SU1707624A1 - Способ определени антилизоцимной активности штаммов менингококка - Google Patents

Способ определени антилизоцимной активности штаммов менингококка Download PDF

Info

Publication number
SU1707624A1
SU1707624A1 SU894733637A SU4733637A SU1707624A1 SU 1707624 A1 SU1707624 A1 SU 1707624A1 SU 894733637 A SU894733637 A SU 894733637A SU 4733637 A SU4733637 A SU 4733637A SU 1707624 A1 SU1707624 A1 SU 1707624A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
lysozyme
strains
activity
concentration
enzyme
Prior art date
Application number
SU894733637A
Other languages
English (en)
Inventor
Евгений Михайлович Бабич
Лидия Петровна Пивоваревич
Инэсса Борисовна Васильева
Светлана Андреевна Деркач
Владимир Иванович Белозерский
Ирина Витальевна Елисеева
Виталий Петрович Пимченко
Original Assignee
Харьковский Научно-Исследовательский Институт Микробиологии, Вакцин И Сывороток Им.И.И.Мечникова
Харьковский научно-исследовательский институт эндокринологии и химии гормонов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Харьковский Научно-Исследовательский Институт Микробиологии, Вакцин И Сывороток Им.И.И.Мечникова, Харьковский научно-исследовательский институт эндокринологии и химии гормонов filed Critical Харьковский Научно-Исследовательский Институт Микробиологии, Вакцин И Сывороток Им.И.И.Мечникова
Priority to SU894733637A priority Critical patent/SU1707624A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1707624A1 publication Critical patent/SU1707624A1/ru

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к медицине, а именно к медицинской микробиологии. Цель изобретени  - упрощение способа, поИзобретение относитс  к области медицины , а именно к медицинской микробиологии . Лизоцим обладает способностью подавл ть рост многих бактерий. Поэтому штаммы микроорганизмов, которые ингиби- руют данный фермент, получают существенное преимущество в межвидовой конкуренции. Они лучше выживают и при внутриклеточной локализации. Переваривание антилизоцимных штаммов в фагоцитах протекает во много раз медленнее, чем клеток , не обладающих активностью в отношевышение чувствительности и ускорение определени  активности. Способ заключаетс  в приготовлении взвесей изучаемых штаммов мэнингскокков с концентрацией 5.0- 10,0 млрд, микробных клеток на 1 мл раствора лизоцима. внесении их в грздпент концентрации лизоцима, инкубировании 30-60 мин смеси с последующим определением остаточного лизоцима и засевом в лунки гельбзктериальной полиакриламидней среды, включающей т е с т - -- у л ь т у р у Micrococcus Lysodekticus. Причем градиент концентрации фермента готсе т из расчета 0.25. 05 и 1.0 . Способ позвол ет с ei- сокой слеленью -сч.гс определить способность штаммов инг/Ьиро- t   т ь фермент в услови х, близка к внутриклеточному паразитироззкньг1 микроорганизмов , в 12-15 раз сократить сроки исследовани  и значи ельно упростить и удешевить метод определени  зчти- лизоцимчой активности с..ежевыделемных штаммов менингококка. 5 табл. (Л С нии Фермента. Кроме того, микроорганизмы с указанными свойствами способны к внутриклеточному размножению. Менингококки относитс  к внутриклеточным паразитам и обладают антнлизо- цимнсй активностью (АЛА). Широкий диапазон значений АЛА характерен дл  различных штаммов и даже клонов попул ции. Наличие этого фактора расцениваетс  как один из возможных показателей патогенно- сти микроорганизмов, который может быть использован при эпидемиологической характеристике штаммов. vj О vj О ГО

Description

Известны различные модификации одного способа определени  антилизоцимной активности штаммов менингококка - определение АЛА на плотных питательных средах , содержащих - определенные концентрации кристаллического лизоцима.
Недостатками данного способа  вл ютс  сложность постановки опыта, недостаточна  чувствительность теста и длительность исследовани .
Наиболее близким у предлагаемому  в- л тес  метод, основанный на создании градиента концентрации лизоцима на одной чашке с плотной питательной средой. В чашку Петри внос т 20 мл расплавленного агара и став т в наклонное положение дл  получени  скошенного агара. После засты- зэни  среды чашку кладут строго горизонтальное положение и заливают 20 мл 20%-ного сывороточного агара с лизоцимом в максимальной исследуемой концентрации 20-30 мкг/мл. После охлаждени  образуетс  среда, имеюща  градиент концентрации лизоцима. На поверхность агара стандартной петлей (d 3 мм) наноситс  непрерывной полосой по направлению градиента концентрации лизоцима взвесь исследуемой 18-24-часовой культуры менингококка (109 КОЕ/мл).
Через 18-24 ч инкубации в термостате при 37°С культура обрабатываетс  парами хлороформа и заливаетс  0.1 мл взвеси индикаторного штамма микрококка (10 К СЕ /мл) в 4 мл 0.7 % -ного питательного агара . Чашки вновь-помещают в термостат при 37°С. Учет результатов провод т по наличию роста M.lysodeikticus вдолк полосы исследуемой культуры. За уровень антилизоцимной активности принимают максимальное значение концентрации фермента , при которой еще отмечаетс  рост M . - .рококка.
Недостатком указанного метода  вл етс  тс. что он не позвол ет изучить энтили- зоиимную активность штаммов в жидких средах, т.е. в услови х, близких к развитию менингококков в биологических жидкост х, в том числе, внутриклеточного паоззитиро- вани . Кроме того, постановка опыта довольно сложна , требует значительного расходовани  питательной среды и сопр жена с длительностью исследований (не менее 48 ч). Указанна  методика определени  АЛА может давать существенные отклонени  в результатах, св занных с различным числом жизнеспособных клеток во взвеси, вз той дл  посева менингококка на агаровую среду, и неодинаковой скоростью его размножени , что затрудн ет стандартизацию условий постановки данного теста.
Целью изобретени   вл етс  упрощение способа, повышение чувствительности и ускорение определени .
Цель достигаетс  путем приготовлени 
взвесей культур изучаемых штаммов менингококка в жидкой среде, содержащей различные концентрации лизоцима, инкубировэни  смесей в течение определенного времени при 37°С, определени  в
0 .них содержани  остаточного лизоцима с использованием высокочувствительной поли- акриламидной среды, с последующим вычислением инактивированных штаммов доз фермента. За уровень антилизоцимной
5 активности принимают максимальную концентрацию лизоцима, полностью анактиви- рованную взвесью менингококка, Применение полиакриламидной среды позвол ет вы вить концентрации фермента
0 (менее 1 мкг/мл), которые известным способом не могут быть обнаружены, и сократить сроки исследовани  до 2-4 ч вместо 48 ч.
Параметры постановки теста - концентрации культур менингококка и растворов
5 лизоцима. врем  инкубации, критерии оценки активности штаммов по антилизоцимно- му признаку, определены следующим образом.
В опыт брали суспензию культуры ме0 нингококка (эталонный штамм № 0646) различной концентрации от 1 до 15 млрд микробных клеток на 1 мл дистиллированной воды. Полученные данные (табл.1) свидетельствуют , что одномиллиардна  взвесь
5 не подавл ла в течение 1 ч лизоцимную активность в стандартных растворах. Увеличение концентрации менингококка до 2.5 млрд клеток в 1 мл суспензии позволило во всех случа х ингибировать 0.1-0.25 мкг/мл
0 лизоцима. Угнетение фермента в дозе 0.5 мкг/мл наблюдалось лишь в отдельных случа х . Содержание микробных клеток в пределах 5-10 млрд/мл давало посто нные результаты, во всех стандартных растворах
5 с концентрацией лизоцима 0,1-1,0 мкг/мл в течение 1 ч было отмечено ингибирование фермента.
Более высокое содержание микробных клеток (15 млрд/мл) в смеси подавл ло активность Фермента в-диапазоне 0,1-2,0
0 мкг/мл, однако повтор емость результатов наблюдалась лишь при исследовании растворов , содержащих 0.1-1.0 мкг/мл фермента . Исследование образцов с концентрацией лизоцима 2.0 мкг/мл позво5 лило вы вить ан,тилизоцимную активность менингококка только в отдельных опытах. Отсутствие стабильности результатов при использовании двух с половиной и п тнэд- цатимиллиардной микробной взвеси в растворах 0,5 и 2,0 мкг/мл лиэоцима соответственно  вилось основной причиной дл  ограничени  минимальных и максимальных значений концентрации менингококка 5-10 млрд микробных клеток в одном миллилитре смеси.
Чувствительность тесте обусловлена также длительностью инкубации культуры менингококка с лизоцимом. Соответствующие данные представлены в табл.2. Как вид- но из полученных данных табл.2, п тнадцатиминутна  экспозици  оказалась недостаточной дл  про влени  антилизо- цимной активности менингококка. Ингиби- рование лизирующего действи  фермента в концентрации 0,1-1.0 мкг/мл во всех опытах наступало в теиение 30-60 мин, поэтому увеличение времен экспозиции более 1 ч нецелесообразно. В контрольных образцах, не содержацих культуры менингококка, активность раствора лизоцима в течение 1 ч не измен лась.
Применение стандартных растворов лизоцима позвол ет значительно сократить сроки определени  антилизоцимной активности штаммов Благодар  учету результатов по времени по влени  начальной зоны ли- эисо тест-культуры о гельбактериэльной среде Без использовани  калибровочной кривой. Как показало экспериментальное изучение много-испенных контрольных образцов растворгэ лизсцима с концентрацией 0,25-- 1.0 мкг/мл на полизкриламидной гельбактериэль-о, среде, примен емой в данном способе, временные параметры их, лизирующею эффекта всегда находились в пределах от 30 мин до 2 Параметры уроьи-;й г, тилизоцимной активности по предлагаемому способу определены на 25 ит зммах менингококка. Все вз тые в опыт к/г,ьтуры предварительно изучались с псмсгщыс известного теста и были сгруппированы по способности инак- тивировать различные концентрации фермента следующим образом. 7 штаммов с низкой АЛ А (и на т и веровал и 1-5 мкг/мл лизоцима ), 8 штэммсв со средней АЛА {6-10 мкг/мл) и 10 штаммов с высокой АЛА(инак- тивировали 10 мкг/мл и более).
Результаты изучени  антилизоцимной активности этих штаммов по предлагаемо-. му способу представлены в табл.З.
Как следует из табл.З, концентраци  инактивированного лизоцима пр мо коррелировала с уровне АЛА штаммов менингококка , определенной известным способом. Полученные сравнительные данные свидетельствуют также о том,что характеристику штаммов можно проводить с помощью трех контрольных растворов лизоцима с концентрацией 0,25; 0,5 и 1 мкг/мл и сценипэть полученные результаты следующим обрэ- зом: при инактивации 0.25 мкг/мл лизоцимз штаммы менингококка считать низкозкгив- ными; при 0,5 мкг/мл - среднеактивными и
при 1 мкг/мл - высокоактивными антилизо- цимному признаку.
Продолжительность исследований на полиакриламидной гельбактериэльном среде в опытных образцах представлена в
0 тэбл.4.
Обнаружение в течение 2 ч лизирующего эффекта смесей культуры менингококка и лизоцима при концентраци х последнего 0,5 и 1,0 мкг/мл указывает на низкую спо5 собность штаммов ингибировать фермент. Наличие зон лизиса в указанный промежуток времени при исследовании образцов, содержащих только 1 мкг/мл лизоцима. характеризует среднюю активность штамма, а
0 отрицательные результаты при исследовании всех растворов - сысокую антилизоцим- ную активность культур менингококка.
Таким образом, дл  определени  АЛА штаммов менингококка целесообразно ис5 пользовать водную суспензию исследуемого штамма, содержащую 5,0-10,0 млрд микробных клеток нз 1 M;I рэствсра лизсцима (концентрации 0,25. 0.5 и .0 мкг/мл), инкубироэать смесь в течение 30-60 мин
0 при 37°С, после чого с предел ть количество ингибирпвзниого фегмечта с помощью по- лиакрплгми,1 ой ге. ь озктс-ризльисй среды в течение не более Г ч.
Способ осуществл емс  :..гедуО1:;им сб5 разсм.
Суточную культуру меничгск.0- 3 смы- сзютдистиллированной физиологическим растворе с рН 6,2 и готов т густую взвесь, соответствующую густоте
3 50-100 млрд/мл по оптическому ст.дарту плотности ГИСК им.Тарасевича. ГСТОБЯТ растворы с различной концентрацией /изо- цима (0,25; 0,5 и 1,0 мчг/мл) и рззлисэют в пробирки по 1 мл (по 2 пробирки на каждую
5 концентрацию лизоцима). В каждую опытную пробирку вносит микробную взвесь из расчета 5.0-10.0 млрд/мл и инкусируют при температуре 37°С в течение 30- мин. Контролем  вл ютс  стандартные
0 раствори лизоцима без бактериальной культуры. Затем содержимое каждой пробирки (опытной и контрольной) внос т в за- ранееприготовленные лунки гельбзктериальной среды и инкубируют в
5 течение 2 ч при 37°С. Результаты учитывают визуально по по влению зон лизиса или по их отсутствию вокруг лунок с исследуемой микробной суспензией. Определ ют какие максимальные дозы фермента ингибированы . Штаммы менингококка считают низкоактивными по антилизоцимному признаку, если они подавл ют действие лизоцима только при концентрации последнего 0,25 мкг/мл; среднеактивными - 0.25 и 0,5 мкг/мл- высокоактивными - 0.25; 0,5 и 1,0 мкг/мл.
П р и м е р 1. Выросшую в чашке Петри суточную культуру менингококка смывают двум  миллилитрами дистиллированной воды . С помощью оптического стандарта мутности определ ют густоту взвеси и довод т ее до мутности, соответствующей 50 млрд микробных клеток в 1 мл.
Готов т стандартные растворы кристаллического лизоцима дл  чего раствор ют 10 мг лизоцима в 50 мл дистиллированной воды (конечна  концентрации 200 мкг/мл), затем 2 мп данного растпсра соедин ют с 48 мл дистиллированной воды (концентраци  8 м .г/мл). Эти pac. можно , ранит ь при температуре 4- Г;°С Е течение 30 и 6 дней ссотг.ет те-знно.
Из последнего рззседени  гогсвчт ех .еглрогае рабочий рзствор. г.сдерж.ащий 1 мкг/мл лизоцима. Дл  этого к 0.5 мл раствора , содержащего 8 МХ-/УЛ фермента, добавл ют 3,5 МЛ Д1Н1ТИЛГ .фСВйННСЙ БОДь1.
Дг:  получен; ч ; агтворп с белее низкой концентрацией лизоцима смешивают 0,5 мл рабочего раствора лизоцимэ с 1.5 мт дистиллированной ecr.bi (кснц- ктс.чци  0.25 м-г. мл). 1 мл p.c-o-iero рэстегрэ - с 1 мл воды концентра:.   0.5 мкг/мл)
Кзхдый и пон отсЕленчых р створов лизоцима. содержащих 0,25; 0,5 и 1 мкг/мл фермента, внос т по 0.9 мл в дое прсб. -рки. В пеовый р д добавл ют по 0,1 мл 50 млрд микробной взвеси изучаемого штамма менингококка , второй бг рут в качестве кснтрс- л  Все пробирки, инкубируют в течение 30 мин при 37°С, затем исслед1- ют нз лизоцим- ную активность с ислопг-зоь змием гельбак- теризльной среды. Гельбактернальна  среда готовилась из реакционной смеси, содержащей 5 г акрилзмида; 0,2 N.N -ме- тилен-бис-акриламидз; 0.3 мл N.N.N .N -тет- раметилэтилендиамина; 0.12 г кали  персульфата и 0,1-15 г тест-культуры M.lysodelkticus в 90 мл буферного раствора с рН 6,2.
Стекла с внесенными в лунки образцами растворов и смесей инкубируют при в течение 2 ч. Учет результатов, про вившихс  на гельбактериэльнсй среде, показал , что опытные образцы, содержащие лизоцим в концентрации 0,25; 0.5 и 1 мкг/мл, не вызывали лизиса микрококка. тогда как соответствующие контрольные растворы его лизировзли в течение 2 ч инкубации , таким образом, изучаема  культура менингококка способна ингибировать лизоцим в максимальной дозе 1.0 мкг/мл, т.е.  вл етс  высокоактивной по антилизоцимному признаку. При определении известным способом штамм инактивировал 15 мкг/мл лизоцима.
П р и м е р 2. Изучали уровень антилизо- цимной активности свежевыделенного из
0 спинномозговой жидкости больного гнойным менингитом штамма манингококка. Готовили 100 млрд взвеси суточной культуры и растворы лизоцима той же концентрации 0,25; 0,5 и 1,0 мкг/мл. Все последующие
5 операции проводили способом, описанным в примере 1. Врем  инкубации взвесей 60 мин.
Опытные образцы взвеси менингококка , содержащие лизоцим в концентрации
0 0.25 и 0,5 мкг/мл, лизиса тест-культуры не вызывали, а с 1.0 мкг/мл дали хорошую видимую зону лизиса уже через 40 мин инкубации в термостате. Изучаемый штамм менингококка  вл етс  среднеактивным по
5 антилизоцимному признаку, так как максимально он способен инактивировать 0,5 мкг/мл лизоцима. При определении АЛА известным способом данный штамм инакти- вировал 6 мкг/мл лизоцима. При изучении
0 предлагаемым способом 28 носоглоточных штаммов микроорганизмов, выделенных от 19 общавшихс  с больным лиц в очаге менингококковой инфекции, было установлено , что 5 культур оказались высокозк5 тивными (инактивировали 1 мкг/мл лизоцима}, 14 - среднеактивными (инактивировали 0,5 мкг/мл фермента), а 9 всвсе не обладали антипиэоцимнои активностью. Результаты при этом были получены в
0 течение 4 ч от начала исследовани  со значительно меньшей затратой рабочего времени и питательных сред.
Сравнительные данные применени  предлагаемого и известного способов сви5 детельстэуют о том, что определение АЛА штаммов менингококка с жидкой среде имеет р д существенных преимуществ (табл.5). По предлагаемому способу используетс  небольшое количество сред, себестои0 мость которых значительно ниже примен емых в известном тесте. В качестве объекта исследовани  вместо растущей культуры примен ют микробную взвесь, что позвол ет стандартизовать методику опре5 делени  антилизоцимной активности штаммов .
Изучение знтилизоцимной активности штаммов менингококка в жидкой среде с использованием раствора лизоцима и чувствительной гельбактериаг.ьной среды позаолчет определить способность штаммов ин- гибировать фермент в услови х, близких к таковым при внутриклеточном пэразитиро- вании микроорганизмов,сократить а 12-15 раз врем  исследовани  и значительно упростить способ определени  АЛА.

Claims (1)

  1. Формула изобретени  Способ определени  антилизоцимной активности штаммов менингококка, предусматривающий приготовление взвеси менингококка в жидкой среде, внесение ее в градиент концентрации лизоцима, инкуои- рование с последующей оценкой антилизо0
    цимной активности по характеру роста тест- культуры Micrococcus Lysodekticus. отличающийс  тем, что. с целью упрощени  способа, повышени  чувствительности и ускорени  определени , концентрацию взвеси менингококка устанавливают равной 5.0-10,0 млрд микробных клеток на 1 мл раствора лизоцима. градиент концентраций фермента готов т из расчета 0,25; 0.5 и 1.0 мкг/мл раздельно, полученную взвесь инкубируют в течение 30-60 мин. а затем внос т ее в лунки гельбэктериальной толиакрила- мидной среды, включающей тест-культуру.
    Таблица 1
    20
    Таблица 2
    Примечание. - - отсутствие лизирующего эффекта. + - наблюдаетс  лизирующий эффект.
    Таблица 3
    Таблица 4
    Таблица 5
SU894733637A 1989-08-29 1989-08-29 Способ определени антилизоцимной активности штаммов менингококка SU1707624A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894733637A SU1707624A1 (ru) 1989-08-29 1989-08-29 Способ определени антилизоцимной активности штаммов менингококка

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894733637A SU1707624A1 (ru) 1989-08-29 1989-08-29 Способ определени антилизоцимной активности штаммов менингококка

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1707624A1 true SU1707624A1 (ru) 1992-01-23

Family

ID=21467965

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894733637A SU1707624A1 (ru) 1989-08-29 1989-08-29 Способ определени антилизоцимной активности штаммов менингококка

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1707624A1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Борисов С.Д. Антилизоцимнэ активность менингококков и ее применение в диагностике менингококковой инфекции. Автореф.канд.мед. Чел бинск, 1988, с.19. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Loomis Jr et al. Glucose-lactose diauxie in Escherichia coli
Hugo et al. A quantitative and qualitative study of the lipolytic activity of single strains of seven bacterial species
Avery et al. The use of the final Hydrogen ion concentration in differentiation of Streptococcus haemolyticus of human and bovine types
Hipp et al. Inhibition of Neisseria gonorrhoeae by a factor produced by Candida albicans
Alexander et al. Mode of action of streptomycin on type b Hemophilus influenzae: II. Nature of resistant variants
US4923801A (en) Compositions and methods for the enrichment and isolation of Campylobacter pylori and related organisms from biological specimens and the environment
Bauer et al. The determination of sulfonamide susceptibility of bacteria
US6228606B1 (en) Culture medium for detecting pathogenic bacteria of the genus Listeria and method for identifying said bacteria
Chang Studies on Entamoeba histolytica: IV. The relation of oxidation-reduction potentials to the growth, encystation and excystation of Entamoeba histolytica in culture
SU1707624A1 (ru) Способ определени антилизоцимной активности штаммов менингококка
Steinberg et al. Temperature-sensitive mutants of Mycoplasma pneumoniae. I. In vitro biologic properties
Humphreys Formation of acrolein from glycerol by B. welchii
King et al. Induction of enterococcal L-forms by the action of lysozyme
Cremers et al. Sym plasmid and chromosomal gene products of Rhizobium trifolii elicit developmental responses on various legume roots
Dietrich et al. Effect of shaking speed on the secretion of enterotoxin B by Staphylococcus aureus
Smith The Leeuwenhoek Lecture, 1991. The influence of the host on microbes that cause disease
Barbaree et al. Tolerance of Legionella species to sodium chloride
RU2707640C1 (ru) Штамм бактерий escherichia coli в качестве контрольного тест-штамма для фенотипических и молекулярных исследований эшерихий серологической группы о144
US3278393A (en) Selective culture medium for microorganisms and use thereof
Pace et al. Measurement of free intracellular calcium levels in epithelial cells as consequence of bacterial invasion
Harinasuta et al. Studies on the growth in vitro of strains of Entamoeba histolytica
Berk Effect of antibacterial agents on the autoplaque phenomenon of Pseudomonas aeruginosa
SU1604846A1 (ru) Штамм бактерий SтRертососсUS FаесIUм, используемый в качестве эталона дл оценки активности микробов-антагонистов менингококка
Nayak et al. A simple alternative method for rapid detection of slime produced by Staphylococcus epidermidis isolates in bacterial keratitis
RU2121506C1 (ru) Способ определения гемолитической активности bacillus anthracis