SU1751208A1 - Recombinant plasmid dna pfr blv-f6, encoding bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus, method of its construction and strain of bacteria escherichia coli - a producer of bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus - Google Patents

Recombinant plasmid dna pfr blv-f6, encoding bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus, method of its construction and strain of bacteria escherichia coli - a producer of bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus Download PDF

Info

Publication number
SU1751208A1
SU1751208A1 SU894745577A SU4745577A SU1751208A1 SU 1751208 A1 SU1751208 A1 SU 1751208A1 SU 894745577 A SU894745577 A SU 894745577A SU 4745577 A SU4745577 A SU 4745577A SU 1751208 A1 SU1751208 A1 SU 1751208A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
protein
bacteriophage
dna
plasmid
envelope protein
Prior art date
Application number
SU894745577A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Райнер Ульрих
Хельга Сиаккоу
Корнелия Платцер
Зинаида Розенталь
Ханс Альфред Розенталь
Татьяна Минаевна Козловская
Ирина Витальевна Соминская
Дзидра Эдвиновна Дрейлиня
Артис Янович Бреде
Юрис Арвидович Озолс
Петр Мечиславович Пушко
Павел Павлович Пумпен
Элмар Янович Грен
Original Assignee
Институт Органического Синтеза Ан Латвсср
Отдел Медицины (Шарите) Университета Гумбольдта (Берлин)(Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Органического Синтеза Ан Латвсср, Отдел Медицины (Шарите) Университета Гумбольдта (Берлин)(Фирма) filed Critical Институт Органического Синтеза Ан Латвсср
Priority to SU894745577A priority Critical patent/SU1751208A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1751208A1 publication Critical patent/SU1751208A1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к микробиологической промышленности и биотехнологии . Целью изобретени   вл етс  получение слитого белка, обладающего активностью белка оболочки бактериофага fr и белка др 51 вируса лейкоза крупного рогатого скота Получена рекомбинантна  плазмидна  ДНК pFRBLV-F6, котора  состоит из векторной плазмиды pFR 20, несущей ген белка оболочки бактериофага fr под контролем промотора триптофанового оперона, и фрагмента гена др 51 вируса лейкоза крупного рогатого Скота длиной 147 п.о. внедренного в ген белка оболочки по сайту EcoRV, соответствующему второй аминокислоте белка оболочки, с сохранением фаз трансл ции как гена др 51, так и гена белка оболочки, белой fr CP-BLVflp 51 состоит из 130 аминокислот белка оболочки и 48 аминокислот др 51 и обладает антигенными свойствами обоих белков. Получен штамм Е coli K802, несущий плазмиду pFRBLV-F6. 3 с.п. ф-лы, 2 табл слThis invention relates to the microbiological industry and biotechnology. The aim of the invention is to obtain a fusion protein having the activity of the bacteriophage fr shell protein and cattle leukemia virus protein 51. The recombinant plasmid DNA pFRBLV-F6 is obtained, which consists of the vector plasmid pFR 20 carrying the protein gene of the bacteriophage fr shell under the control of the tryptophan promoter promoter , and a fragment of the gene dr 51 bovine leukemia virus, 147 bp long. the EcoRV site introduced into the envelope protein gene, the corresponding second amino acid of the envelope protein, with the translation of both the other 51 gene and the envelope protein gene, the white fr CP-BLVflp 51 consists of 130 amino acids of the envelope protein and 48 amino acids of the other 51 and has antigenic properties of both proteins. The obtained strain E coli K802, carrying the plasmid pFRBLV-F6. 3 sec. f-ly, 2 tabl

Description

Изобретение относитс  к микробиологической промышленности и биотехнологии .This invention relates to the microbiological industry and biotechnology.

Целью изобретени   вл етс  получение слитого белка, обладающего активностью белка оболочки бактериофага fr и белка др 51 вируса лейкоза крупного рогатого скота.The aim of the invention is to obtain a fusion protein having the activity of the bacteriophage fr coat protein and the protein of other 51 cattle leukemia virus.

Сконструирована рекомбинантна  плазмида pFRBLV-F6, котора  состоит из следующих элементов:A recombinant plasmid pFRBLV-F6 was constructed, which consists of the following elements:

ДНКплазмиды pRF20 несущей полный ген бактериофага frc внедренным по второй аминокислоте по уникальному сайту рестрикции EcoRV и делецией в гене тетрациклинустойчивости , прот женностью 5279 п о.,The DNA plasmid pRF20 harboring the complete gene of the bacteriophage frc introduced by the second amino acid at the unique restriction site EcoRV and deletion in the gene of tetracycline resistance, length 5279 bp,

Bglll-BamHI фрагмента ДНК Я HVI, кодирующего участок последовательности др 51 (49 аминокислот), соответствующий 56- 103 аминокислотам зрелого др 51 и содержащего нейтрализующий эпитоп с прилежащими аминокислотами и иммунологический эпитоп - сайт узнавани  моноклональных антител тАК14, прот женностью 147 п.о.Bglll-BamHI DNA fragment I HVI, encoding a portion of the sequence of others 51 (49 amino acids), corresponding to 56-103 amino acids of mature others 51 and containing a neutralizing epitope with adjacent amino acids and an immunological epitope, the 147 bp monoclonal antibody recognition site.

8 состав ДНК рекомбинантной плазмиды pFRBLV-F6 вход т гены8 DNA composition of recombinant plasmid pFRBLV-F6 includes genes

ген fr CP-BLV др 51 обеспечивающий синтез рекомбинантного белка,gene fr CP-BLV dr 51 providing the synthesis of recombinant protein,

чh

СЛSL

ЮYU

о соabout with

ген Ыа, обеспечивающий устойчивость к ампициллину. Ген fr CP-BLV др 51 находитс  под контролем промотора trp.gene Na providing ampicillin resistance. The CP-BLV gene fr dr 51 is under the control of the trp promoter.

Плазмида pFRBLV-F6 амплифицируетс  при добавлении в среду хлорамфеникола, неконъюгативна.Plasmid pFRBLV-F6 is amplified by addition of chloramphenicol to the medium, non-conjugative.

Сущность способа конструировани  плазмиды pFRBLV-F6 состоит в том, что фрагмент гена др 51 вируса лейкоза внедр етс  во вторую аминокислоту белка оболочки fr с образованием рекомбинантного гена frCP-BLVflp51.The essence of the method for constructing the plasmid pFRBLV-F6 is that a fragment of the other gene 51 of the leukemia virus is inserted into the second amino acid of the fr shell protein to form the recombinant frCP-BLVflp51 gene.

Штамм-продуцент получают трансформацией клеток Е. coll K802 рекомбиШнтмэй плазмидной ДНК pFRBLV-F6. The producer strain is obtained by transformation of E. coli cells. Recombinant strain pFRBLV-F6 plasmid DNA.

Штамм характеризуетс  следующими признаками.The strain is characterized by the following features.

Морфологические признаки: клетки палочковидной формы, грамотрицательные.Morphological features: cells rod-shaped, gram-negative.

Культуральные признаки: клетки растут на обычно используемых питательных средах , образуют колонии средней величины.Cultural characteristics: cells grow on commonly used nutrient media, form medium-sized colonies.

Физико-биохимические признаки: оптимальна  температура культивировани  37°С, оптимум рН 7,0-7,4. В качестве источника углерода используют углеводы, в качестве источника азота - минеральные соли, а также органические соединени  в йиде пептона , триптона, аминокислот, ,Physical and biochemical characteristics: the optimum cultivation temperature is 37 ° C, the optimum pH is 7.0-7.4. Carbohydrates are used as carbon sources, mineral salts are used as nitrogen sources, as well as organic compounds in iide peptone, tryptone, amino acids,

Устойчивость к антибиотикам4 устойчив к ампициллину, что обусловлено наличием плазмиды. Присутствие в штамме плазмидной ДНК подтверждаетс  путем проверки устойчивости к ампициллину, а также путем выделени  и анализа плазмидных ДНК экспресс-методом .Antibiotic resistance4 is resistant to ampicillin due to the presence of a plasmid. The presence of plasmid DNA in the strain is confirmed by testing the resistance to ampicillin, as well as by isolating and analyzing the plasmid DNA by an express method.

Продуктивность штамма составл ет 0,5% целевого продукта от общего клеточного белка.The productivity of the strain is 0.5% of the target product of total cellular protein.

Штамм дёпонирова н в коллекции Центрального музе  промышленных микроорганизмов под номером ВКПМ В-4984.The strain is deponated in the collection of the Central Museum of Industrial Microorganisms under the number VKPM B-4984.

Пример 1. Конструирование реком- бинантной плазмидной ДНК pFRBLB-F6.Example 1. Construction of recombinant plasmid DNA pFRBLB-F6.

20 мкг ДНК плазмиды, содержащей Bglll-BamH фрагмент др 51 и выделенной стандартным методом, расщепл ют 50 ед. рестриктазы Bglll и 50 ед. рестриктазы BamHI в 100 мкл раствора А, содержащего 0,1 М трис-HCl, рН 7,5, 0,05 М NaCI и 0,01 М MgCh, в течение 2 ч при 37°С. Рестриктазы инактивируют 15 мин прогреванием при 65°С. После очистки ДНК Bgltl-BamHI фрагмента на агарозном геле ДНК раствор ют в 20 мкл воды. Заполнение концов провод т в 100 мкл раствора Б, содержащего 0,05 М трис-HCl. рН 7,5, 0,01 MgCl2, 0,01 М дитиот- рейтол, 0,025 М NaCI, 100 мкМ dATP, dCTP, dTTH и dGTP и 10 ед. ДНК-полимеразы Е. coli (фрагмент Кленова), в течение 1 ч при20 µg of plasmid containing the Bglll-BamH fragment of others 51 and isolated by the standard method, 50 units are cleaved. restrictase Bglll and 50 units. restriction enzymes BamHI in 100 μl of solution A containing 0.1 M Tris-HCl, pH 7.5, 0.05 M NaCI and 0.01 M MgCh for 2 hours at 37 ° C. Restriction enzymes inactivate 15 min by heating at 65 ° C. After purification of the DNA of the Bgltl-BamHI fragment on an agarose gel, the DNA is dissolved in 20 µl of water. The filling of the ends is carried out in 100 µl of Solution B containing 0.05 M Tris-HCl. pH 7.5, 0.01 MgCl2, 0.01 M dithio-Reitol, 0.025 M NaCI, 100 μM dATP, dCTP, dTTH and dGTP and 10 u. E. coli DNA polymerase (Klenow fragment), for 1 h at

12°С. После переосаждени  этанолом ДНК раствор ют в 10 мкл воды (ДНК 1).12 ° C. After reprecipitation with ethanol, the DNA is dissolved in 10 µl of water (DNA 1).

2 мкг плазмиды pFR 20 расщепл ют 3 ед. рестриктазы EcoRV в 15 мкл раствора В, содержащего 0,01 М трис-HCl,-рН 7,5, 0,05 М NaCI и 0,01 М MgCl2, в течение 1 ч при 37°С, нанос т инкубационную смесь на 1,5%-ный агарозный гель. Фрагмент, соответствующий линеаризованной плазмиде 0 pFR 20, выдел ют из агарозного гел  (ДНК 2),2 µg of the plasmid pFR 20 cleaves 3 units. restrictase EcoRV in 15 µl of solution B containing 0.01 M tris-HCl, -pH 7.5, 0.05 M NaCI and 0.01 M MgCl2, for 1 h at 37 ° C, put the incubation mixture at 1 , 5% agarose gel. The fragment corresponding to the linearized plasmid 0 pFR 20 is isolated from an agarose gel (DNA 2),

0,1 мкг ДНК 1 и 0,1 мкг ДНК 2 сшивают Т4 ДНК-лигазой в 10 мкл раствора Г, содержащего 0,05 М трис-HCl, рН 7,5, 0,01 М 5 MgCla. 0,01 М дитиотрейтол, 50 мкМ АТР и 10 ед. Т4 ДНК-лигазы, в течение 12 ч при 4°С. Фермент инактивируют нагреванием при 65°С в течение 15 мин. К реакционной смеси добавл ют 100 мкл клеток Е. coll RR1, 0 обработанных 0,1 М CaCh (конечна  концентраци  5x10 клеток/мл), дл  трансформации клеток.0.1 μg of DNA 1 and 0.1 μg of DNA 2 are crosslinked with T4 DNA ligase in 10 μl of solution G containing 0.05 M Tris-HCl, pH 7.5, 0.01 M 5 MgCla. 0.01 M dithiothreitol, 50 μM ATP and 10 units. T4 DNA ligase, for 12 h at 4 ° C. The enzyme is inactivated by heating at 65 ° C for 15 minutes. To the reaction mixture, 100 µl of E. coli RR1 cells, 0 treated with 0.1 M CaCh (final concentration 5x10 cells / ml) were added to transform the cells.

Отбор клонов осуществл ют путем экспресс-выделени  и секвенировани  5 плазмидной ДНК, выделенной экспресс- методом. Плазмида с ожидаемой последовательностью получает наименование PFRBLV-F6.The selection of clones is carried out by the express selection and sequencing of 5 plasmid DNA, isolated by the express method. The plasmid with the expected sequence is given the name PFRBLV-F6.

Штамм-продуцент Е. coli K802 (pFRBLV- 0 F6).Strain producing E. coli K802 (pFRBLV-0 F6).

Штамм-продуцент получают трансформацией клеток Е. coli K802 рекомбинантной плазмидой pFRBLV-F6. Клетки выращивают в солевой среде М9 с добавкой, г/л: казами- 5 новые кислоты 10, глюкоза 2, ампициллин 0,02 до оптической плотности ОПево 4-5.The producer strain is obtained by transformation of E. coli K802 cells with the recombinant plasmid pFRBLV-F6. Cells are grown in a saline medium M9 with the addition of, g / l: kazami-5nova acids 10, glucose 2, ampicillin 0.02 to the optical density of Opeco 4-5.

Определение др 51- и fr-активности методом иммуноблотинга.Identification of other 51- and fr-activity by the method of immunoblotting.

Дл  иммуноблотинга клетки (6 мг) сус- 0 пендируют в 100 мкл буфера дл  нанесени  образцов на полиакриламидный гель по Лэммли, содержащего 2%-ный додецил- г-.сульфат натри  (ДСН) и 2%-ный/ -меркапто- ,Чтанол, и лизируют 2 мин прогреванием на 5 -кип щей вод ной бане. Полученные лизаты (2-4 мг/мл белка) нанос т на полиакриламидный градиентный гель (12-23%) разме- „ром 150x150x0,75 мм. Электрофорез Провод т в течение 15ч при силе тока 7 мА. 0 После электрофореза белки перенос т на нитроцеллюлозу.For immunoblotting, cells (6 mg) are suspended in 100 µl of Laemmli polyacrylamide gel sample buffer containing 2% dodecyl sodium sulfate (SDS) and 2% / mercapto, Chanol. , and lysed for 2 min by heating in a 5-boiling water bath. The resulting lysates (2-4 mg / ml protein) were applied to a polyacrylamide gradient gel (12-23%) with a size of 150x150x0.75 mm. Electrophoresis Conducted for 15 hours at a current of 7 mA. 0 After electrophoresis, proteins are transferred to nitrocellulose.

Фильтры инкубируют с моноклональны- ми анти- др 51 антителами гпАК 14 в разведении 1:500 на буфере TBS, содержащем 5 50 мМ трис-HCl, рН 7,5, 0,15 М NaCI, 0,1% тритон Х100, 1% БСА, в течение 15 ч при 20°С. После трехкратной отмывки буфером TBS фильтры инкубируют 2°ч при 20°С с конъюгатом пероксидазы с антителами про- тив иммуноглобулинов мыши в разведенииFilters are incubated with monoclonal anti-drug 51 gpAK 14 at a dilution of 1: 500 on TBS buffer containing 5 50 mM Tris-HCl, pH 7.5, 0.15 M NaCI, 0.1% Triton X100, 1% BSA, for 15 h at 20 ° C. After washing three times with TBS buffer, the filters are incubated for 2 ° h at 20 ° C with a peroxidase conjugate with antibodies against mouse immunoglobulins in dilution

1:500. Фильтры отмывают буфером TBS (3- 5 раз) и про вл ют диаминобензидином. В параллельной постановке фильтры инкубируют с анти- fr CP антителами кролика в разведении 1.200 на буфере TBS в течение 15 ч при 20°С. После двукратной отмывки буфером TBS фильтры инкубируют 2 ч при 20°С с конъюгатом пероксидазы с белком А S. aureus. Лизаты клеток штамма-продуцента обнаруживают в обоих случа х специфические зоны окраски, соответствующие белку с мол.м. 19.32 кДа (или длиной 184 аминокислот). Контрольные лизаты клеток Е. coll K802 таких зон не обнаруживают.1: 500. The filters are washed with TBS buffer (3-5 times) and develop with diaminobenzidine. In a parallel setting, the filters are incubated with rabbit anti-fr CP antibodies at a dilution of 1.200 on TBS buffer for 15 hours at 20 ° C. After washing twice with TBS buffer, the filters are incubated for 2 hours at 20 ° C with peroxidase conjugate with protein A S. aureus. The lysates of the producer strain cells in both cases reveal specific staining zones corresponding to the protein with mol.m. 19.32 kDa (or 184 amino acids long). Control lysates of E. coli K802 cells do not detect such zones.

Пример 2. Определение др51-актив- ности в составе слитого белка fr СР-В1У др 51 методом энзимоиммунологического анализа на твердой фазе.Example 2. Determination of other51 activity in the composition of the fr CP-B1U f 51 fusion protein by the enzyme immunoassay method on the solid phase.

В качестве твердой фазы используют полистироловые 96-луночные планшеты дл  иммунологических реакций Очищенный белок fr CP-BLV др 51 развод т до концентрации 10 мкг/мл в 50 мМ трис-H.CI, рН 8,0, 0,15 М NaCI и внос т в лунки планшетов - по 100 мкл в каждую. Инкубируют 1 ч при 37°С, после чего раствор удал ют из лунок, планшеты отмывают 4-5 раз дистиллированной водой и высушивают. В лунки внос т моно- клональныеанти-др51 антитела (мыши) или поликлональные анти- fr антитела (кролика) в различных разведени х. После инкубации в течение 1 ч при 37°С планшеты отмывают дистиллированной водой и внос т по 100 мкл коныогата пероксидазы хрена с антителами против иммуноглобулинов кролика или мыши в разведении 1:500. После инкубации в течение 1 ч планшеты отмывают и провод т цветную реакцию. В лунки йнос т по 100 мкл 0,25%-ного раствора ортофени- лендиамина, 2 М HCI в OJ М цитрате натри , рН 5,0, 0,02% НаОа, инкубируют 30 мин при 20°С, реакцию останавливают добавлением 100 мкл 0,1 H.HCI. По вление коричневой окраски свидетельствует о наличии антигенной активности, дл  количественной оценки активности измер ют оптическую плотность при 492 нм (табл. 1). Отсутствие реакции в отрицательном контроле (fr CP) свидетельствует о специфичности св зывани  анти- др 51 ( антител рекомбинантным белком fr CP-BLV др 51.96-well polystyrene plates for immunological reactions are used as the solid phase. Purified fr protein CP-BLV et al 51 is diluted to a concentration of 10 µg / ml in 50 mM Tris-H.CI, pH 8.0, 0.15 M NaCI and tons per well of tablets - 100 µl each. Incubate for 1 h at 37 ° C, after which the solution is removed from the wells, the plates are washed 4-5 times with distilled water and dried. Monoclonal anti-viral antibodies (mice) or polyclonal anti-fr antibodies (rabbit) are introduced into the wells at various dilutions. After incubation for 1 h at 37 ° C, the plates are washed with distilled water and 100 µl of horseradish peroxidase konyogata with antibodies against rabbit or mouse immunoglobulins are added at a dilution of 1: 500. After incubation for 1 hour, the plates are washed and the color reaction is carried out. 100 μl of a 0.25% orthophenylene diamine solution, 2 M HCI in OJ M sodium citrate, pH 5.0, 0.02% NaOa, are incubated in the wells for 30 min at 20 ° C, the reaction is stopped by adding 100 µl 0.1 H.HCI. The appearance of a brown color indicates the presence of antigenic activity; optical density is measured at 492 nm to quantify the activity (Table 1). The absence of the reaction in the negative control (fr CP) indicates the binding specificity of anti-others 51 (antibodies recombinant protein fr CP-BLV others 51.

Пример 3. Иммуногенна  активность слитого белка fr CP-BLV др 51.Example 3. Immunogenic activity of the fr protein of CP-BLV et al 51.

Дл  определени  иммуногенности рекомбинантным белком fr CP-BLV др 51 иммунизируют кроликов. Дл  этого смешивают 2 мг белка, растворенного в 1 мл физиологического раствора PBS, с 1,25 мл полного адъюванта Фрейнда и получают гомогенную эмульсию. Белок ввод т подкожно Инъекции антигена повтор ют на 14 и 21 день и с 28 дн  начинают брать кровь Специфичность антител определ ют методом ИФА с использованием двух антигенов1 frTo determine the immunogenicity, recombinant fr protein CP-BLV et al 51 immunizes rabbits. To do this, mix 2 mg of protein, dissolved in 1 ml of physiological PBS, with 1.25 ml of Freund's complete adjuvant and get a homogeneous emulsion. Protein is injected subcutaneously. Antigen injections are repeated on days 14 and 21 and they begin to take blood from 28 days. Specificity of antibodies is determined by ELISA using two antigens. 1 fr

5 CP (дл  определени  анти- fr CP антител), НВ с Ад - др 51 (дл  определени  др 51 аи гител). Титры антител на 28 день иммунизации приведены в табл. 2.5 CP (for the determination of anti-fr CP antibodies), HB with Ad - other 51 (for the definition of another 51 avitel). Antibody titers on day 28 of immunization are given in Table. 2

Таким образом, изобретение позвол етThus, the invention allows

0 получить слитый белок оболочки РНК-со- держащего бактериофага fr и оболочки руса лейкоза крупного рогатого скота, обладающий иммунологической активностью как по белку бактериофага fr, так и0 to obtain a fusion protein of the shell of an RNA-containing bacteriophage fr and the shell of the leukemia rus in cattle, which has immunological activity both for the bacteriophage fr protein and

5 белку др 51 чируса лейкоза крупного рогатого скота.5 squirrel dr 51 bovine leukemia virus.

Claims (3)

Формула изобретени Invention Formula 0 1. Рекомбинантна  плазммдна  ДНК pFRBLV-F6, кодирующа  белок оболочки бактериофага fr и белок др 51 вируса лейкоза крупного скота, размером 5426 п.о, и мол.м. 3,48 МДа, содержаща 0 1. Recombinant plasmamdna DNA pFRBLV-F6, coding bacteriophage fr coat protein and protein 51 of cattle leukemia virus, 5426 bp in size, mol.m. 3.48 MDa containing 5 . EcoRV-EcoRV - фрагмент ДНК плазми- ды pFR 20 размером 5279 п.о.,five . EcoRV-EcoRV - DNA fragment of plasmid pFR 20, size 5279 bp, Bglll-BamHI -фрагментДHKAHV1, кодирующий белок др 51 вируса лейкоза крупного рогатого скота и белок оболочкиBglll-BamHI -fragmentDHKAHV1 encoding a protein of others 51 cattle leukemia virus and a coat protein 0 РНК-содержащего бактериофага fr, размером 147 п о.,0 RNA-containing bacteriophage fr, size 147 p., уникальные сайты рестрикции с координатами:unique restriction sites with coordinates: 5five 00 BspMII- Pstl- Scal - Hpal- Mstll - Sacl- Aval О (начало координат)BspMII- Pstl-Scal - Hpal-Mstll - Sacl-Aval O (origin) 19471947 21822182 36403640 38853885 45804580 4801,4801, генетические маркерУ и регул торные участки:genetic markers and regulatory sites: ген Ыа, обеспечивающий устойчивость к ампициллину координаты 1629-2489, Ptrp - промотор координаты 3635-2648.Na gene, providing resistance to ampicillin coordinates 1629-2489, Ptrp - promoter coordinates 3635-2648. 2. Способ конструировани  рекомби- нантной плазмидной ДНК pFRBLV-F6, кодирующей белок оболочки бактериофага2. Method for constructing recombinant plasmid DNA pFRBLV-F6 encoding bacteriophage envelope protein fr и белок др 51 вируса лейкоза крупного рогатого скота, включающий гидролиз ДНК Я НИ рестриктазами Bglll и BamHI, обработку гидролизата ДНК-полимеразой Е. coli, лигирование фрагментов ДНК с ДНКfr and protein 51 of the bovine leukemia virus, including DNA hydrolysis with Bglll and BamHI restrictases, treatment of hydrolyzate with E. coli DNA polymerase, ligation of DNA fragments with DNA плазмиды pFR 20, обработанной рестрикта- зой EcoRV, трансформацию полученной ли- газной смесью клеток Е. coli RRI, отбор путем секвенировани  клонов, несущих плазмиду FRBLV-F6.plasmid pFR 20, restriction enzyme-treated EcoRV; transformation of E. coli RRI cells with the resulting ligase mixture; selection by sequencing of clones carrying the FRBLV-F6 plasmid. 3. Штамм бактерий Escherlchla coll ВКПМ В 4984-продуцент белка оболочки3. The bacterial strain Escherlchla coll VKPM B 4984-producing protein shell бактериофага fr и белка др 51 вируса лейкоза крупного рогатого скота.bacteriophage fr and protein dr 51 of cattle leukemia virus. Таблица 1Table 1 5. Т а б л и ц а 25. T and l and c and 2 Иммуногенность рекомбинантного белка fr CP-BLVgp 51Immunogenicity of recombinant protein fr CP-BLVgp 51
SU894745577A 1989-08-10 1989-08-10 Recombinant plasmid dna pfr blv-f6, encoding bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus, method of its construction and strain of bacteria escherichia coli - a producer of bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus SU1751208A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894745577A SU1751208A1 (en) 1989-08-10 1989-08-10 Recombinant plasmid dna pfr blv-f6, encoding bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus, method of its construction and strain of bacteria escherichia coli - a producer of bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894745577A SU1751208A1 (en) 1989-08-10 1989-08-10 Recombinant plasmid dna pfr blv-f6, encoding bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus, method of its construction and strain of bacteria escherichia coli - a producer of bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1751208A1 true SU1751208A1 (en) 1992-07-30

Family

ID=21472788

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894745577A SU1751208A1 (en) 1989-08-10 1989-08-10 Recombinant plasmid dna pfr blv-f6, encoding bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus, method of its construction and strain of bacteria escherichia coli - a producer of bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1751208A1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Weiss et al. Localization of the Escherichia coli cell division protein FtsI (PBP3) to the division site and cell pole
Engman et al. Molecular cloning of mtp70, a mitochondrial member of the hsp70 family
Wiedmann et al. Xenopus oocytes can secrete bacterial β-lactamase
AU625554B2 (en) CKS method of protein synthesis
US4375514A (en) Preparation and use of recombinant plasmids containing genes for alkaline phosphatases
JPS60501391A (en) Polypeptide and protein products and methods of production and use thereof
JPS61274687A (en) Tissue surface antigen of pig mycoplasma and vaccine and diagnostic method based thereon
Takagawa et al. Analysis of choline acetyltransferase protein in temperature sensitive mutant flies using newly generated monoclonal antibody
JPH05268983A (en) Improvement of formation of conformation of natural protein that is crosslinked with disulfide and secreted by prokaryote
US5318900A (en) Method for producing antiviral protein utilizing E. coli transformant, and gene and E. coli vector used in the method
EA035117B1 (en) Codon optimized polynucleotide for high level expression of crm
KR20030031979A (en) Phage-Dependent Superproduction of Biologically Active Protein and Peptides
Hennecke et al. Threonyl-transfer ribonucleic acid synthetase from Escherichia coli: subunit structure and genetic analysis of the structural gene by means of a mutated enzyme and of a specialized transducing lambda bacteriophage
JP2002501752A (en) Regulated high-efficiency expression of foreign genes in Escherichia coli
IE67890B1 (en) Enhanced Protein production in bacteria by employing a novel ribosome binding site
SU1751208A1 (en) Recombinant plasmid dna pfr blv-f6, encoding bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus, method of its construction and strain of bacteria escherichia coli - a producer of bacteriophage @@ envelope protein and protein @@51 of cattle leukosis virus
US6040141A (en) Bacteria for preparing stable fusion proteins and methods for detecting the same
York et al. Autoregulation-deficient mutant of the plasmid R6K-encoded pi protein distinguishes between palindromic and nonpalindromic binding sites.
JP2660095B2 (en) Escherichia coli secretory strain
Henthorn et al. Identification of related genes in phages phi 80 and P22 whose products are inhibitory for phage growth in Escherichia coli IHF mutants
Müller et al. Cloning of mglB, the structural gene for the galactose-binding protein of Salmonella typhimurium and Escherichia coli
Viaplana et al. Polylinker‐encoded peptides can confer toxicity to recombinant proteins produced in Escherichia coli
SU1751209A1 (en) Recombinant plasmid dna hiv 24-5, encoding fused protein of hepatitis b virus core-antigen and envelope protein of human immunodeficiency virus, and strain of bacteria escherichia coli - a producer of fused protein of hepatitis b virus core-antigen and envelope protein of human immunideficiency virus
JPH02135094A (en) Method for producing and separating a fused protein with an eucaryotic cell
SU1744110A1 (en) Recombinant plasmid dna pfrbls f6, encoding fused protein of bacteriophage for envelope and envelope protein of cattle leukosis virus gp51, method of its construction, and strain of bacteria escherichia coli