SU1634713A1 - Method for preparing restriction endonuclease - Google Patents

Method for preparing restriction endonuclease Download PDF

Info

Publication number
SU1634713A1
SU1634713A1 SU884498140A SU4498140A SU1634713A1 SU 1634713 A1 SU1634713 A1 SU 1634713A1 SU 884498140 A SU884498140 A SU 884498140A SU 4498140 A SU4498140 A SU 4498140A SU 1634713 A1 SU1634713 A1 SU 1634713A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
biomass
enzyme
xba
target product
yield
Prior art date
Application number
SU884498140A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Валентина Кузьминична Михайлова
Original Assignee
Научно-Исследовательский Конструкторско-Технологический Институт Биологически Активных Веществ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-Исследовательский Конструкторско-Технологический Институт Биологически Активных Веществ filed Critical Научно-Исследовательский Конструкторско-Технологический Институт Биологически Активных Веществ
Priority to SU884498140A priority Critical patent/SU1634713A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1634713A1 publication Critical patent/SU1634713A1/en

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биохимии и биотехнологии, касаетс  способа получени  эндонуклеазы рестрикции ХЬа I из биомассы клеток Xanthomonas badrii штамм ВКПМ В-2754 (АТСС 11672) и может быть использовано в генной инженерии и молекул рной биологии. Целью изобретени   вл етс  упрощение процесса с одновременным повышением выхода и качества целевого продукта. Дл  этого биомассу Xanthomonas badrii разрушают ультразвуком, полученный клеточный гомогенат фракционируют в двухфазной системе, содержащей 7%-ный полиэтиленгликоль и 2%-ный декстран в присутствии 0,35-0,42 М NaCI, хроматографиче- скую очистку препарата осуществл ют на гепаринсефарозе путем нанесени  фермента на аффинный сорбент, уравновешенный ЮмМ трис-HCI буфером с рН 7,2 с последующим концентрированием целевого продукта диализом против 50%-ного раствора глицерина. Выход эндонуклеазы рестрикции ХВа 1 составл ет 12-15 тыс.ед./г биомассы. Препарат свободен от примесей неспецифических эндо-и энзонуклеаз (ЛThis invention relates to biochemistry and biotechnology, concerns a method for producing the restriction enzyme XBa I from the biomass of cells Xanthomonas badrii, strain VKPM B-2754 (ATCC 11672), and can be used in genetic engineering and molecular biology. The aim of the invention is to simplify the process while increasing the yield and quality of the target product. To do this, Xanthomonas badrii biomass is disrupted by ultrasound, the resulting cell homogenate is fractionated in a two-phase system containing 7% polyethylene glycol and 2% dextran in the presence of 0.35-0.42 M NaCI, the chromatographic purification of the preparation is carried out on heparin sepharose by applying the enzyme to an affinity sorbent equilibrated with YumM tris-HCl buffer with a pH of 7.2, followed by concentration of the target product by dialysis against a 50% glycerin solution. The yield of the restriction endonuclease XBa 1 is 12-15 thousand units / g biomass. The drug is free from impurities of nonspecific endo and enzonucleases (L

Description

Изобретение относитс  к биохимии и биотехнологии, касаетс  способа получени  эндонуклеазы рестрикции ХЬа I из биомассы Xanthomonas badrii и может быть использовано в генной инженерии и молекул рной биологии.This invention relates to biochemistry and biotechnology, concerns a method for producing the restriction enzyme XBa I from Xanthomonas badrii biomass, and can be used in genetic engineering and molecular biology.

Цель изобретени  - упрощение процесса с одновременным повышением выхода и качества целевого продукта.The purpose of the invention is to simplify the process while increasing the yield and quality of the target product.

Способ осуществл ют следующим образом .The method is carried out as follows.

Биомассу клеток X.badrii штамм ВКПМ В-2754 (АТСС 11672) разрушают с помощью ультразвука, затем к клеточному гомогенату добавл ют концентрированную смесь поли- этиленгликол  и декстрана в калий-фосфатном буфере, рН 7,4 до конечной концентрации в смеси полиэтиленгликол  7%, декстрана 2% и NaCI до концентрацииThe biomass of X.badrii cells, the strain VKPM B-2754 (ATCC 11672), is destroyed by ultrasound, then a concentrated mixture of polyethylene glycol and dextran in potassium phosphate buffer, pH 7.4, is added to the cell homogenate to a final concentration of 7% in polyethylene glycol mixture , dextran 2% and NaCI to concentration

0,35-0,42 М. После тщательного перемешивани  смеск центрифугируют при lOOOOg в течение 20 мин, верхнюю полиэтиленглико- левую фазу, содержащую целевой продукт, собирают, разбавл ют буфером, приливают гепаринсефарозу, предварительно уравновешенную 10 мМ трис-HCI, рН 7.2 и этой суспензией набивают колонку (нанесение в объеме), провод т элюцию белков линейным градиентом концентрации NaCI от 0 до 0,6 М в буфере. Фракции, содержащие эндо- нуклеазу ХЬа I собирают и концентрируют диализом против 50%-ного раствора глицерина в буфере.0.35-0.42 M. After thorough mixing, the mixture is centrifuged at lOOOOg for 20 minutes, the upper polyethylene glycol phase containing the desired product is collected, diluted with buffer, heparin-sepharose, previously equilibrated with 10 mM Tris-HCl, pH 7.2, is poured. and this suspension is packed into the column (deposition in volume), and the proteins are eluted with a linear NaCI concentration gradient from 0 to 0.6 M in the buffer. The fractions containing endo-nuclease XA I are collected and concentrated by dialysis against a 50% glycerol buffer solution.

Выход фермента из 10 г клеток составл ет 120-150 тыс.ед.акт. Хранитс  препарат при -20(±2)°С в течение 6 мес без снижени  активности. Свободен от значительных примесей неспецифических эндонуклеаз: обраОThe output of the enzyme from 10 g of cells is 120-150 thousand units of act. The preparation is stored at -20 (± 2) ° C for 6 months without a decrease in activity. Free from significant impurities of nonspecific endonucleases: curing

соwith

ь. |s |

GJGj

ботка ДНК фага Т7 50-кратным избытком фермента в течение 20 ч (1000-кратный избыток ) при 37°С не измен ет специфической картины гидролиза.Treatment of phage T7 DNA with a 50-fold excess enzyme for 20 hours (1000-fold excess) at 37 ° C does not change the specific hydrolysis pattern.

Предлагаемый способ иллюстрируетс  следующими примерами.The proposed method is illustrated by the following examples.

Пример 1. Все операции по очистке фермента провод т при 4±4°С.Example 1. All enzyme purification operations were carried out at 4 ± 4 ° C.

Активность рестриктазы ХЬа I тестируют методом гидролиза ДНК фага Т7 с последующим разделением полученных фрагментов электрофорезом в 0,8%-ном агарозном геле. За единицу активности принимали минимальное количество фермента, необходимое дл  посто нного специфического гидролиза 1 мкг ДНКфагаТ7втечение 1 ч 37 ±1°С.The activity of restriction enzyme XBa I is tested by the method of hydrolysis of DNA of phage T7, followed by separation of the obtained fragments by electrophoresis in a 0.8% agarose gel. The minimum amount of enzyme required for constant specific hydrolysis of 1 μg of DNA phage T7 for 1 h 37 ± 1 ° C was taken per unit of activity.

10 г замороженной биомассы X.badrii ВКПМ В-2754 суспендируют в 20 мл 10 мМ трис-HCI, рН 7,9, содержащего 1 мМ ЭДТА и 0,01 М 2-меркаптоэтанола, добавл ют тритон Х-100 до конечной концентрации 0,1 % и обрабатывают ультразвуком при частоте 20 кГц и амплитуде 17±2 мкм несколько раз до исчезновени  в зкости в биомассе, периодически охлажда  смесь дл  предотвращени  нагревани  смеси и инактивации фермента. К клеточному гомо- генату при посто нном перемешивании приливают 30 мл смеси, содержащей 21% полиэтиленгликол  и 6% декстрана, 7,88 мл 4М раствора NaCI (до конечной концентрации последних: полиэтиленгликол  7%, декстрана 2%, NaCI 0,35 М) и 22,12 мл деионизованной воды.10 g of frozen biomass X. badrii VKPM B-2754 are suspended in 20 ml of 10 mM Tris-HCl, pH 7.9, containing 1 mM EDTA and 0.01 M 2-mercaptoethanol, triton X-100 is added to a final concentration of 0, 1% and sonicated at a frequency of 20 kHz and an amplitude of 17 ± 2 µm several times until the viscosity disappears in the biomass, periodically cooling the mixture to prevent the mixture from heating and inactivating the enzyme. Under continuous stirring, 30 ml of a mixture containing 21% polyethylene glycol and 6% dextran, 7.88 ml of 4M NaCI solution (to the final concentration of the latter: polyethylene glycol 7%, dextran 2%, NaCI 0.35 M) are poured to the cellular homogenate and 22.12 ml deionized water.

Смесь продолжают перемешивать в течение 20 мин, затем центрифугируют при 10000 об/мин в течение 20 мин. Верхнюю фазу отбирают, разбавл ют в / раза буфером 10 мМ трис-HCI, рН 7,2, содержащим 10 мМ 2-меркаптоэтанол, 0,1 мМ ЭДТА и 10% глицерина (буфер А) и добавл ют туда же 10 мл гепарин-сефарозы, предварительно уравновешенной буфером А.Смесь перемешивают на магнитной мешалке в течение 20 мин и набивают в колонку (2,0 Х15 см). Колонку промывают 100 мл 10 мМ трис-HCI, рН 7,5, содержащим 10 мМ 2-меркаптоэтанол , 0,1 мМ ЭДТА и 10% глицерина (буфер Б), фермент элюируют линейным градиентом концентрации NaCI от 0 до 0,6 М в буфере Б. Общий объем градиента 100 мл. Скорость нанесени , промывки и элюции 15 мл/ч. Собирают фракции объемом по 3 мл и анализируют на активность ретриктазы ХЬа I. Фракции, содержащие целевой продукт , которые элюируютс  в диапазоне концентрации NaCI 0,3-0,4 М, объедин ют(v 15 мл), перенос т в диализный мешок и диали- зуют против 200 мл 50%-ного глицерина в 10 мМ трис-HCI, рН 7,4, содержащим 0,1 мМThe mixture is continued to stir for 20 minutes, then centrifuged at 10,000 rpm for 20 minutes. The upper phase is taken, diluted v / fold with 10 mM Tris-HCl buffer, pH 7.2, containing 10 mM 2-mercaptoethanol, 0.1 mM EDTA and 10% glycerol (buffer A) and 10 ml of heparin is added. Sepharose, pre-equilibrated with buffer A. The mixture is stirred on a magnetic stirrer for 20 minutes and packed into a column (2.0 x 15 cm). The column is washed with 100 ml of 10 mM Tris-HCl, pH 7.5, containing 10 mM 2-mercaptoethanol, 0.1 mM EDTA and 10% glycerol (buffer B), the enzyme is eluted with a linear gradient of NaCl concentration from 0 to 0.6 M buffer B. Total gradient volume 100 ml. The rate of application, washing and elution is 15 ml / h. Collect fractions with a volume of 3 ml and analyze the activity of XAa I retrictase. Fractions containing the desired product, which elute in the range of NaCI concentration of 0.3-0.4 M, are pooled (v 15 ml), transferred to the dialysis bag and dialy - against 200 ml of 50% glycerol in 10 mM Tris-HCl, pH 7.4, containing 0.1 mM

ЭДТА 0,5 М KCI, 0,01 М 2-меркаптоэтанола (буфер С), Врем  диализа 14-17 ч.EDTA 0.5 M KCI, 0.01 M 2-mercaptoethanol (buffer C), dialysis time 14-17 h.

Выход фермента составл ет 120 тыс. ед. акт. Концентраци  фермента 24000 ед. акт./мл.The enzyme yield is 120 thousand units. Act. The enzyme concentration is 24,000 units. act./ml.

Полученный препарат эндонуклеазы рестрикции ХЬа I хран т при -20°С в течение 6 мес без снижени  активности. Содержание примесей неспецифических нуклеаз в препарате оценивали двум  способами: обработкой ДНК фага 17 избытками фермента в течение длительного времени и методом рестрикци -легирование-повторна  рестрикци . Установлено, что при обработке 1 мкг ДНК фага Т7 50 ед.акт. препарата рестриктазы ХЬа I в течение 20 ч при 37°С не измен етс  четка  специфическа  картина гидролиза. Фрагменты, получаемые при обработке 1 мкг ДНК фага Т7 30 ед. акт препарата ХЬа I в течение 17 ч при 37°С,The resulting preparation of the restriction enzyme XBa I is stored at -20 ° C for 6 months without a decrease in activity. The content of impurities of nonspecific nucleases in the preparation was evaluated in two ways: by treating the DNA of phage 17 with excess enzyme for a long time and using the restriction-doping-re-restriction method. It was established that when processing 1 μg of DNA of phage T7 50 units of act. For 20 hours at 37 ° C, the XBa I restrictase drug does not change a clear specific pattern of hydrolysis. Fragments obtained by processing 1 μg of DNA phage T7 30 units. the act of preparation HBA I for 17 h at 37 ° C,

лигируютс  ДНК-лигазой фага Т4 не менееare ligated with DNA ligase of phage T4 not less than

чем на 90% и полностью специфически гидролизуютс  при обработке препаратом ХЬа I.than 90% and fully specifically hydrolyzed when treated with preparation XBa I.

Пример 2, Эндонуклеазу рестрикцииExample 2 Restriction Endonuclease

ХЬа I выдел ют из 10 г клеток аналогичноXBa I is isolated from 10 g of cells in a similar manner.

примеру 1 за исключением того, что к клеточному гомогенату приливают 9,45 мл 4 М NaCI (до конечной концентрации 0,42 М) и 20,55 мл деионизованной воды.Example 1, except that 9.45 ml of 4 M NaCI (to a final concentration of 0.42 M) and 20.55 ml of deionized water are added to the cell homogenate.

Примеси неспецифических эндонуклеазImpurities of non-specific endonucleases

и фосфатаз в препарате не обнаруживаютс .and phosphatases are not detected in the preparation.

Claims (1)

Формула изобретени  Способ получени  эндонуклеазы рестрикции ХЬа I, предусматривающий разрушение клеток продуцента Xanthomonas badrli ультразвуком, фракционирование клеточного гомогената в двухфазной системе , содержащей 7% полиэтиленгликол  и 2% декстрана, в присутствии NaCI, хроматографическую очистку на сорбенте, уравновешенном буфером, и диализ против 50%-ного раствора глицерина, отличающийс  тем, что, с целью упрощени  процесса с одновременным повышениемThe invention The method of obtaining the restriction enzyme XBa I, involving the destruction of the cells of the producer Xanthomonas badrli with ultrasound, the fractionation of the cell homogenate in a two-phase system containing 7% polyethylene glycol and 2% dextran, in the presence of NaCl, chromatographic purification of the sorbent, with a buffer. a solution of glycerol, characterized in that, in order to simplify the process while simultaneously increasing выхода и качества целевого продукта, в качестве продуцента используют штамм Xanthomonas badrli ВКПМ-2754, фракционирование клеточного гомогената провод т в присутствии 0,35-0,42 М NaCI, хроматог5 рафическую очистку фермента осуществл ют на гепаринсефарозе, уравновешенной 10 мМ трис-HCI буфером рН 7,2.yield and quality of the target product, Xanthomonas badrli VKPM-2754 strain was used as a producer, cell homogenate was fractionated in the presence of 0.35-0.42 M NaCI, chromatographic purification of the enzyme was performed on heparinsepharose, balanced with 10 mM Tris-HCl buffer pH 7.2.
SU884498140A 1988-10-26 1988-10-26 Method for preparing restriction endonuclease SU1634713A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884498140A SU1634713A1 (en) 1988-10-26 1988-10-26 Method for preparing restriction endonuclease

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884498140A SU1634713A1 (en) 1988-10-26 1988-10-26 Method for preparing restriction endonuclease

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1634713A1 true SU1634713A1 (en) 1991-03-15

Family

ID=21405893

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU884498140A SU1634713A1 (en) 1988-10-26 1988-10-26 Method for preparing restriction endonuclease

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1634713A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Майстренко В.Ф. и др. Метод выделени высокоочищенной рестриктазы Xbat. - Биотехнологи , 1986, № 1, 26-30. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Remy et al. Purification of yeast phenylalanyl-tRNA synthetase by affinity chromatography, on a tRNAPhe-sepharose column
Jordan et al. Sequence and conformation of 5 S RNA from Chlorella cytoplasmic ribosomes: comparison with other 5 S RNA molecules
TWI653241B (en) Specific affinity chromatography
SU1634713A1 (en) Method for preparing restriction endonuclease
Sulkowski et al. Venom exonuclease (phosphodiesterase) immobilized on concanavalin-A-sepharose
Bode et al. Crude aminoacylase from Aspergillus sp. is a mixture of hydrolases
JP3817269B2 (en) Purification method of thrombin-like protease from snake venom
SU1613490A1 (en) Method of producing endonuclease of nna1 restriction
RU2136749C1 (en) Method of restriction endonuclease producing
NL8103540A (en) BACTERIAL ENDOPROTEINASE-LYS-C AND METHOD FOR OBTAINING THEREOF.
le Goffic et al. Affinity chromatography of β-lactamases
Pogell et al. [32] Specific elution with substrate
Markey Rapid purification fo deoxyribonuclease I using fast protein liquid chromatography
US4080261A (en) Novel endonuclease and process for production thereof
Beyrakhova et al. Biotechnological production of acetylated thymosin β4
SU1655986A1 (en) Method for isolation of endonuclease restriction apa 1
RU2274656C1 (en) Method for preparing highly purified recombinant polypeptide with property of human tumor necrosis factor-alpha
RU2233877C2 (en) Method for preparing endonuclease restriction sst 12i
US7365173B2 (en) Method for the production of pure virally inactivated butyrylcholinesterase
Pozidis et al. Sequence-specific DNA affinity chromatography: application of a group-specific adsorbent for the isolation of restriction endonucleases
RU2184777C2 (en) Method of endonuclease restriction bse 21 i preparing
JPS6317436B2 (en)
SU1495377A1 (en) Method of producing ribonuclease from escherichia coli
Moore et al. A quick method for purifying bile salt-activated lipases
RU2101292C1 (en) Method of isolation of recombinant human tumor necrosis alpha-factor