SU1490650A1 - Method for quantitative analysis of steroid hormones - Google Patents
Method for quantitative analysis of steroid hormones Download PDFInfo
- Publication number
- SU1490650A1 SU1490650A1 SU874222602A SU4222602A SU1490650A1 SU 1490650 A1 SU1490650 A1 SU 1490650A1 SU 874222602 A SU874222602 A SU 874222602A SU 4222602 A SU4222602 A SU 4222602A SU 1490650 A1 SU1490650 A1 SU 1490650A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- progesterone
- steroid hormones
- hormones
- protein
- crp
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биохимии и может найти применение в медицине, сельском хоз йстве, экспериментальной биологии. С целью повышени точности анализа исследуемый образец обрабатывают специфическим рецепторным белком (СРБ) к стероидным гормонам (СГ) в присутствии стероидных гормонов, меченых люминесцирующим веществом (СГЛ). Затем с помощью гидроксилапатита отдел ют СГ и СГЛ, св завшиес с СРБ. О количестве СГ в исследуемом образце суд т по интенсивности люминесценции в фазе, содержащей СГ и СГЛ, св занные с СРБ. Дл осуществлени способа используют СРБ к СГ, выделенный из децидуальной ткани. 1 табл.The invention relates to biochemistry and may find application in medicine, agriculture, experimental biology. In order to increase the accuracy of the analysis, the test sample is treated with a specific receptor protein (CRP) for steroid hormones (SG) in the presence of steroid hormones labeled with a luminescent substance (SGL). Then, using hydroxylapatite, SG and SGL are separated from SRB. The amount of SG in the test sample is judged by the luminescence intensity in the phase containing SG and SGL associated with CRP. For the implementation of the method, CRP to SG isolated from the decidual tissue is used. 1 tab.
Description
Изобретение относитс к биохимии, в частности к способам определени стероидных гормонов, и может найти применение в медицине, сельском хоз йстве и экспериментальной биологии.The invention relates to biochemistry, in particular to methods for determining steroid hormones, and may find application in medicine, agriculture and experimental biology.
Целью изобретени вл етс повышение точности способа.The aim of the invention is to improve the accuracy of the method.
Поставленна цель достигаетс тем, что в качестве гормонсв зывающего вещества используют специфический ре- цепторный белок к стероидным гормонам , получаемый из децидуальной ткани , а дл разделени св занных и не- св занньк гормонов используют гидро- ксилапатит.This goal is achieved by using a specific receptor protein for steroid hormones, derived from decidual tissue, as a hormone-binding substance, and hydroxyapatite is used to separate bound and unrelated hormones.
Этот белок обеспечивает св зьшание гормона с высокой константой св зывани .(константа диссоциации Кд ), т.е. более специфическое св зывание, чем св зывание гормона с антителами (K 10 M) зтого гормона .This protein provides a link between the hormone and a high binding constant (dissociation constant cd), i.e. more specific binding than the binding of a hormone to antibodies (K 10 M) of this hormone.
Способ осуществл ют следующим образом .The method is carried out as follows.
Пример 1. Получение специфического рецепторного белка к прогестерону .Example 1. Obtaining specific receptor protein for progesterone.
Специфический рецепторный белок к прогестерону получали из децидуальной ткани человека следующим образом.Specific progesterone receptor protein was obtained from human decidual tissue as follows.
К 1 г ткани, отмытой от крови физраствором (при 4°С) и гомогенизированной в проточном гомогенизатореTo 1 g of tissue washed with blood saline (at 4 ° C) and homogenized in a flow homogenizer
со о о: ел co o o: ate
АПГ-1, добавл ли 5 мл лед ного буфера рН 7,4, содержащего 10 мМ ТРИС-ИС1, 1,5 мМ ЭДТА и 0,02% азида Na. Полученную массу осаждали при ЮЗОООд в течение 1 ч, осадок отбрасывали и в дальнейшем использовали супернатант, содержащий 4,5 мг белка/мл.APG-1, 5 ml of ice-cold buffer pH 7.4, containing 10 mM TRIS-EC1, 1.5 mM EDTA and 0.02% Na azide were added. The resulting mass was besieged at USOOD for 1 h, the pellet was discarded, and a supernatant containing 4.5 mg of protein / ml was subsequently used.
Полученный супернатант обрабатывали в течение 1 ч при О С свежеприготовленным раствором трипсина (8 мг/мл 1 мМ НС1) из расчета 20 мк трипсина на 1 мг белка и затем соевым ингибитором трипсина из расчета 2 мкг ингибитора на 1 мг трипсина (дл прекращени пщролиза) .The resulting supernatant was treated for 1 hour at 0 ° C with freshly prepared trypsin solution (8 mg / ml 1 mM HCl) at a rate of 20 μm trypsin per 1 mg of protein and then a soy trypsin inhibitor at a rate of 2 μg inhibitor per 1 mg trypsin (to stop the proliferation) .
В полученный гидролизат добавл л меркаптоэтанол до концентрации 1 мМ и -затем при О С насыщенный раствор сульфата аммони (в 1 мМ ЭД и 1 мМ меркаптоэтанола) до 20% по объему. Эту смесь в течение 40 мин размешивали на магнитной мешалке дл формировани белкового осадка, и центрифугировали 15 мин при lOOOg Осадок отбрасывали, а к супернатант добавл ли насьщенный раствор сульфата аммони в ЭДТА и меркаптоэтано ле до 40% концентрации по объему.To the resulting hydrolyzate was added mercaptoethanol to a concentration of 1 mM, and then, at O C, a saturated solution of ammonium sulfate (in 1 mM ED and 1 mM mercapto ethanol) to 20% by volume. This mixture was stirred on a magnetic stirrer for 40 min to form a protein precipitate, and centrifuged for 15 min at lOOOg. The precipitate was discarded, and a saturated ammonium sulfate solution in EDTA and mercaptoethanol was added to the supernatant to 40% concentration by volume.
Белковый осадок из этой смеси фомировали на магнитной мешалке и осадали- центрифугированием. Надосадоч- ную жидкость отбрасывали.The protein precipitate from this mixture was ground on a magnetic stirrer and precipitated by centrifugation. The supernatant was discarded.
Полученный осадок раствор ли в буфере, содержащем 10 мМ трис-НС1 (рН 7,4), 1,5 мМ ЭДТАи 1 ( меркаптэтанола (ТЭМ). Специфический рецепт ный белок к прогестерону выдел лиThe precipitate was dissolved in a buffer containing 10 mM Tris-HCl (pH 7.4), 1.5 mM EDTA and 1 (mercaptoethanol (TEM). A specific prescription protein for progesterone was isolated
5five
5 five
наносили около 80 мг белка, сила тока составл ла 5 мА/см гел , скорость элюции 15 мл/ч. Врем разделени about 80 mg of protein was applied, the current strength was 5 mA / cm gel, the elution rate was 15 ml / h. Separation time
(выход фракции с необходимым рецеп- торным белком) не превьпиало 22 ч.(output of the fraction with the required receptor protein) did not exceed 22 h.
После изотахофореза препараты, содержащие специфический рецепторный белок к прогестерону, концентрирова0 ли через мембранный фильтр Амикон и наносили на колонку (16x31 мм с охлаждением) с ДЕАЕ целлюлозой (ДЕ-52 Whatman), уравновещивали ТЭМ буфе- . ром. Ионно-обменную хроматографию проводили ступенчатой элюцией ТЭМ буфером и ТЭМ буфером, содержащим 0,15 М КС1. В белковый раствор, элюированный в присутствии КС1, при О С добавл ли нейтральный формалин до концентрации 0,5% и через 45 мин выделенный белок концентрировали на мембранном фильтре Амикон (дл удалени триса и НС1) и лиофилизиро- вали. Лиофилиэированные препараты белков-рецепторов к прогестерону хранили в холодильнике и использовали дл определени прогестерона в биологических жидкост х и ткан х,After isotachophoresis, preparations containing specific receptor protein to progesterone were concentrated through an Amikon membrane filter and applied to a column (16x31 mm with cooling) with DEAE cellulose (DE-52 Whatman), equilibrated with TEM buffer-. rum. Ion exchange chromatography was performed by stepwise elution with TEM buffer and TEM buffer containing 0.15 M KCl. Neutral formalin was added at 0 ° C to the protein solution eluted in the presence of KCl at a concentration of 0.5% and after 45 minutes the isolated protein was concentrated on an Amikon membrane filter (to remove Tris and HCl) and lyophilized. Lyophilized progesterone receptor protein preparations were stored in a refrigerator and used to determine progesterone in biological fluids and tissues.
Кажду партию лиофилизированного препарата специфического рецепторно- го белка к прогестерону (СРВ) провер ли на титр св зывани прогестероном , меченым люминолом (ПЛ). Дл этого навеску сухого СРВ раствор ли в 0,1 М натрий-фосфатном буфере рН 7,5, содержащем 1 мМ ЭДТА и 0,1% азида натри (НЭА буфер), и титровали со 100 мкл ГШ. Концентрацию СРВ, св зывающую 50% гормона в пробе с 500 пгEach batch of lyophilized progesterone specific receptor protein (SRV) preparation was tested for binding titer with progesterone labeled with luminol (PL). For this, a portion of dry CPB was dissolved in 0.1 M sodium phosphate buffer pH 7.5, containing 1 mM EDTA and 0.1% sodium azide (HEA buffer), and titrated with 100 µl of GSH. The concentration of CPB that binds 50% of the hormone in a 500 pg sample
00
5five
00
из этого раствора путем гель-фильтра- 40 ГШ использовали в дальнейших аналиции на колонке (1100 х 20 мм с охлаждением ) с сефадексом Г-150. Фракции , содержащие специфический рецепторный белок к прогестерону (присутзах как рабочую концентрацию.from this solution by gel-filter 40 GSH was used in further analysis on a column (1100 x 20 mm with cooling) with Sephadex G-150. Fractions containing a specific receptor protein for progesterone (present as a working concentration.
П р и М е р 2. Определение содержани прогестерона в сыворотке кровиPr and M e r 2. Determination of serum progesterone
Дл исследовани брали образцы сыствие этого белка определ ли с помо- д5 воротки крови трех женщин (16 недельFor the study, samples were taken for the consistency of this protein was determined with the help of 5 blood coils of three women (16 weeks
беременности) объемом по 0,5 мл, которые охлаждали до 4 С, и из каждого образца отбирали по 100 мкл в инкубационные пробирки дл последующего анализа.pregnancy) with a volume of 0.5 ml, which were cooled to 4 ° C, and 100 μl were taken from each sample into incubation tubes for subsequent analysis.
щью бпособа рецепторно-люминесцент- ного анализа) собирали, концентрировали через мембранный фильтр Амикон и дальнейшую очистку проводили методом изотахофореза в колонке 200х X 20 мм с охлаждением в полиакрил- амидном геле (,2%, ), содержащем 8М мочевину, 60 мкл амфолинов (рН 6-8) на 1 мг белка. Ведущим буфером был трис-фосфатный (рн 6,6), замыкающим электролитом - трис-Б - -амушокапроновый (рН 8,9), элюцион- ным буфером - ведущий буфер, содержащий 1 мМ меркаптозтанола. На колонкуThe method of receptor-luminescence analysis was collected, concentrated through an Amikon membrane filter, and further purification was performed by isotachophoresis in a 200 × X 20 mm column with cooling in a polyacrylamide gel (, 2%) containing 8 M urea, 60 μl of ampholins ( pH 6-8) per 1 mg of protein. The leading buffer was tris-phosphate (pH 6.6), the trailing electrolyte — Tris-B - -amushokapronovy (pH 8.9), the elution buffer — the leading buffer containing 1 mM mercaptozthanol. On column
зах как рабочую концентрацию.zah as working concentration.
П р и М е р 2. Определение содержани прогестерона в сыворотке крови.Pr and M e r 2. Determination of the content of progesterone in the serum.
Дл исследовани брали образцы сыворотки крови трех женщин (16 недельFor the study, serum samples were taken from three women (16 weeks
беременности) объемом по 0,5 мл, которые охлаждали до 4 С, и из каждого образца отбирали по 100 мкл в инкубационные пробирки дл последующего анализа.pregnancy) with a volume of 0.5 ml, which were cooled to 4 ° C, and 100 μl were taken from each sample into incubation tubes for subsequent analysis.
Дл построени калибровочной кривой готовили контрольные образцы, содержащие 100, 200, 500, 1000, 2000, 5000 и 10000 пг (пикограмм/мл) прогестерона , по 100 мкл которых также отбирали в инкубационные пробирки.To construct a calibration curve, control samples were prepared containing 100, 200, 500, 1000, 2000, 5000 and 10000 pg (picogram / ml) of progesterone, 100 µl each were also taken into incubation tubes.
В отобранные исследуемые и контрольные пробы добавл ли по 100 мкл раствора прогестерона, меченого люкикIn the selected test and control samples were added 100 µl of progesterone solution labeled hatchway.
НОЛОМ (ПЛ), содержащего 500 пг/мл ПЛ, и по 100 мкг раствора, содержащего специфический рецепторный белок к прогестерону ( выделенный из дециду альной ткани, как описано в примере 1) в количестве 1,1 мг/мл, обеспечивающем св зывание 50% ПЛ в пробе , содержащей 500 пг ПЛ (см.пример 1).NOLOM (PL) containing 500 pg / ml PL and 100 µg each of the solution containing the specific receptor protein for progesterone (isolated from the decidual tissue, as described in Example 1) in an amount of 1.1 mg / ml, which provides 50 % PL in a sample containing 500 pg PL (see example 1).
Полученные смеси инкубировали при А°С и встр хивании в течение 60 мин (во врем инкубации происходи образование комплекса прогестерон- рецепторный белок).The resulting mixtures were incubated at A ° C and shaken for 60 minutes (the progesterone-receptor protein complex was formed during incubation).
Дл отделени прогестерон-рецеп- тоного комплекса от свободного прогестерона и остальных компонентов сыворотки крови в каждую проинкубированную пробу добавл ли гидроксилап тит в количестве 30 мкг и выдерживали при 4 С в течение 10 мин. Проинкубированные пробы - гидроксилапа- тит с прогестерон-рецепторным комплексом - наносили на фильтры (каждую на 1 фильтр) и промывали холодным НЭА буфером (0,1 М натрий-фосфатный буфер рН 7,5, содержащий 1 мМ ЭДТА и 0,1% азида натри ). Затем каждую пробу переносили (вместе сTo separate the progesterone-receptor complex from the free progesterone and the remaining components of the blood serum, hydroxylapite was added in an amount of 30 µg to each incubated sample and kept at 4 ° C for 10 minutes. The incubated samples — hydroxylapite with a progesterone-receptor complex — were applied to the filters (each for 1 filter) and washed with cold HEA buffer (0.1 M sodium phosphate buffer pH 7.5, containing 1 mM EDTA and 0.1% azide on three ). Then each sample was transferred (along with
Сравнительна характеристика специфичности и чувствительности способов РИА и РЯА при определении прогестеронаComparative characteristic of the specificity and sensitivity of the methods of RIA and RNA when determining progesterone
8 88 8
Содержание прогестерона в сыворотке крови определ ли методами РИА и РЛА у 8 женщин, имеющих 9 недель беременности , и у 8 женщин, имеющих ,16 недель беременности.The content of progesterone in the serum was determined by the methods of RIA and RLA in 8 women who have 9 weeks of gestation and 8 women who have, 16 weeks of gestation.
В каждый флакон добавл ли по 10 мкл 5 М NaOH и инкубировали при 60 С 60 мин. Пробы охлаждали до комнатной температуры, отбирали из них дл дальнейшего исследовани по 300 мкл жидкости, добавл ли в каждую10 µl of 5 M NaOH was added to each vial and incubated at 60 ° C for 60 minutes. Samples were cooled to room temperature, 300 µl of liquid was taken from them for further investigation, added to each
5five
00
фильтром) в отдельный флакон и заливали НЭА буфером (по 200 мкл в каждую пробу).filter) in a separate vial and filled with NEA buffer (200 μl in each sample).
Дл отделени изолюминола от прогеетерои-репепторного комплекса к пробам добавл ли по 100 мкл 5 М NaOH и инкубировали при 60 С 60 мин.To isolate the isoluminol from the progeteroie-repeater complex, 100 µl 5 M NaOH was added to the samples and incubated at 60 ° C for 60 minutes.
Q Пробы охлаждали до комнатной температуры , отбирали по 300 мкл (пипеткой с фильтром) и помещали их в кюветы люминометра.Q Samples were cooled to room temperature, 300 µl each were taken (with a pipette with filter) and placed in luminometer cuvettes.
Затем в пробы добавл ли до 100 мкл раствора пероксидазы хрена и не позже чем через 30 с вносили по 100 мкл 10 м .Then, up to 100 µl of horseradish peroxidase solution was added to the samples, and no later than 30 seconds, 100 µl 10 m each was added.
Интенсивность хемолюминесценции измер ли в люминометре в течение 20 с и полученные значени использовали дл построени калибровочной кривой (зависимость интенсивности люминесценции от концентрации прогестерона в контрольных пробах) иThe chemoluminescence intensity was measured in a luminometer for 20 seconds and the values obtained were used to construct a calibration curve (the dependence of the luminescence intensity on the progesterone concentration in the control samples) and
5 определени количества прогестерона в пробах сыворотки крови обследуемых женщин.5 determine the amount of progesterone in the serum samples of the examined women.
Минимальное количество прогестерона , определ емое в стандартных про0 бах различными способами, представлено в таблице.The minimum amount of progesterone, as determined by standard methods in various ways, is presented in the table.
0,l6i:0,0080, l6i: 0.008
23,,96 39,62i1,7923, 96 39.62i1.79
исследуемую пробу по 100 мкл пероксидазы хрена и 10 м сразу же измер ли в люминометре интенсивность люминесценции каждой из проб за период 20 с.The test sample of 100 µl horseradish peroxidase and 10 m were immediately measured in the luminometer for the luminescence intensity of each of the samples for a period of 20 s.
Из таблицы видно, что при количе- ственном определении прогестерона в стандартных растворах точность, а следовательно, и специфичность РЛА и РИА почти одинаковы. Однако, при определении гормона в сыворотке крови беременных женщин (различных сроков беременности) специфичность РЛА более, чем в 2 раза выше специфичности РИА.The table shows that in the quantitative determination of progesterone in standard solutions, the accuracy and, consequently, the specificity of RLA and RIA are almost the same. However, when determining the hormone in the blood serum of pregnant women (of different gestational age), the specificity of RLA is more than 2 times higher than the specificity of RIA.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874222602A SU1490650A1 (en) | 1987-04-06 | 1987-04-06 | Method for quantitative analysis of steroid hormones |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874222602A SU1490650A1 (en) | 1987-04-06 | 1987-04-06 | Method for quantitative analysis of steroid hormones |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1490650A1 true SU1490650A1 (en) | 1989-06-30 |
Family
ID=21295639
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874222602A SU1490650A1 (en) | 1987-04-06 | 1987-04-06 | Method for quantitative analysis of steroid hormones |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1490650A1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2451292C2 (en) * | 2010-02-09 | 2012-05-20 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Антидопинговый центр" | Method for detecting human endogenous blood plasma steroids |
RU2776013C1 (en) * | 2021-07-09 | 2022-07-12 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи" | Method for quantifying the residual content of steroid hormones in fish |
-
1987
- 1987-04-06 SU SU874222602A patent/SU1490650A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Kletsky О.А., Nakamura A.M., Mishell D.R. The normal distribution of gonado-tropins and ovarian steroid values in the normal menstrual cycle,Amer. J. Obstet gynecol. 1975, V.121, p.688-694. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2451292C2 (en) * | 2010-02-09 | 2012-05-20 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Антидопинговый центр" | Method for detecting human endogenous blood plasma steroids |
RU2776013C1 (en) * | 2021-07-09 | 2022-07-12 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки "Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи" | Method for quantifying the residual content of steroid hormones in fish |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CARRELL et al. | Altered protamine 2 expression is uncommon in donors of known fertility, but common among men with poor fertilizing capacity, and may reflect other abnormalities of spermiogenesis | |
Owren et al. | The control of dicumarol therapy and the quantitative determination of prothrombin and proconvertin | |
Margolis | The kaolin clotting time: a rapid one-stage method for diagnosis of coagulation defects | |
US4067775A (en) | Process and composition for determining the activity of creatinekinase-MB | |
EP0086095B1 (en) | Assay | |
Hai et al. | Characterization and assay of the progesterone receptor in rat uterine cytosol | |
Tamate et al. | The role of superoxide dismutase in the human ovary and fallopian tube | |
Laster | A pregnancy-specific protein in the bovine uterus | |
JPH08145998A (en) | Immunological measuring method of insulin-like growth factor, and kit for measuring the factor | |
SALHANICK et al. | Estrogen-binding proteins in the oviduct of the turtle, Chrysemys picta: evidence for a receptor species | |
US3689633A (en) | Preparation of test sample for immunological assay of pregnancy of mares | |
YONEYAMA et al. | Studies on non-hemin iron | |
US4426455A (en) | Assay of vitamin B12 | |
Atkinson et al. | Development and characterization of a hemolytic assay for mouse C4 | |
Porter et al. | Heparin cofactor and plasma antithrombin in relation to the mechanism of inactivation of thrombin by heparin | |
SU1490650A1 (en) | Method for quantitative analysis of steroid hormones | |
JPH10512362A (en) | Standards for stabilized aqueous steroid immunoassays | |
Smith et al. | Methods for ligand-receptor assays in clinical chemistry. | |
Lilja et al. | Synthetic protease inhibitors and post-ejaculatory degradation of human semen proteins | |
Miquel et al. | Quantification of mucin in human gallbladder bile: a fast, specific, and reproducible method | |
Base | Gamma globulin in serum | |
Zhu et al. | Observation of the activity of factor VIII in the endometrium of women with regular menstrual cycles | |
EP0992512A2 (en) | Reduced cortisol conjugate | |
US5597701A (en) | Process for determining androstenone contents in adipose tissues | |
Smith et al. | A fluorometric method for plasma cortisol and transcortin |