SU1640165A1 - Method for preparing bacterial pyrogene - Google Patents
Method for preparing bacterial pyrogene Download PDFInfo
- Publication number
- SU1640165A1 SU1640165A1 SU864339698A SU4339698A SU1640165A1 SU 1640165 A1 SU1640165 A1 SU 1640165A1 SU 864339698 A SU864339698 A SU 864339698A SU 4339698 A SU4339698 A SU 4339698A SU 1640165 A1 SU1640165 A1 SU 1640165A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- dialysis
- pyrogen
- followed
- target product
- water
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к медицинской биотехнологии, в частности к получению бактериальных пирогенов, используемых в лечебной практике дл стимул ции естественных защитных сил. Целью изобретени вл етс повышение выхода целевого продукта. Способ заключаетс в следующем. В качестве источников используют экспериментально полученные методом половой конъюгации с использованием высокоэффективных доноров эшерихий группы HfrH(/T) гибриды шигелл Флекснера и эшерихий. Провод т предварительное удаление клеточных липидов, лиофили- зацию, суспендирование биомассы в дистиллированной Н-0, многократное воднофенольное экстрагирование (2:1) с использованием свежеперегнанного фенола, температура экстракции 65- 70°С с последующим центрифугированием (3000 об/мин, 20 мин), диализом в течение 3 сут через пергаментную бумажную мембрану с размером пор 10- 20 А, удельной поверхностью пор 1000- 1200 мг/г и толщиной 0,16-0,20 мм, предварительно промытую хлороформ- метанольной смесью (2:1) дл обезжиривани , упаривание при 30°С с использованием жидкого азота, ультра- центрифугирование в режиме: 108000 об/мин, 1 ч, три раза с последующей лиофильной сушкой полученных продуктов. 2 табл. с/ сThis invention relates to medical biotechnology, in particular, to the production of bacterial pyrogens used in medical practice to stimulate natural defenses. The aim of the invention is to increase the yield of the target product. The method is as follows. The sources used are experimentally obtained by the method of sexual conjugation using highly efficient donors of the Escherichia group HfrH (/ T) of the Shigella Flexner and Escherichia hybrids. Cell lipids are preliminarily removed, lyophilized, suspension of biomass in distilled H-0, repeated water-phenol extraction (2: 1) using freshly distilled phenol, extraction temperature 65-70 ° C, followed by centrifugation (3000 rpm, 20 min), dialysis for 3 days through a parchment paper membrane with a pore size of 10-20 A, a specific surface area of 1000-1200 mg / g and a thickness of 0.16-0.20 mm previously washed with a chloroform-methanol mixture (2: 1) for degreasing, evaporation at 30 ° C using liquid nitrogen, ultracentrifugation in the mode: 108000 rpm, 1 h, three times, followed by freeze drying of the obtained products. 2 tab. s / s
Description
Изобретение относитс к медицинской биотехнологии, в частности к -получению бактериальных пирогенов, используемых в лечебной практике дл стимул ции естественных защитных сил организма.The invention relates to medical biotechnology, in particular to the production of bacterial pyrogens used in medical practice to stimulate the body's natural defenses.
Целью изобретени вл етс повышение выхода целевого продукта.The aim of the invention is to increase the yield of the target product.
В качестве источников липополи- сахаридов (ЛПС) используют экспериментально полученные методом половой конъюгации с использованием высокоэффективных доноров эшерихий группы HfrHW) гибриды шигелл Флекснера и эшерихий, провод т предварительное удаление клеточных липидов, лиофили- зацию, суспендирование биомассы в дистиллированной , многократное воднофенольное экстрагирование (2:1) с использованием свежеперегнанного фенола (температура экстракции 65 - 70°С) с последующим центрифугированием 3000 об/мин, 20 мин), диализом в течение 3 сут через пергаментную бумажаAs sources of lipopolyaccharides (LPS), experimentally obtained by the method of sexual conjugation using highly efficient donors of the HfrHW group of the Escherichia group of the Flexer Flexner and Escherichia hybrids, pre-removal of cell lipids, lyophilization, suspension of biomass in distilled water, multiple water, repeated lyophilization, lyophilization, suspension of biomass in distilled water, multiple water, multiple water, and multiple water are used. : 1) using freshly distilled phenol (extraction temperature 65 - 70 ° C) followed by centrifugation at 3000 rpm, 20 min), dialysis for 3 days through the gummed paper
елate
ную мембрану с размером пор 10-20А, Удельной поверхностью пор 1000- 1200 ма/г и толщиной 0,16-0,20 мм, предварительно промытую хлороформ- метанольной смесью (2:1) дл обезжиривани , упаривани при с использованием жидкого азота, ультрацентрифугированием в режиме: tOSOOOg, 1 ч, три раза, с последующей лиофильной сушкой полученных продуктов.membrane with a pore size of 10–20 A, a specific surface area of 1000–1200 mA / g and a thickness of 0.16–0.20 mm, previously washed with a chloroform-methanol mixture (2: 1) for degreasing, evaporation using liquid nitrogen, ultracentrifugation mode: tOSOOOg, 1 h, three times, followed by freeze drying of the obtained products.
Пример. Провод т генетическую рекомбинацию бактерий с использованием донора E.coli HfrH (fl), (str5, mon1, ), реципиента Example. Bacteria are genetically recombined using E. coli donor HfrH (fl), (str5, mon1,), recipient
sh.flexneri № 737 тип 2а (strr, neo). Получают половые гибриды (ге- нетичаские рекомбинаты) шигелл Флекс- нера и эшерихий HfrHCft), три штамма: R-737-2, R-737-4 и R-737-6, которые обладают одинаковыми биологическими характеристиками: грамотрицательным,sh.flexneri No. 737 type 2a (strr, neo). Sexual hybrids (genetic recombinants) of Shigella Flexner and Escherichia HfrHCft are obtained, three strains: R-737-2, R-737-4, and R-737-6, which have the same biological characteristics: gram-negative,
iнеподвижны, устойчивы как к ртрепто- мицину9 так и к антибиотикам резерваImmobile, resistant to both rtreptomycin9 and antibiotics of the reserve
|(strps monr, пео), активны в отно- шении к лактозе, что используют вместе со стрептомицкнрезистентностью как важный селективный признал дл отбо ра рекомбинантов. По вирулентности(strps monr, peo), are active against lactose, which is used together with streptomy resistance as an important selective recognized for the selection of recombinants. Virulence
(половые ргкомбинаты следуют за реципи ентной культурой Sh. flexneri № 737 серотип 2а ( составл ет 133i t 47 млн.микробных тел). Так как все(genital laboratories follow the recipient culture of Sh. flexneri No. 737 serotype 2a (amounts to 133i t 47 ppm microbial bodies). Since all
три штамма рекомбинантов имеют близкие биологические характеристики, то дл дальнейших исследований отбирают R-737-4, отличающийс наиболее высокой стабильностью морфотинкто риальных и биохимических показателей.Since three strains of recombinants have similar biological characteristics, R-737-4 is selected for further studies, which is characterized by the highest stability of morphotinctual and biochemical parameters.
Биомассу бактериальных культур выращивают на стандартных плотных средах МПА одной серии изготовлени . Отмыв культур от остатков среды производ т раствором натри хлорида с массовой долей 0,50% до отрицатель- ной реакции с нингидрином. Чистоту выросших колоний провер ют микроскопическим путем. Биомассу бактерий высушивают на воздухе. Удал ют клеточные ЛИПИДЫ.The biomass of bacterial cultures is grown on standard dense MPA media of one production series. Washing the cultures from the residues of the medium is performed with a solution of sodium chloride with a mass fraction of 0.50% to a negative reaction with ninhydrin. The purity of the grown colonies is checked microscopically. The biomass of bacteria is dried in air. Cell LIPIDS are removed.
Остаток биомассы лиофильно высушивают , дел т на три равные части и суспендируют каждую в дистиллированной воде при 37°С, затем каждую порцию обрабатывают фенолводной смесью (1 ;2,V/V)c использованием свежеперегнанного фенола при 65-70°С(5 раз) слученные экстракты объедин ют и центрифугируют (3000 об/мин) ,диализуют черезThe biomass residue is freeze-dried, divided into three equal parts and suspended each in distilled water at 37 ° C, then each batch is treated with phenol-water mixture (1; 2, V / V) using freshly distilled phenol at 65-70 ° C (5 times a) the obtained extracts are combined and centrifuged (3000 rpm), dialyzed through
5 Q5 Q
00
пергаментную бумажную мембрану с размером пор 10-20 А, удельной поверхностью пор 1000-1200 мг/г и толщиной 0,16-0,20 мм, предварительно обезжиренную хлороформ-метанольной смесью (2:1) в течение 3 сут, мен воду через каждые 6 ч, упаривают на ротЬрном испарителе с использованием жидкого азота (), полученные экстракты центрифугируют в следующем режиме: 108000s, 1 ч, 3 раза. Полученные продукты лиофилизуют. Выход рассчитывают по данным весового анализа .parchment paper membrane with a pore size of 10-20 A, a specific surface area of 1000-1200 mg / g and a thickness of 0.16-0.20 mm, previously defatted with chloroform-methanol mixture (2: 1) for 3 days, changes water through every 6 hours, evaporated on a rotary evaporator using liquid nitrogen (), the obtained extracts are centrifuged in the following mode: 108000s, 1 hour, 3 times. The resulting products are lyophilized. The output is calculated according to the weight analysis.
Обща характеристика состава АПС и их выхода у генетических рекомбикан- тов и исходных культур донора и реципиента дано в табл. 1.The general characteristics of the composition of APS and their yield in genetic recombinants and initial cultures of the donor and recipient are given in Table. one.
Выход ЛПС наибольший у половых f гибридов (табл 1). ЛПС каждой из культур гидролизуют 1%-ной уксусной кислотой (50 мл, 2 ч. 100°С) в за- iпа нных ампулах. Переосаждение липи- да А производ т п тикратным объемом ч ацетона.The output of LPS is greatest in genital f hybrids (Table 1). LPS of each of the cultures is hydrolyzed with 1% acetic acid (50 ml, 2 hours, 100 ° C) in sealed ampoules. Lipid A re-precipitation is carried out with a multiple volume of acetone.
Липид А (10 мг) гидролизуют сол ной кислотой (С (1/1 НС1)4 моль/л; 12 4J 100°С) в запа нных стекл нных ампулах. Жирные кислоты экстрагируют хлороформом с последующим упариванием и метилированием диазометаном . Провод т контроль чистоты фракции метиловых зфиров. Газожидкост- ную хроматографию провод т, использу хроматограф с пламенно-ионизационным детектором при услови х: колонка 0,5 см х 35 м, температура колонны 180 С, фаза Sp-ЮОО. Хромато- масс-спектрометрию метиловых эфиров Ж ведут на приборе (колонка та же). Осуществл ют интерпретацию масс- спектров Определ ют общее содержание белка в ЛПС, нуклеиновых кислот, нейтральных моносахаридов фенолсерно- кислым методом, наход т содержание кетодезоксио ктоновой кислоты (КДО), рассчитывают массовую долю суммарного фосфора в ЛПС. Фенола в препаратах че обнаруживают.,Lipid A (10 mg) is hydrolyzed with hydrochloric acid (C (1/1 HC1) 4 mol / l; 12 4J 100 ° C) in sealed glass ampoules. Fatty acids are extracted with chloroform, followed by evaporation and methylation with diazomethane. The purity of the methyl zofir fraction is monitored. Gas-liquid chromatography was carried out using a chromatograph with a flame ionization detector under the following conditions: column 0.5 cm x 35 m, column temperature 180 ° C, Sp-UOO phase. Chromato-mass spectrometry of the methyl esters of F are carried out on the instrument (the same column). Interpret mass spectra. Determine the total protein content in LPS, nucleic acids, neutral monosaccharides by the phenol-acid method, find the content of keto-deoxy-aconic acid (KDO), calculate the mass fraction of total phosphorus in LPS. Phenol in Che preparations is found.,
Полученные данные статистически обраОачъшают с учетом распределени Стьюден та-Фише ра.The data obtained is statistically based on the Studen and Fiche distribution.
После выхода пирогенной кривой на режим пирогенала производ т сравнительное изучение действи ЛПС в зависимости от источника и дозы препарата . Данные статистически обрабатывают с учетом распределени Стьюдента-Фишера.After the pyrogenic curve has reached the pyrogenal regime, a comparative study of the effect of LPS depending on the source and dose of the preparation is carried out. The data are statistically processed taking into account the Student-Fisher distribution.
Полученные результаты свидетельствуют о том, что половые гибриды вл ютс более лучшими эндопродуцентами ЛПС, чем исходные эщерихии (в 2 рза ) E.coli HfrH(fT) и шигеллы. Средн температура режима пирогенного эффекта у ЛПС гибридов составл ет 40,5°С при 40,OtfC у пирогенала.The results obtained indicate that sex hybrids are better endoproducts of LPS than the original escherichia (2 times) E. coli HfrH (fT) and shigella. The average temperature of the pyrogenic effect mode in LPS hybrids is 40.5 ° C at 40, OtfC at pyrogenal.
Содержание жирных кислот и углеводов в липиде А генетических реком- .бинантов и исходных культур-донора и реципиента приведено в табл. 2.The content of fatty acids and carbohydrates in lipid A of genetic recombinants and initial donor and recipient cultures is given in table. 2
wТаким образом, предлагаемый способ получени бактериального пироге- на вл етс новым и на основании биотестировани обладает температурой и временной компонентой пиро- генного эффекта, свидетельствующей о его усилении в сравнении с пиро- геналом. w Thus, the proposed method of obtaining bacterial pyrogen is new and, based on biotesting, has a temperature and a temporal component of the pyrogenic effect, indicating its enhancement in comparison with pyrogenal.
16401651640165
Ф оF o
vv
рмула изобретениrmula of invention
Способ получени бактериальногоThe method of obtaining bacterial
пирогена, предусматривающий экстракцию пирогена из бактерий с последующим диализом в течение 3 сут ульт- рацентрифугированием и лиофилизацией целевого продукта, отличагащ и и с тем, что, с целью повышени выхода целевого продукта, пиро- ген экстрагируют из генетических ре- комбинантов шигелл Флекснера и Eshe- richia coli HfrH(lp) ЗЗХ-ной водно5 фенольной смесьга при 70°С после предварительного суспендировани в дистиллирозанной воде, а диализ осуществл ют через обезжиренную перга- бумагу с размером пор 1020 А, удельной поверхностью пор 1000- 1200 м2/г и толщиной 0,16-0,20 мм со сменой диализной воды через 6 ч.pyrogen, which involves extraction of pyrogen from bacteria, followed by dialysis for 3 days by ultracentrifugation and lyophilization of the target product, is different because, in order to increase the yield of the target product, pyrogen is extracted from genetic recombinants Shigella Flexner and Eshe - richia coli HfrH (lp) ЗЗХ-ary water-5 phenolic mixture at 70 ° С after preliminary suspension in distilled water, and dialysis is carried out through degreased parch paper with a pore size of 1020 A, a specific surface area of 1000–120 m2 / g and 0.16-0.20 mm thick with a change of dialysis water after 6 h.
Т а 5 л и ц а 1T a 5 l and c a 1
Таблица 2table 2
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864339698A SU1640165A1 (en) | 1986-11-04 | 1986-11-04 | Method for preparing bacterial pyrogene |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864339698A SU1640165A1 (en) | 1986-11-04 | 1986-11-04 | Method for preparing bacterial pyrogene |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1640165A1 true SU1640165A1 (en) | 1991-04-07 |
Family
ID=21340770
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU864339698A SU1640165A1 (en) | 1986-11-04 | 1986-11-04 | Method for preparing bacterial pyrogene |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1640165A1 (en) |
-
1986
- 1986-11-04 SU SU864339698A patent/SU1640165A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Westphal 0. et al. Bacterial li- popolysaccharides extraction with phenol water and further applicatiosns of the procedure. - Methods in Car- bohydr. Chemistry, 1965, v.5. p.83-91. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Koplow et al. | Alterations in the outer membrane of the cell envelope of heptose-deficient mutants of Escherichia coli | |
Braun et al. | Supramolecular structure of the rigid layer of the cell wall of Salmonella, Serratia, Proteus, and Pseudomonas fluorescens. Number of lipoprotein molecules in a membrane layer | |
Bassford Jr et al. | Outer membrane proteins of Escherichia coli. VI. Protein alteration in bacteriophage-resistant mutants | |
Taniguchi et al. | Identification and characterization of multifunctional cationic peptides derived from peptic hydrolysates of rice bran protein | |
Kates et al. | Lipids of Serratia marcescens | |
US4297272A (en) | Process for the preparation of purified bacterial membranal proteoglycans | |
HU228688B1 (en) | Methods for the production of 3-0-deactivated-4'-monophosphoryl lipid a (3d-mla) | |
NO152281B (en) | PREPARATION OF HEAT STABLE E.COLI ENTEROTOXIN DERIVATIVES | |
HU191746B (en) | Process for producing new proteins for diminishing level of cholesterol in the blood and pharmaceutical compositions containing them | |
SK111193A3 (en) | Bacterial macromolecule extract, method for preparing same and pharmaceutical composition containing said extract | |
SU1640165A1 (en) | Method for preparing bacterial pyrogene | |
Krieg et al. | Phosphorylcholine stimulates capsule formation of phosphate-limited mucoid Pseudomonas aeruginosa | |
WO2002028424A9 (en) | Kyberdrug as autovaccines with immune-regulating effects | |
Joseleau-Petit et al. | A novel electrophoretic fractionation of Escherichia coli envelopes | |
KR20020074746A (en) | Anticancer agents containing antigenotoxic and immunostimulation peptides produced from the hydrolyate of silkworm cocoon | |
US20160024149A1 (en) | Bioactive molecules produced by probiotic bacteria and methods for isolating and using the same | |
RU2483112C1 (en) | Method to produce lypopolysaccharide of plague agent | |
Armitage | Changes in the organization of the outer membrane of Proteus mirabilis during swarming: freeze-fracture structure and membrane fluidity analysis | |
JP3866337B2 (en) | Novel lipid A and LPS and photosynthetic bacteria producing the same | |
RU2028381C1 (en) | Method of preparing of galactan sulfated derivative | |
Poirier et al. | Biological and chemical comparison of butanol‐and phenol‐water extracted lipopolysaccharide from Capnocytophaga sputigena | |
WO2024058253A1 (en) | Composition comprising lipopolysaccharide | |
Jabbar et al. | Fatty acid profiling of lipid A isolated from indigenous Salmonella Typhi strain by gas chromatography mass spectrometry. | |
Osada et al. | A possible role of glycolipids in epithelial cell penetration by virulent Shigella flexneri 2a | |
RU2231364C2 (en) | Method for preparing meliodosis pathogen capsule substance |