SU1672365A1 - Method of exotoxin determination - Google Patents
Method of exotoxin determination Download PDFInfo
- Publication number
- SU1672365A1 SU1672365A1 SU884493668A SU4493668A SU1672365A1 SU 1672365 A1 SU1672365 A1 SU 1672365A1 SU 884493668 A SU884493668 A SU 884493668A SU 4493668 A SU4493668 A SU 4493668A SU 1672365 A1 SU1672365 A1 SU 1672365A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- exotoxin
- volume
- eluate
- sample
- preparation
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биотехнологии и может быть использовано дл определени количества β экзотоксина в энтомопатогенных препаратах. Целью изобретени вл етс упрощение способа и повышение достоверности результатов определени β - экзотоксина. В суспензию препарата, содержащего β - экзотоксин, или в культуральную жидкость внос т трилон Б, затем центрифугируют полученный супернатант, нанос т полосой на пластинку силуфола УФ254, хроматографируют в системе пропанол - аммиак - вода, элюируют β - экзотоксин с хроматограммы, фильтруют элюат через мембранный фильтр дл удалени частиц силуфола, определ ют оптическую плотность отфильтрованного элюата при длинах волн 260, 230 нм, вычисл ют концентрации β - экзотоксина по формуле Cэт (мас.%) = 6D260 - D230 / 5,75 . V0 . V2 / M0 . V1 . 16,6, где V0 - объем мл, в котором суспендируют навеску препаратаThis invention relates to biotechnology and can be used to determine the amount of β exotoxin in entomopathogenic preparations. The aim of the invention is to simplify the method and increase the reliability of the results of the determination of β-exotoxin. Trilon B is added to the suspension of the β-exotoxin preparation or the culture fluid, then the supernatant obtained is centrifuged, streaked onto a Silufol UV 254 plate, chromatographed over the propanol-ammonia-water system, β-Exotoxin is chromatographed, the eluate is filtered through a membrane filter to remove particles of Silufol, the optical density of the filtered eluate is determined at wavelengths of 260, 230 nm, the concentrations of β - exotoxin are calculated according to the formula C at (wt.%) = 6 D 260 - D 230 / 5.75 . V 0 . V 2 / M 0 . V 1 . 16.6, where V 0 is the volume of ml in which the sample of the preparation is suspended
M0 - навеска препарата (мг), V1 - объем раствора, наносимого на хроматограммуM 0 - the sample of the drug (mg), V 1 - the volume of solution applied to the chromatogram
V2 - объем раствора, используемого дл спектрофотометрировани . В случае исследовани культуральной жидкости V0 и M0 = 1, V1 - объем культуральной жидкости, наносимой на хроматограмму. Отклонение от средней величины не превышает 2 - 3%. 5 табл.V 2 is the volume of solution used for spectrophotometry. In the case of studying the culture liquid, V 0 and M 0 = 1, V 1 is the volume of the culture liquid applied to the chromatogram. The deviation from the average value does not exceed 2 - 3%. 5 tab.
Description
Изобретение относитс к биотехнологии и может быть использовано дл определени количества экзотоксина в энтомопатогенных препаратах.This invention relates to biotechnology and can be used to determine the amount of exotoxin in entomopathogenic preparations.
Цель изобретени - упрощение способа и повышение достоверности результатов определени экзотоксина.The purpose of the invention is to simplify the method and increase the reliability of the results of exotoxin determination.
Способ определени / -экзотоксина заключаетс в следующем.The method for determining / -exotoxin is as follows.
Используемый энтомопатогенный препарат раствор ют в насыщенном водном растворе трилона Б. Суспензию центрифугируют , удал ют нерастворившиес вещества, / -экзотоксин, содержащийс в супернатанте, очищают методом тонкослойной хроматографии, полученный после хро- мотографии элюат фильтруют через мембранный фильтр с размером пор 0,1 - 0,2 мкм, измер ют оптическую плотность фильтрата при длинах волн 260 и 230 нм и определ ют количество/9-экзотоксина при значении коэффициента расчетным путем по формулеThe entomopathogenic preparation used is dissolved in a saturated aqueous solution of Trilon B. The suspension is centrifuged, the undissolved substances are removed, the β-exotoxin contained in the supernatant is purified by thin layer chromatography, and the eluate obtained after chromatography is filtered through a 0.1-p membrane filter. 0.2 µm, the optical density of the filtrate is measured at wavelengths of 260 and 230 nm, and the amount of / 9-exotoxin is determined when the coefficient value is calculated by the formula
оabout
4 N3 CJ О СЛ4 N3 CJ O SL
СЭт Set
6 D260 - D230Vo V2 6 D260 - D230Vo V2
-Ч.М . 01 - H.M. 01
5.75m0Vi 16.6 мас 5.75m0Vi 16.6 wt
где V0 - объем, в котором суспендируют навеску препарата, мл;where V0 is the volume in which the sample of the preparation is suspended, ml;
т0 - навеска препарата, мг;t0 - drug weight, mg;
Vi - обьем раствора, наносимого на хроматограмму , мл;Vi is the volume of the solution applied to the chromatogram, ml;
Va - объем раствора, используемого дл спектрофотометрировани , мл, дл определени СЭт (мг/мл) в культуральной жидкости в формуле полагают m0 V0 1.Va is the volume of the solution used for spectrophotometry, ml, to determine the EC (mg / ml) in the culture fluid in the formula, m0 V0 1 is assumed.
16,6 - поглощение чистого/3 -экзотоксина при концентрации 1 мг/мл;16.6 - the absorption of pure / 3-exotoxin at a concentration of 1 mg / ml;
D2GO, D230 - поглощение элюата при соответствующих длинах волн.D2GO, D230 - absorption of the eluate at the corresponding wavelengths.
Добавление трилона Б(динатриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты) крайне важно дл препаратов, которые получены на питательных средах, содержащих ионы двухвалентных металлов (хлористый кальций, хлористый или серно-кислый магний и др.).The addition of Trilon B (ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt) is extremely important for preparations obtained on nutrient media containing divalent metal ions (calcium chloride, magnesium chloride or sulfuric acid, etc.).
Экзотоксин обладает способностью образовывать слаборастворимые комплексы с ионами двухвалентных металлов и поэтому при наличии в питательной среде двухвалентных ионов часть/ -экзотоксина св зана и не отдел етс при выделении традиционными методами. Это приводит к заметно заниженым результатам определени /5 -экзотоксина как в препарате, так и в культуральной жидкости. Например, в препаратах , полученных на поликомпонентной среде, содержащей 0,2% CaCl2, 20 - 25% /3-экзотоксина в св занном состо нии, а на ацетатной среде, содержащей 3-4% ацетата кальци , св зано 60 - 70% ft -экзотоксина . Добавление избытка трилона Б, который св зывает двухвалентные ионы, приводит к освобождению и растворению /3-экзотоксина.Exotoxin has the ability to form poorly soluble complexes with divalent metal ions and therefore, in the presence of bivalent ions in the nutrient medium, a part of the / -exotoxin is bound and is not separated when isolated by conventional methods. This leads to significantly underestimated results of the determination of β-exotoxin both in the preparation and in the culture fluid. For example, in preparations prepared on a multicomponent medium containing 0.2% CaCl2, 20-25% / 3-exotoxin in the bound state, and 60% to 70% bound on an acetate medium containing 3-4% calcium acetate. ft-exotoxin. Adding an excess of Trilon B, which binds divalent ions, results in the release and dissolution of β-exotoxin.
В табл.1 показаны результаты исследований на примере чистого (чистота 99,5%) / -экзотоксина.Table 1 shows the results of studies on the example of pure (purity 99.5%) / -exotoxin.
Пример1.К2мл водного раствора Р -экзотоксина в концентрации 6 мл/мл (0,6%) добавл ют 20 мкл 5%-ного водного раствора CaClz. Дл ускорени процесса осаждени добавл ют несколько капель 25%-ного водного раствора аммиака, довод рН до 8,0 (об осаждении суд т по помутнению раствора). К 2 мл суспензии, содержащей нерастворимый комплекс /3 -экзотоксина с кальцием, а также свободный экзотоксин, добавл ют 6 мл насыщенного раствора трилона Б или 6 мл дистиллированной воды (контроль) и фильтруют через фильтр Владипор Мг 1 или Nfe 2 (размер пор 0,1 - 0,2 мкм). То же делают при отсутствии хлористого кальци . В фильтратах определ ют значение оптической плотности при длине волны 260 нм.Example 1. To a 2 ml aqueous solution of P-exotoxin at a concentration of 6 ml / ml (0.6%), 20 µl of a 5% aqueous solution of CaClz is added. To speed up the precipitation process, a few drops of a 25% aqueous ammonia solution are added, bringing the pH to 8.0 (precipitation is judged by cloudiness of the solution). To 2 ml of the suspension containing the insoluble complex of / 3-exotoxin with calcium, as well as free exotoxin, add 6 ml of a saturated solution of trilon B or 6 ml of distilled water (control) and filter through a Vladipor Mg 1 filter or Nfe 2 (pore size 0 , 1 - 0.2 microns). The same is done in the absence of calcium chloride. In the filtrates, the value of optical density at a wavelength of 260 nm is determined.
Как следует из табл.1, добавление трилона Б не сказываетс на поглощении/ -экзотоксина . При добавлении СаС12 примерно 33% /3-экзотоксина осаждаетс , что приводит к снижению оптической плотности. При добавлении же трилона Б результат практически совпадает с величинами, полученными при растворении чистого /J-экзотоксинаAs follows from Table 1, the addition of Trilon B does not affect the absorption of / -exotoxin. When CaC12 is added, about 33% / 3-exotoxin precipitates, resulting in a decrease in optical density. When Trilon B is added, the result almost coincides with the values obtained by dissolving pure / J-exotoxin
в воде.in water.
При хроматографии 100 мкл образца нанос т полосой на пластину силуфола УФ254 размером 20 х 20 мл. Количество / -экзотоксина, наносимого на пластинку,In chromatography, 100 µl of the sample was applied in a strip to a 20 x 20 ml Silufol UV 254 plate. The amount of / -exotoxin applied to the plate,
должно быть таковым, чтобы после элюации обеспечивать поглощение выше порога чувствительности используемого спектрофотометра .should be such that, after elution, to ensure absorption above the sensitivity threshold of the spectrophotometer used.
Фильтрование элюата провод т сFiltration of the eluate is carried out with
целью удалени частиц силикагел , вызывающих светорассе ние образцов, отражающеес на точности определени оптической плотности. Концентрацию /J -экзотоксина в препарате определ ют по формуле, где первый сомножитель (в скобках) дает истинное поглощение ft -экзотоксина, вычита вклад примесей, присутствующих в препаратах:the purpose of removing silica gel particles that cause light scattering of samples, reflecting on the accuracy of optical density determination. The concentration of / J-exotoxin in the preparation is determined by the formula, where the first factor (in parentheses) gives the true absorption of ft-exotoxin, subtracting the contribution of impurities present in the preparations:
2525
г 6 D260 - D230 V1 V2 эт5,75 mo V 16.6g 6 D260 - D230 V1 V2 et5,75 mo V 16.6
0,84/6D260-D230, мае. % , 0.84 / 6D260-D230, May. %
где V0 - обьем раствора трилона Б, в кото- ром суспендируют навеску препарата, мл; гл0 - навеска препарата, мг; Vi - обьем раствора, наносимого на хро- матограмму, мл;where V0 is the volume of the solution of Trilon B in which the sample of the preparation is suspended, ml; gl0 - drug weight, mg; Vi is the volume of the solution applied to the chromatogram, ml;
V2 - обьем спектрофотометрируемого раствора, мл;V2 - volume of the spectrophotometric solution, ml;
16,6 - поглощение чистого/3 -экзотоксина при концентрации 1 мг/мл при 260 нм.16.6 - the absorption of pure / 3-exotoxin at a concentration of 1 mg / ml at 260 nm.
Дл определени СЭт. мг/мл, в культуральной жидкости m0 - V0 1. Определение точности метода производитс по контрольным опытам с применением высокоочищенного /3-экзотоксина (чистота 96 - 98%). Затем составл ют пробы с заранее известным содержанием / -экзо- токсина (в качестве наполнител , в частности , используют препарат лепидоцид, не содержащий / -экзотоксина).To determine the SET. mg / ml, in the culture fluid m0 - V0 1. The determination of the accuracy of the method is carried out by control experiments using highly purified / 3-exotoxin (purity 96 - 98%). Then samples are prepared with the previously known content of / -exotoxin (in particular, the preparation lepidocide, which does not contain / -exotoxin, is used as a filler.
Результаты представлены в табл.2. Статистический анализ приведенных зависимостей показал, что точность предлагаемого метода выше, чем ±3%.The results are presented in table 2. Statistical analysis of these dependencies showed that the accuracy of the proposed method is higher than ± 3%.
П р и м е р 2. Исследуемый препарат (0.5 г) суспендируют в 8 мл насыщенного водного раствора трилона Б. Суспензию центрифугируют при 8000 об/мин в течение 10 мин, Супернатант (100 мкл) микрошприцом нанос т полосой на пластину силуфола УФ254 20 х 20. с кра нанос т свидетель - чистый/9 -экзотоксин. Пластину хроматографируют в системе пропанол 25% - аммиак - вода ( 10:2:5). Положение разделенного вещества определ ют в УФ-свете. Адсорбент перенос т в бюкс дл элюировани с помощью 5 мл 0,01 М раствора аммиака. элюат фильтруют через мембранный фильтр Владипор (0,1 - 0,2 мкм) дл удалени частиц силуфола и измер ют оптическую плотность при длинах волн 260 и230 нм. Концентрацию/ -экзотоксина определ ют по указанной формуле.PRI mme R 2. The test preparation (0.5 g) is suspended in 8 ml of a saturated aqueous solution of trylon B. The suspension is centrifuged at 8000 rpm for 10 minutes. The supernatant (100 µl) is applied by microspray to a UV 254 force plate. x 20. on the edge of the witness is applied - pure / 9-exotoxin. The plate is chromatographed in the propanol 25% - ammonia - water system (10: 2: 5). The position of the separated substance is determined in UV light. The adsorbent is transferred to a tube for elution with 5 ml of 0.01 M ammonia solution. The eluate is filtered through a Vladipor membrane filter (0.1 - 0.2 µm) to remove the particles of Silufol, and the optical density is measured at wavelengths of 260 and 230 nm. The concentration of β-exotoxin is determined by the indicated formula.
Результаты представлены в табл.3 и 4.The results are presented in table 3 and 4.
Пример 3. В культуральную жидкость (5мл), содержащую ft -экзотоксин, добавл ют 20 мг трилона Б, центрифугируют при 8000 об/мин в течение 5 мин, ЮОмкл супер- натанта нанос т полосой на пластину (20 х 20) силуфола УФ254. Далее по примеру 2. Концентрацию/ -экзотоксина определ ют по формуле приведенной в примере 1, полага m0 V0 1.Example 3. In the culture fluid (5 ml) containing ft-exotoxin, 20 mg of Trilon B is added, centrifuged at 8000 rpm for 5 minutes, and 10 μm of the supernatant are applied in a strip on a plate (20 x 20) of UV 254 forcefol. Further, according to Example 2. The concentration of β-exotoxin is determined by the formula given in Example 1, assuming m0 V0 1.
Результаты представлены в табл.5.The results are presented in table.5.
Предлагаемый способ прост, имеет чувствительность , позвол ющую определ ть концентрацию ft -экзотоксина во всех про- мышленных препаратах и в культуральной жидкости на разных стади х производства препаратов, а также при их хранении. Способ не требует дефицитного оборудовани и реактивов, анализ может быть проведен в течение 30 мин, что позвол ет его отнести к экспресс-методам. Способ может быть полезен в научно-исследовательских и заводских лаборатори х как альтернатива длительным биоиспытани м и используемым полуколичест- венным методам определени ft -экзотоксина.The proposed method is simple, has a sensitivity that allows determining the concentration of ft-exotoxin in all industrial preparations and in the culture fluid at different stages of production of the preparations, as well as during their storage. The method does not require scarce equipment and reagents, the analysis can be carried out within 30 minutes, which makes it possible to attribute it to express methods. The method can be useful in research and production laboratories as an alternative to long-term bio-testing and semi-quantitative methods used for determining ft-exotoxin.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884493668A SU1672365A1 (en) | 1988-10-13 | 1988-10-13 | Method of exotoxin determination |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884493668A SU1672365A1 (en) | 1988-10-13 | 1988-10-13 | Method of exotoxin determination |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1672365A1 true SU1672365A1 (en) | 1991-08-23 |
Family
ID=21403973
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU884493668A SU1672365A1 (en) | 1988-10-13 | 1988-10-13 | Method of exotoxin determination |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1672365A1 (en) |
-
1988
- 1988-10-13 SU SU884493668A patent/SU1672365A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР N 1359744, кл. G 01 N 33/50, 1987. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Terayama | Method of colloid titration (a new titration between polymer ions) | |
DE69329280T2 (en) | TEST APPARATUS AND METHOD FOR CARRYING OUT BLOOD COagulation TESTS | |
EP0571539A4 (en) | Simple test for detecting carcinoembryonic antigen | |
US5393673A (en) | Method for particulate reagent sample treatment | |
US4939096A (en) | Method and apparatus for assaying whole blood | |
SU1672365A1 (en) | Method of exotoxin determination | |
RU2374639C1 (en) | Method of detecting iron (ii) | |
SUTOR et al. | Urinary inhibitors of the formation of calcium oxalate | |
Hutchins et al. | Determination of ampicillin in serum by using simple ultrafiltration technique and liquid chromatographic analysis | |
US3350174A (en) | Process of determining hemoglobin separated from peroxidase inhibitors in urine | |
CA1268705A (en) | Digoxin assay | |
JP2766869B2 (en) | Determination of lower carboxylic acids in body fluid materials | |
RU2071050C1 (en) | Method of determining heavy metals in water | |
Clegg et al. | [46] Screening procedures for quantitative abnormalities in hemoglobin synthesis | |
SU960621A1 (en) | Choride cotarnin determination method | |
Sisk et al. | Factors influencing the solubility of relatively insoluble salts in urine | |
SU1051413A1 (en) | Process for determining rutin | |
Roboz et al. | Polyol concentrations in serum during hemodialysis | |
SU794444A1 (en) | Method of separative determination of 2-nitrophenol and 3-nitrophenol in water | |
JP2589079B2 (en) | Method for producing purified guaiac fat | |
SU1605190A1 (en) | Method of determining tellurium | |
SU1561034A1 (en) | Method of determining sensitivity of membranes of erythrocytes to free-radical oxidation of lipids | |
SU1719974A1 (en) | Method of determination of sodium thiopental in blood | |
SU1762232A1 (en) | Method for determining toxicity of water | |
SU1539616A1 (en) | Method of determining iron in deionized water |