SU1669918A1 - Method of sorbent preparation for affinity chromatography - Google Patents
Method of sorbent preparation for affinity chromatography Download PDFInfo
- Publication number
- SU1669918A1 SU1669918A1 SU894689702A SU4689702A SU1669918A1 SU 1669918 A1 SU1669918 A1 SU 1669918A1 SU 894689702 A SU894689702 A SU 894689702A SU 4689702 A SU4689702 A SU 4689702A SU 1669918 A1 SU1669918 A1 SU 1669918A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- solution
- sorbent
- cellulose
- sodium borohydride
- affinity chromatography
- Prior art date
Links
Landscapes
- Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к получению производных целлюлозы, которые могут быть использованы в качестве сорбентов дл аффинной хроматографии и биотехнологии. Изобретение позвол ет повысить механическую прочность сорбентов за счет того, что целлюлозу осаждают из эмульсии 1%-ного медно-аммиачного раствора целлюлозы в смеси хлороформа и бензола при их объемном соотношении соответственно 1:9, содержащей 0,13 - 0,26 мас.% полиоксиэтиленсорбитанмоноолеата, раствором уксусной кислоты в ацетоне. Выделенный продукт обрабатывают 1,6%-ным раствором боргидрида натри в пиридине, в течение 4 - 8 ч с последующей обработкой водным щелочным раствором, содержащим 0,01 - 0,05 мас.% эпихлоргидрина и 0,01 - 0,04 мас.% боргидрида натри , при нагревании. Затем продукт активируют водным раствором перйодата натри и конъюгируют с белком. 1 табл.This invention relates to the production of cellulose derivatives that can be used as sorbents for affinity chromatography and biotechnology. The invention makes it possible to increase the mechanical strength of sorbents due to the fact that cellulose is precipitated from an emulsion of a 1% copper – ammonium solution of cellulose in a mixture of chloroform and benzene at their volume ratio of 1: 9, respectively, containing 0.13 - 0.26% polyoxyethylene sorbitan monooleate, acetic acid solution in acetone. The isolated product is treated with a 1.6% solution of sodium borohydride in pyridine for 4 to 8 hours, followed by treatment with an aqueous alkaline solution containing 0.01-0.05% by weight of epichlorohydrin and 0.01-0.04%. % sodium borohydride when heated. The product is then activated with an aqueous solution of sodium periodate and conjugated to the protein. 1 tab.
Description
Изобретение относитс к получению производных целлюлозы, которые могут быть использованы в качестве сорбентов дл аффинной хроматографии, используемых в биотехнологии .This invention relates to the production of cellulose derivatives that can be used as sorbents for affinity chromatography used in biotechnology.
Цель изобретени - повышение механической прочности сорбента.The purpose of the invention is to increase the mechanical strength of the sorbent.
П р и ме р 1.4,1 гсвежеприготовленного Си(ОН)2 раствор ют в 50 мл 25%-ного NHijOH. раствор добавл ют к 5 г целлюлозы из линта хлопчатника. Через 20 ч объем смеси довод т тем же раствором аммиака до 500 мл. Раствор осветл ют центрифугированием в течение 5 мин при 4000 об/мин, 50 мл полученного медно-аммиачного раствора помещают в сосуд емкостью 500 мл, куда налито 200 мл смеси хлороформ:бензол 1:9, содержащей 0,26 мзс.% (0,6 мл с ,08Example 1.4.1 of freshly prepared Cu (OH) 2 is dissolved in 50 ml of 25% NHijOH. the solution is added to 5 g of cotton lint cellulose. After 20 hours, the volume of the mixture was adjusted to 500 ml with the same ammonia solution. The solution was clarified by centrifuging for 5 minutes at 4000 rpm, 50 ml of the obtained ammonia solution was placed in a 500 ml vessel containing 200 ml of a mixture of chloroform: benzene 1: 9 containing 0.26 msec.% (0, 6 ml, 08
г/см полиоксиэтиленсорбитанмоноолеата. В сосуд опускают мешалку и эмульгируют в течение 4-5 мин при 440 об/мин Эмульгированную целлюлозу выпускают через нижний отросток в регенерирующий раствор, содержащий 500 мл ацетона и 50 мл лед ной уксусной кислоты. Через 8 мин, выпавшие шарики, отдел ют и промывают 10-ю объемами воды.g / cm polyoxyethylene sorbitan monooleate. A mixer is dipped into the vessel and emulsified for 4-5 minutes at 440 rpm. Emulsified cellulose is released through the lower process into a regenerating solution containing 500 ml of acetone and 50 ml of glacial acetic acid. After 8 minutes, the precipitated balls are separated and washed with 10 volumes of water.
Пористые целлюлозные шарики фракционируют на капроновых ситах и отдел ют фракции, содержащие частицы целлюлозы размером 70-200 мкм.Porous cellulosic beads are fractionated on nylon sieves and fractions containing cellulose particles of 70-200 µm in size are separated.
1 г (100 мл) пористых целлюлозных шариков (ПЦШ) помещают в круглодонную кол бу емкостью 500 мл, снабженную обратным холодильником, добавл ют 100 мг. пиридина , содержащего 1.6 мас.% боргидрида наО1 g (100 ml) of porous cellulose beads (PCS) is placed in a 500 ml round-bottom flask, equipped with a reflux condenser, 100 mg is added. pyridine containing 1.6 wt.% borohydride na
ю юyu yu
три . и нагревают на вод ной бане в течение 8 ч. После этого сорбент промывают на воронке Бюхнера сначала ацетоном,а затем дистиллированной водой до исчезновени следов ацетона.three . and heated in a water bath for 8 hours. After that, the sorbent is washed on a Büchner funnel, first with acetone and then with distilled water until all traces of acetone disappear.
1 г (100 мл) ПЦШ промывают еще раз на стекл нном фильтре дистиллированной водой , перенос т в стакан, суспендируют в 70 мл дистиллированной воды и добавл ют 20 мл 12%-ного раствора NaOH, 0,016 мас.% (0,2 мл, ,18 г/см ) эпихлоргидрина и 0.01 мас.% (20 мг) №ВЩ. Стакан помещают в вод ную баню и нагревают смесь до 60°С о течение 2 ч, посто нно перемешива посредством механической мешалки. Через 2 ч продукт промывают дистиллированной водой до нейтрального значени рН.1 g (100 ml) of the PCR was washed once again on a glass filter with distilled water, transferred to a beaker, suspended in 70 ml of distilled water, and 20 ml of a 12% NaOH solution, 0.016% by weight (0.2 ml, , 18 g / cm) epichlorohydrin and 0.01 wt.% (20 mg) No. VSch. The beaker is placed in a water bath and the mixture is heated to 60 ° C for 2 hours, constantly stirring with a mechanical stirrer. After 2 hours, the product is washed with distilled water until neutral pH.
Затем сорбент активируют обработкой 0,015 М раствором NaJCM в течение 18 ч в темноте и снова промывают водой.Then the sorbent is activated by treating with a 0.015 M solution of NaJCM for 18 h in the dark and again washed with water.
Далее сорбент обрабатывают 0,1 М кар- бонат-бикарбонатным буферным раствором с рН 9,2 и дл получени иммуносорбента добавл ют предварительно отдиализован- ный против буфера белок (гамма-iлобулин лошади). Смесь перемешивают в течение 2 ч при комнатной температуре и инкубируют 1 сут при 4°С. Полученный иммуносорбент промывают поочередно 0,01 М раствором HCI в 0,15 М растворе NaCI и затем 0,1 М борно-боратным буфером с рН 8,6 Свободные альдегидные группы восстанавливаютNext, the sorbent is treated with 0.1 M carbonate-bicarbonate buffer solution with a pH of 9.2 and pre-dialyzed protein is added to the immunosorbent (horse gamma ilobulin) to obtain the immunosorbent. The mixture is stirred for 2 hours at room temperature and incubated for 1 day at 4 ° C. The obtained immunosorbent is washed alternately with a 0.01 M solution of HCl in 0.15 M solution of NaCl and then with a 0.1 M boric borate buffer at pH 8.6. Free aldehyde groups are reduced.
обработкой иммуносорбента 0,1 М МаВЩ в 0,15 М NaCI, а затем отмывают его 0,15 М раствором NaCI, Количество присоединившегос белка.отдел ют по окрашиванию бромфеноловым синим.by treating the immunosorbent with 0.1 M MaVSH in 0.15 M NaCI, and then washing it with 0.15 M NaCI solution, Amount of protein attached. Separate by bromophenol blue staining.
Услови получени и свойства сорбента при различных параметрах способа представлены в таблице.The conditions for the preparation and properties of the sorbent with different parameters of the method are presented in the table.
10ten
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894689702A SU1669918A1 (en) | 1989-05-25 | 1989-05-25 | Method of sorbent preparation for affinity chromatography |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894689702A SU1669918A1 (en) | 1989-05-25 | 1989-05-25 | Method of sorbent preparation for affinity chromatography |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1669918A1 true SU1669918A1 (en) | 1991-08-15 |
Family
ID=21446802
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU894689702A SU1669918A1 (en) | 1989-05-25 | 1989-05-25 | Method of sorbent preparation for affinity chromatography |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1669918A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104841381A (en) * | 2015-04-28 | 2015-08-19 | 中国农业科学院上海兽医研究所 | Oriented adsorption carrier, immunoaffinity chromatography column, preparation method and kit |
-
1989
- 1989-05-25 SU SU894689702A patent/SU1669918A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР № 968039, кл. С 08 В 15/06, 1981. Авторское свидетельство СССР № 1512974, кл. С 08 В 15/06. 1987. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104841381A (en) * | 2015-04-28 | 2015-08-19 | 中国农业科学院上海兽医研究所 | Oriented adsorption carrier, immunoaffinity chromatography column, preparation method and kit |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE3853219T2 (en) | Method of removing serum amyloid protein. | |
DE2630753C2 (en) | ||
DE102006055558A1 (en) | Adsorbent for removing endotoxins from solutions comprises a ligand in the form of an amine-functional molecule in which some of the amine groups are modified with an amine-reactive molecule | |
EP0203463A2 (en) | Process for producing a material for affinity chromatography | |
SU1669918A1 (en) | Method of sorbent preparation for affinity chromatography | |
CN105040277B (en) | Nano-cellulose/Triafol T the composite nano-fiber membrane of adsorbable desorption protein | |
CN111701581B (en) | Low-density lipoprotein, cholesterol and triglyceride adsorbent and preparation method and application thereof | |
US3723251A (en) | Method for extracting urokinase | |
US5096593A (en) | Separation material derived from glucomannan for blood coagulation factor, preparation and use thereof | |
CN105289546B (en) | A kind of preparation method of liquaemin Special adsorbent | |
JPS63218691A (en) | Novel pentasaccharide compound, production thereof, anticoagulant and antithrombotic agent | |
SU1512974A1 (en) | Method of producing sorbent for affine chromatography | |
CA1283073C (en) | Adsorbent for purification of blood coagulation factor viii and process for purification of blood coagulation factor viii using the same | |
US3069323A (en) | Insulin recovery process | |
CN109485749A (en) | A method of chromatography and Ultrafiltration Membrane prepare Enoxaparin Sodium | |
JPS6354386A (en) | Phospholipid and use thereof | |
DE2616761C3 (en) | Process for the production of urokinase | |
CN111085172A (en) | Modified straw paper fiber, preparation method and application of modified straw paper fiber as nitrate radical adsorbent | |
CN111607016A (en) | Sulfonation modification method of sodium alginate and sulfonated sodium alginate | |
Sakami et al. | Purification of folic acid | |
JP2903251B2 (en) | Carrier for affinity chromatography and method for purifying antithrombin III | |
CN111744464A (en) | Adsorbent with bifunctional ligand and preparation method thereof | |
RU2257951C1 (en) | Sorbent manufacturing method | |
CN105601793A (en) | Preparation method and application of apocynum venetum flavone purifying resin | |
SU1402938A1 (en) | Method of determining water in lubricant greases |