SU1571070A1 - Method of identifying lectines - Google Patents
Method of identifying lectines Download PDFInfo
- Publication number
- SU1571070A1 SU1571070A1 SU884472456A SU4472456A SU1571070A1 SU 1571070 A1 SU1571070 A1 SU 1571070A1 SU 884472456 A SU884472456 A SU 884472456A SU 4472456 A SU4472456 A SU 4472456A SU 1571070 A1 SU1571070 A1 SU 1571070A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- lectins
- replica
- proteins
- fractionation
- erythrocytes
- Prior art date
Links
Abstract
Изобретение относитс к биотехнологии, в частности к биохимии растений, и может быть использовано в биохимии иммунитета растений и патогенам и в медицинской биохимии дл идентификации компонентов лектинов в спектрах белков. Целью изобретени вл етс упрощение и повышение разрешающей способности анализа. Дл этого перед фракционированием подбирают оптимальный состав реплики, на поверхности которой могут иммобилизоватьс лектины, и после фракционировани на раздел ющий гель накладывают реплику, с которой лектины св зываютс , после чего реплику погружают в раствор эритроцитов и по рко-красным полосам идентифицируют лектины.The invention relates to biotechnology, in particular to plant biochemistry, and can be used in plant biochemistry and pathogens and in medical biochemistry to identify components of lectins in protein spectra. The aim of the invention is to simplify and increase the resolution of the analysis. To do this, prior to fractionation, an optimal replica composition is selected, on the surface of which lectins can be immobilized, and after fractionation, a replica is attached to the separating gel, with which the lectins bind, after which the replica is immersed in a solution of erythrocytes and the bright red bands identify lectins.
Description
ЁYo
Изобретение относитс к области биотехнологии , в частности к биохимии растений и животных, и может быть использовано в области биохимии иммунитета растений к патогенам и в медицинской биохимии дл идентификации компонентов лектинов в спектрах белков после электрофореза, изо- электрического фокусировани или фракционировани белков другими методами.The invention relates to the field of biotechnology, in particular to the biochemistry of plants and animals, and can be used in the field of biochemistry of plant immunity to pathogens and in medical biochemistry to identify the components of lectins in protein spectra after electrophoresis, isoelectric focusing or fractionation of proteins by other methods.
Лектины - это белки, специфично св зывающиес с определенными углеводными группами, которые могут входить в состав гликопротеинов слюны или крови животных , ичного белка и т.д. Важную биологическую роль играют углеводные остатки, наход щиес на поверхности клеток - эритроцитов , спор патогенных грибов и т.д. Лек- тины благодар своим свойствам участвуют в реакци х узнавани в морфогенезе и в защитных реакци х животных и растений.Lectins are proteins that specifically bind to certain carbohydrate groups, which can be part of the glycoproteins of saliva or animal blood, egg protein, etc. An important biological role is played by carbohydrate residues located on the cell surface — erythrocytes, spores of pathogenic fungi, etc. Due to their properties, lectins are involved in recognition reactions in morphogenesis and in defense reactions of animals and plants.
Целью изобретени вл етс упрощение и повышение разрешающей способности анализа.The aim of the invention is to simplify and increase the resolution of the analysis.
Способ состоит в том, что перед фракционированием неочищенных белков предварительно устанавливают состав реплики, оптимальный дл св зывани определ емых лектинов, а после фракционировани белки из раздел ющего гел перенос т на реплику, с которой лектины св зываютс , затем реплику погружают в суспензию эритроцитов и идентифицируют лектины на реплике по рко-красным полосам, образованным эритроцитами.The method consists in the fact that, prior to fractionation of unpurified proteins, the replica composition is preliminarily determined for binding the detected lectins, and after fractionation, the proteins from the separating gel are transferred to the replica with which the lectins are bound, then the replica is immersed in a suspension of erythrocytes and identified lectins on the replica on the bright red bands formed by red blood cells.
Суть метода заключаетс в следующем. Лектины св зываютс с репликой либо за счет специфичного взаимодействи с включенными в состав реплики гликопротеинами, или углеводами, остатки которых соответствуют специфичности лектинов, либо за счет неспецифичного взаимодействи с материсл .The essence of the method is as follows. Lectins bind to a replica either through a specific interaction with glycoproteins or carbohydrates included in the replica, the residues of which correspond to the specificity of lectins, or due to non-specific interaction with the material.
оabout
чh
оabout
злами реплики, например с нитроцеллюлозой . Молекулы лектинов, фиксированные на поверхности реплики, способны соедин тьс с углеводными остатками мембран эритроцитов своими свободными реакционными центрами. Фиксаци лектинов на реплике позвол ет им достаточно прочно удерживать эритроциты, что, например, дает возможность даже прополаскивать реплику в физиологическом растворе дл уменьшени фона от неспецифичности осевших эритроцитов. При отсутствии такой фиксации механически стабильных спектров агглютинировавших эритроцитов получить практически невозможно или по крайней мере очень трудно.evil replicas such as nitrocellulose. The lectin molecules fixed on the replica surface are capable of combining with the carbohydrate residues of erythrocyte membranes with their free reaction centers. Fixing lectins on a replica allows them to hold erythrocytes sufficiently firmly, which, for example, makes it possible even to rinse the replica in physiological saline to reduce the background from the nonspecificity of the settled erythrocytes. In the absence of such fixation, mechanically stable spectra of agglutinated erythrocytes are almost impossible to obtain or at least very difficult.
П р и м е р 1. Идентификаци компонентов агглютинина зародышей пшеницы (АЗП) в спектрах белков зародышей после изофо- кусировани .PRI me R 1. Identification of wheat germ agglutinin components (AFP) in the spectra of germ proteins after isofocusing.
Зародыши отдел ют от зерна пшеницы сорта Безоста 1. Навеску из 100 мг зародышей , размолотых в ступке, заливают 1 мл 0,1 HCI. Смесь центрифугируют, осадок отбрасывают .The embryos are separated from the wheat grain of the Bezost 1 variety. A portion of 100 mg of the embryos ground in a mortar is poured with 1 ml of 0.1 HCI. The mixture is centrifuged, the precipitate discarded.
Дл выбора оптимального дл определ емого лектина состава реплики готов т несколько типов реплик: ПААГ, обработанный мукопротеинами слюны; ПААГ, обрабо- танный каким-либо другим типом гликопротеинов; нитроцеллюлозна мембрана , обработанна каким-либо гликопро- теином; гель(акриламидный, агарозный или другой), в состав которого включены опре- деленныеуглеводные группы; необработанна нитроцеллюлозна мембрана и т.д.To select the composition of the replica optimal for the lectin to be determined, several types of replicas are prepared: PAGE treated with saliva mucoproteins; PAG treated with any other type of glycoprotein; nitrocellulose membrane treated with any glycoprotein; a gel (acrylamide, agarose, or other), which includes certain carbohydrate groups; untreated nitrocellulose membrane, etc.
На поверхность реплики нанос т капл ми по 2-10 мкл изучаемый раствор белков, содержащий лектины. Через 10-20 мин реплики промывают физраствором и помещают в суспензию эритроцитов. При оптимальных дл изучаемого лектина услови х осуществлени способа на месте нанесени образца по вл етс рко-красное п тно. В случае АЗП оптимальной вл етс реплика, состо ща из ПААГ, содержащего мукопротеины слюны и обработанного глу- таровым альдегидом дл св зывани мукоп- ротеинов с ПААГ.On the surface of the replica, 2-10 µl drops of the studied protein solution containing lectins are applied in drops. After 10-20 minutes the replicas are washed with saline and placed in a suspension of red blood cells. Under optimal conditions for carrying out the method for the lectin under study, a bright red spot appears at the site of application of the sample. In the case of ARP, the replica consisting of PAAG containing mucoproteins of saliva and treated with glutaraldehyde to bind mucoproteins with PAAG is optimal.
Провод т изоэлектрическое фокусирование (ИЭФ) белков в 6%-ном ПААГ толщиной 0,2 мм, содержащем 2% амфолина с интервалом рН 3-10. Образцы нанос т на гель с помощью полосок фильтровальной бумаги в объеме 1-20 мкл. Полимеризуют 6%-ную ПААГ-реплику толщиной 0,2 мм на пластиковой подложке. Реплика содержит 0,9% NaCI в фосфатном буфере рН 7,5. Реплику обрабатывают в течение минуты мукопротеинами слюны человека. ЗатемIsoelectric focusing (IEF) of proteins was carried out in 6% PAG 0.2 mm thick, containing 2% ampholin with a pH range of 3-10. Samples are applied to the gel using filter paper strips in a volume of 1-20 µl. A 6% PAG replica 0.2 mm thick is polymerised on a plastic substrate. The replica contains 0.9% NaCl in phosphate buffer pH 7.5. The replica is treated for a minute with human saliva mucoproteins. Then
реплику накладывают на 40 мин на бумагу, смоченную 10%-ным Глухаревым альдегидом . Реплику ополаскивают в физрастворе 5-10 мин и слегка подсушивают дл удалени капель влаги. После ИЭФ на раздел ющий гель накладывают гель-реплику на 10-30 мин. Затем реплику погружают в суспензию (1-4% по обьему) эритроцитов кролика . Через 5-20 мин на поверхностиreplica put on 40 minutes on paper moistened with 10% Glukharevy aldehyde. The replica is rinsed in saline for 5-10 minutes and lightly dried to remove moisture droplets. After IEF, a gel-replica is applied to the separating gel for 10-30 minutes. Then the replica is immersed in a suspension (1-4% by volume) of rabbit erythrocytes. After 5-20 minutes on the surface
0 гель-реплики по вл ютс четкие рко-красные полосы, образованные эритроцитами, св занными с лектинами.0 gel replicas appear clear bright red stripes formed by erythrocytes associated with lectins.
На раздел ющий гель после реплики накладывают фотопленку на 20 мин и про вл 5 ют ее трипсином дл идентификации компонентов ингибиторов трипсина. Изо- точки лектинов и ингибиторов трипсина из зародышей пшеницы несколько отличаютс .After separation, a separating gel is applied with a film for 20 minutes and is trypsinized to identify the components of trypsin inhibitors. The iso-points of lectins and trypsin inhibitors from wheat germ are somewhat different.
0 Таким образом, предлагаемый способ в отличие от прототипа позвол ет идентифицировать в спектре белков компоненты лектинов и наличие примесей белков с иной специфичностью не вли ет на результаты.Thus, the proposed method, unlike the prototype, allows identifying the components of lectins in the spectrum of proteins and the presence of impurities of proteins with different specificity does not affect the results.
5П р и м е р 2. Идентификаци компонентов лектина фасоли.5Im р 2. Identification of the components of the lectin beans.
Выбор оптимального варианта реплики провод т, как в примере 1. Дл лектина фасоли наиболее оптимальной репликой вл 0 етс необработанна нитроцеллюлозна мембрана.The choice of the optimal variant of the replica is carried out as in Example 1. For the bean lectin, the most optimal replica is the raw nitrocellulose membrane.
Провод т ИЭФ препарата лектина фасоли . На раздел ющий гель накладывают необработанную нитроцеллюлозную мемб5 рану. После переноса белков за счет диффузии (10-20 мин) мембрану погружают в суспензию эритроцитов. Компоненты лектинов фасоли про вл ютс в виде рко-красных полос. В этих же услови х АЗПConduct IEF bean lectin preparation. An untreated nitrocellulose membrane is placed on the separating gel. After the transfer of proteins due to diffusion (10–20 min), the membrane is immersed in a suspension of erythrocytes. Bean lectin components appear as bright red stripes. Under the same conditions of ARQ
0 вы вл ютс очень слабо, т.е. чувствительность данного варианта способа достаточна дл лектина фасоли и недостаточна дл АЗП.0 are very weak, i.e. The sensitivity of this variant of the method is sufficient for a lectin bean and insufficient for an ARD.
Использование предлагаемого способаUsing the proposed method
5 обеспечивает по сравнению с прототипом следующие преимущества.5 provides in comparison with the prototype the following advantages.
Повышение достоверности и разрешающей способности анализа при идентификации компонентов лектинов. КомпонентыImproving the reliability and resolution of the analysis in the identification of lectin components. Components
0 лектинов вы вл ютс непосредственно на реплике с раздел ющего гел и примесь других белков не вли ет на результаты.0 lectins are detected directly on the replica from the separating gel and the admixture of other proteins does not affect the results.
С одного гел можно сн ть несколько реплик, обработанных разными гликопроте5 инами или углеводами дл идентификации разных типов лектинов; желатиновые реплики дл идентификации ингибиторов про- теиназ, реплики, содержащие субстраты дл идентификации различных ферменов и их ингибиторов и т.п.Multiple replicas treated with different glycoproteins or carbohydrates can be removed from a single gel to identify different types of lectins; gelatin replicas to identify proteinase inhibitors, replicas containing substrates for identifying various enzymes and their inhibitors, and the like.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884472456A SU1571070A1 (en) | 1988-08-04 | 1988-08-04 | Method of identifying lectines |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU884472456A SU1571070A1 (en) | 1988-08-04 | 1988-08-04 | Method of identifying lectines |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1571070A1 true SU1571070A1 (en) | 1990-06-15 |
Family
ID=21394850
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU884472456A SU1571070A1 (en) | 1988-08-04 | 1988-08-04 | Method of identifying lectines |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1571070A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2014059336A1 (en) * | 2012-10-12 | 2014-04-17 | University Of Notre Dame Du Lac | Exosomes and diagnostic biomarkers |
-
1988
- 1988-08-04 SU SU884472456A patent/SU1571070A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Peumans W.J. etal. a genetie basis for the origin of six different isolectins in hexaploid wheat. - Planta, 1982, v. 154, p. 562. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2014059336A1 (en) * | 2012-10-12 | 2014-04-17 | University Of Notre Dame Du Lac | Exosomes and diagnostic biomarkers |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Sutton et al. | Detection of IgE-and IgG-binding proteins after electrophoretic transfer from polyacrylamide gels | |
US4217339A (en) | Glycoprotein and process for isolating it | |
Al-Hassan et al. | Composition of the proteinaceous gel secretion from the skin of the Arabian Gulf catfish (Arius thallasinus) | |
DE4219149C2 (en) | Method for preserving an immobilized immunologically reactive substance | |
Baumann et al. | Purification and identification of neurohormone D, a heart accelerating peptide from the corpora cardiaca of the cockroach Periplaneta americana | |
JP3451091B2 (en) | Analytical cuvette used for quantification of an analyte present in a whole blood sample, quantification method, and diagnostic test kit | |
Soh et al. | The relationship between the N-acetylgalactosamine content and the blood group Sda activity of Tamm and Horsfall urinary glycoprotein | |
Abe et al. | Purification and properties of a presynaptically acting neurotoxin, mandaratoxin, from hornet (Vespa mandarinia) | |
Weiner et al. | Discrete molecular weight components of the organic matrices of mollusc shells | |
O'CONNOR et al. | The venom of the honeybee (Apis mellifera): I. General character | |
US4195017A (en) | Malignin, derived from brain tumor cells, complexes and polypeptides thereof | |
SU1571070A1 (en) | Method of identifying lectines | |
Moore et al. | Seminal plasma proteins and the reaction of spermatozoa from intact boars and from boars without seminal vesicles to cooling | |
Mill et al. | Enzyme-like Globulins from Serum Reproducing the Vascular Phenomena of Inflammation: VI. Isolation and Properties of Permeability Factor and its Inhibitor in Human Plasma | |
WO1990010061A1 (en) | Diamine oxidase and assay for rupture of amniotic membrane in pregnant mammals | |
Iivanainen et al. | Micromethod for detection of oligoclonal IgG in unconcentrated CSF by polyacrylamide gel electrophoresis | |
EP2511707A1 (en) | Method for detection of basic peptide and reagent for detection of basic peptide | |
Sehon et al. | Electrophoretic separation of skin-sensitizing antibody from the sera of ragweed-sensitive patients | |
Chase et al. | Preliminary evidence for the structure of the concanavalin-A binding site on human lymphocytes that induces mitogenesis | |
WO1986005591A1 (en) | Method for the immunological determination of a biological substance in a sample | |
US5039619A (en) | Method for detecting characteristic markers of disease in biological fluids | |
Wood et al. | Two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis of hymenoptera venom and venom sac extracts | |
CH633808A5 (en) | METHOD FOR PRODUCING AN ANTIGENT FRACTION OF SCHISTOSOMAMANSONI EGGS AND ITS USE FOR TESTING FOR SCHISTOSOMIASIS. | |
Munjal et al. | Studies of antigenic fractions in honey-bee (Apis mellifera) venom | |
DE3638767A1 (en) | INCUBATION MEDIUM CONTAINING LACTOTRINE FOR SOLID-PHASE IMMUNOMETRIC METHOD AND ITS USE |