SU1506471A1 - Способ моделировани паркинсонизма - Google Patents

Способ моделировани паркинсонизма Download PDF

Info

Publication number
SU1506471A1
SU1506471A1 SU874336389A SU4336389A SU1506471A1 SU 1506471 A1 SU1506471 A1 SU 1506471A1 SU 874336389 A SU874336389 A SU 874336389A SU 4336389 A SU4336389 A SU 4336389A SU 1506471 A1 SU1506471 A1 SU 1506471A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
rat
minutes
introduction
animal
develops
Prior art date
Application number
SU874336389A
Other languages
English (en)
Inventor
Леонид Семенович Годлевский
Алексей Антонович Шандра
Андрей Миронович Мазарати
Original Assignee
Одесский Медицинский Институт Им.Н.И.Пирогова
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Одесский Медицинский Институт Им.Н.И.Пирогова filed Critical Одесский Медицинский Институт Им.Н.И.Пирогова
Priority to SU874336389A priority Critical patent/SU1506471A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1506471A1 publication Critical patent/SU1506471A1/ru

Links

Landscapes

  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к медицине, а именно к нервным болезн м. Цель - повышение воспроизводимости способа. С этой целью животному билатерально в черную субстанцию мозга ввод т раствор дельта-сон индуцирующего пептида в дозе 5-10 нмоль. Применение способа позвол ет повысить воспроизводимость модели паркинсонизма на 55% по сравнению с прототипом.

Description

Изобретение относитс  к медицине, а именно к нервным болезн м.
Цель изобретени  - повышение воспроизводимости способа.
Способ осуществл ют следующим образом .
Крысу под гексеналовым наркозом (100 мг/кг) фиксируют в стереотак- сическом аппарате, затем производ т срединный разрез кожных покровов черепа , удал ют надкостницу, бормашиной высверливают трепанационные отверсти  и ввод т направл ющую канюлю (внешний диаметр 0,5 мм) по координатам (АР -5,3, L 2,5; Н , 8,0). Фиксацию канюль осуществл ют с помощью быстротнердеющей зубоврачебной пластмассы типа Норакрил. Прооперированное животное в течение 10-14 дней находитс  при обычном содержании и кормлении. Дл  адаптации животного к услови м эксперимента и предсто щей внутримозговой инъекции препарата его ежедневно в течение 5 мин держат в руках. На 1(|-1А-м день после операции
через имплантированную канюлю с помощью микроинъектора производ т введение раствора дельта-сон индуцирующего пептида. При этом в течение 2-3 мин ввод т 1-3 мкл раствора (5- 10 нмоль в физиологическом растворе), после введени  еще в течение 2-3 мин канюлю оставл ют на месте дл  более полной диффузии препарата и предотвращени  его обратного вытекани . После извлечени  канюли крысу помещают в прозрачную камеру дл  визуальной регистрации изменений.
Пример 1. Крысе-самцу линии Вистар массой 275 г под гексеналовым наркозом (100 мг/кг) стереотаксичес- ки билатерально имплантируют канюли (наружный диаметр 0,5 мм) в зону черной субстанции (АР -5,3, L 2,5; Н 8,0). Канюли фиксируют с помощью быстротвердеющей зубоврачебной пластмассы Норакрил. Через 10 дней после операции (в течение всего времени животное находилось в обычных услови х содержани  и кормлени ) в услови х
§
СП
о
Од
и
свободного поведени  крысы с помощью микроинъектора билатерально ввод т свежеприготовленный раствор дельта- сон индущфующего пептида в дозе 5,0 нмоль в 1 мкл физиологического раствора. При этом каждое введение осуществл ют в течение 2,5 мин и после прекращени  введени  канюли продолжают оставатьс  на месте в тече- кие 3 мин. Затем крысу помещают в прозрачную камеру (40 х 60 х 30 см) дл  визуальной регистрации поведенческих изменений. Через 5 минут после инъекции у крысы отмечаетс  замира- ние, в течение 2,5 мин у животного развиваетс  флексорна  установка туловища - голова прижимаетс  к передним лапам, развиваетс  характерна  горбатость, задние конечности рас- ставлены в стороны и выдвинуты вперед . Длинник затьшок-основание хвоста составл ет 11,8 см (до введени  пептида в состо нии поко  13,5 см). При пассивном отведении конечности ощущаетс  значительное сопротивление Частота сердечных сокрал1ений снижаетс  с 410 до 350 в минуту, а частот дыхани  - со 112 до 82 в минуту. Определение двигательной активности ме тодом пр мой актометрии (подсчет числа колебаний сейсмодатчика установленного в подвижном полу за 2 мин) показало снижение этого показател  с 817 до 130j отмечаетс  также сниже ние горизонтального и вертикального поведени  в открытом поле: число пересеченных квадратов до введени  ДСИ составл ло 21 за 2 мин, после введени  - 1, а число вepтикaльн JГX стоек - соответственно В и 0. У крысы развиваетс  птоз, движени  вибрисс отсутствуют . В период непродолжительной локомоции, провоцируемой болевым раз дражеи11ем, наблюдаетс  скованность движений, уменьшение длины шага.
Таким образом, у крысы воспроизведен остро формирующийс  акинетико- ригидный паркинсонический синдром.
П р и м е р 2. Крысе-самцу линии Вистар массой 290 г под гексеналовым наркозом (100 мг/кг) стереотаксичес- ки билатерально имплантируют канюли (наружный диаметр 0,5 мм) в зону черной субстанции (ЛР -5,3, L 2,5; Н 8,0). Канюли фиксируют с помощью быстротвердеющей зубоврачебной пластмассы Норакрил. Через 11 дней после операции (в течение
5 0 Q
0
этого времени животное находилось в обычных услови х содержани  и кормлени ) в услови х свободного поведени  крысы С помощью микроинъектора билатерально ввод т свежеприготовленный раствор дельта-сон индуцирующего пептида в дозе 7,5 нмоль в 2 мкл физиологического раствора. При этом каждое введение осуществл ют в течение 3 мин и после прекращени  введени  канюли продолжают оставатьс  на месте в течение 3 мин. Затем крысу помещают в прозрачную камеру (40 х X 60 X 30 см) дл  визуальной регистрации поведенческих изменений. Через 6 мин после инъекции у крысы отмечаетс  замирание и п течение последующих 1,5 мин у животного развиваетс  флексорна  установка туловища - голова прижимаетс  к передним конечност м , по вл етс  характерна  горбатость , задние конечности расставлены в стороны и выдвинуты вперед. Длинник затылок - основание хвоста составл ет 11,9 см (до введени  пептида в состо нии поко  13,4 см). Отмечаетс  птоз, уменьшаетс  движение вибрисс . При пассивном отведении правой передней конечности ощущаетс  значительное сопротивление. Частота сердечных сокращений снижаетс  с 385 до минуту, а частота дыхани  - с 98 до 84 в минуту. Определение двигательной активности методом пр мой актометрии (подсчет числа колебаний сейсмодатчика, установленного в подвижном полу, за 2 мин) показало снижение этого показател  с 736 до 57; отмечаетс  также cнIiжeниe горизо - тального и вертикального поведени  в открытом поле: число пересеченных квадратов до введени  составл ло 17 за 2 минуты, после введени  - 3, а число вертикальных стоек - соответственно 4 и 0. В период непродолжительной спонтанной локомоции, отмечаемой через 15,5 мин после введени  пепт1- да, у животного наблюдаетс  скованность движений, уменьшение длины шага. Животное не реагирует на предъ вление воды и ПИ11Ш. Изучение элек- тромиограм а1 камбаловидной М1лшцы и ЭЭГ-изменений показалб, что в период описанных поведенческих нарушений имеет место увеличение мьш1ечного тонуса и развитие пароксизмальной синхронизированной активности в хвостатых  драх мозга.
, 1506Д71,
Таким образом, у крысы воспроиз- -левой передней конечности ощущаетс 
веден остро формирующийс  акинетико-значительное сопротивление. Частота
ригидный паркинсонический синдром.сердечных сокращений снижаетс  с ЗД9
Пример 3. Крысе-самке линиидо 297 в минуту, а частота дыхани  - Вистар массой 280 г под гексеналовымс 102 до 89 в минуту. Определение наркозом (100 мг/кг) стереотаксическидвигательной активности методом пр - билатерально имплантируют канюли (на-мой актометрии (подсчет числа коле- ружный диаметр 0,5 мм) в зону чернойбаний сейсмодатчика, установленного субстанции (ЛР -5,3; L 2,5; Н tO подвижном полу, за 2 мин) показало 8,0). Канюли фиксируют с помощьюснижение этого показател  с 895 до быстротвердеющв зубоврачебной пласт-107, отмечаетс  снижение горизонталь- масс,1 Норакрил. Через 14 дней посленого и вертикального поведени  в от- операции в услови х свободного пове-крытом поле: число пересеченных квад- дени  животного (в течение всего это-15 ДО введени  составл ло 27 за го времени крыса находилась в обычных2 мин, после введени  - 7, а число услови х содержани  и корм чени ) свертикальных стоек - соответственно помощью микроин7-,ектора билатерально5 и 1 . В период непродолжительной ввод т свежеприготовленный растворлокомоции, провоцируемой болевьп раз- дельта-сон индуцирующего пептида в20 дражителем, наблюдаетс  скованность дозе 10,0 нмоль в 2 мкл физиологичес-движений, уменьшение длины шага. Жи- кого раствора. При этом каждое введе-вотное не реагирует на предъ вление ние осуществл ют в течение 3 мин иводы и пищи.

Claims (1)

  1. после прекращени  введени  канюпиТаким образом, у крысы воспроизве- продолжают оставатьс  на месте в те-25 ден остро формирующийс  акинетико- чение 3 мин. Затем крысу помещают вригидный паркинсонический синдром, прозрачную камеру (40 х 60 х 30 см)Применение способа позвол ет по- дл  визуальной регистрации поведен-высить воспроизводимость модели пар- ческих изменений. Через 8,5 мин послекинсонизма на 55% по сравнению с из- инъекции у крысы отмечаетс  замира- О вестным способом, ние, в течение 3 MVIH у животного развиваетс  флексорна  установка туло-Формула изобретени  вища - голова прюкимаетс  к передним
    лапам, отмечаетс  характерна  горба-Способ моделировани  паркинсонизма
    тость, задние конечности расставленыпутем введени  животному химического
    в стороны и вьщвинуты вперед. Длинниквещества, отличающийс 
    затылок - основание хвоста составл -тем, что, с целью повышени  воспроет , 11,2 см (до введени  пептида визводимости способа, ввод т раствор
    состо нии поко  12,9 см). У крысыдельта-сон индуцирующего пептида в
    развиваетс  птоз, движени  вибрисс,Q дозе 5-10 нмоль билатерально в черную
    отсутствуют. При пассивном отведениисубстанцию мозга.
SU874336389A 1987-11-30 1987-11-30 Способ моделировани паркинсонизма SU1506471A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU874336389A SU1506471A1 (ru) 1987-11-30 1987-11-30 Способ моделировани паркинсонизма

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU874336389A SU1506471A1 (ru) 1987-11-30 1987-11-30 Способ моделировани паркинсонизма

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1506471A1 true SU1506471A1 (ru) 1989-09-07

Family

ID=21339404

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU874336389A SU1506471A1 (ru) 1987-11-30 1987-11-30 Способ моделировани паркинсонизма

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1506471A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2789823C1 (ru) * 2022-03-01 2023-02-10 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Северный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ экспериментальной модели болезни паркинсона у лабораторных животных

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Крыжановский Г.Н. Детерминантиые структуры в патологии нервной системы.- М.: Медицина, 1980, с, 36-41. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2789823C1 (ru) * 2022-03-01 2023-02-10 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Северный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ экспериментальной модели болезни паркинсона у лабораторных животных

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Rutten et al. Memory impairment following status epilepticus in immature rats: time‐course and environmental effects
Ellendorff et al. The milk ejection reflex in the pig
Depaulis et al. Quiescence and hyporeactivity evoked by activation of cell bodies in the ventrolateral midbrain periaqueductal gray of the rat
Moshé et al. Kindling in developing rats: persistence of seizures into adulthood
Holman et al. Sleep produced by clonidine (2‐(2, 6‐dichlorophenylamino)‐2‐imidazoline hydrochloride)
Fratta et al. Stress-induced insomnia: opioid-dopamine interactions
Jacoby et al. Patterns of spontaneous cortisol and growth hormone secretion in rhesus monkeys during the sleep-waking cycle
DiCARA et al. Effect of heart-rate learning under curare on subsequent noncurarized avoidance learning.
Iwahara et al. L-DOPA-induced air-stepping in decerebrate developing rats
Moran et al. Organized behavioral responses to lateral hypothalamic electrical stimulation in infant rats
Gold et al. Epinephrine-induced learning under anesthesia: Retention performance at several training–testing intervals.
Prado-Alcalá et al. A possible caudate-cholinergic mechanism in two instrumental conditioned responses
Thurber et al. Behavioral effects of continuous hippocampal stimulation in the developing rat
Laychock et al. PGD2 effects on rodent behavior and EEG patterns in cats
Nakamura et al. Central sites involved in lateral hypothalamus conditioned neural responses to acoustic cues in the rat
SU1506471A1 (ru) Способ моделировани паркинсонизма
SPOONER JR OBSERVATIONS ON THE USE OF THE CHICK IN THE PHARMACOLOGICAL INVESTIGATIONOF THE CENTRAL NERVOUS SYSTEM
Lebrun et al. The role of the septum in the control of the milk ejection reflex in the rat: effects of lesions and electrical stimulation.
Shaywitz et al. Effects of phenobarbital on activity and learning in 6-hydroxydopamine treated rat pups
Rovee et al. Developmental changes in tonic immobility in young chicks (Gallus gallus)
Katayama et al. Intracranial pressure variations associated with activation of the cholinoceptive pontine inhibitory area in the unanesthetized drug-free cat
Stein et al. Neuropharmacological effects of isomers of hexachlorocyclohexane—3. An account of the convulsant activity of the γ-isomer in rats
Beck et al. Lethal self-administration of morphine by rats
Benoni et al. Pharmacokinetics of propofol: influence of fentanyl administration
Rose Distribution and properties of diencephalic neuronal responses to genital stimulation in the female cat