SU1707499A1 - Способ окрашивани перехватов Ранвье - Google Patents

Способ окрашивани перехватов Ранвье Download PDF

Info

Publication number
SU1707499A1
SU1707499A1 SU894708484A SU4708484A SU1707499A1 SU 1707499 A1 SU1707499 A1 SU 1707499A1 SU 894708484 A SU894708484 A SU 894708484A SU 4708484 A SU4708484 A SU 4708484A SU 1707499 A1 SU1707499 A1 SU 1707499A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
solution
nerve
interceptions
incubated
distilled water
Prior art date
Application number
SU894708484A
Other languages
English (en)
Inventor
Игорь Николаевич Замураев
Original Assignee
Институт Физиологии Им.И.П.Павлова
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Физиологии Им.И.П.Павлова filed Critical Институт Физиологии Им.И.П.Павлова
Priority to SU894708484A priority Critical patent/SU1707499A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1707499A1 publication Critical patent/SU1707499A1/ru

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение отмоетс  к медицине, а именно к нейрогистологии. Цели изобретени  - увеличение количества окрашенных перехватов Ранвье нервных волокон. Цель достигаетс  многоступенчатой обработкой нервных волокон. Вначале их фиксируют 2 ч в 5%-ном глютаровом альдегиде на дистиллированной воде, затем инкубируют 1 ч в 0,01 М растворе хлористого железа (рН 1,5) и 20 мин 81%-ном растворе желтой кров ной соли (рН 2,0). Затем нервные волокна инкубируют 10-20 мин с 3-4%-ном растворе нитрате серебра и после зтого 27-30 мин в 1,5 ±0,5% растворе красной кров ной со ли (рН 2). Затем препараты заключают j глицерин-желатин и изучают под микроскопом.

Description

Изобретение относитс  к медицине, в частности к нейрогистологии.
Цель изобретени  - повышение качества окраски за счет увеличени  количества окрашенных перехватов Ранвье нервных волокон.
Окрашивание по предлагаемому способу включает фиксацию в 5%-ном глутараль- дегиде на дистиллированной врде, инкубацию в течение 1 ч в растворе хлорного железа и затем в растворе ферроцианида кали  с последующей заливкой дл  микроскопического исследовани , дополнительно после двух vKa dhMh.x инкубации препарат инкуоиру 0т в J -ч /о ном рыСтпсрс нитрата серебра в течение 10-20 и 27-30 мин в 1,5 ± 0,5%-ном растворе феррицианида кали , используют глутаральдегид на дистиллированной воде, а заливку осуществл ют в глицерин-желатин.
Пример 1. Кролика после предварительного эфирного наркоза умерщвл ли де- капитацией. После этого в районе подколенной  мки обнажали седалищный нерв и вырезали его часть и вырезали его часть длиной 1 см. Нерв фиксировали 2 ч в 5%-ном глутарэльдегиде на дистиллированной воде. Объем фиксирующей жидкости 40 мл. Затем нерв промывали в 5 порци х дистиллированной воды 4 раза. Потом под микроскопом МССО тонкими иглами удал ли с нерпа эпинесрмй. После удалени  эпинео- ри  основной нервный стеол р сг:л;г т на р д болие тонких нервных пучкиа (илщи- ной 0,5-1 мм, которые выдел ли и далее проводили по растворам отдельно.
С
««I
4
ч. ч
ч
j
Выделенные нервные пучки после этого инкубировали 1 ч в 0,01 М растворе хлорного железа (рН 1,5). рН раствора доводили 0.1 н сол ной кислотой, а затем провер ли по рН- метру. Далее нервы промывали 5 раз по 5 мин в дистиллированной воде. Затем нервные пучки инкубировали 20 мин в 1 %-ном растворе желтой кров ной соли (рН 2). рН раствора доводили как указано. Промывали нервы в 5 порци х дистиллированной воды по 5 мин. После этого инкубировали нервы 20 мин в 3%-ном растворе нитрата серебра. Промывали в 5 порци х по 5 мин дистиллированной воды. Затем инкубировали нервы 30 мин в 1 %-ном растворе красной кров ной соли (рН 2). Промывали нервы в 5 порци х дистиллированной воды по 5 мин. После этого заключали нервные пучки на предметные стекла в глицерин-желатин. Сразу после этого препараты можно изучать под световым микроскопом.
Результаты. У 50 произвольно выбранных волокон на прот жении 880 мкм было обнаружено 29 окрасившихс  перехватов. У 50 волокон, обработанных по способу-прототипу , на прот жении 880 мкм удалось вы вит ь лишь 2 окрашенных перехвата.
Пример 2. Л гушку умерщвл ли декапитацией. После этого вырезали участок седалищного нерва в области бедра длиной 0,5 см. Фиксировали, как и в примере 1. После промывки в дистиллированной воде снимали эпиневральную соединитель- нотканую оболочку. Затем нерв проводили по растворам тем же способом, как и в примере 1. Нервы заливали в глицерин-желатин .
Результаты. В перехватах Ранвье выпал темно-кор1:;невый осадок. У 50 произвольно выбранных волокон на прот жении 889 мкм было обнаружено 48 окрашенных перехватов , а у обработанных по способу-прототипу 6.
Пример 3. Л гушку умерщвл ли декэпитацией. После этого вскрывали cnvi- номозговой канал и выдел ли левый дореальный корешок X пары спиномозгооых нервов. Затем осуществл ли с нервом те же операции, что и в примерах 1 и 2.
Результаты. В толстых нервных пучках м котных афферентных волокон вы вились
перехваты Ранвье и насечки Шмидта-Лан- термана. У 50 произвольно выбранных волокон на рассто нии 880 мкм было обнаружено 36 перехватов Ранвье. У такого же количества волокон на рассто нии 880 мкм из нервных пучков, обработанных по.
способу-прототипу, вы влено 19 окрашенных перехватов, насечки Шмидта-Лантер- мана не вы вились.
Форм, у л а изобретени  Способ окрашивани  перехватов Рэн- вье, включа ющий фиксацию в глутаровом альдегиде, инкубацию в течение 1 ч в растворе хлористого железа и затем в растворе ферроцианидэ капи , отличающийс  тем, что с повышени  качества окраски за счет увеличени  в препарате количества окрашенных перехватов Ранвье, дополнительно провод т инкубацию в 3- 4%-ном растворе нитрата серебра в течение 5 10-20и27-30 мин в 1,5±0,5%-ном растворе .феррицианида кали .

Claims (1)

  1. Форм.ула изобретения
    Способ скрашивания перехватов Ранвье, включа'ющий фиксацию в глутаровом альдегиде, инкубацию в течение 1 ч в растворе хлористого железа и затем в растворе ферроцианида калия. отличающийся тем, что с цел>ю повышения качества окраски за счет увеличения в препарате количества окрашенных перехватов Ранвье, дополнительно проводят инкубацию в 34%-ном растворе нитрата серебра в течение 10~20и27-30 мин в 1,5±0,5%-ном растворе феррицианида калия.
SU894708484A 1989-06-22 1989-06-22 Способ окрашивани перехватов Ранвье SU1707499A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894708484A SU1707499A1 (ru) 1989-06-22 1989-06-22 Способ окрашивани перехватов Ранвье

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894708484A SU1707499A1 (ru) 1989-06-22 1989-06-22 Способ окрашивани перехватов Ранвье

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1707499A1 true SU1707499A1 (ru) 1992-01-23

Family

ID=21455756

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894708484A SU1707499A1 (ru) 1989-06-22 1989-06-22 Способ окрашивани перехватов Ранвье

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1707499A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2475537C2 (ru) * 2008-05-14 2013-02-20 Новадак Текнолоджиз Инк. Способы визуализации и композиции, содержащие флюоресцентные красители, связанные с вирусными компонентами для визуализации нервов

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Quick D.C.. Waxman S.G. Serrocyanide and Inorganic phosphate as cytochemical reactants at peripheral nodes of Rawier. -J. Nenrocy tol.. 1977, v.6, N: 5, p.555-570. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2475537C2 (ru) * 2008-05-14 2013-02-20 Новадак Текнолоджиз Инк. Способы визуализации и композиции, содержащие флюоресцентные красители, связанные с вирусными компонентами для визуализации нервов

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Barral et al. LEISHMANIASIS IN BAHIA, BRAZIL: EVIDENCE THAT LEISHM4 NJ4 4M42 ON ENSIS PRODUCES A WIDE
Wolman Polarized light microscopy as a tool of diagnostic pathology.
WAeSSLE et al. The mosaic of horizontal cells in the macaque monkey retina: with a comment on biplexiform ganglion cells
Maynard Electrophoretic studies of cholinesterases in brain and muscle of the developing chicken
SU1707499A1 (ru) Способ окрашивани перехватов Ранвье
Blakemore et al. The organization and post‐natal development of area 18 of the cat's visual cortex.
Goridis et al. The effect of flash illumination on the endogenous cyclic GMP content of isolated frog retinae
Strausfeld et al. Optic lobe projections of marginal ommatidia in Calliphora erythrocephala specialized for detecting polarized light
Ensink et al. Pitfalls in the assay of lysozyme in human tear fluid
Brodsky et al. The case of the gray optic disc!
King et al. Trichothiodystrophy-neurotrichocutaneous syndrome of Pollitt: a report of two unrelated cases.
CA2371675C (en) Novel uses of antibodies against ache and peptides thereof
Heenen et al. Decreased rate of DNA-chain growth in human basal cell carcinoma
Bayer et al. Systematic differences in time of dopaminergic neuron origin between normal mice and homozygous weaver mutants
Frisancho et al. Taste sensitivity to phenylthiourea (PTC), tongue rolling, and hand clasping among Peruvian and other Native American populations
Bologa-Sandru et al. Oligodendrocytes of jimpy mice express galactosylceramide: an immunofluorescence study on brain sections and dissociated brain cell cultures
Criswell et al. Acetylcholinesterase and choline acetyltransferase localization patterns do correspond in cat and rat retinas
Vita et al. A histochemical study of fibre types in rat extraocular muscles
Dobell Researches on the intestinal protozoa of monkeys and man: XI. The cytology and life-history of Endolimax nana
DAWSON et al. Very large neurons of the inner retina of humans and other mammals
Keilin et al. Direct perception of pigment in the nerve tissue of human retina
Lipscomb et al. A whole-mount cholinesterase technic for study of innervation of the deep structures of the limbs
Brand et al. Pattern of distribution of acetylcholinesterase in the cerebellar cortex of the pond turtle, with emphasis on parallel fibers: A histochemical and biochemical study
Lubahn et al. A rapid silver-stain procedure for use with routine electrophoresis of cerebrospinal fluid on agarose gels.
Parker Methods of estimating the effects of melanophore changes on animal coloration