SU1654750A1 - Method for immunoenzymatic analysis caring out - Google Patents

Method for immunoenzymatic analysis caring out Download PDF

Info

Publication number
SU1654750A1
SU1654750A1 SU894686889A SU4686889A SU1654750A1 SU 1654750 A1 SU1654750 A1 SU 1654750A1 SU 894686889 A SU894686889 A SU 894686889A SU 4686889 A SU4686889 A SU 4686889A SU 1654750 A1 SU1654750 A1 SU 1654750A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
substrate
mol
sensitivity
added
analysis
Prior art date
Application number
SU894686889A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Равиль Айратович Ситдыков
Дмитрий Маркович Ивницкий
Лев Семенович Рейфман
Владимир Ефимович Курочкин
Original Assignee
Самаркандский Государственный Медицинский Институт Им.И.П.Павлова
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Самаркандский Государственный Медицинский Институт Им.И.П.Павлова filed Critical Самаркандский Государственный Медицинский Институт Им.И.П.Павлова
Priority to SU894686889A priority Critical patent/SU1654750A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1654750A1 publication Critical patent/SU1654750A1/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к медицине, а именно к определению концентрации био- ЛОГИЧРСКИХ вещестр иммуноферментным анализом Цель изобретени  - повышение чувствительности анализа Сенсибилизируют подложку инкубируют с исследуемыми Пробами затем отмывают подложку и внос т меченый коньюгат После добавлени  субстрата дополнительно внос т крахмал до концентрации 007-008% а непосредственно перед измерением ионов иода подложку прогревают при 60 70°С По сравнению с прототипом увеличиваетс  чувствительность анализа в 100 разThe invention relates to medicine, in particular, to determination of the concentration of bio-LOGIC substances by an enzyme-linked immunosorbent assay. Objective of the invention — Increasing the sensitivity of the assay. Sensitize substrate is incubated with test samples. Then the substrate is washed and labeled conjugate is added. immediately before the measurement of iodine ions, the substrate is heated at 60–70 ° C. Compared to the prototype, the sensitivity of the analysis is increased by a factor of 100

Description

ёyo

Изобретение относитс  к медицине, ветеринарии , сельскому хоз йству в частности к способам иммуноферментного определени  биологически активных веществ в различных средах и может быть использовано на предпри ти х медицинской биотехнологической , пищевой промышленности .The invention relates to medicine, veterinary medicine, agriculture, in particular, to methods for the immunoenzymatic determination of biologically active substances in various media and can be used in enterprises of the medical biotechnological and food industries.

Цель изобретени  - повышение чувствительности способа.The purpose of the invention is to increase the sensitivity of the method.

Способ осуществл ют следующим образом .The method is carried out as follows.

Электрохимическое определение фермента-маркера осуществл ют по молекул рному йоду - продукту пероксидазного окислени  йодид-ионов перекисью водорода при рН 3,8-4,2 в присутствии 0,07-0,08% крахмала, с последующим разрушением комплекса крахмал-йод прогреванием при 60-70°С непосредственно перед измерением .Electrochemical determination of the marker enzyme is carried out by molecular iodine — the product of peroxidase oxidation of iodide ions with hydrogen peroxide at pH 3.8–4.2 in the presence of 0.07–0.08% starch, followed by destruction of the starch-iodine complex by heating 60-70 ° C immediately before measurement.

Пример В лунки полистироловых планшетов дл  иммунологических реакций внос т по 200 мкл у-глобулиновой фракции кроличьей антисыворотки против L-acnapa- гичазы содержащей 20 мкг/мл белка, на фоне 001 моль/л фосфатного буфера (рН 7 4) инкубируют 2 ч при 37°С, лунки промывают 4 раза 0,01 моль/л фосфатным буфером (рН 7,4) содержащим 0,15 моль/л хлористого натри  и 0,05% тритона Х-100 Затем внос т в лунки по 200 мкл растворов с различным содержанием коньюгата L-ac- парагиназа-пероксидаза на фоне промывочного буфера инкубируют в течение 1 ч при 37°С После чего повтор ют операцию промывки 5 раз, внос т по 200 мкл субстратной смеси, содержащей 0,75 ммоль/л йодистого кали  0,3 ммоль/л перекиси водорода и 0,07% крахмала на фоне О 1 моль/л ацетатного буфера, рН 4 1 инкубируют 50 мин при комнатной температуре Регистрацию результатов провод т после инжекции 100Example An immunological reaction is poured into 200 µl y-globulin fraction of rabbit antiserum against L-acnapa-gichase containing 20 µg / ml protein in the wells of polystyrene plates, and 001 mol / l phosphate buffer (pH 7 4) is incubated for 2 hours at 37 ° C, the wells were washed 4 times with 0.01 mol / l phosphate buffer (pH 7.4) containing 0.15 mol / l sodium chloride and 0.05% Triton X-100. Then, 200 µl solutions with various the content of L-ac conjugate-paraginase-peroxidase on the background of the wash buffer is incubated for 1 hour at 37 ° C. Then repeat Washing is applied 5 times, 200 µl of substrate mixture containing 0.75 mmol / l of potassium iodide 0.3 mmol / l of hydrogen peroxide and 0.07% of starch on the background of O 1 mol / l acetate buffer, pH 4 1 are added. 50 min at room temperature. Results are recorded after injection. 100

ОABOUT

слcl

Јь VI СЛ ОVI VI SL O

мкл пробы в проточную линию амперомет- рического датчика. Температуру проточной линии и датчика устанавливают равной 70 ±0,5°С.µl sample into the flow line of the amperometric sensor. The temperature of the flow line and the sensor is set to 70 ± 0.5 ° C.

П р и м е р 2. Определение провод т пр мым методом св зывани . Дл  этого в лунки полистироловых планшетов дл  иммунологических реакций внос т по 200 мкл у-глобулиновой фракции кроличьей антисыворотки против L-аспарагиназы, содержащей 20 мкг/мл белка на фоне 0,01 моль/л фосфатного буфера (рН 7,4). инкубируют 2 ч прл 37°С. Лунки промывают 4 раза 0,01 моль/л фосфатным буфером (рН 7,4). содержащим 0,15 моль/л хлористого натри  и 0,05% тритона Х-100. Затем внос т в лунки по 200 мкл растворов с различным содержанием коньюгата L-аспарагиназэ-пероксида- за на фоне промывочного буфера, инкубируют 1 ч при 37°С. Операцию промывки повтор ют 5 раз. Затем внос т по 200 мкл субстратной смеси, содержащей 0,75 ммоль/л йодистого кали , 0,3 ммоль/л перекиси водорода и 0,08% крахмала на фоне 0,1 моль/л ацетатного буфера (рН 4,1), инкубируют ВО мин при комнатной температуре. Регистрацию результатов провод т после инжекции 100 мкл пробы в проточную линию амперометрического датчика. Температуру проточной линии и датчика устанавливают равной 60 ± 0,5°С.EXAMPLE 2. The determination is carried out by a direct coupling method. For this purpose, 200 µl of the y-globulin fraction of rabbit antiserum against L-asparaginase containing 20 µg / ml of protein against a background of 0.01 mol / l phosphate buffer (pH 7.4) are added to the wells of polystyrene plates for immunological reactions. incubated for 2 hours at 37 ° C. The wells are washed 4 times with 0.01 mol / L phosphate buffer (pH 7.4). containing 0.15 mol / l sodium chloride and 0.05% Triton X-100. Then, 200 µl of solutions with different content of L-asparaginase-peroxidase conjugate are added to the wells against the background of wash buffer, and they are incubated for 1 hour at 37 ° C. The washing operation is repeated 5 times. Then, 200 µl of a substrate mixture containing 0.75 mmol / l of potassium iodide, 0.3 mmol / l of hydrogen peroxide and 0.08% of starch against a background of 0.1 mol / l of acetate buffer (pH 4.1) are added, incubate BOW at room temperature. The results are recorded after injection of 100 µl of the sample into the flow line of the amperometric sensor. The temperature of the flow line and the sensor is set to 60 ± 0.5 ° C.

Статистически установлено (по t-крите- рию Стьюдента при Р 0,95), что нижний предел определени  коньюгата предла0It is statistically established (according to Student's t-criterion at P 0.95) that the lower limit of the definition of the conjugate is

5five

00

5five

00

гаемым методом равен 8 моль/л (1,0 нг/мл) по 1-аспарагиназе, по известному способу 1 -10 моль/л (13.0 нг/мл).The recommended method is equal to 8 mol / l (1.0 ng / ml) in 1-asparaginase, by the known method 1 -10 mol / l (13.0 ng / ml).

Таким образом, предлагаемый способ обеспечивает значительное повышение чувствительности иммуноферментного анализа с электрохимической детекцией как по ферменту-маркеру (с 1 10 до 6 моль/л), так и по меченому антигену (с 1 10 10до8 10 12 моль/л), т.е. в 100 раз по сравнению с известным способом.Thus, the proposed method provides a significant increase in the sensitivity of the enzyme immunoassay with electrochemical detection of both the marker enzyme (from 1 10 to 6 mol / l) and the labeled antigen (from 1 10 10 to 8 10 12 mol / l), i.e. . 100 times compared with the known method.

Использование предлагаемого метода позволит проводит иммуноферментный анализ различных физиологически активных соединений, при наличии иммунопе- роксидазных диагностикумов с высокой чувствительностью. При этом становитс  возможным расширить круг определ емых объектов, содержание которых в анализируемых средах составл ет пикомоли.Using the proposed method allows enzyme immunoassay of various physiologically active compounds, in the presence of immunoperoxidase diagnostics with high sensitivity. In this case, it becomes possible to expand the range of detectable objects, the content of which in the analyzed media is picomolar.

Claims (1)

Формула изобретени Invention Formula Способ проведени  иммуноферментного анализа, включающий сенсибилизацию подложки, инкубацию с меченым коньюга- том, отмывку с последующим добавлением субстрата и измерением ионов, отличающийс  тем, что, с целью повышени  чувствительности способа, после добавлени  субстрата дополнительно внос т крахмал в концентрации 0,07-0,08%, а перед измерением ионов подложку прогревают до 60-70°С.An enzyme immunoassay method, including sensitization of the substrate, incubation with labeled conjugate, washing followed by the addition of the substrate and measuring ions, characterized in that, in order to increase the sensitivity of the method, after addition of the substrate, starch is added at a concentration of 0.07-0 , 08%, and before measuring the ions, the substrate is heated to 60-70 ° C. 3535
SU894686889A 1989-05-03 1989-05-03 Method for immunoenzymatic analysis caring out SU1654750A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894686889A SU1654750A1 (en) 1989-05-03 1989-05-03 Method for immunoenzymatic analysis caring out

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894686889A SU1654750A1 (en) 1989-05-03 1989-05-03 Method for immunoenzymatic analysis caring out

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1654750A1 true SU1654750A1 (en) 1991-06-07

Family

ID=21445520

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894686889A SU1654750A1 (en) 1989-05-03 1989-05-03 Method for immunoenzymatic analysis caring out

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1654750A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Авторское свидетельство СССР N- 1205913, кл G 01 N 33/53 1985 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0347138B1 (en) Specific binding composition comprising a low pI protein or carbohydrate and a diagnostic test kit and method of use
Bayer et al. A sensitive enzyme assay for biotin, avidin, and streptavidin
Marchenko et al. Application of potentiometric biosensor based on recombinant urease for urea determination in blood serum and hemodialyzate
CN111896730A (en) Dry-type immunofluorescence quantitative method Heparin Binding Protein (HBP) detection kit
CN202916286U (en) Latex enhanced turbidimetric immunoassay kit for quantitatively detecting procalcitonin (PCT)
He et al. Differential pulse voltammetric enzyme-linked immunoassay for the determination of Helicobacter pylori specific immunoglobulin G (IgG) antibody
US5506114A (en) Methods and kits for detecting the presence or concentration of biological analytes
Bier et al. High sensitive competitive immunodetection of 2, 4-dichlorophenoxyacetic acid using enzymatic amplification with electrochemical detection
EP0514509B1 (en) Composition and its preparation process using antigen conjugated to enzymatic activity for immunological diagnosis and chagas' disease immunological diagnosis kits, for individual and epidemiological application, based on that composition
Toyota et al. Determination of total protein in serum using a tyrosinase enzyme electrode
SU1654750A1 (en) Method for immunoenzymatic analysis caring out
JP2638877B2 (en) Immunochemical assay
EP0241140A1 (en) Assay method with a multivalently labelled reagent, and means therefor
Messina et al. Continuous-flow/stopped-flow system using an immunobiosensor for quantification of human serum IgG antibodies to Helicobacter pylori
JPS60501178A (en) Antigen antibody detection agent
Babkina et al. Enzyme amperometric sensor for the determination of cholinesterase inhibitors or activators
JPH0248239B2 (en)
CA1215303A (en) Composition and method for detecting antistreptolysin o
CN110333348A (en) The nano particle and preparation method and application that polypeptide and copper ion are formed
Biloivan et al. Development of enzyme biosensor based on ISFETs for Quantitative analysis of serine proteinases
EP0413810A1 (en) Composition containing labeled streptococcal antibody, test kit and assay using same
Yamada et al. Detection of antibody to Staphylococcus aureus teichoic acid by enzyme-linked immunosorbent assay
SU1606940A1 (en) Method of qualitative determination of catalitically active molecules of serine proteinases of bacillae
Sand et al. Development of an immunosensor based on pressure transduction
Monroe Immunoselective electrodes