SU1730594A1 - Method of interleukin-1 determination in human monocytes - Google Patents
Method of interleukin-1 determination in human monocytes Download PDFInfo
- Publication number
- SU1730594A1 SU1730594A1 SU894765398A SU4765398A SU1730594A1 SU 1730594 A1 SU1730594 A1 SU 1730594A1 SU 894765398 A SU894765398 A SU 894765398A SU 4765398 A SU4765398 A SU 4765398A SU 1730594 A1 SU1730594 A1 SU 1730594A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- monocytes
- lymphocytes
- determination
- hours
- wells
- Prior art date
Links
Abstract
Использование: изобретение относитс к медицине, преимущественно к иммунологии , и может быть использовано в диагностике состо ни иммунной системы. Цель изобретени - упрощение, ускорение и повышение точности определени ИЛ-1 моноцитов человека. Моноциты крови после отделени от лимфоцитов в пластиковых лунках посредством адгезии промывают, активируют липополисахаридом в течение 1,5-3 ч, повторно промывают и внос т в лунки равный объем (0,2 мм) суспензии ауто- логичных лимфоцитов и фитогемагглютинин в субоптимальной дозе и после культивировани подсчитывают по сравнению с контрольными пробами индекс восстановлени реакции бласттрансфор,мации. Положительный эффект изобретени заключаетс в уп- рощении.ускорении и повышении точности определени ИЛ-1 за счет импульсной активации (1,5-3 ч) моноцитов липополисахаридом и использовани аутологичной системы иммунокомпетентных клеток (моноцитов и лимфоцитов). 2 ил. 1 табл.Use: The invention relates to medicine, primarily immunology, and can be used in the diagnosis of the state of the immune system. The purpose of the invention is to simplify, accelerate and improve the accuracy of the determination of IL-1 human monocytes. After separation from lymphocytes in plastic wells, blood monocytes are washed by adhesion, activated with lipopolysaccharide for 1.5-3 hours, washed again and an equal volume (0.2 mm) of autologous lymphocyte suspensions and phytohemagglutinin is added to the wells in a suboptimal dose and after cultivation, as compared with the control samples, the index of recovery of the reaction of blasttranspor, mation is calculated. The positive effect of the invention is to simplify and accelerate the determination of IL-1 by pulsed activation (1.5-3 hours) of monocytes by lipopolysaccharide and using an autologous system of immunocompetent cells (monocytes and lymphocytes). 2 Il. 1 tab.
Description
Изобретение отностис к медицине, преимущественно к иммунологии, и может быть использовано в диагностике состо ни иммунной системы.The invention of otnostis to medicine, mainly to immunology, and can be used in the diagnosis of the state of the immune system.
Цель изобретени - упрощение, ускорение и повышение точности определени ИЛ-1 моноцитов человека.The purpose of the invention is to simplify, accelerate and improve the accuracy of the determination of IL-1 human monocytes.
Поставленна цель достигаетс тем, что моноциты крови после отделени от лимфоцитов в пластиковых лунках посредством адгезии промывают, активируют липополисахаридом в течение 1,5-3 ч, повторно промывают и внос т в лунки равный объем (0,2 мл) суспензии аутологических лимфоцитов и фитогемагглютинин и после культивировани смеси клеток подсчитывают по сравнению с контрольными пробами индекс восстановлени реакции бласттрансформа- ции.The goal is achieved by clearing blood monocytes after separation from lymphocytes in plastic wells by adhesion, activating with lipopolysaccharide for 1.5-3 hours, re-washing and adding equal volume (0.2 ml) of autologous lymphocytes and phytohemagglutinin to the wells and after cultivating the mixture of cells, the index of recovery of the blast transformation is calculated, as compared with the control samples.
Способ осуществл ют следующим образом .The method is carried out as follows.
Гепаринизированную(20 ЕД), венозную кровь в объеме 5-6 мл наслаивают на 2 мл градиента Фиколл-Гипак (1,077 г/см3) в центрифужной пробирке и центрифугируют при 400 g 40 мин. Фракцию мононуклеаров, наход щуюс в интерфазном слое, собирают, отмывают три раза физиологическим раствором и приготавливают суспензию клеток до кон центрации 2 х 106 в 1 мл среды RRM1 -1640 с 10%-ной инактивированной AB(IV) сывороткой . Дл разделени прилипающих и не- прилипающих клеток суспензию мононуклеарных клеток разливают по 0,2 мл на одну лунку в пластиковые плоскодонные планшеты дл культивировани клеток и инкубируют в течение 45 мин при 37°С и 5% С02. Неприлипшие клетки, состо щие на 95% из лимфоцитов (окраска азур-эозином)Heparinized (20 U), venous blood in a volume of 5-6 ml is layered on a 2 ml Ficoll-Gipak gradient (1.077 g / cm3) in a centrifuge tube and centrifuged at 400 g for 40 minutes. The mononuclear fraction in the interphase layer is collected, washed three times with physiological saline, and the cell suspension is prepared to a concentration of 2 x 106 in 1 ml of RRM1 -1640 medium with 10% inactivated AB (IV) serum. To separate adherent and non-adherent cells, a suspension of mononuclear cells is poured into 0.2 ml per well in plastic flat-bottomed plates for cell culture and incubated for 45 minutes at 37 ° C and 5% C02. Non-adherent cells consisting of 95% lymphocytes (azure-eosin stain)
ЧH
СОWITH
8eight
юYu
4Ьь 4b
собирают и хран т при 4°С до использовани . Прилипшие клетки, состо щие на 92% из моноцитов (окраска на неспецифическую эстеразу), осторожно промывают несколько раз средой 199 и во все лунки добавл ют по 0,1 мл среды РРМ1-1640. Клетки активируют липополисахаридом Е. Coli (ЛПС Sen/a) импульсным методом. Дл этого в часть лунок с моноцитами внос т по 0,02 мл (20 мкг/мл) ЛПС, в другие - 0,02 мл среды RPM1-1640 и инкубируют при 37°С и 5% С02 в различные интервалы времени (0,5; 1,5; 3,0 ч). По окончании удал ют всю над- осадочную жидкость и лунки с клетками осторожно промывают три раза средой 199. Затем в монослой моноцитов (активированных и неактивированных ЛПС) внос т по 0,2 мл суспензии аутологичных неприлипших клеток (лимфоцитов) в концентрации 2x10 на 1 мл среды RPM1-1640 с 20 мМ глутами- на, 10% инактивированной АВ (IV) сыворотки и 50 мкг/мл гентамицина. В часть лунок (опыт) с клеточными смес ми, состо щими из активированных или интактных моноцитов и лимфоцитов, добавл ют субоптимальную дозу(1 мкг/мл) Ф ГА в объеме 0,02 мл. В другие (контроль) внос т равный объем среды RPM1- 1640. Планшеты помещают в термостат при 37°С с 5% СОа и культивируют в течение 72 ч. По окончании реакции бласттрансформации лимфоцитов (РБТЛ) готов т мазки клеток, в которых определ ют бластные клетки.collect and store at 4 ° C until use. Adherent cells consisting of 92% monocytes (staining for nonspecific esterase) are gently washed several times with medium 199 and 0.1 ml of PPM1-1640 medium is added to all wells. Cells are activated by lipopolysaccharide E. Coli (LPS Sen / a) by the pulsed method. To this end, 0.02 ml (20 µg / ml) of LPS was added to a portion of the wells with monocytes, 0.02 ml of RPM1-1640 medium was added to others and incubated at 37 ° C and 5% C02 at different time intervals (0, 5; 1.5; 3.0 hours). At the end, all supernatant liquid is removed and the wells with cells are gently washed three times with medium 199. Then, 0.2 ml of autologous non-adherent cells (lymphocytes) in a concentration of 2x10 cells is added to a monolayer of monocytes (activated and non-activated LPS). RPM1-1640 medium with 20 mM glutamine, 10% inactivated AV (IV) serum and 50 μg / ml gentamicin. A suboptimal dose (1 µg / ml) F HA in a volume of 0.02 ml is added to a portion of the wells (test) with cell mixtures consisting of activated or intact monocytes and lymphocytes. An equal volume of RPM1-1640 medium is added to the other (control). Plates are placed in a thermostat at 37 ° C with 5% COa and cultured for 72 hours. At the end of the reaction, lymphocyte blast-transformation (RBTL) prepare cell smears in which blast cells.
РБТЛ с исходными мононуклеарными клетками и с неприлипшими клетками (лимфоциты) став т с целью контрол спонтанного и митоге- ниндуцированного пролиферативного ответа клеток. Дл этого в лунки помещают по 0,2 мл суспензии клеток с концентрацией 2x10 на 1 мл среды RPM1-1640 с 20 мМ глутамина, 10% инактивированной AB(IV) сыворотки и 50 мкг/мл гентамицина. В опытные лунки добавл ют 0,02 мл ФГА(10 мкг/мл), в контрольные лунки -такое же количество среды и культивируют при 37°С с 5% С02 в течение 72 ч с последующим определением бластных клеток. РБТЛ во всех исследовани х оценивают по индексу активации (ИА) - отношение числа бластных клеток в культурах, обработанных ФГА (опыт), к количеству бластных клеток в культурах, не обработанных ФГА (контроль). RBTLs with the original mononuclear cells and with non-adherent cells (lymphocytes) are set to control the spontaneous and mitogen-induced proliferative response of the cells. For this, 0.2 ml of a suspension of cells with a concentration of 2x10 per 1 ml of RPM1-1640 medium with 20 mM glutamine, 10% inactivated AB (IV) serum and 50 μg / ml gentamicin are placed in the wells. 0.02 ml of PHA (10 µg / ml) is added to the test wells, the same amount of medium is added to the control wells and cultured at 37 ° C with 5% C02 for 72 hours, followed by blast cell determination. RBTL in all studies was assessed by the activation index (AI) —the ratio of the number of blast cells in cultures treated with PHA (experiment) to the number of blast cells in cultures not treated with PHA (control).
Дл оценки продукции ИЛ-1 моноцитами используют индекс восстановлени реакции бласттрансформации (ИВРБ).To assess the production of IL-1 by monocytes, the blast transformation reaction recovery index (CRRI) is used.
Лимфоциты + моноциты, активированные ИА импуль- сным методом, или интакт- ные моноциты - ИА (лимфоциты)Lymphocytes + monocytes activated by the AI by the pulsed method, or intact monocytes - AI (lymphocytes)
ИА (мононуклеары) ИА (лимфоциты)IA (mononuclear cells) IA (lymphocytes)
В части исследований ИЛ-1 определ ют в суточных супернатантах моноцитов, активированных ЛПС импульсным методом, а также в суточных супернатантах интактных моноцитов согласно изобретению. Дл этого монослой клеток инкубируют с или без ЛПС в течение 0,1; 1,5; 3 ч. Затем их осторожно промывают три раза средой 199 от индуктора, суспензируют в среде RPM1- 1640 и культивируют в течение 1 сут при 37°С с 5% . Затем собранные суперна- танты центрифугируют при 400д 15 мин и определ ют в них активность ИЛ-1. Полученные данные выражают в ИВРБ.In terms of research, IL-1 was determined in daily monocyte supernatants activated by LPS by the pulsed method, as well as in intact monocyte daily supernatants according to the invention. For this, the cell monolayer is incubated with or without LPS for 0.1; 1.5; 3 hours. Then they are gently washed three times with medium 199 from the inductor, suspended in RPM1-1634 medium, and cultured for 1 day at 37 ° C with 5%. Then, the collected supernatants are centrifuged at 400d15 min and the IL-1 activity is determined in them. The data obtained is expressed in the IIRB.
ИА (лимфоциты) + ИЛ) - ИА (лимфоциты)IA (lymphocytes) + IL) - IA (lymphocytes)
ИА (мононуклеары ) - ИА (лимфоциты)IA (mononuclear cells) - IA (lymphocytes)
где ИЛ - суточные супернатанты моноцитов , активированных импульсным методом ЛПС или интактных моноцитов.where IL is the daily supernatants of monocytes activated by the pulsed LPS or intact monocytes.
Полученные результаты подвергают статистической обработке с применением критери Стьюдента.The results obtained are statistically processed using Student’s criteria.
Результаты. Интактные моноциты стимулируют пролиферативный ответ аутологичных лимфоцитов в ответ на субоптимальную дозу ФГА по сравнению с пролиферацией одних лимфоцитов (фиг.1). Однако эти клетки не способны восстанавливать пролиферацию лимфоцитов до показателей , полученных в РБТЛ с мононуклеарными клетками, так как ИВРБ равен 0,6 ±0,09. После активации моноцитов ЛПС в течение 0,5 ч их способность стимулировать пролиферацию лимфоцитов существенно не отличаетс от действи интактных клеток (фиг.1), Пролиферативный ответ лимфоцитов значительно возрастает (Р 0,05) после активации моноцитов ЛПС в течение 1,5 ч и сохран етс при применении моноцитов, активированных ЛПС 3 ч (фиг.1). Полученные данные свидетельствуют о том, что после импульсной активации ЛПС моноциты приобретают способность усиливать пролиферативный ответ аутологичных лимфоцитов в ответ на субоптимальную дозу ФГА.Results. Intact monocytes stimulate the proliferative response of autologous lymphocytes in response to a suboptimal dose of PHA compared with the proliferation of lymphocytes alone (figure 1). However, these cells are not able to restore the proliferation of lymphocytes to the values obtained in RBTL with mononuclear cells, since the IBRB is equal to 0.6 ± 0.09. After activation of LPS monocytes for 0.5 hours, their ability to stimulate lymphocyte proliferation is not significantly different from the action of intact cells (Fig. 1). The proliferative response of lymphocytes increases significantly (P 0.05) after activation of LPS monocytes for 1.5 hours and saved when using monocytes activated by LPS for 3 hours (figure 1). The findings suggest that after pulsed activation of LPS, monocytes acquire the ability to enhance the proliferative response of autologous lymphocytes in response to a suboptimal dose of PHA.
ЛПС вл етс хорошим индуктором продукции ИЛ-1 моноцитами. Поэтому предполагаетс , что после импульсной активации ЛПС моноциты человека приобретают способность продуцировать ИЛ-1, который стимулирует пролиферацию аутологичных лимфоцитов. Дл подтверждени этого с помощью известного способа определ ют ИЛ-1 в суточных супернатантах моноцитов, активированных ЛПС импульсным методом. Кроме того, известным способом определ ют ИЛ-1 в суточных супер- натантах интактных моноцитов человека, Оказалось, что супернатанты интактных клеток стимулируют пролиферацию лимфоцитов в ответ на субоптимальную дозу ФГА. ИВРБвэтихслуча х равен 0,92 ± 0,12 (фиг.2), что видно по результатам, полученным согласно известному способу. Увеличение ИВРБ наблюдаетс при использовании супернатантов моноцитов, активированных ЛПС импульсным методом в течение 1,5 и 3 ч (фиг.2), в то врем как супернатанты моноцитов , активированных ЛПС в течение 0,5 ч, не обладают таким действием (фиг.2).LPS is a good inducer of IL-1 production by monocytes. Therefore, after pulsed activation of LPS, human monocytes are supposed to acquire the ability to produce IL-1, which stimulates the proliferation of autologous lymphocytes. To confirm this, IL-1 was determined in diurnal supernatants of monocytes activated by LPS using a pulsed method using a known method. In addition, IL-1 in daily supernatants of intact human monocytes was determined in a known manner. It turned out that the supernatants of intact cells stimulate lymphocyte proliferation in response to a suboptimal dose of PHA. IBRBVetihlu x equals 0.92 ± 0.12 (figure 2), which can be seen from the results obtained according to a known method. An increase in IVRB is observed when using monocyte supernatants activated by LPS in a pulsed manner for 1.5 and 3 hours (Fig. 2), while monocytes supernatants activated by LPS for 0.5 h do not have this effect (Fig. 2 ).
Результаты этих исследований свидетельствуют о том, что моноциты,активированные ЛПС импульсным методом, приобретают способность продуцировать ИЛ-1, который определ етс в суточных су- пернатантах этих клеток с помощью известного способа.The results of these studies indicate that monocytes activated by LPS using the pulsed method acquire the ability to produce IL-1, which is determined in the daily supernatants of these cells using a known method.
Таким образом, приведенные данные показывают, что моноциты, активированные ЛПС импульсным методом, продуцируют ИЛ-1, который определ етс по стимул ции пролиферации аутологичных лимфоцитов в ответ на субоптимальную дозу ФГА.Thus, the data show that monocytes activated by LPS using the pulsed method produce IL-1, which is determined by stimulating the proliferation of autologous lymphocytes in response to a suboptimal dose of PHA.
П р и м е р 1. Исследовани проведены на крови 25 доноров станции переливани крови. Статистически обработанные результаты представлены на фиг.1. После активации моноцитов ЛПС в течение 0,5 ч их способность стимулировать пролиферацию аутологичных лимфоцитов в ответ на субоптимальную дозу ФГА существенно не отличаетс от действи интактных моноцитов. Это указывает на то, что в обоих случа х определ етс одинакова способность моноцитов человека продуцировать ИЛ-1. При активации моноцитов ЛПС в течение 1,5 и 3 ч возрастает (,05) пролиферативный ответ лимфоцитов на субоптимальную концентрацию ФГА, На основании полученных данных можно считать, что моноциты человека , активированные ЛПС импульснымPRI me R 1. Studies were conducted on blood from 25 donors of a blood transfusion station. Statistically processed results are presented in figure 1. After activation of LPS monocytes for 0.5 hours, their ability to stimulate the proliferation of autologous lymphocytes in response to a suboptimal dose of PHA does not differ significantly from the action of intact monocytes. This indicates that in both cases the same ability of human monocytes to produce IL-1 is determined. When monocytes of LPS are activated for 1.5 and 3 hours, the proliferative response of lymphocytes to the suboptimal concentration of PHA increases (05). Based on the obtained data, we can assume that human monocytes activated by LPS are pulsed
методом (1,5-3 ч), продуцируют ИЛ-1, который определ етс по способности стимулировать пролиферацию аутологичных лимфоцитов, стимулированных субоптимальной дозой ФГА.method (1.5-3 hours), produce IL-1, which is determined by its ability to stimulate the proliferation of autologous lymphocytes, stimulated by a suboptimal dose of PHA.
П р и м е р 2, Проведено определение ИЛ-1 моноцитов человека по известному и предлагаемому способам у 30 доноров станции переливани крови.Example 2: IL-1 determination of human monocytes was carried out using known and proposed methods in 30 donors of a blood transfusion station.
Данные представлены в таблице.The data presented in the table.
При использовании известного способа определено одинаковое количество ИЛ-1 (ИВРБ 0,92 ±0,12). При определении ИЛ- 1 моноцитов человека предлагаемым способом ИВРБ равен 1,35 ±0,1, что выше данных по известному способу. Следовательно , предлагаемый способ повышает точность определени ИЛ-1 моноцитов человека .When using a known method, the same amount of IL-1 was determined (IVRB 0.92 ± 0.12). When determining IL-1 of human monocytes by the proposed method, the IBRB is equal to 1.35 ± 0.1, which is higher than the data by a known method. Therefore, the proposed method improves the accuracy of the determination of IL-1 human monocytes.
Положительный эффект изобретени заключаетс в упрощении, ускорении и повышении точности определени ИЛ-1 моноцитов человека за счет импульсной активации моноцитов липополисахаридом иThe positive effect of the invention is to simplify, speed up and increase the accuracy of the determination of IL-1 of human monocytes by pulsed activation of monocytes by lipopolysaccharide and
использовани аутологичной системы им- мунокомпетентных клеток (моноциты и лимфоциты ).use of the autologous system of immunocompetent cells (monocytes and lymphocytes).
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894765398A SU1730594A1 (en) | 1989-12-04 | 1989-12-04 | Method of interleukin-1 determination in human monocytes |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894765398A SU1730594A1 (en) | 1989-12-04 | 1989-12-04 | Method of interleukin-1 determination in human monocytes |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1730594A1 true SU1730594A1 (en) | 1992-04-30 |
Family
ID=21482765
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU894765398A SU1730594A1 (en) | 1989-12-04 | 1989-12-04 | Method of interleukin-1 determination in human monocytes |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1730594A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1996012025A1 (en) * | 1994-10-14 | 1996-04-25 | Basf Aktiengesellschaft | TRANSGENIC NONHUMAN ANIMAL HAVING FUNCTIONALLY DISRUPTED INTERLEUKIN-1β CONVERTING ENZYME GENE |
-
1989
- 1989-12-04 SU SU894765398A patent/SU1730594A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Иммунологи , 1986, № 4, с. 52-54. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1996012025A1 (en) * | 1994-10-14 | 1996-04-25 | Basf Aktiengesellschaft | TRANSGENIC NONHUMAN ANIMAL HAVING FUNCTIONALLY DISRUPTED INTERLEUKIN-1β CONVERTING ENZYME GENE |
US6100445A (en) * | 1994-10-14 | 2000-08-08 | Basf Aktiengesellschaft | Transgenic knockout mouse having functionally disrupted interleukin-1β converting enzyme gene |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Snyderman et al. | Human mononuclear leukocyte chemotaxis: a quantitative assay for humoral and cellular chemotactic factors | |
Laurenzi et al. | The neuropeptide substance P stimulates production of interleukin 1 in human blood monocytes: activated cells are preferentially influenced by the neuropeptide | |
Clausen | Migration inhibitory effect of cell-free supernatants from tuberculin-stimulated cultures of human mononuclear leukocytes demonstrated by two-step MIF agarose assay | |
Wright et al. | Studies on the mechanism of natural killer cytotoxicity. II. coculture of human PBL with NK-sensitive or resistant cell lines stimulates release of natural killer cytotoxic factors (NKCF) selectively cytotoxic to NK-sensitive target cells. | |
Keller et al. | Chemotaxis of leucocytes | |
Murphy et al. | Cytotoxic folliculitis in GvHD: evidence of follicular stem cell injury and recovery | |
Namba et al. | Regulatory substances produced by lymphocytes: I. Inhibitor of DNA synthesis in the rat | |
Jones et al. | RESTRICTION OF GENE EXPRESSION IN B LYMPHOCYTES AND THEIR PROGENY: I. Commitment to Immunoglobulin Allotype | |
Vann et al. | In vitro cooperation of cells of bone marrow and thymus origins in the generation of antibody-forming cells | |
Boetcher et al. | Brief communication: Mouse mononuclear cell chemotaxis: Description of system | |
AU632999B2 (en) | Method and means for immuno-stimulating blood treatment with a mitogen | |
Burke | The status of interferon | |
SU1730594A1 (en) | Method of interleukin-1 determination in human monocytes | |
Ruddy et al. | Chemotactic activity derived from interaction of factors D and B of the properdin pathway with cobra venom factor or C3B. | |
Robbins et al. | Functional subsets of human T cells defined by “active” rosette formation | |
Mukerjee et al. | Dengue virus‐induced human cytotoxic factor: production by peripheral blood leucocytes in vitro | |
Pancre et al. | IgE-dependent killing of Brugia malayi microfilariae by human platelets and its modulation by T cell products | |
MacDonald et al. | Histamine-releasing factors and heterogeneity of IgE | |
Miller et al. | Thymic dysplasia (“Swiss agammaglobulinemia”): II. Morphologic and functional observations | |
Jörgensen et al. | Serogenetic investigations on malignant melanomas with reference to the incidence of AB0 system, Rh system, Gm, Inv, Hp and Gc systems | |
Webb et al. | Fractionation of functional lymphocytes sensitized to basic encephalitogen on derivatized collagen and gelatin gels | |
Eibl et al. | Macrophage-lymphocyte interaction in response to a bacterial antigen (E. coli). | |
Hoffmann et al. | Deletion of active human suppressor T lymphocytes from peripheral blood by Sephadex G-10 filtration | |
Egeland et al. | Inflammatory synovial tissue mononuclear cells release leucocyte migration inhibition factor in antigen-and mitogen-free cultures. | |
Golub et al. | Cellular reactions against Burkitt lymphoma cells. II. Effector cells obtained by allogeneic stimulation in mixed leukocyte cultures |