SU1634713A1 - Method for preparing restriction endonuclease - Google Patents
Method for preparing restriction endonuclease Download PDFInfo
- Publication number
- SU1634713A1 SU1634713A1 SU884498140A SU4498140A SU1634713A1 SU 1634713 A1 SU1634713 A1 SU 1634713A1 SU 884498140 A SU884498140 A SU 884498140A SU 4498140 A SU4498140 A SU 4498140A SU 1634713 A1 SU1634713 A1 SU 1634713A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- biomass
- enzyme
- xba
- target product
- yield
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биохимии и биотехнологии, касаетс способа получени эндонуклеазы рестрикции ХЬа I из биомассы клеток Xanthomonas badrii штамм ВКПМ В-2754 (АТСС 11672) и может быть использовано в генной инженерии и молекул рной биологии. Целью изобретени вл етс упрощение процесса с одновременным повышением выхода и качества целевого продукта. Дл этого биомассу Xanthomonas badrii разрушают ультразвуком, полученный клеточный гомогенат фракционируют в двухфазной системе, содержащей 7%-ный полиэтиленгликоль и 2%-ный декстран в присутствии 0,35-0,42 М NaCI, хроматографиче- скую очистку препарата осуществл ют на гепаринсефарозе путем нанесени фермента на аффинный сорбент, уравновешенный ЮмМ трис-HCI буфером с рН 7,2 с последующим концентрированием целевого продукта диализом против 50%-ного раствора глицерина. Выход эндонуклеазы рестрикции ХВа 1 составл ет 12-15 тыс.ед./г биомассы. Препарат свободен от примесей неспецифических эндо-и энзонуклеаз (ЛThis invention relates to biochemistry and biotechnology, concerns a method for producing the restriction enzyme XBa I from the biomass of cells Xanthomonas badrii, strain VKPM B-2754 (ATCC 11672), and can be used in genetic engineering and molecular biology. The aim of the invention is to simplify the process while increasing the yield and quality of the target product. To do this, Xanthomonas badrii biomass is disrupted by ultrasound, the resulting cell homogenate is fractionated in a two-phase system containing 7% polyethylene glycol and 2% dextran in the presence of 0.35-0.42 M NaCI, the chromatographic purification of the preparation is carried out on heparin sepharose by applying the enzyme to an affinity sorbent equilibrated with YumM tris-HCl buffer with a pH of 7.2, followed by concentration of the target product by dialysis against a 50% glycerin solution. The yield of the restriction endonuclease XBa 1 is 12-15 thousand units / g biomass. The drug is free from impurities of nonspecific endo and enzonucleases (L
Description
Изобретение относитс к биохимии и биотехнологии, касаетс способа получени эндонуклеазы рестрикции ХЬа I из биомассы Xanthomonas badrii и может быть использовано в генной инженерии и молекул рной биологии.This invention relates to biochemistry and biotechnology, concerns a method for producing the restriction enzyme XBa I from Xanthomonas badrii biomass, and can be used in genetic engineering and molecular biology.
Цель изобретени - упрощение процесса с одновременным повышением выхода и качества целевого продукта.The purpose of the invention is to simplify the process while increasing the yield and quality of the target product.
Способ осуществл ют следующим образом .The method is carried out as follows.
Биомассу клеток X.badrii штамм ВКПМ В-2754 (АТСС 11672) разрушают с помощью ультразвука, затем к клеточному гомогенату добавл ют концентрированную смесь поли- этиленгликол и декстрана в калий-фосфатном буфере, рН 7,4 до конечной концентрации в смеси полиэтиленгликол 7%, декстрана 2% и NaCI до концентрацииThe biomass of X.badrii cells, the strain VKPM B-2754 (ATCC 11672), is destroyed by ultrasound, then a concentrated mixture of polyethylene glycol and dextran in potassium phosphate buffer, pH 7.4, is added to the cell homogenate to a final concentration of 7% in polyethylene glycol mixture , dextran 2% and NaCI to concentration
0,35-0,42 М. После тщательного перемешивани смеск центрифугируют при lOOOOg в течение 20 мин, верхнюю полиэтиленглико- левую фазу, содержащую целевой продукт, собирают, разбавл ют буфером, приливают гепаринсефарозу, предварительно уравновешенную 10 мМ трис-HCI, рН 7.2 и этой суспензией набивают колонку (нанесение в объеме), провод т элюцию белков линейным градиентом концентрации NaCI от 0 до 0,6 М в буфере. Фракции, содержащие эндо- нуклеазу ХЬа I собирают и концентрируют диализом против 50%-ного раствора глицерина в буфере.0.35-0.42 M. After thorough mixing, the mixture is centrifuged at lOOOOg for 20 minutes, the upper polyethylene glycol phase containing the desired product is collected, diluted with buffer, heparin-sepharose, previously equilibrated with 10 mM Tris-HCl, pH 7.2, is poured. and this suspension is packed into the column (deposition in volume), and the proteins are eluted with a linear NaCI concentration gradient from 0 to 0.6 M in the buffer. The fractions containing endo-nuclease XA I are collected and concentrated by dialysis against a 50% glycerol buffer solution.
Выход фермента из 10 г клеток составл ет 120-150 тыс.ед.акт. Хранитс препарат при -20(±2)°С в течение 6 мес без снижени активности. Свободен от значительных примесей неспецифических эндонуклеаз: обраОThe output of the enzyme from 10 g of cells is 120-150 thousand units of act. The preparation is stored at -20 (± 2) ° C for 6 months without a decrease in activity. Free from significant impurities of nonspecific endonucleases: curing
соwith
ь. |s |
GJGj
ботка ДНК фага Т7 50-кратным избытком фермента в течение 20 ч (1000-кратный избыток ) при 37°С не измен ет специфической картины гидролиза.Treatment of phage T7 DNA with a 50-fold excess enzyme for 20 hours (1000-fold excess) at 37 ° C does not change the specific hydrolysis pattern.
Предлагаемый способ иллюстрируетс следующими примерами.The proposed method is illustrated by the following examples.
Пример 1. Все операции по очистке фермента провод т при 4±4°С.Example 1. All enzyme purification operations were carried out at 4 ± 4 ° C.
Активность рестриктазы ХЬа I тестируют методом гидролиза ДНК фага Т7 с последующим разделением полученных фрагментов электрофорезом в 0,8%-ном агарозном геле. За единицу активности принимали минимальное количество фермента, необходимое дл посто нного специфического гидролиза 1 мкг ДНКфагаТ7втечение 1 ч 37 ±1°С.The activity of restriction enzyme XBa I is tested by the method of hydrolysis of DNA of phage T7, followed by separation of the obtained fragments by electrophoresis in a 0.8% agarose gel. The minimum amount of enzyme required for constant specific hydrolysis of 1 μg of DNA phage T7 for 1 h 37 ± 1 ° C was taken per unit of activity.
10 г замороженной биомассы X.badrii ВКПМ В-2754 суспендируют в 20 мл 10 мМ трис-HCI, рН 7,9, содержащего 1 мМ ЭДТА и 0,01 М 2-меркаптоэтанола, добавл ют тритон Х-100 до конечной концентрации 0,1 % и обрабатывают ультразвуком при частоте 20 кГц и амплитуде 17±2 мкм несколько раз до исчезновени в зкости в биомассе, периодически охлажда смесь дл предотвращени нагревани смеси и инактивации фермента. К клеточному гомо- генату при посто нном перемешивании приливают 30 мл смеси, содержащей 21% полиэтиленгликол и 6% декстрана, 7,88 мл 4М раствора NaCI (до конечной концентрации последних: полиэтиленгликол 7%, декстрана 2%, NaCI 0,35 М) и 22,12 мл деионизованной воды.10 g of frozen biomass X. badrii VKPM B-2754 are suspended in 20 ml of 10 mM Tris-HCl, pH 7.9, containing 1 mM EDTA and 0.01 M 2-mercaptoethanol, triton X-100 is added to a final concentration of 0, 1% and sonicated at a frequency of 20 kHz and an amplitude of 17 ± 2 µm several times until the viscosity disappears in the biomass, periodically cooling the mixture to prevent the mixture from heating and inactivating the enzyme. Under continuous stirring, 30 ml of a mixture containing 21% polyethylene glycol and 6% dextran, 7.88 ml of 4M NaCI solution (to the final concentration of the latter: polyethylene glycol 7%, dextran 2%, NaCI 0.35 M) are poured to the cellular homogenate and 22.12 ml deionized water.
Смесь продолжают перемешивать в течение 20 мин, затем центрифугируют при 10000 об/мин в течение 20 мин. Верхнюю фазу отбирают, разбавл ют в / раза буфером 10 мМ трис-HCI, рН 7,2, содержащим 10 мМ 2-меркаптоэтанол, 0,1 мМ ЭДТА и 10% глицерина (буфер А) и добавл ют туда же 10 мл гепарин-сефарозы, предварительно уравновешенной буфером А.Смесь перемешивают на магнитной мешалке в течение 20 мин и набивают в колонку (2,0 Х15 см). Колонку промывают 100 мл 10 мМ трис-HCI, рН 7,5, содержащим 10 мМ 2-меркаптоэтанол , 0,1 мМ ЭДТА и 10% глицерина (буфер Б), фермент элюируют линейным градиентом концентрации NaCI от 0 до 0,6 М в буфере Б. Общий объем градиента 100 мл. Скорость нанесени , промывки и элюции 15 мл/ч. Собирают фракции объемом по 3 мл и анализируют на активность ретриктазы ХЬа I. Фракции, содержащие целевой продукт , которые элюируютс в диапазоне концентрации NaCI 0,3-0,4 М, объедин ют(v 15 мл), перенос т в диализный мешок и диали- зуют против 200 мл 50%-ного глицерина в 10 мМ трис-HCI, рН 7,4, содержащим 0,1 мМThe mixture is continued to stir for 20 minutes, then centrifuged at 10,000 rpm for 20 minutes. The upper phase is taken, diluted v / fold with 10 mM Tris-HCl buffer, pH 7.2, containing 10 mM 2-mercaptoethanol, 0.1 mM EDTA and 10% glycerol (buffer A) and 10 ml of heparin is added. Sepharose, pre-equilibrated with buffer A. The mixture is stirred on a magnetic stirrer for 20 minutes and packed into a column (2.0 x 15 cm). The column is washed with 100 ml of 10 mM Tris-HCl, pH 7.5, containing 10 mM 2-mercaptoethanol, 0.1 mM EDTA and 10% glycerol (buffer B), the enzyme is eluted with a linear gradient of NaCl concentration from 0 to 0.6 M buffer B. Total gradient volume 100 ml. The rate of application, washing and elution is 15 ml / h. Collect fractions with a volume of 3 ml and analyze the activity of XAa I retrictase. Fractions containing the desired product, which elute in the range of NaCI concentration of 0.3-0.4 M, are pooled (v 15 ml), transferred to the dialysis bag and dialy - against 200 ml of 50% glycerol in 10 mM Tris-HCl, pH 7.4, containing 0.1 mM
ЭДТА 0,5 М KCI, 0,01 М 2-меркаптоэтанола (буфер С), Врем диализа 14-17 ч.EDTA 0.5 M KCI, 0.01 M 2-mercaptoethanol (buffer C), dialysis time 14-17 h.
Выход фермента составл ет 120 тыс. ед. акт. Концентраци фермента 24000 ед. акт./мл.The enzyme yield is 120 thousand units. Act. The enzyme concentration is 24,000 units. act./ml.
Полученный препарат эндонуклеазы рестрикции ХЬа I хран т при -20°С в течение 6 мес без снижени активности. Содержание примесей неспецифических нуклеаз в препарате оценивали двум способами: обработкой ДНК фага 17 избытками фермента в течение длительного времени и методом рестрикци -легирование-повторна рестрикци . Установлено, что при обработке 1 мкг ДНК фага Т7 50 ед.акт. препарата рестриктазы ХЬа I в течение 20 ч при 37°С не измен етс четка специфическа картина гидролиза. Фрагменты, получаемые при обработке 1 мкг ДНК фага Т7 30 ед. акт препарата ХЬа I в течение 17 ч при 37°С,The resulting preparation of the restriction enzyme XBa I is stored at -20 ° C for 6 months without a decrease in activity. The content of impurities of nonspecific nucleases in the preparation was evaluated in two ways: by treating the DNA of phage 17 with excess enzyme for a long time and using the restriction-doping-re-restriction method. It was established that when processing 1 μg of DNA of phage T7 50 units of act. For 20 hours at 37 ° C, the XBa I restrictase drug does not change a clear specific pattern of hydrolysis. Fragments obtained by processing 1 μg of DNA phage T7 30 units. the act of preparation HBA I for 17 h at 37 ° C,
лигируютс ДНК-лигазой фага Т4 не менееare ligated with DNA ligase of phage T4 not less than
чем на 90% и полностью специфически гидролизуютс при обработке препаратом ХЬа I.than 90% and fully specifically hydrolyzed when treated with preparation XBa I.
Пример 2, Эндонуклеазу рестрикцииExample 2 Restriction Endonuclease
ХЬа I выдел ют из 10 г клеток аналогичноXBa I is isolated from 10 g of cells in a similar manner.
примеру 1 за исключением того, что к клеточному гомогенату приливают 9,45 мл 4 М NaCI (до конечной концентрации 0,42 М) и 20,55 мл деионизованной воды.Example 1, except that 9.45 ml of 4 M NaCI (to a final concentration of 0.42 M) and 20.55 ml of deionized water are added to the cell homogenate.
Примеси неспецифических эндонуклеазImpurities of non-specific endonucleases
и фосфатаз в препарате не обнаруживаютс .and phosphatases are not detected in the preparation.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884498140A SU1634713A1 (en) | 1988-10-26 | 1988-10-26 | Method for preparing restriction endonuclease |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884498140A SU1634713A1 (en) | 1988-10-26 | 1988-10-26 | Method for preparing restriction endonuclease |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1634713A1 true SU1634713A1 (en) | 1991-03-15 |
Family
ID=21405893
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU884498140A SU1634713A1 (en) | 1988-10-26 | 1988-10-26 | Method for preparing restriction endonuclease |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1634713A1 (en) |
-
1988
- 1988-10-26 SU SU884498140A patent/SU1634713A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Майстренко В.Ф. и др. Метод выделени высокоочищенной рестриктазы Xbat. - Биотехнологи , 1986, № 1, 26-30. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Remy et al. | Purification of yeast phenylalanyl-tRNA synthetase by affinity chromatography, on a tRNAPhe-sepharose column | |
Jordan et al. | Sequence and conformation of 5 S RNA from Chlorella cytoplasmic ribosomes: comparison with other 5 S RNA molecules | |
TWI653241B (en) | Specific affinity chromatography | |
SU1634713A1 (en) | Method for preparing restriction endonuclease | |
Sulkowski et al. | Venom exonuclease (phosphodiesterase) immobilized on concanavalin-A-sepharose | |
Bode et al. | Crude aminoacylase from Aspergillus sp. is a mixture of hydrolases | |
JP3817269B2 (en) | Purification method of thrombin-like protease from snake venom | |
SU1613490A1 (en) | Method of producing endonuclease of nna1 restriction | |
RU2136749C1 (en) | Method of restriction endonuclease producing | |
NL8103540A (en) | BACTERIAL ENDOPROTEINASE-LYS-C AND METHOD FOR OBTAINING THEREOF. | |
le Goffic et al. | Affinity chromatography of β-lactamases | |
Pogell et al. | [32] Specific elution with substrate | |
Markey | Rapid purification fo deoxyribonuclease I using fast protein liquid chromatography | |
US4080261A (en) | Novel endonuclease and process for production thereof | |
Beyrakhova et al. | Biotechnological production of acetylated thymosin β4 | |
SU1655986A1 (en) | Method for isolation of endonuclease restriction apa 1 | |
RU2274656C1 (en) | Method for preparing highly purified recombinant polypeptide with property of human tumor necrosis factor-alpha | |
RU2233877C2 (en) | Method for preparing endonuclease restriction sst 12i | |
US7365173B2 (en) | Method for the production of pure virally inactivated butyrylcholinesterase | |
Pozidis et al. | Sequence-specific DNA affinity chromatography: application of a group-specific adsorbent for the isolation of restriction endonucleases | |
RU2184777C2 (en) | Method of endonuclease restriction bse 21 i preparing | |
JPS6317436B2 (en) | ||
SU1495377A1 (en) | Method of producing ribonuclease from escherichia coli | |
Moore et al. | A quick method for purifying bile salt-activated lipases | |
RU2101292C1 (en) | Method of isolation of recombinant human tumor necrosis alpha-factor |