SU1573386A1 - Method of disclosing myelonized nerve in histologic preparation - Google Patents
Method of disclosing myelonized nerve in histologic preparation Download PDFInfo
- Publication number
- SU1573386A1 SU1573386A1 SU884423594A SU4423594A SU1573386A1 SU 1573386 A1 SU1573386 A1 SU 1573386A1 SU 884423594 A SU884423594 A SU 884423594A SU 4423594 A SU4423594 A SU 4423594A SU 1573386 A1 SU1573386 A1 SU 1573386A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- solution
- nerve
- myelonized
- disclosing
- hours
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к медицине, а именно к гистологии. Целью вл етс полное вы вление миелиновых волокон. Это достигаетс тем, что фиксацию провод т в течение 0,5-16 ч в 0,2%-ном растворе четырехокиси осми . Далее срезы контрастируют в 0,1%-ном растворе гематоксилина. Миелиновые волокна имеют четкую структуру, окрашены в черный цвет, хорошо дифференцируютс на светлом серо-коричневом фоне.This invention relates to medicine, in particular to histology. The goal is the complete detection of myelin fibers. This is achieved by fixing it for 0.5–16 hours in a 0.2% solution of osmium tetroxide. Next, the sections are contrasted in a 0.1% hematoxylin solution. Myelin fibers have a clear structure, are colored black, and are well differentiated against a light gray-brown background.
Description
Изобретение относитс к медицине, а именно к гистологии.This invention relates to medicine, in particular to histology.
Цель изобретени - полное вы вление миелиновых волокон.The purpose of the invention is the complete detection of myelin fibers.
Способ осуществл ют следующим образом .The method is carried out as follows.
Из нефиксированных кусочков тканей изготавливают гистологические срезы толщиной 10-50 мкм с помощью криостата или замораживающего микротома . Срезы помещают в 0,2%-ный раствор четырехоксиси осми , приготовленный на 0,1%-ном растворе натри хлорида, на 0,5-16 ч. Навлеченные из фиксирующего раствора срезы споласкивают в тргх порци х дистиллированной воды и помещают в 0,1%-ный раствор гематоксилина (свежеприготовленного) на 0,5-6 ч. При потемнении раствора гематоксилина его замен ют свежим. После извлечени срезов из раствораHistological sections 10-50 µm thick are made of unfixed pieces of tissue using a cryostat or a freezing microtome. Sections are placed in a 0.2% solution of tetroxidium osmium prepared in 0.1% sodium chloride solution for 0.5–16 hours. The slices brought in from the fixing solution are rinsed in trgh portions of distilled water and placed in 0, 1% hematoxylin solution (freshly prepared) for 0.5-6 hours. When the hematoxylin solution darkens, it is replaced with fresh one. After removing the sections from the solution
красител их споласкивают в 2-3 порци х дистиллированной воды и провод т дифференцировку окраски по Палю. Степень дифференцировки контролируют под микроскопом, а в случае ее недостаточности процедуру повтор ют. Срезы обезвоживают в спиртах восход щей концентрации, провод т через ксилол и заключают в бальзам Результат - миелинизированные нервные волокна окрашивают в интенсивно-черный цвет, фон светло-серо-коричневый. Окраска обусловлена образованием лака , о чем свидетельствует то, что крас щие вещества не удал ютс из срезов этанолом, ацетоном, ксилолом. Возможно докрашивание препаратов кармином или сафранином, что облегчает изучение взаимоотношени миелиновых нервных проводников и других тканевых структур.their dye is rinsed in 2-3 portions of distilled water and the colorization is carried out according to Palu. The degree of differentiation is controlled under a microscope, and if it is not sufficient, the procedure is repeated. The sections were dehydrated in alcohols of upward concentration, passed through xylene, and placed in a balm. The result is myelinated nerve fibers that are intensely black in color, the background is light gray-brown. The color is due to the formation of varnish, as evidenced by the fact that the coloring matter is not removed from the sections by ethanol, acetone, xylene. Painting with carmine or safranin is possible, which facilitates the study of the relationship between myelin nerve conductors and other tissue structures.
СПSP
JJ
00 0000 00
ооoo
3157338631573386
Пример 1. Биоптат кожи (регенерат ) фиксируют в течение 8 ч. Далее приготавливают гистологические срезы кожи, которые контрастировали в 0,1%-ном растворе гематоксилина в течение 4 ч.Example 1. Skin bioptat (regenerate) is fixed for 8 hours. Next, histological sections of the skin are prepared, which are contrasted in a 0.1% hematoxylin solution for 4 hours.
и рand p
имеют четкий черный цвет на серо-коричневом фоне.have a clear black color on a gray-brown background.
Способ позвол ет более четко окрасить структуру миелиновых нервных волокон. Позвол ет их вы вить более полно в исследуемой ткани.The method makes it possible to more clearly stain the structure of myelin nerve fibers. Allows you to draw them more fully in the studied tissue.
При микроскопии видны черные ми- елинизированные нервные волокна на фоне слабо-серо-коричневого фона. В миелиновых оболочках хорошо различимы узловые перехваты и насечки миелина , которые на поперечных срезах имеют вид колец или овалов,окружаю- щих неокрашенные осевые цилиндры.Microscopy reveals black myelinated nerve fibers on a background of a slightly gray-brown background. In the myelin sheaths, the nodal interceptions and notches of myelin are well distinguished, which in cross sections look like rings or ovals surrounding unpainted axial cylinders.
П и м е р 2. Биоптат продолговатого мозга фиксируют в течение 14ч Далее приготавливают гистологические срезы, которые контрастируют в 0,1%- ном -растворе гематоксилина в течение 6 ч. При микроскопии вы влены все миелиновые нервные волокна, которыеExample 2. An elongated brain biopsy specimen is fixed for 14 hours. Next, histological sections are prepared, which are contrasted in a 0.1% - hemotin solution of 6% for 6 hours. Microscopic examination revealed all myelinated nerve fibers that
Форму.л а изобретени Formula of invention
Способ вы влени миелинизирован- ных нервных волокон на гистологическом препарате путем фиксации в растворе четырехокиси осми с последующим контрастированием и просмотром под микроскопом, отличающийс 1 тем, что, с целью полного вы влени миелиновых волокон, фиксацию провод т в течение 0,5-16,0 ч, при этом в качестве фиксатора используют 0,2%-ный раствор четырехокиси осми , а контрастирование провод т в 0,1%-ном растворе гематоксилина.The method of detecting myelinated nerve fibers on a histological specimen by fixing in a solution of osmium tetroxide with subsequent contrasting and viewing under a microscope, 1 characterized in that, in order to fully detect myelin fibers, fixation is carried out for 0.5-16, 0 h, while a 0.2% osmium tetroxide solution is used as a fixative, and the contrast is carried out in a 0.1% hematoxylin solution.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU884423594A SU1573386A1 (en) | 1988-05-11 | 1988-05-11 | Method of disclosing myelonized nerve in histologic preparation |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU884423594A SU1573386A1 (en) | 1988-05-11 | 1988-05-11 | Method of disclosing myelonized nerve in histologic preparation |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| SU1573386A1 true SU1573386A1 (en) | 1990-06-23 |
Family
ID=21374220
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU884423594A SU1573386A1 (en) | 1988-05-11 | 1988-05-11 | Method of disclosing myelonized nerve in histologic preparation |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| SU (1) | SU1573386A1 (en) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2557931C2 (en) * | 2013-10-10 | 2015-07-27 | Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Амурская Государственная Медицинская Академия" Министерства Здравоохранения Российской Федерации | Method for additional electron-dense contrast enhancement of nucleic acids in nucleus and cytoplasm accompanying histochemical detection of sodium cations in cell and tissue ultrastructures |
| RU2595849C1 (en) * | 2015-06-23 | 2016-08-27 | Максим Викторович Гоман | Method for detection of nerve structures in tissue |
-
1988
- 1988-05-11 SU SU884423594A patent/SU1573386A1/en active
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Ромейс Б. Микроскопическа техника 1953, с.438-439. * |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2557931C2 (en) * | 2013-10-10 | 2015-07-27 | Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Амурская Государственная Медицинская Академия" Министерства Здравоохранения Российской Федерации | Method for additional electron-dense contrast enhancement of nucleic acids in nucleus and cytoplasm accompanying histochemical detection of sodium cations in cell and tissue ultrastructures |
| RU2595849C1 (en) * | 2015-06-23 | 2016-08-27 | Максим Викторович Гоман | Method for detection of nerve structures in tissue |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Young et al. | Laboratory: a new method for staining Negri bodies of rabies | |
| EP3164689B1 (en) | Novel methods of tissue processing for deep imaging | |
| McCann et al. | Fourier transform infrared microspectroscopy is a new way to look at plant cell walls | |
| Parsons et al. | The leg flexor muscle of Carcinus. II. Distribution of muscle fiber types | |
| Pötsch et al. | On pathways for small molecules into and out of human hair fibers | |
| Irving et al. | Intrinsic optical and passive electrical properties of cut frog twitch fibers. | |
| Parija et al. | Evaluation of lacto-phenol cotton blue for wet mount preparation of feces | |
| Cowdry | The relations of mitochondria and other cytoplasmic constituents in spinal ganglion cells of the pigeon... | |
| SU1573386A1 (en) | Method of disclosing myelonized nerve in histologic preparation | |
| Dunnigan | The use of Nile blue sulphate in the histochemical identification of phospholipids | |
| Di Tullio et al. | 1H NMR depth profiles combined with portable and micro-analytical techniques for evaluating cleaning methods and identifying original, non-original, and degraded materials of a 16th century Italian wall painting | |
| WO2019078655A1 (en) | Composition for infiltrating biomolecule into tissue including sulfobetaine-based zwitterionic surfactant, and use thereof | |
| Preston et al. | The assessment of muscle fibre loss after the injection of the venom of Notechis scutatus (Australian tiger snake) | |
| Kaplan et al. | Slow bleach‐induced birefringence changes in rod outer segments. | |
| Gurr et al. | The falgic acid dyes and their applications in histological staining | |
| Livingston et al. | Correspondence of laboratory and field results: What are the criteria for verification?. | |
| Bracegirdle | The history of staining | |
| RU2054177C1 (en) | Method for determining destructive forms of acute pancreatitis | |
| Nguyen et al. | Assessment of demyelination in glycol methacrylate sections: a new protocol for cresyl fast violet staining | |
| Bracegirdle | The development of biological preparative techniques for light microscopy, 1839–1989 | |
| van Bogaert et al. | Appraisals and pitfalls of myoepithelial cell staining by Levanol Fast Cyanine 5RN | |
| Hoagland et al. | The histopathology of progressive muscular dystrophy as revealed by ultraviolet photomicrography | |
| Macallum | The termination of nerves in the liver | |
| Curry | Interference to the Ultra-Violet spectrophotometry of Barbiturates | |
| Swatland | Effect of pH on the birefringence of skeletal muscle fibers measured with a polarizing microscope |