SU1451598A1 - Method of determining the wholeness of nuclei in biological tissue sections on cytological apparatus - Google Patents
Method of determining the wholeness of nuclei in biological tissue sections on cytological apparatus Download PDFInfo
- Publication number
- SU1451598A1 SU1451598A1 SU864100766A SU4100766A SU1451598A1 SU 1451598 A1 SU1451598 A1 SU 1451598A1 SU 864100766 A SU864100766 A SU 864100766A SU 4100766 A SU4100766 A SU 4100766A SU 1451598 A1 SU1451598 A1 SU 1451598A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- nuclei
- integrity
- sections
- core
- phase contrast
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биологии , в частности к цитологии и касаетс идентификации целостности дер в срезе Преимущественно изобретение предназначаетс дл определени размеров дер и фитофотометри- ческого исследовани ДНК дер в срезах . Целью изобретени вл етс повышение точности способа и его упрощение за счет идентификации целостности дра. Дл этого отбирают пробу исследуемой ткани, фиксируют ее, обезвоживают , заключают в парафин, готов т микротомные сре ы, окрашивают их по Фельгену, а затем микроскопируют в фазовом контрасте и по зеленому цвету дра суд т о его целостности. а WThe invention relates to biology, in particular to cytology, and concerns the identification of the integrity of the nuclei in the section. The invention is mainly intended to determine the size of the nuclei and the phytophotometric study of the DNA of the nuclei in sections. The aim of the invention is to improve the accuracy of the method and simplify it by identifying the integrity of the core. To do this, a sample of the test tissue is taken, fixed, dehydrated, enclosed in paraffin, microtome media are prepared, stained with Felgen, and then microscopically examined in phase contrast and its integrity is judged by the green color of the core. W
Description
( ел(ate
елate
соwith
0000
14515981451598
Изобретение относитс к биологии, в частности к цитологии и касаетс идентификации целостности дер в срезах биологической ткани. Преимущественно изобретение предназначаетс дл определени размеров дер и цитофотометрического исследовани ДНК дер в срезах.The invention relates to biology, in particular to cytology, and concerns the identification of the integrity of the nuclei in sections of biological tissue. Advantageously, the invention is intended to determine the size of the nuclei and the cytophotometric study of the DNA of the nuclei in sections.
Целью изобретени вл етс повышение точности способа и его упрощение за счет идентификации целостности дра.The aim of the invention is to improve the accuracy of the method and simplify it by identifying the integrity of the core.
Способ иллюстрируетс следующими примерами.The method is illustrated by the following examples.
Пример 1. Кусочки листьев проростков пшеницы сортов Эммер и Баллади 116 фиксируют по Карнуа, после чего их обезвоживают, заключаютExample 1. Pieces of leaves of wheat germ varieties Emmer and Balladi 116 are fixed according to Carnoy, after which they are dehydrated, they conclude
пшеницы. Максимальн Il,50i3,80, минима При используемой то ( 10 мкм) дро такой разрезать только на видно, что в этом с меры резаных дер м меров целых. На поп листьев пшеницы,исп мый способ, при пом л р-микрометра прои целых и отдельно ре 99%). Средние раз 15 (9,41и10,48) оказал резаного (7, ,2 1wheat. Maximum Il, 50i3,80, minimal. When used then (10 µm), such a cut should not be seen only, which is a measure of the cut kernels of the whole. For the wheat leaf pop, the dry method, using a p-micrometer, is whole and separately (99%). Average times 15 (9,41-10,48) had a cut (7, 2 1
Данные, полученн те, служат основани ни изменени количThe data obtained are the basis of no change in the amount
10ten
3535
в парафин и приготавливают срезы тол- 20 ДНК и размеров дер щиной 10 мкм общеприн тым методом. Депарафинированные срезы окрашивают по Фельгену и просматривают под микроскопом ЛЮМАМ-И-1 в проход щем свете от лампы накаливани . Все дра 25 имеют одинаковый цвет - сиренево- красный. При просмотре этих же дер в фазовом контрасте одни из них имеют зеленый цвет, другие - желтый и оранжево-желтый . Применение других кис- ЗО лых и нейтральньтх фиксаторов, обычно .примен емых дл исследовани ДНК дер посредством реакции Фельгена, на результат не вли ет.cut into paraffin and prepare sections with a thickness of 20 DNA and a size of 10 μm in thickness by the conventional method. The dewaxed sections are stained by Felgen and examined under a LUMAM-I-1 microscope in transmitted light from a incandescent lamp. All cores 25 have the same color - lilac-red. When viewing the same cores in phase contrast, some of them are green, others are yellow and orange-yellow. The use of other acidic and neutral fixatives, usually used for DNA testing by means of the Feelgen reaction, does not affect the result.
Методом послойной реконструкции удалось установить, что зеленый цвет имеют целые дра, а желтый или оранжевый - резаные. Из 87 дер идентифи-; цируют 35 как целые и 52 как резаные.By the method of layer-by-layer reconstruction, it was possible to establish that whole cores have green color, and yellow or orange are cut. From 87 der identi-; 35 as whole and 52 as sliced.
Дл доказательства установленного п влени примен ют еще два методических подхода.Two more methodological approaches are used to prove the established pattern.
Из мезофилла листьев проростка пшеницы выдел ют протопласты, где все дра заведомо целые. После окрас-дч ки по Фельгену выделенных протопластов в суспензии и приготовлени мазков препараты просматривают под микроскопом . В проход р;ем свете все дра в мазках, как и в срезах, имеют сиренево-кр сный свет, .а в фазовом контрасте все дра зеленые. Так как в мазке все дра заведомо целые, то это подтверждает св зь зеленого цвета дра в фазовом контрасте с его целостностью.Protoplasts are isolated from the mesophyll of the wheat germ leaves, where all the nuclei are obviously intact. After staining the Felgen isolated protoplasts in suspension and preparing smears, they are examined under a microscope. In the passage, in light, all the cores in the brushstrokes, as in the sections, have a violet-red light, and in the phase contrast all the cores are green. Since in the smear all the cores are obviously whole, this is confirmed by the connection of the green color of the core in phase contrast with its integrity.
При помоищ винтового окул р-микрометра в мазках устжсавливают средние размеры дер клеток мезофилла листьевWith the help of the screw eye of the p-micrometer in smears, the average sizes of the leaf mesophyll dermal cells are measured.
5050
5555
ростков пшеницы, по телем стеблевой ржаwheat germ, by tele stem rust
Пример 2. Свеж сы помещают в 10%-ны 4с, измельчают на 6 мм , постфиксирую лед на уксусна ки шении 3:1 в течение воживают, заключают готавливают срезы т 5 мкм общеприн тым м финированные срезы Фельгену и просматри скопом ЛЮМАМ-И-1 в от лампы накаливани ют одинаковый цвет Ный . Цитоплазма окр цвет. При просмотре фазовом контрасте бо них зеленого цвета, желтого. Цитоплазма приобрета бледно-же что не мешает четко как целые, так и резExample 2. Fresh sous are placed in 10% 4c, crushed by 6 mm, postfixed ice at 3: 1 acetic solu tion for lead, conclude prepare sections with 5 μm of commonly prepared Finlen sections and look through the LUMAM-I- cluster 1 in incandescent bulbs of the same color Ny. Cytoplasm color color. When viewing the phase contrast, they are green, yellow. Cytoplasm acquiring a pale same that does not interfere clearly both the whole and the cut
Дл доказательств леный цвет в фазовом срезах печени так же пшеницы, имеют целые ют дра по Фельгену в целом кусочке пече этого кусочка готов парат, где дра заве ком цитологическом п микроскопом в проход дра имеют один цвет красньш, а цитоплаз фазовом контрасте д та, а цитоплазма n вого.For evidence, the color in the liver phase slices of the liver as well as wheat has whole Felgen cores in the whole piece of the pech of this piece is prepared, where the cores have one color red and the cytoplasm of the phase contrast, and cytoplasm n vogo.
пшеницы. Максимальный диаметр дра: Il,50i3,80, минимальный 5,40 + 0,01. При используемой толщине среза (10 мкм) дро такой величины можно разрезать только на две части. Очевидно , что в этом случае средт:е размеры резаных дер меньше средних размеров целых. На поперечных срезах листьев пшеницы,использу предлагаемый способ, при помощи винтового окул р-микрометра производ т измерение целых и отдельно резаных дер (Р 99%). Средние размеры целого дра (9,41и10,48) оказались больше, чем резаного (7, ,2 1) .wheat. The maximum diameter of the core: Il, 50i 3.80, the minimum 5.40 + 0.01. With the slice thickness used (10 μm), a nucleus of this size can be cut only into two parts. Obviously, in this case sredm: e sizes of cut kernels are smaller than the average sizes of integers. On the cross sections of wheat leaves, using the proposed method, the whole and separate cut kernels (P 99%) are measured with the aid of a p-micrometer screw eye. The average sizes of the whole core (9.41 and 10.48) turned out to be larger than the cut (7,, 2 1).
Данные, полученные в Эксперименте , служат основанием дл исследовани изменени количества лабильнойThe data obtained in the Experiment serve as a basis for studying the change in the amount of labile
ДНК и размеров дер DNA and der sizes
3535
20 ДНК и размеров дер 25 ЗО 20 DNA and sizes 25 der AOR
; ;
п P
дч dh
в листь х про50in leaves x50
5555
ростков пшеницы, пораженных возбудителем стеблевой ржавчины.wheatgrass affected by stem rust pathogen.
Пример 2. Свежую печень белой крысы помещают в 10%-ный формалин при 4с, измельчают на кусочки объемом 6 мм , постфиксируют в смеси этанол- лед на уксусна кислота в соотношении 3:1 в течение 2 ч. Затем обезвоживают , заключают в парафин и приготавливают срезы толщиной 10 и 5 мкм общеприн тым методом. Депара- финированные срезы окрашивают по Фельгену и просматривают под микроскопом ЛЮМАМ-И-1 в проход щем свете от лампы накаливани . Все дра имеют одинаковый цвет сиренево-крас- Ный. Цитоплазма окрашена в розовый цвет. При просмотре этих же дер в фазовом контрасте большинство из них зеленого цвета, меньша часть желтого. Цитоплазма видоизмен етс , приобрета бледно-желтый оттенок, что не мешает четко различать дра как целые, так и резаные.Example 2. Fresh white rat liver is placed in 10% formalin at 4c, crushed into 6 mm pieces, postfixed in a mixture of ethanol and acetic acid in a ratio of 3: 1 for 2 hours. Then dehydrated, enclosed in paraffin and Prepare sections of 10 and 5 microns in thickness by the conventional method. Deparated sections are stained by Felgen and examined under a LUMAM-I-1 microscope in transmitted light from a incandescent lamp. All cores have the same color lilac-red. Cytoplasm is colored pink. When viewing the same cores in phase contrast, most of them are green, a smaller part of yellow. The cytoplasm is modified by acquiring a pale yellow hue, which does not interfere with a clear distinction between cores as well as slices.
Дл доказательства того, что зеленый цвет в фазовом контрасте в срезах печени так же, как и в листь х пшеницы, имеют целые дра, окрашивают дра по Фельгену непосредственно в целом кусочке печени и затем из этого кусочка готов т давленый препарат , где дра заведомо целыео В таком цитологическом препарате под микроскопом в проход 1чем свете все дра имеют один цвет - сиренево- красньш, а цитоплазма - розовый. В фазовом контрасте дра зеленого цвета , а цитоплазма no-r;piv. розового .In order to prove that the green color in phase contrast in liver sections, as well as in wheat leaves, has whole cores, stains with the Felgen core directly in the whole liver piece, and then a crushed preparation is prepared from this piece, where the cores are known to be In such a cytological specimen under a microscope in the passage of 1 light, all the cores have one color - lilac-red, and the cytoplasm is pink. In phase contrast, the nuclei are green, and the cytoplasm is no-r; piv. pink.
Дл доказательства того, что реза- ные дра в сре ах печени в фазовом контрасте имеют желтьй цвет, определ ют число резаных дер в срезах толщиной 10 и 5 мкм. Очевидно, что в более тонком срез должно быть больше резаных дер, следовательно, в фазовом контрасте большинство дер имеет желтый цвет. Число зеленых и желтыхIn order to prove that the cutting cores in the liver mediums in phase contrast have a yellow color, the number of cut kernels in sections 10 and 5 µm thick is determined. Obviously, in a thinner cut, there should be more cut cuts, therefore, in phase contrast, most of the cuts have a yellow color. The number of green and yellow
дер определ ют при помощи 12-клавиш- ного счетчика по препарату, выбира несколько случайных полей зрени о В п ти пол х зрр.ни срезов толщиной 10 мкм в среднем оказапось 24,5 жел- тых дер, а в срезах толщиной 5 мкм - 41,8. Таким образом, уменьшение толщины среза в 2 раза примерно во столько же раз увеличило число резаных дер, следовательно, резаные дра .The cores are determined using a 12-key counter by drug, choosing several random fields of view on five fields of slices 10 μm thick, on average 24.5 yellow nuclei, and on sections 5 μm thick 41.8. Thus, a decrease in the slice thickness by a factor of 2 approximately the same time increased the number of cut kernels, hence cut cores.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864100766A SU1451598A1 (en) | 1986-05-29 | 1986-05-29 | Method of determining the wholeness of nuclei in biological tissue sections on cytological apparatus |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864100766A SU1451598A1 (en) | 1986-05-29 | 1986-05-29 | Method of determining the wholeness of nuclei in biological tissue sections on cytological apparatus |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1451598A1 true SU1451598A1 (en) | 1989-01-15 |
Family
ID=21250219
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU864100766A SU1451598A1 (en) | 1986-05-29 | 1986-05-29 | Method of determining the wholeness of nuclei in biological tissue sections on cytological apparatus |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1451598A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9057729B2 (en) | 2006-06-29 | 2015-06-16 | Koninklijke Philips N.V. | Vitro method of detecting and/or diagnosing cancer using UV light based DNA image cytometry |
-
1986
- 1986-05-29 SU SU864100766A patent/SU1451598A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Хесин Я.Е. Размеры дер и функциональное состо ние клеток, М.: Медицина, 1967, с. 7-33. Хруст Ю.Р. и др. Основы количественной цитохимии. Изд. Моск. универ-- ситета, 1978, с. 13-18, 31-33. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9057729B2 (en) | 2006-06-29 | 2015-06-16 | Koninklijke Philips N.V. | Vitro method of detecting and/or diagnosing cancer using UV light based DNA image cytometry |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US10018622B2 (en) | Methods and kits for differential staining of abnormal urinary system cells | |
US4400370A (en) | Metachromatic dye sorption means for differential determination of leukocytes | |
US4615878A (en) | Metachromatic dye sorption means for differential determination of sub-populations of lymphocytes | |
Biel et al. | From tissue to cellular ultrastructure: closing the gap between micro‐and nanostructural imaging | |
CA1205365A (en) | Metachromatic dye sorption and fluorescent light emissive means for determination of developmental stages of neutrophilic granulocytic cells and other leukocytes | |
CN106415234A (en) | Fixative composition for cell-comprising liquid samples | |
US4812412A (en) | Standard specimen and method of making and using same | |
US4714606A (en) | Method of staining and identifying cells and compositions thereof | |
US4853210A (en) | Method of staining cells with a diazo dye and compositions thereof | |
EP0183717B1 (en) | Single dye replacement for romanowsky plural dye variable compositions in human biopsy specimen constituent identifications | |
Tas et al. | The Naphthol Yellow S stain for proteins tested in a model system of polyacrylamide films and evaluated for practical use in histochemistry | |
EP2643481A1 (en) | Methods and kits for differential staining of abnormal urinary system cells | |
SU1451598A1 (en) | Method of determining the wholeness of nuclei in biological tissue sections on cytological apparatus | |
WO2003040064A2 (en) | Kits and methods for preparing cell samples optimized for dual staining | |
EP0445277B1 (en) | Quantitative immunocytochemistry assay | |
Moss | A Cytochemical Study of DNA, RNA, and Protein in the Developing Maize Anther: I. Methods | |
US4996040A (en) | Cells stained with a diazo dye | |
Rehfeld et al. | Histological methods | |
RU2795470C1 (en) | Method for qualitative and quantitative colorimetric determination of formaldehyde in milk | |
Begemann et al. | Staining methods | |
Molero et al. | Fluorescence reactions of orcein: new applications for an old stain | |
RU2007720C1 (en) | Method of acute leukosis diagnosis | |
Elias | A phoenix arisen-estrogen receptor immunohistochemistry | |
IT202000014863A1 (en) | KIT FOR THE PREPARATION OF CYTOINCLUSIONS | |
RU2327422C1 (en) | Method of differential diagnostic of primary and secondary liver cancer |