SU1551315A1 - Method of freezing embrios of hens - Google Patents

Method of freezing embrios of hens Download PDF

Info

Publication number
SU1551315A1
SU1551315A1 SU884450600A SU4450600A SU1551315A1 SU 1551315 A1 SU1551315 A1 SU 1551315A1 SU 884450600 A SU884450600 A SU 884450600A SU 4450600 A SU4450600 A SU 4450600A SU 1551315 A1 SU1551315 A1 SU 1551315A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
embryos
yolk
speed
freezing
solution
Prior art date
Application number
SU884450600A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Николай Иванович Сахацкий
Александр Игнатьевич Михайлик
Александр Николаевич Новиков
Original Assignee
Украинский научно-исследовательский институт птицеводства
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Украинский научно-исследовательский институт птицеводства filed Critical Украинский научно-исследовательский институт птицеводства
Priority to SU884450600A priority Critical patent/SU1551315A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1551315A1 publication Critical patent/SU1551315A1/en

Links

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биологии и может быть использовано в криобиологии, генетике и клеточной инженерии. Целью изобретени   вл етс  жизнеспособности эмбрионов. Согласно изобретению используют эмбрион на стадии конца бластулы- начала гаструлы, который отдел ют дополнительно от собственной желточной оболочки, выдерживают в течение 5-10 мин в 8-12%-ном растворе-α пропиленгликол , затем охлаждают со скоростью 50-60 град/мин до начала процесса кристаллизации, выдерживают в течение 25-35 с и замораживают до - 18-22°С со скоростью 30-35 град/мин и до -79°С со скоростью 95-105 град/мин. После размораживани  выдерживают в солевом растворе в течение 5-10 мин и трансплантируют дл  культивировани  на подложку, в качестве которой используют желточную оболочку. 6 табл.The invention relates to biology and can be used in cryobiology, genetics and cell engineering. The aim of the invention is the viability of embryos. According to the invention, the embryo is used at the end of blastula-onset stage of the gastrula, which is additionally separated from its own yolk membrane, kept for 5-10 minutes in an 8-12% solution-α propylene glycol, then cooled at a rate of 50-60 deg / min before the start of the crystallization process, incubated for 25-35 s and frozen to - 18-22 ° C at a speed of 30-35 deg / min and to -79 ° C at a speed of 95-105 deg / min. After thawing, incubated in saline for 5-10 minutes and transplanted for cultivation on a substrate, which is used as a yolk shell. 6 tab.

Description

Изобретение относитс  к области биологии и может быть использовано в криобиологии, генетике и клеточной инженерии.The invention relates to the field of biology and can be used in cryobiology, genetics and cell engineering.

Цель изобретени  - повышение жизнеспособности эмбрионов.The purpose of the invention is to increase the viability of embryos.

Способ осуществл етс  в следующей последовательности.The method is carried out in the following sequence.

Объектом исследований служат эмб рионы на стадии конца бластулы - начала гаструлы, источником которых  вл ютс  свежеснесенные  йца кур породы род-айланд.The objects of research are embryos at the end of blastula stage — the onset of the gastrula, the source of which is freshly carried eggs of the Rhode Island breed.

Дл  выделени  эмбриона на желток, помещенный в чашку Петри бластодиском вверх, накладывают кольцо из фильтровальной бумаги, при этом стрем тс  k Тому, чтобы бластодиск оказалс  в центре кольца. Поджелточную оболочку инъецируют физраствором в количестве до 5 мл (используют в качестве физраствора 0,9%-ный раствор хлористого натри , растворы Рингера, Говарда, Тироде и т.д.). Затем обрезают желточную оболочку по наружному краю кольца и перенос т препарат в другую чашку Петри с физраствором. Колебательными движени ми в растворе смывают эмбрион с желточной оболочки. Отделенный таким путем от собственнойIn order to isolate the embryo, a ring of filter paper is placed on the yolk placed in the Petri dish with the blastodisk upwards, with a tendency for the blastodisc to appear in the center of the ring. The pancreatic membrane is injected with saline in an amount up to 5 ml (0.9% sodium chloride solution, Ringer's, Howard, Tyrode, etc. solutions are used as saline). Then cut the yolk membrane on the outer edge of the ring and transfer the drug to another Petri dish with saline. Oscillating movements in solution wash the embryo from the yolk membrane. Separated in this way from its own

СпSp

елate

СОWITH

СПSP

10ten

1515

2020

Желточной оболочки эмбрион пипеткой (перенос т в другую чашку Петри с 8- 2% oL -пропиленгликол  на растворе Говарда, выдерживают 5-10 мин, затем Перенос т в контейнер дл  замораживани , в качестве которого импользуют к примеру алюминиевый цилиндр диаметром 11 мм и высотой 2 мм.The yolk membrane of the embryo is pipetted (transferred to another Petri dish with 8-2% oL -propylene glycol in Howard solution, kept for 5-10 minutes, then transferred to a freezing container, for example an aluminum cylinder 11 mm in diameter and high 2 mm.

Эмбрион в контейнере в указанном В-12%-ном растворе криопротектора охлаждают со скоростью 50-60 град/мин цо начала процесса кристаллизации, выдерживают в течение с и замораживают до (-18) - (-22)° С со скоростью 30-35 град/мин и до -79°С со скоростью 95-105 град/мин. Скорость (охлаждени  контролируют с помощью онтрольно-измерительного устройства, примеру термопары, подсоединенной самопишущему потенциометру ЛКС- - 003. Замороженные эмбрионы хран т при , использу  в качестве хладагента твердую углекислоту. Размораживание провод т путем помещени  кон- 25 тейнеров с эмбрионами, в раствор (Говарда при 18-22°С. После этого эмбрион выдерживают в течение 5-Ю мин в солевом растворе (растворе Говарда ) дл  отмывки его от криопротектора . Перед размораживанием эмбриона: подготавливают желточную оболочку. Вначале ее отдел ют от желтка (используют пищевые, неоплодотворенные, ia также любые другие дешевые  йца) . |Дл  этого на желток накладывают кольцо из фильтровальной бумаги, врутрен- ний диаметр которого на 2-3 мм должен превышать наружный диаметр используемого дл  культивировани  камеры . Под кольцо инъецируют физраствор в количестве до 5 мл, а затем обрезают желточную оболочку по наружной стороне кольца и перенос т в чашку Петри с физраствором. С помощью 45The embryo in the container in the specified B-12% solution of the cryoprotectant is cooled at a rate of 50-60 degrees / min from the beginning of the crystallization process, kept for s and frozen to (-18) - (-22) ° С at a speed of 30-35 deg / min and up to -79 ° C at a speed of 95-105 deg / min. Speed (cooling is controlled using an inspection device, for example, a thermocouple connected to an LKS-003 recording potentiometer. Frozen embryos are stored using solid carbon dioxide as a refrigerant. Thawing is carried out by placing containers with embryos in a solution ( Howard is at 18-22 ° C. After that, the embryo is kept for 5-10 minutes in saline solution (Howard's solution) to wash it away from the cryoprotectant. Before thawing the embryo: prepare the yolk membrane. they are separated from the yolk (food, unfertilized, ia are also used for any other cheap eggs). | For this, they put a ring of filter paper on the yolk, the inside diameter of which should be 2–3 mm greater than the outer diameter of the chamber used for cultivation. saline is injected in an amount of up to 5 ml, and then the yolk membrane is cut on the outer side of the ring and transferred to a Petri dish with saline solution.

1551315415513154

скребка очищают желточную оболочку от остатков желточной массы и укладывают внутренней стороной вверх на камеру дл  культивировани . Камеру дл  культивировани  перед этим заполн ют питательной средой, как и в известном способе.The scraper cleans the yolk membrane from the remains of the yolk mass and is laid upside down on the culture chamber. The culture chamber is previously filled with a nutrient medium, as in the known method.

Размороженный эмбрион пипеткой с расширенным до и5 мм концом перенос т на желточную оболочку. При этом стрем тс  к тому, чтобы эмбрион лег на желточную оболочку дорсальной стороной . Если же он лег вентральной стороной или завернулс , тонкой стекл нной палочкой привод т его в нужное положение. Затем с помощью тонкой пипетки удал ют остатки физраствора вокруг эмбриона. После этого провод т культивирование эмбриона известным способом. Первый контроль за развитием эмбриона провод т через 12- Й ч культивировани .The thawed embryo pipette with the end extended to 5 mm is transferred to the yolk membrane. At the same time, it tends to ensure that the embryo lies on the yolk membrane by the dorsal side. If he lay down with the ventral side or turned, a thin glass rod leads him to the desired position. The residual saline solution around the embryo is then removed with a thin pipette. After this, the embryo is cultivated in a known manner. The first control over the development of the embryo was carried out after 12 hours of cultivation.

В описании приведены данные, обосновывающие граничные пределы продолжительности выдержки эамбрионов в растворе криопротектора до замораживани  и в солевом растворе после размораживани , а также режима охлаждени , выдержки в течение периода кристаллизации и замораживани  до -79 С.The description contains data justifying the limiting limits of the duration of exposure of eambrions in a cryoprotectant solution before freezing and in saline solution after thawing, as well as cooling mode, exposure during the period of crystallization and freezing to -79 C.

Устойчивость эмбрионов к замораживанию зависит и от продолжительности их выдержки в процессе кристаллизации . При выдержке в течение 25-35 с 25-26% эмбрионов сохран ют жизнеспособность , тогда как при выдержке менее 25 с число жизнеспособных составл ет 3-5%, а более 35 с - 15-18%.The resistance of embryos to freezing also depends on the duration of their exposure during the crystallization process. With an exposure for 25-35 with 25-26% of embryos, viability is maintained, while with an exposure of less than 25 s, the number of viable is 3-5%, and more than 35 s - 15-18%.

Жизнеспособность, % от общего числа , цеконсервированных эмбрионов в зависимости от продолжительности контакта до замораживани  с криопротек- тором в различной концентрации приведена в табл. 1.The viability,% of the total number of conserved embryos, depending on the duration of the contact before freezing with the cryoprotector in various concentrations, is given in Table. one.

Таблица 1Table 1

30thirty

3535

4040

1 2 31 2 3

цc

5 6 75 6 7

Жизнеспособность деконсервированных эмбрионов, % от их общего числа, в зависимости от скорости охлаждени  до начала процесса кристаллизации приведена в табл. 2.The viability of deconserved embryos,% of their total number, depending on the cooling rate prior to the start of the crystallization process, is given in Table. 2

Таблица2Table 2

Выход, %, жизнеспособных эмбрионов в зависимости от скорости их замораживани  от (-18)-(-22)°С до -79°С приведен в табл. Ь.The yield,%, of viable embryos, depending on the speed of freezing from (-18) - (- 22) ° C to -79 ° C, is given in Table. B.

Таблица kTable k

Прикрепл емость эмбрионов к желточной оболочке в зависимости от продолжительности их выдержки в солевомAttachment of embryos to the yolk membrane, depending on the duration of their exposure to salt

15513151551315

Продолжение табл.2Continuation of table 2

50 60 65 7050 60 65 70

2626

25 20 1825 20 18

Жизнеспособность деконсервированных эмбрионов, % к их общему числу, в зависимости от скорости их замораживани  от начала процесса кристаллизации до (-18)-(-22)°С приведена в табл. 3.The viability of deconserved embryos,% of their total number, depending on the speed of their freezing from the beginning of the crystallization process to (-18) - (- 22) ° C is given in Table. 3

Таблиц.а 3Table 3

растворе после размораживани  приведена в табл. 5.the solution after thawing is given in table. five.

Таблица 5Table 5

В табл. 6 приведены данные сравнительных испытаний эффективности за- мораживани  куриных эмбрионов известным и предлагаемым способами. Они свидетельствуют о существенном преимуществе предлагаемого способа перед известным.In tab. 6 shows the comparative test data on the freezing of chicken embryos by known and proposed methods. They indicate a significant advantage of the proposed method over the known.

Claims (1)

Формула изобретени Invention Formula Способ замораживани  эмбрионов kyp, включающий отделение эмбрионов о т желтка, отмывку от желточной мае- Јы, выдержку в растворе криопротек- тора, охлах(дение, отличаю- 1ц и и с   тем, что, с целью повыше- йи  жизнеспособности эмбрионов, ис- рользуют эмбрионы на стадии конца бластулы - начала гаструлы, дополниТаблица 6The method of freezing kyp embryos, including the separation of embryos from the yolk, washing from the yolk cannula, aging in a cryoprotector solution, cooling (and, in order to increase the viability of the embryos, embryos at the end of blastula stage - beginning of the gastrula, complement Table 6 тельно провод т отделение от желточной оболочки, в качестве криопротек- тора используют 8-12%-ный раствор оЈ-пропиленгликолл, выдерживают в течение 5-10 мин, охлаждение ведут в три стадии: вначале со скоростью 50-60 град/мин до начала кристаллизации ,при которой выдерживают с,а затем со скоростью 30-35 град/мин до (-18)-(-22)°С и со скоростью 95 105 град/мин до -79°С.separation from the yolk membrane is conveniently carried out, an 8–12% solution of oЈ-propylene glycol is used as a cryoprotector, incubated for 5–10 min, cooling is carried out in three stages: first with a speed of 50–60 deg / min before crystallization, in which it is kept from, and then at a speed of 30-35 deg / min to (-18) - (- 22) ° С and at a speed of 95,105 deg / min to -79 ° С.
SU884450600A 1988-06-27 1988-06-27 Method of freezing embrios of hens SU1551315A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884450600A SU1551315A1 (en) 1988-06-27 1988-06-27 Method of freezing embrios of hens

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884450600A SU1551315A1 (en) 1988-06-27 1988-06-27 Method of freezing embrios of hens

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1551315A1 true SU1551315A1 (en) 1990-03-23

Family

ID=21385570

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU884450600A SU1551315A1 (en) 1988-06-27 1988-06-27 Method of freezing embrios of hens

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1551315A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2540598C2 (en) * 2013-05-31 2015-02-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение Высшего профессионального образования Астраханский государственный технический университет (ФГБОУ ВПО АГТУ) Method of reducing low-temperature jump of cryoprotectant solutions

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Смит 0. Биологическое действие замораживани и переохлаждени . ИЛ, 1963, с. 175. Gonzales F. Luyet В. Resumption of development in chick embryos after freezing. - Biodynamica, 1954, vol 7, № 145, p. 181-192. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2540598C2 (en) * 2013-05-31 2015-02-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение Высшего профессионального образования Астраханский государственный технический университет (ФГБОУ ВПО АГТУ) Method of reducing low-temperature jump of cryoprotectant solutions

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Mounib et al. Cryogenic preservation of Atlantic cod (Gadus morhua) sperm
Uemura et al. Survival of carnation (Dianthus caryophyllus L.) shoot apices frozen to the temperature of liquid nitrogen
Stoss et al. Studies on cryopreservation of eggs from rainbow trout (Salmo gairdneri) and coho salmon (Oncorhynchus kisutch)
CA2808101C (en) Method of liquid nitrogen surface vitrification
CN103958669A (en) Method of cryopreservation of tissue derived from pluripotent stem cells
CN114868737B (en) Cryopreservation liquid and cryopreservation method for bovine embryo
Mazur et al. A description of the complete metamorphosis of the sea urchin Lytechinus variegatus cultured in synthetic sea water
Bolla et al. Cryogenic preservation of Atlantic halibut sperm
Van der Meer et al. Cryopreservation of Gracilaria tikvahiae (Rhodophyta) and other macrophytic marine algae
SU1551315A1 (en) Method of freezing embrios of hens
EP0710439B1 (en) Method for cryopreservation of primordial germ cells and germ cells
CN111587876B (en) Rapid vitrification cryopreservation and recovery method for sea urchin intermedium embryo
US20080286863A1 (en) Method and solutions for cryopreserving oocytes, especially fresh human oocytes
Fyhn et al. Histology and histochemistry of the ovary and oogenesis in Balanus amphitrite L. and B. eburneus Gould (Cirripedia, Crustacea)
US6143563A (en) Cryopreservation of embryogenic callus
Usuki et al. Effects of developmental stage, seawater concentration and rearing temperature on cryopreservation of Pacific oyster Crassostrea gigas larvae
Find et al. Cryopreservation of an embryogenic suspension culture of Picea sitchensis and subsequent plant regeneration
CN100463963C (en) Freeze preservating method for domestic pig skin tissue
JP2021525790A (en) Ultra-low temperature cryopreservation method of sea cucumber sperm
Okamoto et al. Cryopreservation of parthenogenetic eggs of the rotifer Brachionus plicatilis
NL2030199B1 (en) Method of rapid vitrified cryopreservation and recovery of Strongylocentrotus intermedius embryo
SU1168170A1 (en) Method of cryopreserving silkworm moth sperm
SU1055437A1 (en) Method of preserving genofund of potato varieties and species
JPH03232441A (en) Frozen fertilized egg enhanced in conception rate and preparation thereof
SU1119689A1 (en) Method of processing sperm