SU1751669A1 - Method for determining toxicity of water and aqueous solutions containing active substances - Google Patents
Method for determining toxicity of water and aqueous solutions containing active substances Download PDFInfo
- Publication number
- SU1751669A1 SU1751669A1 SU894727044A SU4727044A SU1751669A1 SU 1751669 A1 SU1751669 A1 SU 1751669A1 SU 894727044 A SU894727044 A SU 894727044A SU 4727044 A SU4727044 A SU 4727044A SU 1751669 A1 SU1751669 A1 SU 1751669A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- water
- toxicity
- chloroplasts
- aqueous solutions
- epistrophic
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
Abstract
Использование экологи , контроль токсичности воды и водных растворов Сущность изобретени : определение токсичности осуществл ют путем воздействи исследуемых вод и водных растворов на клетки р ски, воздействие на р ску определ ют по торможению фототаксиса хлороп- ластов в клетках листецов р ски после инфильтрации проб в межклетники листецов и содержани растений р ски в течение 17-18 ч при освещенности 50 ± 4 лк в исследуемой жидкости Затем подсчитывают количество эпистрофных хлоропластов до и после 10-минутного воздействи света, близкого к максимальному дл данного типа микроскопа Отношение оставшихс в эпистрофном положении хлоропластов к исходному уровню служит показателем токсичности воды или водных растворовThe use of environmentalists, the control of the toxicity of water and aqueous solutions. The essence of the invention: the determination of toxicity is carried out by exposing the test water and aqueous solutions to cells of high pH. leaflets and plant contents of light for 17–18 h with illumination of 50 ± 4 lx in the test liquid. Then the number of epistrophic chloroplasts is counted before and after 10 minutes of exposure to light. close to the maximum for this type of microscope The ratio of chloroplasts remaining in the epistrophic position to the initial level is an indication of the toxicity of water or aqueous solutions
Description
Изобретение относитс к вопросам экологии , а именно к контролю токсичности воды или водных растворов.The invention relates to environmental issues, namely the control of the toxicity of water or aqueous solutions.
Известны способы определени токсичности воды и водных растворов по воздействию их на живые организмы: на животных (млекопитающие, рыбы, беспозвоночные, простейшие) или на растительные клетки. (1,Methods are known for determining the toxicity of water and aqueous solutions by their effect on living organisms: animals (mammals, fish, invertebrates, protozoa), or plant cells. (one,
2).2).
Известен способ, заключающийс в воздействии вредных веществ окружающей среды на растительные клетки (протопласты ) Vlciafaba, Avenasativa иммобилизованные в матрицу Са-альгината или Za-алыината. Об интенсивности воздействи вредных веществ суд т по изменени м биохимическо-физиологических свойств клеток, а именно, определ этан в 1 мThe known method consists in the action of harmful environmental substances on plant cells (protoplasts) of Vlciafaba, Avenasativa immobilized in the matrix of Ca-alginate or Za-alyinate. The intensity of exposure to harmful substances is judged by changes in the biochemical and physiological properties of cells, namely, ethane is determined in 1 m.
газовой пробы с помощью этано-газовой хроматографии или по содержании С1402 в ммоль на мг хлорофилла в час с помощью сцинтил ционного счетчика.gas sample by ethane-gas chromatography or by content of C1402 in mmol per mg chlorophyll per hour using a scintillation counter.
Недостатками известного способа вл ютс сложность технологии (получение или культивирование протопластов, приготовление матриц, иммобилизаци клеток в матрицы); использование дорогосто щих и дефицитных химических веществ (ферментов , меченых предшественников и т.д.); низка чувствительность способа.The disadvantages of this method are the complexity of the technology (the production or cultivation of protoplasts, the preparation of matrices, the immobilization of cells into matrices); the use of expensive and scarce chemicals (enzymes, labeled precursors, etc.); low sensitivity of the method.
Цель изобретени - повышение чувствительности способаThe purpose of the invention is to increase the sensitivity of the method
Поставленна цель в способе определени токсичности вод и водных ра створов, содержащих биологически активные вещества , путем воздействи исследуемой проVIThe goal in the method of determining the toxicity of water and aqueous solutions containing biologically active substances, by the impact of the test
слcl
Ј сь чэЈ che
бой на растительные клетки с последующей оценкой достигаетс тем, что воздействие осуществл ют путем впсдени части исс ледуемой пробы в межклетники листецов р ски, затем растени выдерживают в исследуемой жидкости в течение 17-18 ч при освещенности 50 ± 4 лк, далее подсчитывают количество эпистрофных хлоропластов до и после ,10-минутной экспозиции светом и оценивают токсичность по увеличению количества эпистрофных хлоропластов,a fight on plant cells with a subsequent assessment is achieved by effecting a part of the test sample being studied into the intercellular spaces of the leaves, then the plants are kept in the test liquid for 17-18 h at illumination 50 ± 4 lux, then the number of epistrophic chloroplasts before and after, 10-minute exposure to light and assess toxicity by increasing the number of epistrophic chloroplasts,
Пример. Дл исследовани листецы р ски (Zemna minor Z) инфильтруют различными образцами воды (примеры с 1 по 5) с помощью стекл нного медицинского шприца и став т на слабый свет (50 ± 4) лк в течение 17-18 ч.Example. For the study, leaflets of color (Zemna minor Z) are infiltrated with various water samples (examples 1 through 5) using a glass medical syringe and placed on a weak light (50 ± 4) lux for 17-18 hours.
От растений отрывают по одному листе- цу, которые помещают в капле исследуемой жидкости на предметное стекло микроскопа и при 400-кратном увеличении в 10 клетках верхней стороны листеца, в одном.и том же поле зрени .микроскопа подсчитывают число хлоропластов, наход щихс благодар положительному фототаксису у верхней стенки клеток в эпистрофном положении перпендикул рно лучам света, плашм . Не сдвига препарата, в микроскопе на 10 мин создают сильное освещение объекта, близкое к максимальному (почти до предела увеличивают накал лампы осветител ).One leaf is detached from the plants, which are placed in a drop of the test liquid on a microscope slide and at 400 times magnification in 10 cells of the upper side of the leaf, in one and the same field of view of the microscope, the number of chloroplasts that are positive phototaxis at the upper cell wall in an epistrophic position perpendicular to the rays of light, flat. The preparation doesn’t shift; in a microscope for 10 minutes they create a strong illumination of the object, which is close to the maximum (almost the intensity of the lamp of the illuminator increases to the limit).
Через 10 мин освещение объекта уменьшают до удобного предела и в клетках снова подсчитывают количество эпистрофных хлоропластов.After 10 minutes, the illumination of the object is reduced to a convenient limit and the number of epistrophic chloroplasts is again calculated in the cells.
В контроле (водопроводна или дистиллированна вода) число таких хлоропластов обычно приближалось к 0, поскольку большинство хлоропластов переходило в результате отрицательного фототаксиса в парастрофное положение, т.е. прижималось к боковым стенкам клеток, поворачива сь ребром по отношению к лучам света. Чем сильнее загр знена вода, тем больше сохран лось в клетках эпистрофных хлоропластов . Процент эпистрофных хлоропластов после 10-минутного воздействи сильного света по отношени к исходному уровню служит показателем повреждени клеток р ски загр зненной водой или водными растени ми и,следовательно, показателем токсичности воды или водных растворов. Критерием непосредственного токсического действи на растительную кпетку следует считать достоверное отличие средних показателей (в 10 клетках листецов р ски) 5 опытов (параллелей) от контрол .In the control (tap or distilled water), the number of such chloroplasts usually approached 0, since most of the chloroplasts turned into a parastrophic position as a result of negative phototaxis, i.e. pressed against the side walls of the cells, turning edge with respect to the rays of light. The more water is polluted, the more is preserved in the epistrophic chloroplast cells. The percentage of epistrophic chloroplasts after a 10-minute exposure to strong light in relation to the initial level is an indicator of damage to the cells by contaminated with water or aquatic plants and, therefore, an indication of the toxicity of water or aqueous solutions. The criterion of the direct toxic effect on the plant kpetk should be considered as a significant difference of the average indicators (in 10 cells of the leaves of the river) 5 experiments (parallels) from the control.
В услови х нормы (без действи токсиканта ) хлоропласты клеток имеют индивидуальную чуасгвительногл ьфототаксиса, что и отражаетс в незначительном разбросе количества хлоропластов при их подсчете после короткого действи ркого светаUnder the conditions of the norm (without the action of a toxicant), the cell chloroplasts have an individual chow phototaxis, which is reflected in the insignificant scatter of the amount of chloroplasts when they are counted after a short light
Однако этот показатель всегда достоверно меньше, чем при воздействии токсикантов При определении токсичности веществ в водных растворах критерием токсического действи вл етс также та минимальна However, this indicator is always significantly less than when exposed to toxicants. When determining the toxicity of substances in aqueous solutions, the criterion of toxic effect is also the minimum
концентраци из излученного р да, котора еще вызывает достоверное торможение фо тотаксиса по сравнению с контролемconcentration from the radiated series, which still causes a significant inhibition of phototaxis compared with the control
Выбор 10 мин экспозиции св зан с тем что в течение этого времени при сильномThe choice of 10 min exposure is related to the fact that during this time with a strong
освещении хлоропласты контрольных проб перейдут в эпистрофное положение. Это оптимальное врем дл отрицательного фототаксиса хлоропластов в норме. Превышение этого времени не целесообразноWhen illuminated, chloroplasts of control samples will move to an epistrophic position. This is the optimal time for negative chloroplast phototaxis to be normal. Exceeding this time is not advisable.
П р и м е р 1. Определение токсичности сточных вод на входе в очистные сооружени . Подсчет эпистрофных (расположенных плашм ) хлоропластов в 10 клетках листеца р ски сразу после слабого света в течениеExample 1: Determination of the toxicity of wastewater entering the treatment plant. The counting of epistrophic (located plasm) chloroplasts in 10 cells of lista rk immediately after a weak light during
17ч дал следующие цифры: 20, 15, 24, 20.18. 21, 17, 24, 25 19. В среднем на клетку 20.3 хлоропласта. После 10-минутного освещени сильным светом подсчет эпистрофных хлоропластов в 10-ти клетках в том же поле17h gave the following numbers: 20, 15, 24, 20.18. 21, 17, 24, 25 19. On average per cell 20.3 chloroplast. After 10 minutes of strong light, counting epistrophic chloroplasts in 10 cells in the same field.
зрени микроскопа дал следующие цифры: 14, 15, 11, 13, 9, О, О, 4, 0. 22. В среднем на клетку 8,8 хлоропласта, что составило в процентах от исходной величины (подсчет после слабого света) 33%. Последн цифра иFrom the view of the microscope, he gave the following figures: 14, 15, 11, 13, 9, O, O, 4, 0. 22. On average, 8.8 chloroplasts per cell, which amounted to 33% as a percentage of the initial value (counting after a dim light) . Last digit and
служила показателем интенсивности фототаксиса или степени повреждени клеток.served as an indicator of phototaxis intensity or degree of cell damage.
В контроле (водопроводна вода) были получены следующие данные после слабого света: 24, 13, 17, 28, 16, 16, 17, 18, 26, 23.In the control (tap water) the following data was obtained after a weak light: 24, 13, 17, 28, 16, 16, 17, 18, 26, 23.
В среднем на клетку 19,8 хлоропласта. После 10-минутного освещени сильным светом: 4, 6, О, О, О, О, О, О, 0. 0. В среднем на клетку 1,0 хлоропласт, что составл ет 5% от исходной величины,The average per cell is 19.8 chloroplast. After 10 minutes of strong light: 4, 6, O, O, O, O, O, O, 0. 0. On average, there is 1.0 chloroplast per cell, which is 5% of the initial value,
Данные 5 опытов по определению токсичности входы на входе в очистные сооружени дали следующие средние цифры (в процентах к исходному количеству эпистрофных хлоропластов): 43, 36, 49, 48, 27.Data from 5 experiments to determine the toxicity of the inputs at the entrance to the treatment plant gave the following average figures (as a percentage of the initial number of epistrophic chloroplasts): 43, 36, 49, 48, 27.
Аналогичные данные дл водопроводной воды: 5, 12, 2, 0, 3. М ± м(4 4 ±2,3)%. Достоверность отличи воды до очистки от водопроводной воды 001Similar data for tap water: 5, 12, 2, 0, 3. M ± m (4 4 ± 2,3)%. Reliability of the difference of water before cleaning from tap water 001
Приме р 2. Данные по 5 опытам с водой после очистки перед сбрасыванием в реку Неву (также в процентах к исходному количеству хлоропластов)- 18 16. 26, 12, 18. М ± ±27 Достоверность отличи Example 2. Data from 5 experiments with water after cleaning before dropping into the Neva River (also as a percentage of the initial amount of chloroplasts) - 18 16. 26, 12, 18. M ± ± 27 Reliability difference
от водопроводной воды ,001, достоверность отличи от воды до очистки ,01from tap water, 001, reliability difference from water before cleaning, 01
П р и м е р 3. Аналогичные данные по 4 опытам с водной фракцией активного ила, после ее двукратного разведени : 66%, 78%, 90%, 100%, М ± м-83,5 ± 10,7. Достоверность большей токсичности водной фракции активного ила (после разведени в 2 раза) по сравнению со сточными водами до очистки: ,01.PRI me R 3. Similar data from 4 experiments with a water fraction of activated sludge, after its two-fold dilution: 66%, 78%, 90%, 100%, M ± m-83.5 ± 10.7. Reliability of greater toxicity of the aqueous fraction of activated sludge (after dilution by 2 times) compared with wastewater before purification:, 01.
П р и м е р 4. Данные по 4 опытам с раствором амфотерицина В (1 мг/л) в процентах к исходному количеству хлоропла- стов: 42, 29, 81, 100. М ± ±17,2. Достоверность отличи от водопроводной воды: ,02.PRI me R 4. Data from 4 experiments with Amphotericin B solution (1 mg / L) as a percentage of the initial amount of chloroplasts: 42, 29, 81, 100. M ± 17.2. Reliability differs from tap water:, 02.
П р и м е р 5. Данные по действию на фототаксис хлоропластов солей т желых металлов (данные по минимальным концентраци м ), раствор CuSCM (10 М). Получено в % к исходному количеству хлоропластов: контроль М ± ,1 ± 0.3; опыт М ± м 7.9±2,,05.Example 5: Data on the effect of heavy metal salts on chloroplasts on phototaxis (data on minimum concentrations), CuSCM solution (10 M). Obtained in% of the initial amount of chloroplasts: control M ±, 1 ± 0.3; experience M ± m 7.9 ± 2,, 05.
Раствор (), получено: контроль М ± ,4 ± 0,5; опыт М ± ,5± ±6; ,001. По известному способу излучали токсичность пентахлорфенола на иммобилизованные протопласты Vicla faba (no определению выделени этана по отношению к контролю). При действии 14 мМ пентахлорфенола продукци этана была увеличена примерно в 2 раза, что и вилось показателем токсичности веществ По изобретению фенол ( вл етс менее токсич- ным, чем его хлорпроизводные) при использовании концентрации 7 мМ дал следующие результаты: контроль: 2, 1, 1, 0, 2 (% торможени фототаксиса хлоропластов) М ,34 ±0,2; опыт 8, 47, 15. 53. 76Solution (), obtained: control M ±, 4 ± 0.5; experience M ±, 5 ± 6; , 001. The toxicity of pentachlorophenol to immobilized Vicla faba protoplasts was radiated by a known method (no determination of ethane release relative to the control). Under the action of 14 mM pentachlorophenol, ethane production was increased about 2 times, which was an indicator of the toxicity of substances. According to the invention, phenol (less toxic than its chlorine derivatives) using the concentration of 7 mM gave the following results: control: 2, 1, 1, 0, 2 (% inhibition of chloroplast phototaxis) M, 34 ± 0.2; experience 8, 47, 15. 53. 76
0 М ,8 ±12; .01.0 M, 8 ± 12; .01.
Таким образом, предлагаемый способ значительно чувствительнее способа по прототипу.Thus, the proposed method is much more sensitive than the prototype method.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894727044A SU1751669A1 (en) | 1989-08-04 | 1989-08-04 | Method for determining toxicity of water and aqueous solutions containing active substances |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894727044A SU1751669A1 (en) | 1989-08-04 | 1989-08-04 | Method for determining toxicity of water and aqueous solutions containing active substances |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1751669A1 true SU1751669A1 (en) | 1992-07-30 |
Family
ID=21464830
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU894727044A SU1751669A1 (en) | 1989-08-04 | 1989-08-04 | Method for determining toxicity of water and aqueous solutions containing active substances |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1751669A1 (en) |
-
1989
- 1989-08-04 SU SU894727044A patent/SU1751669A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Хими и токсикологи сточных вод, Л., 1985, ММ, с. 95-99. Патент DE N 3327691, кл. С 12 N 11/02, С 12 Q 1/18, 1985. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Madoni et al. | Acute toxicity of cadmium, copper, mercury, and zinc to ciliates from activated sludge plants | |
Anderson et al. | Bioassay methods for evaluating the toxicity of heavy metals, biocides and sewage effluent using microscopic stages of giant kelp Macrocystis pyrifera (Agardh): a preliminary report | |
Spehar et al. | Chronic effects of cadmium and zinc mixtures on flagfish (Jordanella floridae) | |
Janssen et al. | Ecotoxicological studies with the freshwater rotifer Brachionus calyciflorus: IV. Rotifer behavior as a sensitive and rapid sublethal test criterion | |
Wang et al. | Screening and biomonitoring of industrial effluents using phytotoxicity tests | |
Wang et al. | The use of phytotoxicity tests (common duckweed, cabbage, and millet) for determining effluent toxicity | |
Spangenberg et al. | Developmental effects of barium exposure in a marine bivalve (Mytilus californianus) | |
JP4699214B2 (en) | Hazardous substance evaluation method and hazardous substance evaluation kit | |
Wang | Chromate ion as a reference toxicant for aquatic phytotoxicity tests | |
Nipper et al. | Toxicity testing with coastal species of southeastern Brazil. Echinoderm sperm and embryos | |
Bresch | Investigation of the long-term action of xenobiotics on fish with special regard to reproduction | |
Bay et al. | Toxicity of dry weather flow from the Santa Monica Bay watershed | |
Stallwitz et al. | Motility and phototactic orientation of the flagellate Euglena gracilis impaired by heavy metal ions | |
SU1751669A1 (en) | Method for determining toxicity of water and aqueous solutions containing active substances | |
Poirier et al. | Comparative toxicity of methanol and N, N-dimethylformamide to freshwater fish and invertebrates | |
Roux, DJ, Kempster, PL, Truter, E & Van der Merwe | Effect of cadmium and copper on survival and reproduction of Daphnia pulex | |
Chapman et al. | Detoxication of zinc and cadmium by the freshwater protozoan Tetrahymena pyriformis: I. The effect of water hardness | |
Lee et al. | Short‐term toxicity test based on algal uptake by Ceriodaphnia dubia | |
RU2308719C1 (en) | Method of determining toxic contamination of effluent and natural fresh waters | |
Danilov et al. | Applicability of growth rate, cell shape, and motility of Euglena gracilis as physiological parameters for bioassessment at lower concentrations of toxic substances: an experimental approach | |
Dutton et al. | Rapid test for toxicity in wastewater systems | |
Jop et al. | Development of a water-effect ratio for copper, cadmium, and lead for the Great Works River in Maine using Ceriodaphnia dubia and Salvelinus fontinalis | |
Brooks et al. | The effect of intermittent chlorination on freshwater phytoplankton | |
Ferrari et al. | Premetamorphic anuran tadpoles as test organism for an acute aquatic toxicity assay | |
Stuijfzand et al. | Bioassays using the midge Chironomus riparius and the zebra mussel Dreissena polymorpha for evaluation of river water quality |