SU1703689A1 - Strain of fungus penicillium canescens producent of fructodofuranosidase - Google Patents
Strain of fungus penicillium canescens producent of fructodofuranosidase Download PDFInfo
- Publication number
- SU1703689A1 SU1703689A1 SU894763459A SU4763459A SU1703689A1 SU 1703689 A1 SU1703689 A1 SU 1703689A1 SU 894763459 A SU894763459 A SU 894763459A SU 4763459 A SU4763459 A SU 4763459A SU 1703689 A1 SU1703689 A1 SU 1703689A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- strain
- fructofuranosidase
- units
- activity
- penicillium canescens
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к микробиологической промышленности, в частности к получению нового штамма-продуцента /3-фруктофуранозидазы. используемой в пищевой промышленности и сельском хоз йстве . Цель изобретени - получение штамма /3-фруктофуранозидазы с более высокой активностью . Штамм Penicillium canescens ВКПМ F-418 получен путем обработки исходного штамма ультрафиолетом, депонирован в Центральном музее промышленных микроорганизмов ВНИИгенетика. При глубинном культивировании на среде, содержащей соевую муку и минеральные соли, штамм продуцирует/5-фруктофуранозида- зу с активностью 80 ед/мл (72 ч). Активность очищенного фермента 240 ед/мл. Помимо /3-фруктофуранозидазы продуцент синтезирует/3-галактозидазу 20ед./мл бг-галакто- зидазу - 3.5 ед./мл. ксиланазу - 5 ед./мл. (Л СThis invention relates to the microbiological industry, in particular to the preparation of a new producer strain / 3-fructofuranosidase. used in the food industry and agriculture. The purpose of the invention is to obtain a strain / 3-fructofuranosidase with a higher activity. The strain Penicillium canescens VKPM F-418 obtained by treating the original strain with ultraviolet, deposited in the Central Museum of industrial microorganisms VniIgenetika. During deep cultivation on a medium containing soy flour and mineral salts, the strain produces 5-fructofuranosidase with an activity of 80 U / ml (72 hours). The activity of the purified enzyme 240 u / ml In addition to / 3-fructofuranosidase, the producer synthesizes / 20-galactosidase 20 units / ml of bg-galactosidase - 3.5 units / ml. xylanase - 5 units / ml (Ls
Description
Изобретение относитс к ферментной промышленности, в частности к получению нового штамма, продуцента фермента ft- фруктофуранозидазы. используемой в пищевой промышленности и сельском хоз йстве .The invention relates to the enzyme industry, in particular to the preparation of a new strain, the producer of the enzyme ft-fructofuranosidase. used in the food industry and agriculture.
Цель изобретени - получение штамма с более высокой активностью/ -фруктофура- нозидазы.The purpose of the invention is to obtain a strain with a higher activity of / -fructofuranosidase.
Дл получени высокоактивного штамма был использован штамм Penicillium canescens Sopp. 20171 (с активностью 7.0 ед/мл), который обработан ультрафиолетовыми лучами в дозе 200 Дж/м .To obtain a highly active strain, the strain Penicillium canescens Sopp was used. 20171 (with an activity of 7.0 units / ml), which is treated with ultraviolet rays at a dose of 200 J / m.
Штамм депонирован в Центральном музее промышленных микроорганизмов ВНИИгенетика. коллекционный номер ВКПМ F-418.The strain deposited in the Central museum of industrial microorganisms VNIIgenetika. collection number VKPM F-418.
Морфологические признаки. Штамм атоксичен, быстрорастущий, характеризуетс умеренным спороношен.ием. Образование конидий начинаетс на один деньMorphological signs. The strain is toxic, fast-growing, characterized by moderate spore-carrying. Conidia formation begins one day.
позже, чем в исходной культуре. Конидии 2.2-2.5 мкм, йцевидные, потом шарог.ид- ные. шероховатые, в цепочках соедин ющиес в колонке, но потом более или менее растопыренные при старении. Колом.-.и на агаризованном сусле, агаризованной среде Чапека, агаризованной среде с сахарозой пушистые, состо щие из плотного баз.чль- ного войлочного и рыхлого сплетени иоз- душного мицели со слабо выраженной радиальнобороздчатостью с обильным спо- роношением. превосход щим исходную культуру по урожайности спор на 10-15%. Колонии с растущим краем 2-3 мм ширины.later than in the original culture. Conidia 2.2-2.5 microns, ovoid, then sharog.idnye. rough, chained in a column, but then more or less splayed during aging. Colom .- and on agar wort, agar medium of čapek, agar medium with sucrose, fluffy, consisting of dense basefelt felting and loose wreath of the airway mycelium with poorly expressed radial subcutaneously with abundant spraying. superior to the original crop by yield of spores by 10–15%. Colonies with a growing margin of 2-3 mm width.
VIVI
ОABOUT
со оwith about
0000
оabout
белые до бледно-серого цвета, затем при старении дымчато-серые. Конидиеносцы отход т от субстрата до 350-500 х 3-3,5 мкм или как короткие веточки воздушных спор с разнообразно расположенными растопыренными 1,2-3 мутовчатыми структурами с метул ми обычно около 10-20 х 2, мкм, несущими стеригмы 8 х. 2,3 мкм с четкой конидиеносной шейкой, узкой, но сравнительно короткой.white to pale gray, then smoky gray with aging. Conidiophores deviate from the substrate to 350–500 x 3–3.5 µm or as short sprigs of air spores with variously arranged splayed 1.2–3 whorled structures with swells usually around 10–20 x 2 µm, carrying sterigms 8 x . 2.3 microns with a clear conidiophen neck, narrow, but relatively short.
Культуральные признаки. На агаризо- ванных искусственных средах (сусло-агар, картофельно-глюкозный агар, картофельный агар) и синтетических агаризованных средах (средах Чапека, Сабуро, Ролена-То- ма, агаризованной среде с сахарозой) штамм растет хорошо.Cultural features. On agarized artificial media (wort agar, potato-glucose agar, potato agar) and synthetic agar media (Czapek, Saburo, Rolen-Tom, and agar medium with sucrose), the strain grows well.
Линейный рост колоний штамма на агаризованных средах по дн м: сусло-агаровой среде 5-й день 35-48 мм: 10-й день - до 85 мм; среда Чапека - 5-й день 30 мм: 10-й день 40 мм; агаризованна среда с лактозой - 5-й день 28-40 мм; 10-й день до 70 мм.Linear growth of strain colonies on agarized media at the bottom of the day: wort agar medium 5th day 35-48 mm: 10th day - up to 85 mm; Wednesday of čapek - 5th day 30 mm: 10th day 40 mm; Lactose agar medium - 5th day 28-40 mm; 10th day to 70 mm.
На отруб х в услови х твердо-фазной ферментации штамм растет хорошо.For cuts under conditions of solid phase fermentation, the strain grows well.
Отношение к углеродному питанию. Хо- рои.. усваивает моносахариды: глюкозу, арабинозу, сахароспирты: сорбит, манит, дульцит, из дисахаридов: лактозу, сахарозу, мальтозу, а также крахмал и инулин.Attitude to carbon nutrition. Good by itself ... assimilates monosaccharides: glucose, arabinose, sugar alcohols: sorbitol, lures, dulcite, from disaccharides: lactose, sucrose, maltose, as well as starch and inulin.
Отношение к азотному питанию: усваивает нитратный азот, лучше аммонийный. Из органических источников азота ассимилирует пептон, мочевину, дрожжевой авто- лизат, кукурузный экстракт.Attitude towards nitrogen nutrition: assimilates nitrate nitrogen, preferably ammonium. From organic nitrogen sources, it assimilates peptone, urea, yeast autosate, corn extract.
Отношение к кислороду: облигатный аэроб.Attitude to oxygen: obligate aerobic.
Отношение к температуре: мезофил, оптимальна температура дл роста и биосинтетической активности 26-27°С.Relation to temperature: mesophilic, optimal temperature for growth and biosynthetic activity is 26-27 ° C.
Отношение к кислотности питательной среды: растет в широких пределах рН от 2,0-9,0.Relation to the acidity of the nutrient medium: grows over a wide range of pH from 2.0-9.0.
Дл размножени штамма примен ли модифицированную среду Чапека с сахарозой следующего состава, %: сахароза 3,0; ЫЩМОз 0,2; КН2Р04 0,1, MgS04 0,05; KCI 0,05; кукурузный экстракт 0,05, агар 2, исходное рН 5,8-6,0.For breeding the strain, a modified Czapek medium with sucrose of the following composition was used,%: sucrose 3.0; SIZE 0.2; KH2P04 0.1, MgS04 0.05; KCI 0.05; corn extract 0.05, agar 2, initial pH 5.8-6.0.
Питательной средой дл ферментации служит среда следующего состава, %: соева мука 3,0; Na2HP04 12H20 15; (NH4)2S04 0,2; KCI 0,05, MgS04 0.015, исходное рН 4,1- 4,2.The nutrient medium for fermentation is the medium of the following composition,%: Soya flour 3.0; Na2HP04 12H20 15; (NH4) 2S04 0.2; KCI 0.05, MgS04 0.015, initial pH 4.1-4.2.
Проверкой, проведенной в течение четырех лет, установлено, что при хранении вAn inspection carried out over a period of four years has established that when stored in
пересевах уровень ферментативной активности Penicillium canescens АМЭ-85 не снижаетс .Seeding the level of enzyme activity of Penicillium canescens AME-85 is not reduced.
Продуцент образует богатую белком би- омассу (до 30% от массы сухой биомассы).The producer forms a protein rich biomass (up to 30% by weight of dry biomass).
Штамм Penicillium canescens АМЭ-85 поддерживают на агаризованной среде с сахарозой, мас.%: сахароза 3,0; МЩМОз 0,2, КН2Р04 0,1; KCI 0,1; MgS04 0,05, кукурузный экстракт 0,05; агар 2. Исходное рН среды 6,0.The strain Penicillium canescens AME-85 support on agar medium with sucrose, wt.%: Sucrose 3.0; MSMD 0.2, KH2P04 0.1; KCI 0.1; MgS04 0.05, corn extract 0.05; agar 2. Baseline pH 6.0.
Глубинное культивирование гриба провод т на жидкой питательной среде следующего состава, мас.%: соева мука 3,0:Deep cultivation of the fungus is carried out on a liquid nutrient medium of the following composition, wt.%: Soybean flour 3.0:
Na2HP04 12H20 1,5; ( 0,2; KCI 0,05; MgS04 0,015; исходное рН 4,2.Na2HP04 12H20 1.5; (0.2; KCl 0.05; MgSO4 0.015; initial pH 4.2.
Культивирование провод т в колбах емкостью 750 мл на термостатированной качалке , делающей 220 об/мин (уровеньThe cultivation is carried out in 750 ml flasks with a thermostatic rocking chair, which makes 220 rpm (level
аэрации 1,4 02/лч) при 30°С в течение 72 ч. Объем питательной среды в колбах составл ет 100 мл. Засев питательной ср Эды производ т 2%-ной суспензией конидий поверхностной культуры гриба, выращенной вaeration 1.4 02 / lh) at 30 ° C for 72 hours. The volume of the nutrient medium in the flasks is 100 ml. Sowing the nutrient medium Edy produced 2% suspension of conidia of the surface culture of the fungus grown in
пробирках на скошенном сахарозном агаре в течение 12 дней при 28°С.test tubes on beveled sucrose agar for 12 days at 28 ° C.
Биомассу отдел ют фильтрованием и в фильтрате определ ют активность / -фрук- тофуранозидазы по методу Самоджи-Нельсон . Реакционную смесь, состо щую изThe biomass is separated by filtration and the activity of the / -fructofuranosidase is determined in the filtrate using the Samoji-Nelson method. The reaction mixture consisting of
0,7 мл субстрата. 0,5 мл 0,2 М ацетатного0.7 ml of substrate. 0.5 ml 0.2 M acetate
буфера рН 4,5, 0,3 мл раствора фермента,pH 4.5 buffer, 0.3 ml enzyme solution,
инкубируют при 50°С в течение 15 мин,incubated at 50 ° C for 15 min,
затем добавл ют 1 мл реактива Самоджи иthen 1 ml of Samoji's reagent is added and
кип т т на вод ной бане в течение 20 мин. После охлаждени добавл ют 1 мл реактива Нельсона, довод т водой до 5 мл и фотомет- рируют при 590 нм. Активность /3 -фруктофу- ранозидазы составл ет 80 ед./мл (известнойboil in a water bath for 20 minutes. After cooling, 1 ml of Nelson's reagent is added, made up to 5 ml with water and photometrized at 590 nm. The activity of α-3-fructofuranosidase is 80 units / ml (known
57 ед./мл).57 units / ml).
В фильтрате кроме активности/9-фрук- тофуранозидазы содержатс а-галактозида- за (3,5 ед./мл),/ -галактозидаза (20 ед./мл) и ксиланаза (5 ед./мл).In the filtrate, besides the activity of (9-fructofuranosidase), a-galactosidase (3.5 units / ml), / -galactosidase (20 units / ml) and xylanase (5 units / ml) are contained.
Полученный фильтрат подвергают разделению и выдел ют/ -фруктофуранозида- зу как отдельную фракцию, в которой определ ют активность.The filtrate is separated and the i-fructofuranosidase is isolated as a separate fraction in which the activity is determined.
Активность очищенной / -фруктофуранозидазы составл ет 240 ед./мл.The activity of the purified α-fructofuranosidase is 240 units / ml.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894763459A SU1703689A1 (en) | 1989-11-28 | 1989-11-28 | Strain of fungus penicillium canescens producent of fructodofuranosidase |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894763459A SU1703689A1 (en) | 1989-11-28 | 1989-11-28 | Strain of fungus penicillium canescens producent of fructodofuranosidase |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1703689A1 true SU1703689A1 (en) | 1992-01-07 |
Family
ID=21481761
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU894763459A SU1703689A1 (en) | 1989-11-28 | 1989-11-28 | Strain of fungus penicillium canescens producent of fructodofuranosidase |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1703689A1 (en) |
-
1989
- 1989-11-28 SU SU894763459A patent/SU1703689A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР № 1221900. кл. С 12 N 9/26, 1984. Алексан н Е.Р. Прикладна биохими и микробиологи . 1986. т. XXII. вып. 2. с. 163- 176. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US3882635A (en) | Method of producing cells of algae | |
JPS60244295A (en) | Production of (+)- trans-cyclopropane carboxylic acid | |
EP0547898A2 (en) | Microbial process for the production of trans-4-hydroxy-L-proline | |
SU1703689A1 (en) | Strain of fungus penicillium canescens producent of fructodofuranosidase | |
CA2025678C (en) | Natural delta-lactones and process of the production thereof | |
US3663373A (en) | Process for the preparation of iodinin | |
SU1509402A1 (en) | Mushroom strain penicillium canescens - producer of beta-galactosidase | |
SU1158579A1 (en) | Aspergillus oryzae hpb-169 microscopic fungus strain-producer of alpha-amylase | |
SU1430402A1 (en) | Strain of trichosporon cutaneum yeast as source of protein biomass and method of producing same | |
SU1643608A1 (en) | Strain of fungus allescheria terrestris producer of cellulases | |
SU1717632A1 (en) | Strain of fungus penicillium canescens - a producer of @@@-galactosidase | |
RU2128221C1 (en) | Strain arthrobacter species for petroleum and petroleum products decomposition | |
RU2126831C1 (en) | Strain of fungus pleurotus ostreatus - producer of protein biomass | |
KR102197825B1 (en) | Method for producing and purification of gramicidin S | |
NZ221455A (en) | Microbial production of cellulose | |
RU2092557C1 (en) | Method of preparing the sowing material for citric acid production | |
SU1641887A1 (en) | Strain of fungus aspergillus oryzae (ahlburg) cohn producing xylanase | |
Yamasaki et al. | Studies on Pectic Enzymes of Microorganisms: Part II. Production of Endo-Polygalacturonase with Aspergillus saitoi | |
SU1756355A1 (en) | Method of dextranase preparation | |
KR19990062711A (en) | Erythritol production method | |
SU1705338A1 (en) | Strain of yeast candida requinii - is a produced of alcoholdehydrogenase | |
RU2077573C1 (en) | Strain of yeast hansenula species - a producer of food biomass | |
SU958498A1 (en) | Process for producing alpha-mannase | |
SU1620480A1 (en) | Strain of flavobacterium aguatile used for obtaining living feed for growing small fish | |
SU675986A1 (en) | Starhylococcus saprophyticush 1 strain as urease producent |