SU1654750A1 - Method for immunoenzymatic analysis caring out - Google Patents
Method for immunoenzymatic analysis caring out Download PDFInfo
- Publication number
- SU1654750A1 SU1654750A1 SU894686889A SU4686889A SU1654750A1 SU 1654750 A1 SU1654750 A1 SU 1654750A1 SU 894686889 A SU894686889 A SU 894686889A SU 4686889 A SU4686889 A SU 4686889A SU 1654750 A1 SU1654750 A1 SU 1654750A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- substrate
- mol
- sensitivity
- added
- analysis
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к медицине, а именно к определению концентрации био- ЛОГИЧРСКИХ вещестр иммуноферментным анализом Цель изобретени - повышение чувствительности анализа Сенсибилизируют подложку инкубируют с исследуемыми Пробами затем отмывают подложку и внос т меченый коньюгат После добавлени субстрата дополнительно внос т крахмал до концентрации 007-008% а непосредственно перед измерением ионов иода подложку прогревают при 60 70°С По сравнению с прототипом увеличиваетс чувствительность анализа в 100 разThe invention relates to medicine, in particular, to determination of the concentration of bio-LOGIC substances by an enzyme-linked immunosorbent assay. Objective of the invention — Increasing the sensitivity of the assay. Sensitize substrate is incubated with test samples. Then the substrate is washed and labeled conjugate is added. immediately before the measurement of iodine ions, the substrate is heated at 60–70 ° C. Compared to the prototype, the sensitivity of the analysis is increased by a factor of 100
Description
ёyo
Изобретение относитс к медицине, ветеринарии , сельскому хоз йству в частности к способам иммуноферментного определени биологически активных веществ в различных средах и может быть использовано на предпри ти х медицинской биотехнологической , пищевой промышленности .The invention relates to medicine, veterinary medicine, agriculture, in particular, to methods for the immunoenzymatic determination of biologically active substances in various media and can be used in enterprises of the medical biotechnological and food industries.
Цель изобретени - повышение чувствительности способа.The purpose of the invention is to increase the sensitivity of the method.
Способ осуществл ют следующим образом .The method is carried out as follows.
Электрохимическое определение фермента-маркера осуществл ют по молекул рному йоду - продукту пероксидазного окислени йодид-ионов перекисью водорода при рН 3,8-4,2 в присутствии 0,07-0,08% крахмала, с последующим разрушением комплекса крахмал-йод прогреванием при 60-70°С непосредственно перед измерением .Electrochemical determination of the marker enzyme is carried out by molecular iodine — the product of peroxidase oxidation of iodide ions with hydrogen peroxide at pH 3.8–4.2 in the presence of 0.07–0.08% starch, followed by destruction of the starch-iodine complex by heating 60-70 ° C immediately before measurement.
Пример В лунки полистироловых планшетов дл иммунологических реакций внос т по 200 мкл у-глобулиновой фракции кроличьей антисыворотки против L-acnapa- гичазы содержащей 20 мкг/мл белка, на фоне 001 моль/л фосфатного буфера (рН 7 4) инкубируют 2 ч при 37°С, лунки промывают 4 раза 0,01 моль/л фосфатным буфером (рН 7,4) содержащим 0,15 моль/л хлористого натри и 0,05% тритона Х-100 Затем внос т в лунки по 200 мкл растворов с различным содержанием коньюгата L-ac- парагиназа-пероксидаза на фоне промывочного буфера инкубируют в течение 1 ч при 37°С После чего повтор ют операцию промывки 5 раз, внос т по 200 мкл субстратной смеси, содержащей 0,75 ммоль/л йодистого кали 0,3 ммоль/л перекиси водорода и 0,07% крахмала на фоне О 1 моль/л ацетатного буфера, рН 4 1 инкубируют 50 мин при комнатной температуре Регистрацию результатов провод т после инжекции 100Example An immunological reaction is poured into 200 µl y-globulin fraction of rabbit antiserum against L-acnapa-gichase containing 20 µg / ml protein in the wells of polystyrene plates, and 001 mol / l phosphate buffer (pH 7 4) is incubated for 2 hours at 37 ° C, the wells were washed 4 times with 0.01 mol / l phosphate buffer (pH 7.4) containing 0.15 mol / l sodium chloride and 0.05% Triton X-100. Then, 200 µl solutions with various the content of L-ac conjugate-paraginase-peroxidase on the background of the wash buffer is incubated for 1 hour at 37 ° C. Then repeat Washing is applied 5 times, 200 µl of substrate mixture containing 0.75 mmol / l of potassium iodide 0.3 mmol / l of hydrogen peroxide and 0.07% of starch on the background of O 1 mol / l acetate buffer, pH 4 1 are added. 50 min at room temperature. Results are recorded after injection. 100
ОABOUT
слcl
Јь VI СЛ ОVI VI SL O
мкл пробы в проточную линию амперомет- рического датчика. Температуру проточной линии и датчика устанавливают равной 70 ±0,5°С.µl sample into the flow line of the amperometric sensor. The temperature of the flow line and the sensor is set to 70 ± 0.5 ° C.
П р и м е р 2. Определение провод т пр мым методом св зывани . Дл этого в лунки полистироловых планшетов дл иммунологических реакций внос т по 200 мкл у-глобулиновой фракции кроличьей антисыворотки против L-аспарагиназы, содержащей 20 мкг/мл белка на фоне 0,01 моль/л фосфатного буфера (рН 7,4). инкубируют 2 ч прл 37°С. Лунки промывают 4 раза 0,01 моль/л фосфатным буфером (рН 7,4). содержащим 0,15 моль/л хлористого натри и 0,05% тритона Х-100. Затем внос т в лунки по 200 мкл растворов с различным содержанием коньюгата L-аспарагиназэ-пероксида- за на фоне промывочного буфера, инкубируют 1 ч при 37°С. Операцию промывки повтор ют 5 раз. Затем внос т по 200 мкл субстратной смеси, содержащей 0,75 ммоль/л йодистого кали , 0,3 ммоль/л перекиси водорода и 0,08% крахмала на фоне 0,1 моль/л ацетатного буфера (рН 4,1), инкубируют ВО мин при комнатной температуре. Регистрацию результатов провод т после инжекции 100 мкл пробы в проточную линию амперометрического датчика. Температуру проточной линии и датчика устанавливают равной 60 ± 0,5°С.EXAMPLE 2. The determination is carried out by a direct coupling method. For this purpose, 200 µl of the y-globulin fraction of rabbit antiserum against L-asparaginase containing 20 µg / ml of protein against a background of 0.01 mol / l phosphate buffer (pH 7.4) are added to the wells of polystyrene plates for immunological reactions. incubated for 2 hours at 37 ° C. The wells are washed 4 times with 0.01 mol / L phosphate buffer (pH 7.4). containing 0.15 mol / l sodium chloride and 0.05% Triton X-100. Then, 200 µl of solutions with different content of L-asparaginase-peroxidase conjugate are added to the wells against the background of wash buffer, and they are incubated for 1 hour at 37 ° C. The washing operation is repeated 5 times. Then, 200 µl of a substrate mixture containing 0.75 mmol / l of potassium iodide, 0.3 mmol / l of hydrogen peroxide and 0.08% of starch against a background of 0.1 mol / l of acetate buffer (pH 4.1) are added, incubate BOW at room temperature. The results are recorded after injection of 100 µl of the sample into the flow line of the amperometric sensor. The temperature of the flow line and the sensor is set to 60 ± 0.5 ° C.
Статистически установлено (по t-крите- рию Стьюдента при Р 0,95), что нижний предел определени коньюгата предла0It is statistically established (according to Student's t-criterion at P 0.95) that the lower limit of the definition of the conjugate is
5five
00
5five
00
гаемым методом равен 8 моль/л (1,0 нг/мл) по 1-аспарагиназе, по известному способу 1 -10 моль/л (13.0 нг/мл).The recommended method is equal to 8 mol / l (1.0 ng / ml) in 1-asparaginase, by the known method 1 -10 mol / l (13.0 ng / ml).
Таким образом, предлагаемый способ обеспечивает значительное повышение чувствительности иммуноферментного анализа с электрохимической детекцией как по ферменту-маркеру (с 1 10 до 6 моль/л), так и по меченому антигену (с 1 10 10до8 10 12 моль/л), т.е. в 100 раз по сравнению с известным способом.Thus, the proposed method provides a significant increase in the sensitivity of the enzyme immunoassay with electrochemical detection of both the marker enzyme (from 1 10 to 6 mol / l) and the labeled antigen (from 1 10 10 to 8 10 12 mol / l), i.e. . 100 times compared with the known method.
Использование предлагаемого метода позволит проводит иммуноферментный анализ различных физиологически активных соединений, при наличии иммунопе- роксидазных диагностикумов с высокой чувствительностью. При этом становитс возможным расширить круг определ емых объектов, содержание которых в анализируемых средах составл ет пикомоли.Using the proposed method allows enzyme immunoassay of various physiologically active compounds, in the presence of immunoperoxidase diagnostics with high sensitivity. In this case, it becomes possible to expand the range of detectable objects, the content of which in the analyzed media is picomolar.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894686889A SU1654750A1 (en) | 1989-05-03 | 1989-05-03 | Method for immunoenzymatic analysis caring out |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894686889A SU1654750A1 (en) | 1989-05-03 | 1989-05-03 | Method for immunoenzymatic analysis caring out |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1654750A1 true SU1654750A1 (en) | 1991-06-07 |
Family
ID=21445520
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU894686889A SU1654750A1 (en) | 1989-05-03 | 1989-05-03 | Method for immunoenzymatic analysis caring out |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1654750A1 (en) |
-
1989
- 1989-05-03 SU SU894686889A patent/SU1654750A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР N- 1205913, кл G 01 N 33/53 1985 * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0347138B1 (en) | Specific binding composition comprising a low pI protein or carbohydrate and a diagnostic test kit and method of use | |
Bayer et al. | A sensitive enzyme assay for biotin, avidin, and streptavidin | |
Marchenko et al. | Application of potentiometric biosensor based on recombinant urease for urea determination in blood serum and hemodialyzate | |
CN111896730A (en) | Dry-type immunofluorescence quantitative method Heparin Binding Protein (HBP) detection kit | |
CN202916286U (en) | Latex enhanced turbidimetric immunoassay kit for quantitatively detecting procalcitonin (PCT) | |
He et al. | Differential pulse voltammetric enzyme-linked immunoassay for the determination of Helicobacter pylori specific immunoglobulin G (IgG) antibody | |
US5506114A (en) | Methods and kits for detecting the presence or concentration of biological analytes | |
Bier et al. | High sensitive competitive immunodetection of 2, 4-dichlorophenoxyacetic acid using enzymatic amplification with electrochemical detection | |
EP0514509B1 (en) | Composition and its preparation process using antigen conjugated to enzymatic activity for immunological diagnosis and chagas' disease immunological diagnosis kits, for individual and epidemiological application, based on that composition | |
Toyota et al. | Determination of total protein in serum using a tyrosinase enzyme electrode | |
SU1654750A1 (en) | Method for immunoenzymatic analysis caring out | |
JP2638877B2 (en) | Immunochemical assay | |
EP0241140A1 (en) | Assay method with a multivalently labelled reagent, and means therefor | |
Messina et al. | Continuous-flow/stopped-flow system using an immunobiosensor for quantification of human serum IgG antibodies to Helicobacter pylori | |
JPS60501178A (en) | Antigen antibody detection agent | |
Babkina et al. | Enzyme amperometric sensor for the determination of cholinesterase inhibitors or activators | |
JPH0248239B2 (en) | ||
CA1215303A (en) | Composition and method for detecting antistreptolysin o | |
CN110333348A (en) | The nano particle and preparation method and application that polypeptide and copper ion are formed | |
Biloivan et al. | Development of enzyme biosensor based on ISFETs for Quantitative analysis of serine proteinases | |
EP0413810A1 (en) | Composition containing labeled streptococcal antibody, test kit and assay using same | |
Yamada et al. | Detection of antibody to Staphylococcus aureus teichoic acid by enzyme-linked immunosorbent assay | |
SU1606940A1 (en) | Method of qualitative determination of catalitically active molecules of serine proteinases of bacillae | |
Sand et al. | Development of an immunosensor based on pressure transduction | |
Monroe | Immunoselective electrodes |