SU1735779A1 - Способ получени ауксинрецепторного белка из растений - Google Patents

Способ получени ауксинрецепторного белка из растений Download PDF

Info

Publication number
SU1735779A1
SU1735779A1 SU894749876A SU4749876A SU1735779A1 SU 1735779 A1 SU1735779 A1 SU 1735779A1 SU 894749876 A SU894749876 A SU 894749876A SU 4749876 A SU4749876 A SU 4749876A SU 1735779 A1 SU1735779 A1 SU 1735779A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
protein
plants
receptor protein
obtaining
auxin
Prior art date
Application number
SU894749876A
Other languages
English (en)
Inventor
Ирина Александровна Маркова
Анатолий Константинович Тонких
Алла Вениаминовна Карась
Шавкат Исмаилович Салихов
Original Assignee
Институт Биоорганической Химии Им.А.С.Садыкова
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Биоорганической Химии Им.А.С.Садыкова filed Critical Институт Биоорганической Химии Им.А.С.Садыкова
Priority to SU894749876A priority Critical patent/SU1735779A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1735779A1 publication Critical patent/SU1735779A1/ru

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биохимии и физиологии растений. Цель изобретени  - повышение чистоты выдел емого ауксинре- цепторного белка. Данна  цель достигаетс  выделением всей суммы растворимых аук- синсв зывающих белков методом аффинной хроматографии на индолилуксусной кислоте - ацетоамидогексилсефарозе и дополнительной очисткой элюанта на гидрофобной колонке с политетрафторэтиленом дл  выделени  индивидуального белка. Ё

Description

Изобретение относитс  к биохимии и физиологии растений, а именно к способу получени  ауксинрецепторного белка из проростков хлопчатника, который может быть использован дл  скрининга пестицидов ауксинподобного действи .
Известен способ выделени  ауксинсв - зывающих белков специфической культуры клеток табака, требующий дл  своего роста гербицид 2,4-Д, т.е. 2,4-дихлорфеноксиук- сусную кислоту, и обогащенный тип ауксин- св зывающих белков, методом аффинной хроматографии на колонке с 5-гидроокси- ИУК-эпоксисефарозе (ИУК-индолилуксус- на  кислота). В результате был выделен белок с мол.мае. 150-200 кД, стимулирующий в присутствии ИУК синтез РНК в экспериментах .
Однако в нативном растении присутствует несколько ИУК-св зывающих белков, в св зи с чем применение одностадийного выделени  не пригодно дл  получени  ре- цепторного белка в чистом виде. Кроме того, рецептор выделен из специфической мутан- тной культуры клеток, а не из нативного растени .
Сравнительный анализ предлагаемого изобретени  с другими техническими решени ми показал, что в литературе отсутствуют данные по выделению и характеристике ауксинсв зывающих белков из проростков хлопчатника.
1
СО
ел
4
VJ о
Цель изобретени  - повышение чистоты выдел емого белка - рецептора индолилук- сусной кислоты (ПУК) из проростков хлопчатника .
Поставленна  цель достигаетс  выделением всей суммы растворимых ауксинсв - зывающих белков методом аффинной хроматографии на ИУК-ацетамидогексилсе- фарозе и дополнительной очисткой элюата на гидрофобной колонке с использованием в качестве адсорбента политетрафторэтилена дл  выделени  индивидуального белка и характеристики его рецепторных свойств,
Пример.
Приготовление водного экстракта.
В работе использованы проростки хлопчатника (Gossypium hirsutum L), сорт 175-Ф. Семена обрабатывают концентрированной серной кислотой дл  сн ти  опушен- ности, замачивают в воде 12 ч и проращивают в темноте на влажной фильтровальной бумаге при 28°С 2-3 сут.
40 г этиолированных проростков измельчают ножницами и гомогенизируют в 10 объемах трис-HCI 50 мМ, рН 7,8, 50 мМ KCI. 2,5 мМ MgCl2, 5 мМ ЭДТА (этилендиа- минтетрауксусна  кислота), 2 мМ дитиотре- итола, 250 мМ сахарозы, в гомогенизаторе Поттера. Гомогенизацию и все операции по выделению провод т при 2-4°С. Гомогени- зат фильтруют через слой б зи и центрифугируют 30 мин на центрифуге при 20 тыс.д., при этом осаждаетс  фракци  грубых мембран .
В супернатант объемом 430 мл добал - ют сухой сульфат аммони  до 80% насыщени , выдерживают на холоду и осадок собирают центрифугированием при 20000 д. в течение 20 мин. Осадок перераствор ют в 5 мл буфера (50 мМ трис-HCI, рН 7,8), нерастворившиес  частички удал ют центрифугированием . Супернатант, содержащий 47,8 мг белка, обессоливают на колонке (50x2,5 см) с седафексом G-25, уравновешенной 50 мМ трис-HCI, рН 7,8, и элируют тем же буфером при скорости 30 мл/ч. Белковую фракцию, выход щую в свободном объеме колонки, используют дл  дальнейшей работы.
Синтез аффинного сорбента.
Синтез сорбента осуществлен по известной методике. В 120 мл диоксана раствор ют 2,79 г йодуксусной кислоты и 2,7 г N-гидроксисукцинимида. К полученному раствору добавл ют 3,7 г N.N-дициклогек- силсукцинимида. Через 70 мин выпавший осадок дициклогексилмочевины удал ют фильтрованием. 90 мл фильтрата добавл ют к 60 мл суспензии АН-сефарозы, содержащей 10-13 мкМ NH2-rpynn в 0,1 М фосфатном
буфере, рН 7,5, добавление ведут при 4°С. Дл  тестировани  экранировани  аминогрупп к аликвотам добавл ют тринитробен- золсульфонат и по исчезновению
оранжевой окраски суд т об окончании реакции (30 мин). Затем 60 мл йодацетоамидо- гексилсефарозы перенос т на шотовскую воронку и промывают холодным раствором 0,1 М NaCI (2 л). В йодацетоамидный гель
внос т раствор ИУК-индолилуксусной кислоты в концентрации 10 М, предварительно растворенную в диметилформамиде и смешанную с 0,1 М раствором NaHCOs (рН 8,5) в соотношении 1:1. Смесь выдерживают
в течение 3 сут при комнатной температуре. В полученную ИУК-ацетоамидогексилсефа- розу добавл ют 0,2 М раствор 2-аминоэта- нола дл  маскировки непрореагировавших йодацетильных групп. По окончании реакции (через 24 ч) аффинный сорбент промывают 0,1 М NaHCOs, рН 8,5 (3 л). Полученный сорбент содержит 10 мкМ ПУК на 1 мл гел . Схема получени  сорбента следующа :
25
-кад6шг+ -
(
АН-сефарщ хСНгЗ
щад6нн-с4 0 он
йоЗацетоакиоогексилсефарош
-ЩСНг)6Ш-сЛС6 - LitjJ i|
йобацгтоамидогексип- Н сефароааШ
40
ВДСК ОгСС-ОО 3
сн
ЙУК -аигтоачиОогексилсгфароза
Выделение ИУК-св зывающих белков. Белковую фракцию, содержащую 33,3 мг белка, нанос т на ИУК-ацетоамидогексилсефарозный гель в колонке, размеры которой 10x2,6 см. Аффинную колонку промывают до получени  элюата с посто нной оптической плотностью, при 280 нм. Элюцию св завшихс  белков осуществл ют
1 М NaCI, при скорости 3 мл/мин. Белковую фракцию диализуют против воды и лиофильно высушивают. Количество белка , св зывающегос  с ИУК-ацетоамидогек- силсефарозным гелем, составл ет 4,3 мг,
что дает 9% белка от наносимого на колонку .
Характеристика ИУК-св зывающих белков .
-ООценка рецепторноп св зывани .
Эксперименты по св зыванию провод т , использу  фильтрование на нитроцел- люлозных фильтрах марки Сымпор с размером пор 0,4-0,8 мкм по известной методике . Св зывание с водорастворимыми фракци ми провод т в 20 мМ трис-HCI, рН 7,6. При этом используют Н-ИУК с удельной активностью 21 Ки/мМ. Дл  оценки уровн  неспецифического св зывани  примен ют немеченную МУК в концентрации М. Кривые св зывани  указывают на один тип св зывающего участка с Кд 6 мМ и с плотностью св зывающих участков 20 пМ/мг белка,
2) Оценка РНК-полимеразной активности.
Из проростков хлопчатника выдел ют хроматин обычным способом. Дл  этого проростки хлопчатника гомогенизируют в буфере, содержащем 0,25 М сахарозу, 50 мМ трис-HCI, рН 7,8, 0,1 М MgCIa и 0,02 М 2-меркаптозтанол Гомогенат фильтруют через слой нейлоновой сетки и центрифугируют при 1000 д.в течение 10 мин. Осадок, содержащий  дра, ресуспендируют в буфере выделени , содержащего 1%-ный трион- Х-100, дважды промывают буфером того же состава, но без триона и центрифугируют при 20000 д. в течение 20 мин. Осадок раствор ют в буфере, содержащем 50 мМ трис- HCI, рН 7,8, 0,02 М MgCte, 1 мМ 2-меркаптоэтанола и 10%-ный глицерин.
Реакционна  смесь дл  определени  РНК-полимеразной активности содержит 0,2 мМ АТФ, ГТФ, УТФ и 0,02 мМ 3(-ЩТФ с удельной активностью 20 Ки/мМ, 0,1 М KCI, 2 мМ ацетата натри , 20 мМ трис-HCI с рН 7,8, 1 мкг, выдел емого ауксинсв зывающе- го белка, 10 мкМ ИУК и 20 мкг хроматина. Реакцию начинают внесением суспензии хроматина. Смесь инкубируют 30 мин при 20°С и останавливают добавлением 50 мкл 10%-ной трихлоруксусной кислоты. Содержимое пробирок фильтруют на фильтрах Сынпор, аналогично эксперименту по св зыванию (1 г). Фильтры высушивают, поме- щают во флаконы со стандартным толуольным сцинтилл тором и измер ют их радиактивность на счетчике Бета-2.
Выделение гомогенного ИУК-св зываю- щего белка с помощью гидрофобной хроматографии .
Очистку ауксинсв зывающего белка
провод т на колонке (12x1 см) с сорбентом Полихром-Г .4,3 мглиофильно высушенного белка перераствор ют в 500 мкл буфера трис-HCI 50 мМ с рН, 7,8 и нанос т на колонку . Элюцию с колонки провод т этанолом
ступенчато: 20 - 40 - 60 - 80 - 96 соответственно . Профиль элюции представлен шестью пиками. П тый пик, элюируемый 96%-ным этанолом, в присутствии ИУК стимулирует РНК-полимеразную активность в препарате хроматина и специфически св зывает Н-ИУК. Получено 0,5 мг белка.
Дл  оценки молекул рной массы полученного белка, элюат после аффинной колонки раздел ют на колонке Glas Рас. HW
- 3000 (8x300 мм) с помощью аппаратуры дл  высокоэффективной жидкостной хроматографии фирмы LKB. Пик с кажущейс  молекул рной массой около 200 кДа, обладает РНК-полимеразной активностью. Электрофорез в ПААГ с ДДС-натри , как дл  этого пика, так и дл  п того пика, дает одну полосу , соответствующую мол,массе 43 кДа.
Предлагаемое изобретение позвол ет впервые осуществить эффективное выделение ауксинрецепторного белка из нативно- го растени  (хлопчатника), который может быть использован в качестве инструмента при проведении скрининга новых пестицидов ауксин подобного действи .

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    Способ получени  ауксинрецепторного белка из растений, включающий получение водного экстракта растений, осаждение белков и очистку ауксинрецепторного белка
    хроматографическими методами, отличающийс  тем, что, с целью повышени  чистоты выдел емого белка, очистку ведут методом аффинной хроматографии с использованием в качестве адсорбента
    индолилуксусна  кислота - ацетоамидогек- силсефароза, а затем дополнительно очищают белок методом гидрофобной хроматографии с использованием в качестве адсорбента политетрафторэтилена.
SU894749876A 1989-10-25 1989-10-25 Способ получени ауксинрецепторного белка из растений SU1735779A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894749876A SU1735779A1 (ru) 1989-10-25 1989-10-25 Способ получени ауксинрецепторного белка из растений

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894749876A SU1735779A1 (ru) 1989-10-25 1989-10-25 Способ получени ауксинрецепторного белка из растений

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1735779A1 true SU1735779A1 (ru) 1992-05-23

Family

ID=21474905

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894749876A SU1735779A1 (ru) 1989-10-25 1989-10-25 Способ получени ауксинрецепторного белка из растений

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1735779A1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Libbenga K.R. et al. Hormones receptor and cellular interactions in plants. Cambridge: Cambridge Univ. press, 1986, p. 1-68. Cuatrecasas P. Advances in enzymology. Interscience. - N.Y., 1972, p. 29-38. Нейрохими , 1985, т. 4, № 3, с. 260-267. Селиванкина С.Ю, и др. Физиологи растений, 1982, т. 29, вып. 2, с, 274. Nature, 1970, v. 227, 1st 5259, p. 680. Mennes A.M. et al. NATO ASI Series, v. 10. - Springer Verlag, Berlin-Heidelberg, 1987, p. 51-62. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Kreuger et al. Arabinogalactan-protein epitopes in somatic embryogenesis of Daucus carota L.
Woodin Fractionation of a leucocidin from Staphylococcus aureus
Riggs et al. A simple fractionation method for preparation of fluorescein-labeled gamma globulin.
Fraenkel-Conrat et al. Avidin. I. Isolation and characterization of the protein and nucleic acid
US4469630A (en) Purification of monoclonal antibodies
Cutler et al. Carboxyatractyloside: A Compound from Xanthium strumarium and Atractylis gummifera with Plant Growth Inhibiting Properties. The Probable" Inhibitor A"
Imoto et al. Chitin coated cellulose as an adsorbent of lysozyme-like enzymes preparation and properties
Chang-Chen et al. Purification of estradiol-17β dehydrogenase from human placenta by affinity chromatography
EP0162462B1 (en) Purification of type igm monoclonal antibodies
DE3230996A1 (de) Neues protein (pp(pfeil abwaerts)1(pfeil abwaerts)(pfeil abwaerts)3(pfeil abwaerts)), verfahren zu seiner anreicherung und gewinnung sowie seine verwendung
SU1735779A1 (ru) Способ получени ауксинрецепторного белка из растений
Smith et al. B12 vitamins (cobalamins). 1. Vitamins B12c and B12d
Romanov et al. Receptor-like cytokinin-binding protein (s) from barley leaves
Ray et al. A biologically active receptor for the carbohydrate-binding protein (s) of Dictyostelium discoideum
US3591678A (en) Method of purifying intrinsic factor
Berglund et al. [18] ATP-and dATP-substituted agaroses and the purification of ribonucleotide reductases
US3846937A (en) Production of allergens by plant tissue culture technique
Silhavy et al. The “Hidden Ligand” of the Galactose‐Binding Protein
Takeuchi et al. Nicotinamide as a plant growth regulator isolated from rice hulls
Dabrow et al. Specificity of synexin-induced chromaffin granule aggregation
SU1154329A1 (ru) Способ получени фосфорибулокиназы
SU1615174A1 (ru) Способ раздельного получени бесклеточных экстрактов листьев папортника и цианобактерий из симбиотической системы AZoLLa-АNаваеNа aZoLLa
Kornberg et al. [131] Preparation of coenzyme A
Maas et al. A method for selective staining of damaged yeast cells
Krivut et al. Method for the quantitative determination of adlumine in Corydalis sempervirens and as the isolated substance