SU1555362A1 - Method of obtaining ferments - Google Patents

Method of obtaining ferments Download PDF

Info

Publication number
SU1555362A1
SU1555362A1 SU884375862A SU4375862A SU1555362A1 SU 1555362 A1 SU1555362 A1 SU 1555362A1 SU 884375862 A SU884375862 A SU 884375862A SU 4375862 A SU4375862 A SU 4375862A SU 1555362 A1 SU1555362 A1 SU 1555362A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
vessel
vessels
cultivation
nutrient medium
target products
Prior art date
Application number
SU884375862A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Борис Федорович Нестеров
Александр Николаевич Шкидченко
Борис Афанасьевич Величко
Original Assignee
Специальное конструкторское бюро биологического приборостроения АН СССР
Институт биохимии и физиологии микроорганизмов
Всесоюзный Научно-Исследовательский Биотехнический Институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Специальное конструкторское бюро биологического приборостроения АН СССР, Институт биохимии и физиологии микроорганизмов, Всесоюзный Научно-Исследовательский Биотехнический Институт filed Critical Специальное конструкторское бюро биологического приборостроения АН СССР
Priority to SU884375862A priority Critical patent/SU1555362A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1555362A1 publication Critical patent/SU1555362A1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биотехнологии, в частности к получению биологически активных веществ непрерывным способом и может быть использовано в микробиологической и медицинской отрасл х промышленности. Целью изобретени   вл етс  повышение продуктивности мицелиальных микроорганизмов - продуцентов ферментов за счет одновременного выхода нескольких целевых продуктов, синтезируемых продуцентом в разных фазах роста. Получение ферментов осуществл ют путем многофазового культивировани  в жидких питательных средах, которое осуществл етс  одновременно в нескольких последовательно соединенных сосудах, работающих по принципу аппаратов полного вытеснени , в которых создают однонаправленный ламинарный поток свежей питательной среды. При этом с выхода последующих сосудов отбирают часть культуральной жидкости, обогащают ее кислородом и подают в предыдущие сосуды, а целевые продукты отбирают по стади м их максимального образовани  и выдел ют известными способами, причем параметры, оптимальные дл  биосинтеза каждого из продуктов, поддерживают в каждом из последовательно соединенных сосудов индивидуально. Предложенный способ расшир ет возможности управлени  микробным метаболизмом и приводит к повышению выхода целевых продуктов по сравнению с известными способами получени  ферментов при периодическом и двухстадийном батарейном культивировании. 1 ил.The invention relates to biotechnology, in particular, to the production of biologically active substances in a continuous manner and can be used in the microbiological and medical industries. The aim of the invention is to increase the productivity of mycelial microorganisms - producers of enzymes due to the simultaneous release of several target products synthesized by the producer in different phases of growth. Enzymes are obtained by multiphase cultivation in liquid nutrient media, which is carried out simultaneously in several vessels connected in series, operating on the principle of full displacement machines, in which a unidirectional laminar flow of fresh nutrient medium is created. At the same time, from the output of the subsequent vessels, a part of the culture liquid is taken, enriched with oxygen and fed into the previous vessels, and the target products are selected by stages of their maximum formation and separated by known methods, with the parameters optimal for the biosynthesis of each product, maintained in each of the serially connected vessels individually. The proposed method enhances the control of microbial metabolism and leads to an increase in the yield of the target products in comparison with the known methods for the production of enzymes in batch and two-stage battery cultivation. 1 il.

Description

Изобретение относитс  к биотехнологии , в частности к получению биологически активных веществ непрерывным способом, и может быть использовано в микробиологической и медицинской промышленности.The invention relates to biotechnology, in particular to the preparation of biologically active substances in a continuous manner, and can be used in the microbiological and medical industry.

Целью изобретени   вл етс  повышение продуктивности культур за счетThe aim of the invention is to increase the productivity of crops by

одновременного выхода нескольких целевых продуктов, синтезируемых продуцентов в разных фазах роста.simultaneous release of several target products synthesized by producers in different phases of growth.

На чертеже показана схема, реализующа  предлагаемый способ.The drawing shows the scheme that implements the proposed method.

Культивирование продуцента ведут одновременно в нескольких последовательно соединенных сосудах, работающих по принципу аппарата полного вытеснени , в которых создают однонаправленный ламинарный поток (Rv12300) свежей питательной среды по поверхности фиксированного сло  мицели . При этом с выхода одного или нескольких последующих сосудов отбирают часть культуральной жидкости, обогащают ееCultivation of the producer is carried out simultaneously in several series-connected vessels operating according to the principle of the full displacement apparatus, in which they create a unidirectional laminar flow (Rv12300) of fresh nutrient medium along the surface of a fixed layer of mycelium. At the same time, from the exit of one or several subsequent vessels, a part of the culture liquid is taken, enriching it

КИСЛОРОДОМ И ВВОДЯТ В предыдущие СО- OXYGEN AND INCLUDED

суды.the courts.

По мере направленного перемещени  культуральной жидкости относительно мицели  продуцента она обед- н етс  питательными веществами и обо , гащаетс  продуктами метаболизма и углекислым газом,As the culture fluid is directed towards the producer’s mycelium, it is depleted of nutrients and coated, absorbed by metabolic products and carbon dioxide,

Тем самым в каждом последующем сосуде создаютс  услови , отличающиес  от предыдущего в обуславливающие оп- ,ределенную физиологическую активность iкультуры и характер синтезируемых ею биополимеров.Thus, in each subsequent vessel, conditions are created that differ from the previous one in determining the defined physiological activity of the culture and the nature of the biopolymers synthesized by it.

Таким образом, повторное заведение части культуральной жидкости из последующего сосуда в предыдущий позвол ет получить н последующем сосуде увеличенную концентрацию целевого метаболита, тем самым дополнительно индуциру  его биосинтез в предыду- щем сосуде, что приводит к повышению выхода целевого продукта.Thus, reintroducing part of the culture fluid from the next vessel into the previous one allows to obtain an increased concentration of the target metabolite in the next vessel, thereby further inducing its biosynthesis in the previous vessel, which leads to an increase in the yield of the target product.

Такой обратный.переток части культуральной жидкости может быть организован как между соседними (смежными ) сосудами, так и через один или несколько сосудов. Этот рецикл части культуральной жидкости делает весь процесс культивировани  ступенчато- управл емым, а поддержание скорости каждого из таких рециклов (в каждой паре сосудов) на определенном уровне в сумме с посто нным основным протоком культуральной жидкости через все сосуды обеспечивает стабиль- ность.каждого из состо ний мицели  продуцента.Such reverse flow of part of the culture fluid can be organized both between adjacent (adjacent) vessels, and through one or more vessels. This recycling of a part of the culture liquid makes the whole cultivation process step-controlled, and maintaining the speed of each of these cycles (in each pair of vessels) at a certain level in total with the constant main flow of the culture liquid through all vessels ensures stability. low producer mycelium.

Способ осуществл ют следующим образом .The method is carried out as follows.

Последовательно соединенные со- суды 1-5 с развитой внутренней поверхностью заполн ют стерильной питательной средой до полного заполнени  их геометрического объема, термостатируют, внос т инокулюм и обеспечивают рециркул цию жидкой фазы по направлению от 1 к 5.в течение 30-40 мин дл  гомогенного рас- пределени  инокулюма. Затем рецирConsecutively connected vessels 1-5 with a developed inner surface are filled with a sterile nutrient medium until their geometric volume is completely filled, thermostatic, inoculum is added and the liquid phase is recirculated in the direction from 1 to 5. for 30-40 minutes for homogeneous distribution of inoculum. Then the clerk

QQ

$ $

0 0

5 Q 5 Q

... ...

5five

кул цию отключают, включают аэрацию воздухом, обогащенным кислородом до 30-40% от объема, со скоростью 0,4-0,6 л воздуха/л среды/мин и ведут культивирование периодическим - способом в течение 16-72 ч в зависимости от используемого штамма-продуцента .the cultivation is turned off, aeration is enabled with air enriched with oxygen up to 30-40% of the volume, at a rate of 0.4-0.6 l of air / l of medium / min and are cultivated in a periodic manner in the course of 16-72 h depending on producer strain.

После перехода культуры в фазу замедлени  роста на вход первого куль- тивиционного сосуда подают свежую питательную среду со скоростью разбавлени  D в диапазоне 0,01-0,2 и.. последовательно вытесн ют ее и предшествовавшую ей культуральную жидкость из сосуда в сосуд в направлении от 1 к 5. В случае необходимости последовательно соединенные сосуды термостатируют при разных температурах и дополнительно обогащают импульсным введением кислорода в жид-у кую фазу на уровне от 2 до 5 сосудов. Кроме того, часть культуральной жидкости из сосуда 3 (или 4 или 5) после обогащени  кислородом возвращают , например, в сосуд 2 (или 3, или 4), осуществл   частичную рециркул цию культуральной жидкости по замкнутому контуру.After the culture transitions to the growth inhibition phase, fresh nutrient medium is fed to the inlet of the first culture vessel at a dilution rate D in the range of 0.01-0.2 and .. sequentially displaces it and the previous culture liquid from the vessel into the vessel in the direction from 1 to 5. If necessary, the serially connected vessels are thermostatic at different temperatures and additionally enriched with pulsed introduction of oxygen into the liquid phase at a level of from 2 to 5 vessels. In addition, part of the culture fluid from vessel 3 (or 4 or 5), after being enriched with oxygen, is returned, for example, to vessel 2 (or 3, or 4), by partially recirculating the culture fluid in a closed loop.

Съем целевого продукта осуществл ют , например, из одного из этих сосудов в фазах его максимального выхода .The removal of the target product is carried out, for example, from one of these vessels in the phases of its maximum yield.

Пример 1. Культуру дрожжей Endomycopsis fibuliger 5513 в качестве продуцента амилолитических ферментов выращивали в жидкой питательной среде следующего состава, %: крахмал .кукурузный 1,0; КН2Р04 0,5; кукурузный экстракт 1,0.Example 1. The culture of the yeast Endomycopsis fibuliger 5513 as a producer of amylolytic enzymes was grown in a liquid nutrient medium of the following composition,%: corn starch 1.0; KH2P04 0.5; corn extract 1.0.

Культивирование продуцента ведут в установке, состо щей из сосудов 1-4, последовательно соединенных по принципу аппарата полного вытеснени , Аэрацию осуществл ют продувкой воздуха , обогащенного кислородом, из расчета 0,5 л/л/мин. Поддержание рН обеспечивают автоматической подтит- ровкой 0,5 NaOH и стабилизируют в сосудах 1 и 2 на уровне 5,5-5,6,-а вThe cultivation of the producer is carried out in an installation consisting of vessels 1-4, sequentially connected according to the full displacement apparatus principle. Aeration is carried out by blowing oxygen-enriched air at the rate of 0.5 l / l / min. The maintenance of pH is ensured by automatic subtitling of 0.5 NaOH and stabilized in vessels 1 and 2 at the level of 5.5–5.6, –a in

сосудах 3 и 4 на уровне 4,5-5,0.vessels 3 and 4 at the level of 4.5-5.0.

ii

Сосуды заполн ют питательной средой указанного состава, термостатируют при 30 С; внос т инокулюм и включают рециркул цию культуральной среды на 30 мин в направлении от 1 к 4 сосуду, затем ведут процесс периодического культивировани  в тече- ние 72 ч.The vessels are filled with the nutrient medium of the specified composition, thermostatic at 30 ° C; inoculum is introduced and the culture medium is recirculated for 30 minutes in the direction from 1 to 4 to the vessel, then the process of periodic cultivation is carried out for 72 hours.

После этого на вход сосуда 1 подавали свежую питательную среду с D 0,1 ч и постепенно вытесн ют ее в последующие сосуды. Из сосуда 4 отработанную культурапьную жидкость, обогащенную чистым кислородом, подают в сосуд 3 с ,02 ч 1 . В культу- ральной жидкости, отбиравшейс  из всех четырех фаз культивировани , определ ют активность глюкоамилазы и о -амилазы.After that, fresh nutrient medium with D 0.1 h was fed to the inlet of vessel 1 and gradually displaced it into subsequent vessels. From vessel 4, the spent culture liquid enriched with pure oxygen is fed to vessel 3 seconds, 02 hours 1. The activity of glucoamylase and o-amylase is determined in the cultured fluid taken from all four culture phases.

Глюкоамилазна  активность достигает максимума в сосуде 2 установки и составл ет 46 мкмоль/мл, что в 4 раза выше, чем при периодическом культивировании, и в 3,8 раза выше, чем при двухстадийном культивировани в ферментерах идеального смешени Glucoamylase activity reaches a maximum in vessel 2 of the plant and is 46 µmol / ml, which is 4 times higher than during periodic cultivation, and 3.8 times higher than during two-stage cultivation in fermenters of ideal mixing.

Активность с -амилазы достигает максимума в сосуде 4 установки и составл ет 3,4 ед/мл, что в 7 раз выше , чем при периодическом культивировании в 12 раз выше, чем при двух- стадийном культивировании в ферментерах идеального смешени .The activity of α-amylase reaches a maximum in vessel 4 of the plant and amounts to 3.4 units / ml, which is 7 times higher than with periodic cultivation 12 times higher than with two-stage cultivation in fermenters of ideal mixing.

Пример 2. Все операции как в примере 1, но отбор культуральной жидкости из сосуда 4 и подача -ее в сосуд 3 отсутствуют. Аналогично примеру 1 определ ют активность глюкоамилазы и с -амилазы. Максимум глю- коамилазной активности наблюдаетс  в сосуде 2, а максимум активности о(-амилазы в - сосуде 4. Однако числовые величины этих активностей снижаютс  по сравнению с примером 1: глюПример 5.-Методики и режимыExample 2. All operations as in example 1, but the selection of the culture fluid from the vessel 4 and the flow of it into the vessel 3 are missing. Analogously to Example 1, the activity of glucoamylase and c-amylase is determined. The maximum of glucoamylase activity is observed in vessel 2, and the maximum activity of o (α-amylase in-vessel 4). However, the numerical values of these activities are reduced compared with example 1: glu. Example 5. Methods and regimens

коамилазы-в 2,2 раза (20,9 мкмоль/мл), до те же что и в примере 4 с тем лишьcoamylase-2.2 times (20.9 μmol / ml), to the same as in example 4 with the only

-амилазы - в 1,8 раза (1,88 ед/мл).-amylases - 1.8 times (1.88 units / ml).

Пример 3. Все операции как в примере 1, с тем отличием, что отбор культуральной жидкости из сосуда 4 и подачу ее в сосуд 3 осуществл ют с ,08 ч . Максимум глюко- амилазной активности наблюдаетс  в сосуде 2, а максимум активности о(-амилазы в сосуде 4, Однако числовые величины этих активностей снижаютс  по сравнению с примером 1: глюкоамилазы - в 2,4 раза (19,16 мкмоль/мл) о(-амилазы - в 3,1 раза (1,09 ед/мл). Пример 4, Культуру актлно- мицетов Actinomyces jantinus 118 в качестве продуцента ингибитора трипсина выращивают на жидкой питательной среде следующего состава, мас.%: пептон 5,0j перевар Хоттингера 30 мл;Example 3. All operations as in Example 1, with the difference that the culture liquid was taken from vessel 4 and supplied to vessel 3 from 08 h. The maximum glucoamylase activity is observed in vessel 2, and the maximum activity of o (α-amylase in vessel 4), however, the numerical values of these activities are reduced compared with example 1: glucoamylase 2.4 times (19.16 µmol / ml) o ( α-amylases — 3.1 times (1.09 U / ml). Example 4 The culture of Actinomycetes Actinomyces jantinus 118 as a producer of trypsin inhibitor is grown on a liquid nutrient medium of the following composition, wt.%: peptone 5.0j; 30 ml;

4545

5050

5555

отличием, что отбор культуральной жидкости из сосуда 3 и подачу ее в сосуд 2 осуществл ют с ,02 .the difference is that the selection of the culture fluid from the vessel 3 and its supply to the vessel 2 is made from, 02.

В результате активность ингибитора составл ет в сосуде J 3 ед, в сосуде 2 5 ед, в сосуде 3 14 ед,As a result, the inhibitor activity is J 3 units in the vessel, 2 5 units in the vessel, 3 14 units in the vessel,

Пример 6, Повтор ют все методики и режимы примера 4 с тем ; лишь отличием, что отбор культуральной жидкости из сосуда 3 и подачу ее в сосуд 2 осуществл ют с ,05 ч Example 6; All methods and modes of Example 4 are repeated; the only difference is that the selection of the culture liquid from the vessel 3 and its supply to the vessel 2 is carried out from 05 h

В результате активность ингибитора составл ет в сосуде 1 3 ед в сосуде 2 6 ед, в сосуде 3 12 ед.As a result, the activity of the inhibitor is 1 3 units in a vessel, 2 6 units in a vessel, 3 12 units in a vessel.

Пример 7. Повтор ют все методики и режимы примера 4 с тем лишь отличием, что сосуд 3 термоста- тируют при 28°С,Example 7. All methods and modes of Example 4 are repeated with the only difference that vessel 3 is thermostatically controlled at 28 ° C,

00

5five

00

5five

00

5five

глюкоза 10,0; NaCl 5,0. Стабилизи- , руют рН среды подтитровкой 0,5 н. NaOH в зоне 6,8-7,0, культивирование) осуществл ют в установке, представ- , л ющей три последовательно соединенных сосуда полного вытеснени  с развитой внутренней поверхностью.glucose 10.0; NaCl 5.0. Stabilize the pH of the medium with a titration of 0.5 n. NaOH in the zone of 6.8-7.0, cultivation) is carried out in an installation representing three successively connected full displacement vessels with a developed inner surface.

Установку заполн ют питательной средой указанного состава, термоста- тируют при 28&С, внос т инокулюм и включают рециркул цию питательной среды на 30 мин по замкнутому контуру . Периодическое культивирование ч осуществл ют в течение 40 ч, а затем в сосуд 1 подают свежую питательную среду с , и вытесн ют жидкую фазу потоком в последующие сосуды При этом сосуды 1 и 2 термо- статируют при 28 С, а сосуд 3 - при 34°С.The plant is filled with a nutrient medium of the indicated composition, thermostatically stabilized at 28 ° C, inoculum is introduced and recirculation of the nutrient medium for 30 minutes in a closed loop is started. Periodic cultivation is carried out for 40 hours, and then fresh nutrient medium is fed into vessel 1, and the liquid phase is displaced by flow into subsequent vessels. At that, vessels 1 and 2 are thermostated at 28 ° C and vessel 3 at 34 ° WITH.

Культуральную жидкость из сосуда 3 насыщают кислородом и с ,03 ч дополнительно ввод т в сосуд 2 установки .The culture fluid from vessel 3 is saturated with oxygen and, 03 h, is additionally introduced into vessel 2 of the plant.

В культуральной жидкости, отбиравшейс  из каждого сосуда, определ ют антитрипсиновую активность по изменению эстеразной активности Трипсина , использу  в качестве субстрата тоздаг- -аргининметиловый спирт,In the culture fluid taken from each vessel, the antitrypsin activity is determined by the change in Trypsin esterase activity, using tosdag-arginine methyl alcohol as a substrate,

В сосуде активность ингибито1- ра составл ет 3 ед. в сосуде 2 8 ед. и в сосуде 3 18 ед, что в 4 раза выше , чем максимальна  активность, достигаема  при периодическом культи- вированиио,-In the vessel, the activity of the inhibitor is 3 units. in the vessel 2 8 units. and in the vessel, 3 18 units, which is 4 times higher than the maximum activity, is achieved with periodic cultivation, -

1one

Пример 5.-Методики и режимыExample 5. -Technologies and Modes

о те же что и в примере 4 с тем лишьAbout the same as in example 4 so only

5five

00

5five

отличием, что отбор культуральной жидкости из сосуда 3 и подачу ее в сосуд 2 осуществл ют с ,02 .the difference is that the selection of the culture fluid from the vessel 3 and its supply to the vessel 2 is made from, 02.

В результате активность ингибитора составл ет в сосуде J 3 ед, в сосуде 2 5 ед, в сосуде 3 14 ед,As a result, the inhibitor activity is J 3 units in the vessel, 2 5 units in the vessel, 3 14 units in the vessel,

Пример 6, Повтор ют все методики и режимы примера 4 с тем ; лишь отличием, что отбор культуральной жидкости из сосуда 3 и подачу ее в сосуд 2 осуществл ют с ,05 ч IExample 6; All methods and modes of Example 4 are repeated; the only difference is that the selection of the culture liquid from the vessel 3 and its supply to the vessel 2 is carried out from 05 h I

В результате активность ингибитора составл ет в сосуде 1 3 ед в сосуде 2 6 ед, в сосуде 3 12 ед.As a result, the activity of the inhibitor is 1 3 units in a vessel, 2 6 units in a vessel, 3 12 units in a vessel.

Пример 7. Повтор ют все методики и режимы примера 4 с тем лишь отличием, что сосуд 3 термоста- тируют при 28°С,Example 7. All methods and modes of Example 4 are repeated with the only difference that vessel 3 is thermostatically controlled at 28 ° C,

В результате активность ингибитора составл ет в сосуде 1 3 ед, в сосуде 2 8 ед, в сосуде 3 10 ед.As a result, the activity of the inhibitor is 1 3 units in a vessel, 2 8 units in a vessel, 3 10 units in a vessel.

Пример 8. Культуру актино- мицета Actinomyces Kurssanovii 75 в качестве продуцента хитинолитичес- ких ферментов выращивают на жидкой питательной среде следующего состава, г/л: П,НР04 3,0; MgSO, 7H20 0,54 дрожжевой экстракт 0,5, размолотый хитин (частицы 250 мега) 10,0.Example 8. Actinomyces Actinomyces Kurssanovii 75 culture as a producer of chitinolytic enzymes is grown on a liquid nutrient medium of the following composition, g / l: P, HP04 3.0; MgSO, 7H20 0.54 yeast extract 0.5, milled chitin (particles of 250 mega) 10.0.

Культивирование продуцента ведут в установке, состо щей из 4-после- гдовательно соединенных сосудов полного вытеснени  с развитой внутренней поверхностью.The cultivation of the producer is carried out in an installation consisting of 4-consecutively connected vessels of full displacement with a developed inner surface.

Сосуды заполн ют питательной средой указанного состава, термостати- руют при 30°С, внос т инокулюм и на ,30 мин выключают рециркул цию среды по замкнутому контуру. Затем в течение 16 ч осуществл ют периодическое культивирование гриба с аэрацией от 1-го к 4-му сосуду. Затем в сосуд 1 подают свежую питательную среду с ,15 и постепенно вытесн ют ее в направлении сосуда 4. Часть куль- туральной жидкости с выхода сосуда 4 обогащают кислородом и с ,05 подают в сосуд 2, а термостатиро- вание сосуда 3 осуществл ют при 34 С и в него дополнительно подают воздух , обогащенный кислородом до 40% со скоростью 0,1 л/л/мин.The vessels are filled with the nutrient medium of the specified composition, thermostatically heated at 30 ° C, inoculum is introduced and the medium is recirculated in a closed circuit for 30 minutes. Then for 16 hours, the fungus is periodically cultivated with aeration from the 1st to the 4th vessel. Then fresh nutrient medium is supplied to vessel 1, c, 15 and gradually displaces it in the direction of vessel 4. Part of the culture fluid from the outlet of vessel 4 is enriched with oxygen and c, 05 is fed to vessel 2, and thermostatting of vessel 3 is carried out at 34 C and it additionally serves air enriched with oxygen up to 40% at a rate of 0.1 l / l / min.

В культуральной жидкости, отбиравшейс  из каждого сосуда, определ ют активность хитиназы (СН фермент) и активность СНк-фермента, расщепл ющего коллоидный хитин, а также активность фермента, расщепл ющего N-N-диацетилхитобиозу и другие короткие олигосахариды хитинового р да .In the culture fluid taken from each vessel, the activity of chitinase (CH enzyme) and the activity of the CNA enzyme that breaks down colloidal chitin, as well as the activity of the enzyme that breaks down N-N-diacetylchiobiose and other short chitin oligosaccharides of the chitin series are determined.

Активность хитиназы (СН,,-фермент) достигает максимума в сосуде 2 и составл ет 22 ед или 2,2 раза выше, чем при периодическом культивировании , а затем снижаетс .Chitinase activity (CH ,, - enzyme) reaches a maximum in vessel 2 and is 22 units or 2.2 times higher than during periodic cultivation, and then decreases.

Максимум активности (ЛЦ-фермента достигаетс  в сосуде 3 и составл ет 32 ед или в 4 раза выше, чем при периодическом культивировании, а максимальна  активность фермента, расщепл ющего короткие олиг осахариды хитинового р да, повышаетс  в сосуде 4 и в 2,8 раза превосходит обнаруженную при периодическом культивировании .The maximum of activity (LC-enzyme is reached in vessel 3 and is 32 units or 4 times higher than during periodic cultivation, and the maximum activity of the enzyme that cleaves short oligo-saccharides of the chitin series is increased in vessel 4 and 2.8 times surpasses that found by periodic cultivation.

10 ten

1515

2020

2525

1555362815553628

Пример 9, Повтор ют все методики и режимы примера 8 с тем лишь отличием, что отбираемую из сосуда 4 и подаваемую в сосуд 2 культураль- ную жидкость не обогащают кислородом,Example 9; All methods and modes of Example 8 are repeated with the only difference that the culture liquid taken from vessel 4 and fed to vessel 2 is not enriched with oxygen,

В результате максимум активности хитиназы (СН1-фермент) наблюдаетс  в сосуде 2 и составл ет 12 ед, что в 1,8 раза ниже, чем в примере 8, максимум активности СН -фермента наблюдаетс  в сосуде 3 и составл ет 15ед, что в 2,1 раза ниже, чем в примере 8, максимум активности фермента, расщепл ющего короткие олигосахариды хитинового р да, вновь наблюдаетс  в сосуде 4, однако он в 1,5 раза ниже , чем в примере 8.As a result, the maximum activity of chitinase (CH1-enzyme) is observed in vessel 2 and is 12 units, which is 1.8 times lower than in Example 8, the maximum activity of the CH enzyme is observed in vessel 3 and is 15 units, which is 2 , 1 time lower than in Example 8, the maximum activity of the enzyme that cleaves short chitinous oligosaccharides of the chitin series is again observed in vessel 4, however, it is 1.5 times lower than in Example 8.

Пример 10. Повтор ют все методики и режимы примера 8 с тем лишь отличием, что термостатирование сосуда 3 осуществл ют при З8 с.Example 10. All the methods and modes of Example 8 are repeated with the only difference that the temperature control of vessel 3 is carried out at 3 sec.

В результате все виды провер емых активностей в сосудах, за исключением первого, снизилась ориентировочно в 4-5 раз по сравнению с примером 8.As a result, all types of tested activities in vessels, with the exception of the first, decreased by approximately 4–5 times as compared with Example 8.

Предлагаемый способ позвол ет управл ть биосинтезом ферментов на каждой фазе роста продуцента, разделить выход целевых продуктов по отдельным стади м и повысить их выход в несколько раз по сравнению с известными способами при периодическом и двухстадийном батарейном культивировании мицелиальных форм микроорганизмов .The proposed method allows controlling the biosynthesis of enzymes at each producer growth phase, separating the yield of the target products in separate stages and increasing their yield several times in comparison with the known methods in batch and two-stage battery cultivation of mycelial forms of microorganisms.

Claims (1)

Формула изобретени Invention Formula Способ получени  ферментов, предусматривающий многофазовое культивирование мицелиальных форм микроорганизмов на жидких питательных средах путем фиксации продуцентов на внутренних поверхност х ферментера и перемещени  относительно них жидкой и газообразной фаз питательной среды с последующей стабилизацией культур в заданном физиологическом состо нии и оптимизацией параметров условий биосинтеза ферментов до максимального накоплени  их активности, отличающийс  тем, что, с целью повышени  продуктивности культур за счет одновременного выхода нескольких целевых продуктов, синтезируемых продуцентами в разных фазах роста, культивирование ведутA method for producing enzymes that involves the multi-phase cultivation of mycelial forms of microorganisms on liquid nutrient media by fixing the producers on the inner surfaces of the fermenter and moving the liquid and gaseous phases of the nutrient medium relative to them, followed by stabilizing the cultures in a given physiological state and optimizing the parameters of the enzyme biosynthesis conditions to maximum accumulation their activity, characterized in that, in order to increase the productivity of crops by simultaneously the yield of several target products synthesized by producers in different phases of growth, the cultivation of lead 30thirty 3535 4040 4545 5050 одновременно в нескольких последовательно соединенных сосудах, работающих по принципу аппаратов полного вытеснени , в услови х однонаправленного ламинарного потока свежей питательной среды, при этом на выходе каждого из сосудов отбирают часть культуральной жидкости, равной поat the same time in several vessels connected in series, operating on the principle of full displacement devices, under conditions of a unidirectional laminar flow of fresh nutrient medium, while at the outlet of each of the vessels a part of the culture fluid is taken equal to объему подаваемой свежей питательной- среды, аэрируют ее и вновь подают в сосуд с последующим отбором и выделением целевых продуктов,в стадии их максимального образовани , причем в каждом иэ сосудов поддерживают параметры , оптимальные дл  биоси теэа соответствующих ферментов.The volume of fresh nutrient medium supplied is aerated and re-fed into the vessel, followed by the selection and release of the target products, at the stage of their maximum formation, and in each of the vessels the parameters that are optimal for the biosia of the corresponding enzymes are maintained. Питатель - па  средаFeeder - Wednesday
SU884375862A 1988-02-08 1988-02-08 Method of obtaining ferments SU1555362A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884375862A SU1555362A1 (en) 1988-02-08 1988-02-08 Method of obtaining ferments

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884375862A SU1555362A1 (en) 1988-02-08 1988-02-08 Method of obtaining ferments

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1555362A1 true SU1555362A1 (en) 1990-04-07

Family

ID=21354613

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU884375862A SU1555362A1 (en) 1988-02-08 1988-02-08 Method of obtaining ferments

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1555362A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Патент US № 4670397, кл. С 12 М 1/02, 1987. Патент US № 4379846, кл. С 12 М 1/02, 1983. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Stanbury et al. Principles of fermentation technology
George et al. Comparison of the Baker's yeast process performance in laboratory and production scale
Boze et al. Production of food and fodder yeasts
Yang et al. Continuous propionate production from whey permeate using a novel fibrous bed bioreactor
König et al. Strategies for penicillin fermentation in tower–loop reactors
US20060275858A1 (en) Optimization of Process Variables in Oxygen Enriched Fermentors Through Process Controls
Häggström et al. Calcium alginate immobilized cells of Clostridium acetobutylicum for solvent production
Preusting et al. Continuous production of poly (3-hydroxyalkanoates) by Pseudomonas oleovorans in a high-cell-density, two-liquid-phase chemostat
Wang et al. Bioreactor engineering
Minihane et al. Fed-batch culture technology
Briffaud et al. Citric acid production from glucose. I. Growth and excretion kinetics in a stirred fermentor
EP0424384B1 (en) Improved fermentation process for carboxylic acids
JP2013544106A5 (en)
JP2008054688A (en) Osmotically controlled fermentation process for preparation of acarbose
SU1555362A1 (en) Method of obtaining ferments
Adler et al. Valuation of bioreactors for low viscous media and high oxygen transfer demand
Fiechter Continuous cultivation of yeasts
Cooney Continuous culture: A tool for research, development and production
CN112662713B (en) Culture medium for producing L-lysine by high-density fermentation and method thereof
Humphrey et al. Industrial fermentation: principles, processes, and products
EP2287324A2 (en) Fermentation processes with low concentrations of carbon- and nitrogen-containing nutrients
SU498940A1 (en) Method for producing lysine
Nagar et al. FERMENTATION TECHNOLOGY
O'Beirne et al. Oxygen availability and growth of Escherichia coli W3110: Dynamic responses to limitation and starvation
Gutiérrez-Correa et al. Characteristics and techniques of fermentation systems