий. Клеткам бактерий затем повторно прививают свежую Brain Heart Infision (Difco) и их инкубируют при 37°С на качалке. Через 2 ч культуру заражают smooth-специфическими бактериофагами типа FC-1 (1 бактериофаг/10 клеток бактерий) и инкубируют еше в течение 3 ч. Такой обработкой лизируютс все smoothбактерии и остаютс только rough-бактерии, которые распредел ют на агаровую питательную среду и инкубируют в течение 14 ч при 37°С. Образовавшиес колонии затем реплицируют на эндо-агар, который вместо лактозы содержит 0,2% галактозы. На этой питательной среде можно легко узнать эпимиразо-отрицательные мутанты благодар их виду роста в колони х: эпимиразо-отрицательные мутанты в противоположность дикому типу не сбраживают галактозу, и они растут в типичных бесцветных, плоских колони х с узким внешним валом и вогнутым центром, состо щим из лизированных клеток. Изолируют 30 из. вышеупом нутых колоний и из них те делеционные мутанты, которые и после мутагенной обработки К-метил-Ы-нитро-М-нитрозогуанидином ((NG) не показывают реверсии.The virulent strain of Salmonella typhi is grown in 30 ml Brain Heart Infision (Difco) in a 100 ml shaker flask at 37 ° C. After 4 hours, the bacteria cells are separated by centrifugation and suspended in physiological sodium chloride solution so that the suspension contains 10 organisms per ml. This suspension is irradiated with UV light until an 80% kill of bacteria is reached. Bacteria cells are then re-grafted with fresh Brain Heart Infision (Difco) and incubated at 37 ° C on a rocking chair. After 2 h, the culture is infected with smooth-specific bacteriophage type FC-1 (1 bacteriophage / 10 bacterial cells) and incubated for another 3 hours. With this treatment, all smooth bacteria are lysed and only rough-bacteria remain, which are spread onto the agar culture medium and incubated for 14 h at 37 ° C. The resulting colonies are then replicated onto endo-agar, which instead of lactose contains 0.2% galactose. On this nutrient medium, one can easily recognize epimyrase-negative mutants due to their type of growth in colonies: epimyrase-negative mutants, unlike the wild type, do not ferment galactose, and they grow in typical colorless, flat colonies with a narrow external shaft and a concave center. from lysed cells. Isolate 30 of. The above colonies and of them are deletion mutants, which even after mutagenic treatment with K-methyl-L-nitro-M-nitrosoguanidine ((NG) do not show reversion.
Дл этой цели изолированные мутанты выраш ,ивают на Brain Heart Infision, через 6 ч обрабатывают NG с тем, чтобы получить 99%-ное умерщвление.For this purpose, isolated mutants are grown, given on Brain Heart Infision, after 6 hours, NG is treated in order to obtain a 99% kill.
Оставшиес в живых клетки после двухкратного отделени центрифугированием иThe surviving cells after twofold separation by centrifugation and
промывки в Brain Heart Infision суспендируют , инкубируют на качалке при 37°С и по истечении 2 ч распредел ют на свежую Brain Heart Infision, к которой добавили 0,1% галактозы .the washings in Brain Heart Infision are suspended, incubated on a shaker at 37 ° C and after 2 hours they are distributed to fresh Brain Heart Infision, to which 0.1% galactose is added.
Из-за дефекта в энзиме ИДР-галактоза-4эпимераза эпимеразо-отрицательные мутанты не в состо нии метаболизировать ноглошенную галактозу. Происходит накопление галактоза-1-фосфата и ИДР-галактозы, вследствие чего по истечении 3-4 ч происходит полный лизис эпимеразо-отрицательных бактерий. Затем еще в течение 3 ч инкубируют культуру, что способствует возникновению редких ревертантов . Оставшиес в живых бактерии распредел ют на содержащий галактозу эндоагар и инкубируют в течение 14 ч при 37°С. Ревертанты можно легко узнать на этой питательной среде в виде сбраживающих галактоЗУ темно-красных колонии.Due to a defect in the enzyme IDR-galactose-4 epimerase, epimerase-negative mutants are not able to metabolize the entire galactose. Galactose-1-phosphate and IDR-galactose accumulate, which results in complete lysis of epimerase-negative bacteria after 3–4 hours. Then the culture is incubated for 3 hours, which contributes to the occurrence of rare revertants. Bacteria remaining in the living are distributed to endoagar containing galactose and incubated for 14 hours at 37 ° C. Revertants can be easily recognized on this nutrient medium in the form of dark-red colonies bryvating galactoSU.
Окончательно селекционированный мутант выращивают в Brain Heart Infision на качалке при 37°С. По истечение 6 ч бактерии отдел ют центрифугированием в охлаждающейThe finally selected mutant is grown in Brain Heart Infision on a rocking chair at 37 ° C. After 6 hours, the bacteria are separated by centrifugation in a cooling
центрифуге без промывки в защитной среде, состо щей из 8% сахарозы, 1,5 желатины и 5% порошка из сн того молока, суспендированной в 1 мл этой суспензии из бактерий, лиофилизируют в ампулы емкостью 5 мл.A centrifuge without washing in a protective medium consisting of 8% sucrose, 1.5 gelatins and 5% powdered milk powder suspended in 1 ml of this suspension from bacteria is lyophilized into 5 ml ampoules.
Лиоампулу полученного нового вакуумного штамма открывают и штамм выращивают на питательной среде из скошенного агара при 37°С. Бактерии получают с поверхности скошенной агарной культуры и их суспендируют в физиологическом растворе хлористого натри . Эту суспензию из клеток прививают содержанию колбы Эрленмейера емкостью 1 л. Колба содержит 600 мл питательной среды , которую получают путем растворени Lioampulu obtained a new vacuum strain open and the strain is grown on a nutrient medium from the oblique agar at 37 ° C. Bacteria are obtained from the surface of oblique agar culture and suspended in physiological sodium chloride solution. This cell suspension is grafted onto a 1 liter Erlenmeyer flask. The flask contains 600 ml of nutrient medium, which is obtained by dissolving
28 г казеингидролизата, 10 г дрожжевого экстракта и 2 г глюкозы в 1 л дистиллированной воды и значении рН 7,2, который получают посредством 1 н. раствора NaOH. Колбу Эрленмейера в течение 6 ч встр хивают при28 g caseine hydrolyzate, 10 g yeast extract and 2 g glucose in 1 liter of distilled water and a pH value of 7.2, which is obtained through 1 n. NaOH solution. Erlenmeyer flask is shaken for 6 hours at
37°С. Полученную бактериальную культуру распредел ют на 25 л полученной среды. Культуру инкубируют в течение 12 ч при 37°С, проветрива ее (5 л воздуха/мин). Рост предварительной культуры и главной культуры определ ют нефелометрическим путем. Культурными пробами определ ют чистоту. По истечении времени культивировани клетки бактерий отдел ют центрифугированием в охлаждаемой центрифуге без промывки, суспендируют в 600 мл защитной среды и порци ми по 1 мл лиофилизируют в 5 мл ампулы или в прокалываемые пузырьки. Примен ют ее следующим образом: ампулы или прокалываемые бутылки открывают, содержание суспендируют в 3-5 мл холодной или тепловатой воды или молока и дают через рот.37 ° C. The resulting bacterial culture is distributed to 25 liters of the resulting medium. The culture is incubated for 12 hours at 37 ° C, ventilated (5 liters of air / min). The growth of the pre-culture and the main culture is determined by nephelometric method. Cultural samples determine purity. After the cultivation time has elapsed, the bacterial cells are separated by centrifugation in a cooled centrifuge without washing, suspended in 600 ml of protective medium, and in 1 ml portions lyophilized in 5 ml ampoules or into punctured bubbles. It is used as follows: ampoules or peelable bottles are opened, the contents are suspended in 3-5 ml of cold or tepid water or milk and given by mouth.
Claims (1)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CH631971A CH542928A (en) | 1971-04-29 | 1971-04-29 | Process for producing a new typhoid vaccine |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU492094A3 true SU492094A3 (en) | 1975-11-15 |
Family
ID=4307668
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU1694985A SU492094A3 (en) | 1971-04-29 | 1971-08-16 | Method for preparing live typhoid vaccine |
Country Status (16)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5522448B1 (en) |
AT (1) | AT304763B (en) |
AU (1) | AU445536B2 (en) |
BE (1) | BE770453A (en) |
CA (1) | CA939608A (en) |
CH (1) | CH542928A (en) |
DE (1) | DE2128626B2 (en) |
DK (1) | DK129244B (en) |
ES (1) | ES392830A1 (en) |
FR (1) | FR2134325B1 (en) |
GB (1) | GB1291214A (en) |
IT (1) | IT1101491B (en) |
NL (1) | NL146385B (en) |
SE (1) | SE397632B (en) |
SU (1) | SU492094A3 (en) |
ZA (1) | ZA714798B (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2631924C2 (en) * | 2011-12-22 | 2017-09-28 | Ваксимм Аг | High-productive method of obtaining salmonella strains |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US8444999B2 (en) | 2007-08-23 | 2013-05-21 | Indian Institute Of Science | Mutated Salmonella typhi strain and use thereof in a vaccine |
-
1971
- 1971-04-29 CH CH631971A patent/CH542928A/en not_active IP Right Cessation
- 1971-06-02 ES ES392830A patent/ES392830A1/en not_active Expired
- 1971-06-09 DE DE19712128626 patent/DE2128626B2/en active Granted
- 1971-06-11 GB GB27578/71A patent/GB1291214A/en not_active Expired
- 1971-06-18 AT AT528871A patent/AT304763B/en not_active IP Right Cessation
- 1971-07-14 NL NL717109739A patent/NL146385B/en not_active IP Right Cessation
- 1971-07-20 ZA ZA714798A patent/ZA714798B/en unknown
- 1971-07-23 BE BE770453A patent/BE770453A/en unknown
- 1971-07-29 DK DK373771AA patent/DK129244B/en not_active IP Right Cessation
- 1971-07-29 SE SE7109725A patent/SE397632B/en unknown
- 1971-07-30 FR FR7128099A patent/FR2134325B1/fr not_active Expired
- 1971-07-30 CA CA119,495A patent/CA939608A/en not_active Expired
- 1971-07-30 JP JP5685971A patent/JPS5522448B1/ja active Pending
- 1971-08-16 SU SU1694985A patent/SU492094A3/en active
- 1971-08-27 AU AU32830/71A patent/AU445536B2/en not_active Expired
-
1978
- 1978-12-06 IT IT30643/78A patent/IT1101491B/en active Protection Beyond IP Right Term
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2631924C2 (en) * | 2011-12-22 | 2017-09-28 | Ваксимм Аг | High-productive method of obtaining salmonella strains |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
SE397632B (en) | 1977-11-14 |
FR2134325A1 (en) | 1972-12-08 |
ZA714798B (en) | 1972-04-26 |
FR2134325B1 (en) | 1975-02-07 |
GB1291214A (en) | 1972-10-04 |
IT1101491B (en) | 1985-09-28 |
ES392830A1 (en) | 1974-12-16 |
DK129244C (en) | 1975-02-03 |
BE770453A (en) | 1972-01-24 |
NL7109739A (en) | 1972-10-31 |
DE2128626C3 (en) | 1978-03-16 |
IT7830643A0 (en) | 1978-12-06 |
AU3283071A (en) | 1973-03-01 |
AT304763B (en) | 1973-01-25 |
DE2128626B2 (en) | 1977-07-28 |
NL146385B (en) | 1975-07-15 |
JPS5522448B1 (en) | 1980-06-17 |
CA939608A (en) | 1974-01-08 |
DK129244B (en) | 1974-09-16 |
AU445536B2 (en) | 1974-02-21 |
CH542928A (en) | 1973-10-15 |
DE2128626A1 (en) | 1972-11-02 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CA2094515C (en) | Bacterial attenuation method and vaccine | |
US5580557A (en) | Live, avirulent salmonella choleraesuis vaccine used for inducing an immune response in animals | |
US3856935A (en) | Oral typhoid vaccine and method of preparing the same | |
Herderscheê | An improved medium for the cultivation of the Eaton agent | |
US4404186A (en) | Vaccines obtained from bacterial mutant strains | |
IE47175B1 (en) | Fowl cholera vaccine | |
US5498414A (en) | Attenuated strains of Aeromonas salmonicida useful as fish vaccines | |
SAKATA et al. | Characteristics of Vibrio vulnificus isolated from diseased tilapia | |
SU492094A3 (en) | Method for preparing live typhoid vaccine | |
US4472378A (en) | Live vaccine for the prevention of salmonellosis in water fowl, a process for making and applying the same | |
US3401219A (en) | Moraxella bovis infectious bovine keratoconjunctivitis steam-killed bacterin | |
HU214245B (en) | Production of vaccines | |
US5225194A (en) | Aqueous diafiltration process for preparing acellular vaccines, against selected bacterial diseases | |
Tjørnehøj et al. | Interaction between Ascaris suum and Pasteurella multocida in the lungs of mice | |
Cosenza et al. | Occurrence of motile, pigmented streptococci in lepidopterous and hymenopterous larvae | |
KR930001382B1 (en) | Method for culture of salmonella typhi | |
RU2085584C1 (en) | Method of preparing recombinant tularemia microorganisms - producers of virulence factors, recombinant strain of francisella tularensis subspecies, holarctica r5s - producer of virulence factor francisella tularensis nearctica shu, recombinant strain of francisella tularensis holarctica rn4 - a producer of virulence factor pseudomonas tularensis subspecies holarctica r1a - a producer of virulence factor francisella tularensis nearctica b 399 a cole | |
US4999191A (en) | Pasteurella multocida vaccine | |
Dulaney | Microbic dissociation of B. coli-communis | |
US4440748A (en) | Strain of Escherichia coli by bacterial conjugation | |
RU2689903C1 (en) | Freshly isolated strain of bordetella pertussis bacteria - producer of a complex of protective antigens for production of cell-free pertussis vaccine | |
RU2521651C1 (en) | STRAINS OF BACTERIA Moraxella bovoculi "SH-CH6 N-DEP" USED TO MANUFACTURE DIAGNOSTIC PREPARATIONS AND VACCINES AGAINST INFECTIOUS KERATOCONJUNCTIVITIS OF CATTLE | |
RU2818959C1 (en) | Pasteurella multocida "pm - b" bacterium strain for manufacture of biopreparations for specific prevention of pasteurellosis (hemorrhagic septicemia) in cattle caused by serogroup b pasteurella | |
RU2098127C1 (en) | Mixed vaccine for control over cattle necrobacteriosis | |
Vladoianu et al. | Contribution to the study of live streptomycin–dependent salmonella vaccines: The problem of reversion to a virulent form |