SU1439508A1 - Method of analysis of adesine triphosphate - Google Patents

Method of analysis of adesine triphosphate Download PDF

Info

Publication number
SU1439508A1
SU1439508A1 SU864099170A SU4099170A SU1439508A1 SU 1439508 A1 SU1439508 A1 SU 1439508A1 SU 864099170 A SU864099170 A SU 864099170A SU 4099170 A SU4099170 A SU 4099170A SU 1439508 A1 SU1439508 A1 SU 1439508A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
atp
phosphate
triphosphate
sensitivity
adenosine triphosphate
Prior art date
Application number
SU864099170A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Михаил Юрьевич Рукавишников
Юрий Васильевич Туманов
Михаил Петрович Гришаев
Елена Ивановна Кубатина
Алексей Дмитриевич Аммосов
Мелис Абдукаюмов
Original Assignee
Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Молекулярной Биологии
Хозрасчетное опытное предприятие "Радиопрепарат" Института ядерной физики АН УзССР
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Молекулярной Биологии, Хозрасчетное опытное предприятие "Радиопрепарат" Института ядерной физики АН УзССР filed Critical Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Молекулярной Биологии
Priority to SU864099170A priority Critical patent/SU1439508A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1439508A1 publication Critical patent/SU1439508A1/en

Links

Landscapes

  • Saccharide Compounds (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к иммуно- анализу биологически активных ве- шеств и может найти применение в биохимии , молекул рной биологии и производстве меченых фосфором-32(33) аденозинтрифосфатов. Цель изобретени  - повьп ение точности способа за счет повышени  его чувствительности. Иммунизируют животных конъюгатом производного 5,5-диаденозинтетрафос- фатп с бычьим сывороточным альбумином . Получаемую антисыворотку инкубируют с анализируемой пробой в присутствии -у-- р АТФ, раздел ют св занный и свободный АТФ адсорбцией на активированном угле, покрытом дек- страном. Определ ют количество АТФ в пробе с использованием калибровочного графика, построенного по эталонным ,9 пробам с известным содержанием АТФ. Чувствительность способа 5-1 О моль/мл АТФ. (ЛThe invention relates to the immunoassay of biologically active substances and can be used in biochemistry, molecular biology and the production of phosphorus-labeled 32 (33) adenosine triphosphates. The purpose of the invention is to increase the accuracy of the method by increasing its sensitivity. Animals are immunized with a derivative conjugate of 5,5-diadenosine tetraphosphate with bovine serum albumin. The resulting antiserum is incubated with the analyzed sample in the presence of -y-p ATP, bound and free ATP are separated by adsorption on activated charcoal, coated with dextran. The amount of ATP in the sample is determined using a calibration graph based on reference 9 samples with a known ATP content. The sensitivity of the method is 5-1 O mol / ml ATP. (L

Description

4four

оо со елoo con

Изобретение относитс  к области л муноанализа биологически активных веществ и может найти применение в биохимии, молекул рной биологии ив производстве меченых фосфором-32(33 аденозинтрифосфатов.This invention relates to the field of lunoanalysis of biologically active substances and can be used in biochemistry, molecular biology in the production of labeled with phosphorus-32 (33 adenosine triphosphates.

Целью изобретени   вл етс  повышение точности способа за счет повышени  чувствительности способа. The aim of the invention is to improve the accuracy of the method by increasing the sensitivity of the method.

Пример 1. Получение конъ- югата антигена с бычьим сывороточным альбумином.Example 1. Preparation of bovine serum albumin conjugate antigen.

8-Вг АДФ и гексаметилендиамин АДФ получают следунндим образом, 8-Vg ADP and hexamethylenediamine ADP are obtained as follows

500 мг динатриевой соли АДФ в 10 мл Ш Na-ацетатного буфера (рН 4,3) обрабатьшают избытком Вг в течение 40 мин. Избыток Вг2 экстрагируют хлороформом, а дл  удалени  осTciTKOB Вг водный раствор обрабаты- вгиот 2 мг метабисульфита натри . Продукт осаждают добавлением 3-4 объемов этилового спирта при -20°С. Осадок отфильтровьшают и промывают о5У1а денным спиртом, раствор ют в 10 мл воды и добавл ют 2 г гексаметилен- диамина. Смесь нагревают при 60-70° в течение 2,5-3 ч. Дл  освождени  от избытка гексаметилендиамина про- дукт осаждают спиртом. Осадок промывают центрифугированием, раствор ют в воде и хроматографируют на ДЭАЭ-сефадексе А-25 в аммонийбикар- бонатном буферном растворе, рН 7,5.500 mg of the disodium salt of ADP in 10 ml of III Na-acetate buffer (pH 4.3) are treated with an excess of Br for 40 min. An excess of Br2 is extracted with chloroform, and an aqueous solution is treated with 2 mg of sodium metabisulphite to remove the AcTciTKOB Br of an aqueous solution. The product is precipitated by adding 3-4 volumes of ethyl alcohol at -20 ° C. The precipitate was filtered off and washed with O5U1a with a danol, dissolved in 10 ml of water and 2 g of hexamethylenediamine added. The mixture is heated at 60-70 ° for 2.5-3 hours. To precipitate from an excess of hexamethylenediamine, the product is precipitated with alcohol. The precipitate is washed by centrifugation, dissolved in water and chromatographed on DEAE-Sephadex A-25 in ammonium bicarbonate buffer solution, pH 7.5.

Дл  получени  модифицированного 5 , 5 -диаденозинтетрафосфата (РАр4А) гексаметштендиаминовое производное АДФ ввод т в реакцию кон- денсации с активированным АДФ. 0,06 моль триэтиламмонийной соли 5 -АДФ сушат упариванием Зк мл безводного ацетонитрилаJ раствор ют в 1,2 мл смеси диметилсульфоксид - зтиловьт спирт (1:1 по объему) и добавл ют 0,3 ммоль 4-диметиламико- пиридина, 0,24 ммоль трифенилфосфи- на, 0,24 ммоль дипиридилдисульфвда (PyS)i Смесь вьщерживают при комнатной температуре в течение 20 мин (смесь I) Выход 4-диметиламиноп1фИ- диниевого производного определ ют тех на Kieselgel GO, F2f4 предварительно разбавл   аликвоту реакционной смеси 10%-ным раствором пиперидина в этиловом спирте и анализиру  получающийс  устойчивый пиперидид , Rf АДФ-0,05, Rf пиперидида .ЦФ-0,3.In order to obtain a modified 5, 5 -diadenosine tetraphosphate (PAP4A), the hexamethythiandiamine derivative of ADP is introduced into condensation with activated ADP. 0.06 mol of the triethylammonium salt of 5 -ADPA is dried by evaporation of Zc ml of anhydrous acetonitrileJ dissolved in 1.2 ml of a mixture of dimethylsulfoxide – ethyl alcohol (1: 1 by volume) and 0.3 mmol of 4-dimethylamicopyridine, 0.24 mmol of triphenylphosphine, 0.24 mmol of dipyridyl disulfide (PyS) i The mixture is held at room temperature for 20 minutes (mixture I) The yield of 4-dimethylaminophenyl-indium derivative is determined by those on Kieselgel GO, F2f4 previously diluted with an aliquot of the reaction mixture 10% - a solution of piperidine in ethanol and analyzing the resulting Ychy piperidide, Rf ADP-0.05, Rf piperidide .CF-0.3.

0 5 о 0 5 o

Q j Q j

5five

Отдельно высушивают 0,077 ммоль триэтиламмонийной соли 8-(б-амино- гексаметш1ен)-аминоаденозин-5 -ди- фосфата добавлением и упариванием 3x1 мл ацетонитрила, раствор ют в 800 мкл безводного диметилсульфокси- да, перенос т в смесь I, упаривают этиловый спирт и провод т реакцию при в течение 2 ч. К смеси добавл ют 10 мл смеси вода-дйметилсуль- фоксид (1:1) и нанос т на колонку с ПЭИ-целлюлозой НСОа-форма,( мм), Колонку промьюают 50 мл смеси вода- диметилсульфоксид (I:), 50 мл воды, и выделение продукта провод т в градиенте концентрации ТЭАБ от О до 0,5 М {объем раствора 800 мл, скорость этаоции 40 М.Т1/Ч, объем фракций 15 мл) . Выход продукта составл ет 65% относительно исходного АДФ. По- лученньй продукт по времени элюции ионообменной смолы, устойчивости к щелочной фосфатазе, соотношению основание .фосфат (1:2) и спектральным характеристикам в УФ-свете (Separately dry 0.077 mmol of the triethylammonium salt of 8- (b-aminohexamethylene) -aminoadenosine-5-diphosphate by adding and evaporating 3x1 ml of acetonitrile, dissolve in 800 µl of anhydrous dimethyl sulfoxide, transfer to mixture I, evaporate ethyl alcohol and 10 ml of water-dimethylsulfoxide mixture (1: 1) is added to the mixture and applied to a column with PEI-cellulose HCO-form, (mm), the column is washed with 50 ml of water- dimethyl sulfoxide (I :), 50 ml of water, and the product is isolated in a concentration gradient of TEAB from 0 to 0.5 M {volume of solution of 800 ml, the speed of etiotia 40 M.T1 / H, volume of fractions 15 ml). The yield of the product is 65% relative to the starting ADP. The resulting product by the time of elution of the ion exchange resin, resistance to alkaline phosphatase, the ratio of base phosphate (1: 2) and spectral characteristics in UV light (

290 267 им, 236 им, -g-JeO  290,267 im, 236 im -g-jeO

0,58) соответствует гексаметилен- диаминовому производному Ару А. 0.58) corresponds to the hexamethylenediamine derivative Aru A.

Конъюгирование полученного соединени  с ВСА провод т по известной методике (10). К 2 мл 0,2 М Na-фос- фатного буфера рН 7,5, содержаща- щего 20 мг ВСА и 20 мг производного Ар4.А, по капл м добавл ют 1 мл 0,2%- ного раствора глутарового альдегида Б воде. Добавление диальдегида провод т в лед ной бйне, а затем реакционную смесь инкубируют при комнатной температуре в течение 2 ч. Непрореагировавший глутаровый альдегид св зывают добавлением избытка лкзи- на. Конъюгат очищают от низкомолекул рных примесей диализом. Содержание ЕАр4А в составе конъюгата определ ют спектрофотометрически. Эпитопное число конъюгата равн етс  25-27 молекулам диаденозинтетрафосфата на молекулу ВСА.Conjugation of the obtained compound with BCA was carried out according to a known method (10). To 2 ml of 0.2 M Na-phosphate buffer pH 7.5, containing 20 mg of BCA and 20 mg of derivative Ap4. A, 1 ml of a 0.2% solution of glutaraldehyde B water is added dropwise. . The addition of dialdehyde is carried out in ice lane, and then the reaction mixture is incubated at room temperature for 2 hours. Unreacted glutaraldehyde is combined by adding an excess of carboxylic acid. The conjugate is purified from low molecular weight impurities by dialysis. The content of EAp4A in the conjugate composition is determined spectrophotometrically. The epitopic number of the conjugate is 25-27 diadenosine tetraphosphate molecules per BCA molecule.

Пример 2. Получение антисыворотки и ее характеристика.Example 2. Obtaining antisera and its characteristics.

Дл  иммунизации используют кроликов весом 1,5-2,0 кг. Антиген - конъ- югат ВСА с 5, 5 -диаденозинтетрафос- фатом {ВСА-К--Ар4А) в количестве 1 мг раствор ют в 0,5 мл физиологического раствора и nepefl, , имьгунизацией смешивают с 0,5 мл адъюванта Фрейнда доRabbits weighing 1.5-2.0 kg are used for immunization. The antigen - conjugate of BCA with 5, 5 -diadenosine tetraphosphate {BCA-K - Ap4A) in an amount of 1 mg is dissolved in 0.5 ml of physiological saline and nepefl, and mixed with 0.5 ml of Freund's adjuvant

3I/,3I /,

образовани  однородной эмульсии. Полученный препарат ввод т подкожно в несколько точек спины кролика. Первую инъекцию провод т с применением полного адъюванта Фрейнда. Спуст .2,4 и 8 нед. повторные инъекции провод т с использованием неполного адъюванта Фрейнда. Иммунизаци  животными пере- нчэситс  хорошо. Через 9-10 дн, после четвертой инъекции забирают кровь тотально и получают антисьшоротку известным путем.formation of a homogeneous emulsion. The resulting preparation is administered subcutaneously at several points of the rabbit's back. The first injection is performed using Freund's complete adjuvant. After .2,4 and 8 weeks. repeated injections are carried out using Freund's incomplete adjuvant. Immunization with animals transfer well. After 9-10 days, after the fourth injection, blood is taken totally and an anti-short is obtained in a known way.

Титр антисыворотки, выраженньй в виде концентрации центров св зьтани  антигена Q, и .аффинитет антител к антигену в виде константы ассоциации К,,, определ ют в эксперименте по св зыванию -j. - Pj АТФ антителами из разбавленной антисьгаоротки путем представлени  полученных данных в координатах Скэтчарда.Реакцию провод т в буферном растворе, содержащем 50 мМ трис-HCl, 4 мМ ЭДТА (рН8,2) К одному и тому же количеству антисыворотки (конечное разбавление 1: i 20) добавл ют различные количества y-3ipj дтф известной мол рной радиоактивности и довод т с помощью буферного раствора объем во всех пробах до 100 мкл. Смесь инкубируют при А С в течение часа. Разделение св завшегос  в комплекс с антителами и свободного АТФ осуществл ют с помощью суспензии активированного угл , покрытого декстраном. После центрифугировани  (2 мин, 6000 g) определ ют радиоактивность супернатанта и рассчитывают количество АТФ,включившегос  в комплекс антиген-антитело.The antiserum titer, expressed as the concentration of the binding sites of the Q antigen, and the antibody affinity for the antigen as the association constant K ,,, is determined in the binding experiment -j. - Pj ATP antibodies from dilute antibloss by presenting the data obtained in Scatchard coordinates. The reaction is carried out in a buffer solution containing 50 mM Tris-HCl, 4 mM EDTA (pH8.2) To the same amount of antiserum (final dilution 1: i 20) various amounts of y-3ipj dtf of known molar radioactivity are added and the volume in all samples is adjusted to 100 µl with a buffer solution. The mixture is incubated at A C for one hour. Separation of complexed with antibodies and free ATP is carried out using a suspension of activated carbon coated with dextran. After centrifugation (2 min., 6000 g), the supernatant radioactivity is determined and the amount of ATP that is incorporated into the antigen-antibody complex is calculated.

Пример 3. Определение количества АТФ.Example 3. Determining the amount of ATP.

Все реагенты готов т на буферном растворе, содержащем 50 мМ трис-НС1 и 4 мМ ЭДТА (рН 8,2) у, АТФ высокой мол рной радиоактивности (V6000 Ки/ммоль) добавл ют в пробы, содержащие известные возрастающие количества нерадиоактивного АТФ (5, 10, 15, 20 и 25х10 ь моль). В параллельной серии пробы содержат неизвест ные количества АТФ. Одна из проб не содержит намеченный АТФ (проба сравне ни ). Объем всех проб довод т буферным раствором до 150 мкл с учетом анти- сьшоротки (разбавление 1:120), которую добавл ют во все пробы в последнюю очередь. Пробы перемешивают встр  хиванием и инкубируют при 40 С в те9508 All reagents are prepared in a buffer solution containing 50 mM Tris-HCl and 4 mM EDTA (pH 8.2) y, ATP of high molar radioactivity (V6000 Ci / mmol) is added to samples containing known increasing amounts of non-radioactive ATP (5 , 10, 15, 20 and 25x10 mol). In a parallel series, samples contain unknown amounts of ATP. One of the samples does not contain the intended ATP (the sample is not comparable). The volume of all samples is adjusted to 150 µl with buffer solution, taking into account the anti-shortening (dilution 1: 120), which is added to all samples as a last resort. Samples are mixed by shaking and incubated at 40 ° C in a te9508

чение 2 ч. Далее во все пробы, кроме гфобы сравнени , добавл ют по 50 мкл суспензии активированного угл , покрытого декстраном, перемешивают и центрифугируют при 6000 g в течение 10 мин. По 75 мкл супернатанта из каждой пробирки раствор ют в 1 мл воды и считают на жнцкос.тно-сцинтил0 л ционном счетчике Mark- 1J.2 hours. Then all the samples, except for the comparison of the comparison, are added with 50 µl of a suspension of activated carbon coated with dextran, mixed and centrifuged at 6000 g for 10 minutes. 75 µl of the supernatant from each tube was dissolved in 1 ml of water and counted on a Mark-1J scintillation counter.

Предлагаемый способ определени  АТФ прост в исполнении Дл  вьтолне- ни  серии анализов требуетс  всего несколько мкКи фосфора-32(33). Позто5 му способ может быть осуществлен в любой биохимической лаборатории. Благодар  высокой чувствительности способа необходимое .дл  анализа количество фосфора-32 настолько мало,The proposed method for determining ATP is simple to perform. For performing a series of analyzes, only a few μCi of phosphorus-32 is required (33). This method can be carried out in any biochemical laboratory. Due to the high sensitivity of the method, the required. For analyzing the amount of phosphorus-32 is so small

0 что в совокупности с коротким периодом полураспада делает работу безопасной дл  здоровь  персонала и исключает радиоактивное загр знение лаборатории . В насто щее врем  налажен0 which, combined with a short half-life, makes the work safe for the health of the personnel and excludes radioactive contamination of the laboratory. Currently established

5 регул рный промьшшенный вьтуск Р АТФ высокой мол рной активности, и, следовательно, эта метка широко дос тупна.5 is a regular industrial grade of P ATP of high molar activity, and, therefore, this label is widely available.

Способ найдет применение преждеThe method will be used before

0 всего дл  технологического контрол  качества продукции - дл  определени  мол рной радиоактивности нуклеозид- трифосфатов высокой Удельной активности . Ранее дл  определени  этой ха5 рактеристики продукции изотопного синтеза требовалось не менее нескольких мКи Р НТФ. Регул рное прове- , дение таких анализов дорого и требует прин ти  специальных мер дл  за0 щиты персонала от облучени .In total, for technological control of product quality, to determine the molar radioactivity of high specific activity nucleoside triphosphates. Previously, to determine this characteristic of the production of isotopic synthesis, at least a few mCi of P NTF was required. Regularly conducting such analyzes is expensive and requires special measures to protect personnel from exposure.

В области биохимического анализа предлагаемый способ делает возможньм измерение содержани  зтого биологически важного нуклеотвда в масштабеIn the field of biochemical analysis, the proposed method makes it possible to measure the content of this biologically important nucleotide in scale.

45 отдельной клетки и его внутриклеточного распределени .45 single cell and its intracellular distribution.

По предлагаемому способу чувствительность анализа определ етс  Q как %10 моль/пробу, а по известному 3 1 О моль/пробу. Специфичность, определ ема  по величине 50% ингибироваг и  антител с .-АТФ, по предлагаемому способу опре- eg дел етс  1,6%, а по известному - О,3%.According to the proposed method, the sensitivity of the analysis is determined by Q as% 10 mol / sample, and by the known 3 1 O mol / sample. The specificity, determined by the value of 50% inhibition and antibodies with.-ATP, according to the proposed method is determined 1.6%, and according to the known - O, 3%.

Claims (1)

Формула изобретени Invention Formula Способ определени  аденочинтри- фосфата 5 включающий имьгунизащ-оо жи514395086Method of determining adenochintri-phosphate 5 including imgunizac-oo 514395086 вотного гаптеном, ковалентно св зан-чувствительности и специфичности раным с бычьим сывороточным албумином,диоиммунного анализа, в качествеbovine serum, covalently linked to sensitivity and specificity with bovine serum albumin wound, a dioimmune assay, as забор крови, вьщеление антисьторот-гаптена дл  иммунизации используютblood sampling, the use of anti-helper-hapten for immunization is used ки, инкубирование ее с анализируе-8-(6-аминогексил)-5,5 -диаденозинki incubating it with analyzer-8- (6-aminohexyl) -5,5-diadenosine мой пробой в присутствии меченоготетрафосфата, в качестве меченогоmy breakdown in the presence of labyrintetraphosphate, as labeled аналога аденозинтрифосфата, разделе-аналога аденозинтрифосфата испольние св занного и свободного адено-зуют tc(j ) - 32(33) Р аденозинтризинтрифосфата и определение коли-фосфата и разделение св занного и чества аденозинтрифосфата по радио- свободного аденозинтрнфосфата осуактивной метке, отличающий-ществл ют путем адсорбции на актис   тем, что, с целью повьшени вированном угле, покрытом декстраточности способа за счет повышени ном.adenosine triphosphate analogue, adenosine triphosphate analogue section, bound and free adeno-zypol tc (j) - 32 (33) P adenosyntrizine triphosphate and the determination of coli phosphate and separation of bound and adenosine triphosphate by radio-free adenosine phosphate and zinc phosphate and zinc-phosphate and zinc-phosphate adenosine triphosphate; by adsorption on the act that, in order to increase the angle covered with the dextra method, by increasing the nom.
SU864099170A 1986-05-11 1986-05-11 Method of analysis of adesine triphosphate SU1439508A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864099170A SU1439508A1 (en) 1986-05-11 1986-05-11 Method of analysis of adesine triphosphate

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864099170A SU1439508A1 (en) 1986-05-11 1986-05-11 Method of analysis of adesine triphosphate

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1439508A1 true SU1439508A1 (en) 1988-11-23

Family

ID=21249601

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU864099170A SU1439508A1 (en) 1986-05-11 1986-05-11 Method of analysis of adesine triphosphate

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1439508A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
R.Bredehorst et al. Biochim, Biophys Acta (1981), v. 652, p.16-28. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Denckla et al. The determination of tryptophan in plasma, liver, and urine
US4824941A (en) Specific antibody to the native form of 2'5'-oligonucleotides, the method of preparation and the use as reagents in immunoassays or for binding 2'5'-oligonucleotides in biological systems
US4751190A (en) Fluorescence polarization immunoassay and reagents for use therein
US4062733A (en) Radio-assay of oestrogen
HU176133B (en) Process and reagent for determining mb-creatinase-activity in body-liquid-samples
US4091087A (en) Folic acid derivatives and use in radio-assay
EP0180305B1 (en) Antibody and reagent for immunoassay of atrazine and materials for production thereof
Boxenbaum et al. Determination of isoniazid and metabolites in biological fluids
US4188189A (en) Quantitative testing for vitamin B12
Rudkin et al. Chemical method for determining vitamin B12
US4478934A (en) Determination of adenosine by immunoassay involving acylation of the adenosine
Dreyfuss et al. Fluorescent photoaffinity labeling: Adenosine 3′, 5′-cyclic monophosphate receptor sites
US3988431A (en) Radioassay of folates
US4115065A (en) Saturation analysis of folate compound with selenium-75 labeled folate
SU1439508A1 (en) Method of analysis of adesine triphosphate
US4237044A (en) Antibodies against creatinekinase-M8 and process for the production thereof
FI75935C (en) Method for analyzing the complement fragment C3a, C4a and C5a or des-Arg derivatives and a set useful for carrying out the method
EP0073865B1 (en) Derivatives of iodothyronine compounds and their use in an assay for the free iodothyronine compounds
Kamel et al. Preparation of 125iodine-labelled methotrexate and its use in a magnetisable particle solid-phase radioimmunoassay
Mount et al. Production of antibodies and development of enzyme immunoassay for determination of monensin in biological samples
SU655343A3 (en) Method of qualitative and quantitative determination of cyclic nucleotides
CN108205064B (en) 25OHD3 detection reagent, kit and detection method thereof
Yamamoto et al. Double antibody enzyme immunoassay for the quantitation of adenosine 3′, 5′-cyclic monophosphate (cyclic AMP) and guanosine 3′, 5′-cyclic monophosphate (cyclic GMP) in tissue and plasma
Wood et al. Direct measurement of cGMP in blood plasma and urine by radioimmunoassay
Roberts et al. Comparison of radioimmunoassay and spectrophotometric analysis for the quantitation of hypoxanthine in fish muscle