SU1529124A1 - Method of diagnosis of mastitis - Google Patents
Method of diagnosis of mastitis Download PDFInfo
- Publication number
- SU1529124A1 SU1529124A1 SU874245011A SU4245011A SU1529124A1 SU 1529124 A1 SU1529124 A1 SU 1529124A1 SU 874245011 A SU874245011 A SU 874245011A SU 4245011 A SU4245011 A SU 4245011A SU 1529124 A1 SU1529124 A1 SU 1529124A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- mastitis
- gel
- methyl green
- milk
- accuracy
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к медицине, в частности к хирургии, и может быть использовано дл диагностики мастита. Целью изобретени вл етс увеличение точности и ранн диагностика. Дл этого пробу грудного молока обследуемой в объеме 0,20-0,04 мл с каплей 0,01%-ного водного раствора метиленового зеленого нанос т на верхнюю поверхность столбика из 15%-ного полиакриламидного гел и подвергают электрофоретическому разделению в 0,9 н. уксусной кислоте в течение 3 ч. После окраски гел красителем амидочерным 10В визуально оценивают спектр кислоторастворимых белков молока и измер ют длину пробега отдельных белковых франкций. При по влении на электрофореграмме катодной полосы с RF=0,47-0,49 по отношению к метиловому зеленому диагностируют раннюю стадию мастита. Способ относительно несложен, позвол ет достоверно различать мастит и лактостаз на доклинической стадии. Точность способа составл ет 97%.The invention relates to medicine, in particular to surgery, and can be used to diagnose mastitis. The aim of the invention is to increase accuracy and early diagnosis. For this, a sample of breast milk surveyed in a volume of 0.20-0.04 ml with a drop of a 0.01% aqueous solution of methylene green is applied to the upper surface of a column of 15% polyacrylamide gel and subjected to electrophoretic separation in 0.9 n . Acetic acid for 3 hours. After staining the gel with the amideciferous dye 10B, the spectrum of acid-soluble milk proteins was visually evaluated and the path length of individual protein francs was measured. When a cathode strip with R F = 0.47-0.49 appears in relation to methyl green, an early stage of mastitis is diagnosed with respect to methyl green. The method is relatively uncomplicated, allowing reliably distinguishing between mastitis and lactostasis at the preclinical stage. The accuracy of the method is 97%.
Description
Изобретение относитс к медицине, в частности к хирургии, и может быть использовано дл диагностики мастита.The invention relates to medicine, in particular to surgery, and can be used to diagnose mastitis.
Целью изобретени вл етс увеличение точности способа и ранн диагностика .The aim of the invention is to increase the accuracy of the method and early diagnosis.
Способ осуществл ют следующим образом .The method is carried out as follows.
Пробу молока в объеме 0,02-0,04 мл с каплей 0,01%-ного водного раствора метилового зеленого нанос т на верхнюю поверхность предварительно лод- готовленного столбика полиакриламид- ного гел и в течение 3 ч при силе тока 2,0 мА на трубку осуществл ют злектрофоретическое разделение белковA sample of milk in a volume of 0.02-0.04 ml with a drop of a 0.01% aqueous solution of methyl green is applied on the upper surface of a pre-prepared column of polyacrylamide gel and for 3 hours at a current of 2.0 mA electrophoretic separation of proteins is performed on the tube
в кислом растворе до достижени метиловым зеленым финишной зоны гел . После извлечени гел из трубочек их -окрашивают раствором красител амидо- черного 10 В в течение 30-40 мин. а затем отмывают несв завшийс краситель , визуально оценивают спектр кислоторастворимых белков и измер ют длину пробега отдельных белковых фракций. При по влении на электрофо- реграммах катодной полосы с Е 0,47-0,49 по отношению к метиловому 1- леному диагностируют раннюю стадию мастита.in an acidic solution until the methyl green reaches the finish zone of the gel. After removing the gel from the tubes, they are stained with a solution of amid black dye 10 V for 30-40 minutes. and then washed unbound dye, visually assess the spectrum of acid-soluble proteins and measure the length of the run of individual protein fractions. When a cathode band with E 0.47–0.49 appears on electrophores in relation to methyl 1-lenoma, the early stage of mastitis is diagnosed.
Пример 1. Пробу молока здоровой родильницы в объеме 0,02 млExample 1. Sample milk of a healthy puerperal in a volume of 0.02 ml
„ii.„Ii.
вместе с каплей 0,01%-ного водного красител метилового зеленого нанос т на верхнюю поверхность предварительно подготовленного столбика полиакрил- амидного гел , находившегос в стекл нной трубочке размером 0,5 х 10 см. Подготовку полиакриламидного гел и процедуру электрофореза осуществл ют по прописи Пани м и Чолкли. Полиакрил амидный геЛь готов т путем смешивани 3 растворов: раствор А: 60% акриламид (W/V); 0,4% метиленбисакриамид (W/V) в H-jO; раствор В: 43,2% уксусна кислота (V/V); 4% тетраметилэтилендиамин (V/V) в HjO; раствор С: IOM раствор мочевины.together with a drop of 0.01% aqueous dye of methyl green is applied on the upper surface of a previously prepared column of polyacrylamide gel, which was placed in a 0.5 x 10 cm glass tube. The preparation of polyacrylamide gel and the electrophoresis procedure are carried out according to the recipe of Pani m and Chalkly. Polyacryl amide gels are prepared by mixing 3 solutions: solution A: 60% acrylamide (W / V); 0.4% methylene bisacrylamide (W / V) in H-jO; solution B: 43.2% acetic acid (V / V); 4% tetramethylethylenediamine (V / V) in HjO; solution C: IOM solution of urea.
Все растворы можно готовить загод И хранить на холоде (+4°С) в teмнoй стекл нной посуде с притертой крышкой в течение 2-4 недель. Непосредственно перед анализом растворы сливают в следующем соотношении А:В.С 2:1:5. Далее к смеси добавл ют катализатор полимеризации - персульфат аммони (40 мг на 32 мл смеси; 50 мг на 40 мл смеси). Смесь с катализатором тщательно перемешивают и разливают с помощью пипетки или шприца в стекл нные трубочки на высоту 9 см, а затем наслаивают на смесь дистиллированную воду. В течение 60-90 мин происходит полимеризаци гел в трубочках. После окончани полимеризации, устанавливаемой по формированию четкой гра- ницы между гелем и водой и влению синерезиса гел , выжидают 1 ч и перенос т трубочки с гелем в аппарат дл электрофоретического разделени (можно использовать отечественный аппарат марки ПЭФ-1 или венгерский аппарат фирмы Reanal модель-69). В верхнюю (анодную) и нижнюю (катодную) камеры заливают по 0,5 л 0,9 н. раствора уксусной кислоты в воде (буфер), при силе тока 2-3 мА на трубку осуществл ют процедуру преэлектрофореза, в процессе которой удал ют из гел компоненты , мешающие лроведениш аналитического электрофореза. После оконча- НИН проэлектрофореза буфер в верхней и нижней камерах замен ют свежим. Преэлектрофорез провод т в течение 5-16 ч до посто нных значений тока и напр жени . Можно гели с полиакрил- амидным гелем подготавливать за 12 ч до проведени аналитического электрофореза . Пробы анализируемого молока с каплей 0,01%-ного водного раствораAll solutions can be prepared for storage and stored in the cold (+ 4 ° C) in a temny glass dish with a ground-in lid for 2-4 weeks. Immediately before the analysis, the solutions are drained in the following ratio A: B. 2: 1: 5. Next, a polymerization catalyst — ammonium persulphate (40 mg per 32 ml of the mixture; 50 mg per 40 ml of the mixture) is added to the mixture. The catalyst mix is thoroughly mixed and poured with a pipette or syringe into glass tubes to a height of 9 cm, and then distilled water is layered onto the mixture. Within 60-90 minutes, the gel is polymerized in the tubes. After completion of the polymerization, established to form a clear boundary between the gel and water and the appearance of the syneresis of the gel, wait 1 hour and transfer the tubes with the gel to an apparatus for electrophoretic separation (you can use a domestic apparatus of the PEF-1 brand or a Hungarian apparatus of the Reanal company). 69). In the upper (anodic) and lower (cathodic) chambers pour 0.5 l of 0.9 n. a solution of acetic acid in water (buffer), with a current of 2-3 mA per tube, a pre-electrophoresis procedure is carried out, during which components that interfere with the analytical electrophoresis are removed from the gel. After finishing the NIN electrophoresis, the buffer in the upper and lower chambers is replaced with fresh. Trans electrophoresis is carried out for 5-16 hours to constant values of current and voltage. Polyacrylamide gel gels can be prepared 12 hours before analytical electrophoresis. Samples of the analyzed milk with a drop of 0.01% aqueous solution
метилового зеленого нанос т на верхнюю поверхность гел . Они вл ютс достаточно плотными, поэтому быстрой диффузии белков в кислый раствор дл электрофореза не наблюдаетс . Электрофорез ведут при посто нной силе тока 2,0 мА на трубку в течение 3 ч. По окончании электрофореза, фиксируемого по достижении индикаторным красителем метиловым зеленым - нижней финишной части столбика гел . Гели извлекают из трубочек традиционным способом и окрашивают в течение 30 мин 0,1%-ным раствором амидочерного 10 В, растворенного в 20%-ном этаноле, 7%-ной уксусной кислоте, остальное . После окрашивани гели отмывают от несв завшегос красител , либо электрофо- ретически, либо путем смены раствора 0,9 н, уксусной кислоты. Спектр кис- лоторастворимых белков молока можно условно разделить на две зоны. В первой верхней зоне представлено 5 основных белковых фракций. Втора зона в средней части гел представлена одинарной катодной полосой с Кл 0,37- 0,38. Rr определ ют как отношение длины пробега данной белковой полосы к длине пробега метилового зеленого, т.е. к общей длине гел . Диапазон значений Rr обусловлен тем, что белкова полоса после прокрашивани имеет определенную толщину, а потому определение длины пробега ее в геле можно осуществл ть как по переднему, так иmethyl green is applied to the top surface of the gel. They are quite dense, so fast diffusion of proteins into the acidic solution for electrophoresis is not observed. The electrophoresis is carried out at a constant current of 2.0 mA per tube for 3 hours. At the end of the electrophoresis, fixed upon reaching the indicator dye methyl green - the lower finishing part of the gel column. The gels are removed from the tubes in the traditional way and stained for 30 min with a 0.1% solution of amide-black 10 V dissolved in 20% ethanol, 7% acetic acid, the rest. After staining, the gels are washed away from the unsupported dye, either electrophoretically or by changing the solution of 0.9 n acetic acid. The spectrum of acid-soluble milk proteins can be divided into two zones. In the first upper zone, 5 basic protein fractions are represented. The second zone in the middle part of the gel is represented by a single cathode strip with C 0.37-0.38. Rr is defined as the ratio of the mileage of a given protein band to the mileage of methyl green, i.e. to the total length of the gel. The range of Rr values is due to the fact that the protein strip after staining has a certain thickness, and therefore the determination of its run length in the gel can be carried out both along the front and
по заднему фронту полосы.on the falling edge of the strip.
I.Пример 2. Проба молока вI. Example 2. Milk sample in
объеме 0,02 мл, вз та у родильницы, у которой клинически диагностирован лактостаз, подвергаетс электрофоре- тическому анализу так же, как в примере 1. В спектре кислоторастворимьк белков молока этой пациентки вы влена дополнительна катодна полоса с Rf 0,47-0,49. Следовательно у больной имеет место начальный этап воспалени в молочной железе при отсутствии его клинического про влени . Диагноз подтвержден клиническими наблюдени ми в течение последующих семи дней.a volume of 0.02 ml taken from the puerperal patient with lactostasis clinically diagnosed undergoes electrophoretic analysis in the same way as in example 1. In the spectrum of the acid-soluble proteins of the milk of this patient, an additional cathode band with Rf 0.47-0 was detected, 49. Consequently, the patient has an initial stage of inflammation in the mammary gland in the absence of its clinical manifestation. The diagnosis was confirmed by clinical observations over the next seven days.
Пример 3. Проба молока в объеме 0,02 мл, вз та у родильницы, у которой клинически диагностирован лак тостаэ, подвергаетс электрофоретичес кому анализу так же, как в примере 1. В спектре кислоторастворимых белков молока этой пациентки изменений поExample 3. A sample of milk in a volume of 0.02 ml taken from a puerperal who has been clinically diagnosed with lactostasis is subjected to electrophoretic analysis in the same way as in example 1. In the spectrum of the acid-soluble milk proteins of this patient
5151
сравнению с нормой не обнаружено. Диагноз - лактостаз (застой молока), который подтвержден последующ} Ми клиническими наблюдени ми.compared with the norm is not detected. The diagnosis is lactostasis (milk stagnation), which is confirmed by subsequent clinical observations.
С помощью предлагаемого способа возможно однозначно диагностировать начальную стадию развивающегос мастита в тех случа х, когда известные биохимические и физические способы не позвол ют этого осуществить, а также дифференцировать воспаление от лактостаза. Точность способа - 97%, что на 16% выше, чем сцособа- прототипа.Using the proposed method, it is possible to unambiguously diagnose the initial stage of developing mastitis in cases where known biochemical and physical methods do not allow this, as well as to differentiate inflammation from lactostasis. The accuracy of the method is 97%, which is 16% higher than the prototype method.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874245011A SU1529124A1 (en) | 1987-05-26 | 1987-05-26 | Method of diagnosis of mastitis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874245011A SU1529124A1 (en) | 1987-05-26 | 1987-05-26 | Method of diagnosis of mastitis |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1529124A1 true SU1529124A1 (en) | 1989-12-15 |
Family
ID=21304242
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874245011A SU1529124A1 (en) | 1987-05-26 | 1987-05-26 | Method of diagnosis of mastitis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1529124A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2003013702A1 (en) * | 2001-08-06 | 2003-02-20 | Gradipore Limited | Separation of components from milk sources |
-
1987
- 1987-05-26 SU SU874245011A patent/SU1529124A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Голота В.Я., Алтуев Г.Н. Качественный состав молока при лактационном мастите. - Акушерство и гинекологи , 1984, № 9, с. 48-50. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2003013702A1 (en) * | 2001-08-06 | 2003-02-20 | Gradipore Limited | Separation of components from milk sources |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Staynov et al. | Molecular weight determination of nucleic acids by gel electrophoresis in non-aqueous solution | |
Pesce et al. | Rapid differentiation of glomerular and tubular proteinuria by sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis | |
US5057438A (en) | Electrophoretic antigen-antibody determination with laminate of multiple membranes | |
Xu et al. | Simultaneous determination of urinary creatinine, calcium and other inorganic cations by capillary zone electrophoresis with indirect ultraviolet detection | |
SU1529124A1 (en) | Method of diagnosis of mastitis | |
EP0464544A1 (en) | Neutral and positively charged dyes for electrophoresis sample loading solutions | |
Grönwall | On paper electrophoresis in the clinical laboratory | |
Mogi et al. | Two-dimensional electrophoresis in the analysis of a mixture of human sublingual and submandibular salivary proteins | |
Mehta et al. | Silver staining of unconcentrated cerebrospinal fluid in agarose gel (Panagel) electrophoresis. | |
Trotter et al. | Isoelectric focusing of gamma globulins in cerebrospinal fluid from patients with multiple sclerosis. | |
Westwood et al. | Analysis of the common genetic variants of the human Gc system in plasma and bloodstains by isoelectric focusing in immobilized pH gradients | |
Jenkins | Clinical applications of capillary electrophoresis: Status at the new millennium | |
Stolorow et al. | An efficient method to eliminate streaking in the electrophoretic analysis of haptoglobin in bloodstains | |
Vergani | Crossover electrophoresis for the rapid detection of serum hepatitis (Australia) antigen and antibody. | |
Moore et al. | Glycosylated haemoglobin: comparison of five different methods, including measurement on capillary blood samples | |
RU2310204C1 (en) | Method for quantitative detection of human fetal hemoglobin | |
SU500502A1 (en) | Method for electrophoretic determination of glycosaminoglycans | |
SU1158929A1 (en) | Method of diagnosis of cow mastitis | |
Jackson et al. | Demonstration of basic human-brain-specific proteins by the BASO-DALT system. | |
Crowle et al. | Microimmunoelectrophoresis: comparison of template with nontemplate methods | |
RU1827635C (en) | Method of determining glycoproteides and proteins of blood serum | |
SU1603280A1 (en) | Method of investigating apo-b-lipoproteins in blood serum | |
SU1662678A1 (en) | Method for endotoxicosis estimation | |
Manz et al. | Analysis of proteins in renal tubule fluid by ultramicrogradient gel electrophoresis in 0.5 microliter capillary tubes | |
Rerabek | Two-dimensional immunoelectrophrophoretic pattern of low-and very-low-density lipoproteins, with particular reference to Fredrickson's type III. |