SU1419717A1 - Method of producing biospecific adsorbents for extracting fibronectin and colagenoses - Google Patents
Method of producing biospecific adsorbents for extracting fibronectin and colagenoses Download PDFInfo
- Publication number
- SU1419717A1 SU1419717A1 SU864143143A SU4143143A SU1419717A1 SU 1419717 A1 SU1419717 A1 SU 1419717A1 SU 864143143 A SU864143143 A SU 864143143A SU 4143143 A SU4143143 A SU 4143143A SU 1419717 A1 SU1419717 A1 SU 1419717A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- fibronectin
- adsorbents
- buffer
- collagen
- biospecific adsorbents
- Prior art date
Links
Abstract
Изобретение относитс к химии полимеров и позвол ет получать биоспецифические адсорбенты дл выделени фибронектина и коллагеназ, имеющие емкость по выдел емым веществам 2,0-2,6 мг/мг лиганда. Это достигаетс использованием в способе получени биоспецифических адсорбентов дл выделени фибронектина и коллагеназ путем активировани нерастворимой матрицы и последующего кова- лентного св зывани ее со специфическим лигандом фрагментов oL -цепи молекулы коллагена или об 1СВ7-бром- цианового пептида коллагена в качестве лигандов. 1 табл. а «е (ЛThe invention relates to the chemistry of polymers and allows the preparation of biospecific adsorbents for the release of fibronectin and collagenases, having a capacity of 2.0-2.6 mg / mg of ligand for the substances to be emitted. This is achieved by using a method for producing biospecific adsorbents to isolate fibronectin and collagenases by activating an insoluble matrix and then covalently linking it with a specific ligand of fragments of the oL-chain of the collagen molecule or about collagen 1CB7-bromo cyanogen peptide as ligands. 1 tab. and “e (L
Description
со with
Ичпбретение относитс к химии полимеров, а именно к способу получени биоспецифических адсорбентов дл выделени фибронектина и колла- геназ, и может быть использовано в биохимии и медицине.Immersion relates to the chemistry of polymers, namely, the method of obtaining biospecific adsorbents for the isolation of fibronectin and collagenases, and can be used in biochemistry and medicine.
Целью изобретени вл етс повышение емкости адсорбентов по фибро- нектину и коллагеназам.The aim of the invention is to increase the capacity of adsorbents for fibronectin and collagenases.
В качестве специфических лигандов в способе используютс of. -цепи коллагена или oL 1СВ7 пептид, получаемый бромциановым щеплением oi. J -цепи коллагена.The specific ligands used in the method are of. -Collagen chains or oL 1CB7 peptide obtained by cyanide splitting oi. J-chains of collagen.
Пример 1. 140 мг лиофилизо- ванного коллагена из кожи крыс раствор ют в 70 мл 0,5 М уксусной кислот в течение 16 ч при 4°С. Раствор диа лизуют против 8 л 0,06 М натрий-аце- татного буфера, рН 4,8, за 16 ч при и затем нагревают при 45 С в течение 30 мин. Полученный раствор фильтруют, ввод т на колонку с целлюлозной КМ-52 (2,5x23 см), уравнове- шенной 0,06 М натрий-ацетатным буфером , рН 4,8 и элюируют линейным градиентом NaCl (,1 М) в том же буфере. Смеситель дл градиента двухкамерный , по 400 мл в каждой камере, общий объем - 800 мл. ХроматографиюExample 1. 140 mg of lyophilized collagen from rats' skin is dissolved in 70 ml of 0.5 M acetic acid for 16 hours at 4 ° C. The solution is dialyzed against 8 liters of 0.06 M sodium acetate buffer, pH 4.8, for 16 hours at and then heated at 45 ° C for 30 minutes. The resulting solution is filtered, injected on a KM-52 cellulose column (2.5x23 cm), equilibrated with 0.06 M sodium acetate buffer, pH 4.8, and eluted with a linear gradient of NaCl (1 M) in the same buffer . A two-chamber gradient mixer, 400 ml in each chamber, total volume 800 ml. Chromatography
провод т при 42 С. Скорость тока 200 мл/ч. Фракции анализируют по поглощению при 230 нм. Соответствующие фракции, содержащие oi, , oi, + ft 2 ио, -компоненты, диали зуют против 0,1 М уксусной кислотой и лиофилизуют. Суммарный выход по белку 50,2% ( od| цепь - 9,52 мг, - 18,4 мг, /J „ - 7,76 мг, ,, - 22,5 мг oi., + /Ь„ - 12,09 мг).conducted at 42 C. The flow rate is 200 ml / h. Fractions analyzed by absorption at 230 nm. The corresponding fractions containing the oi,, oi, + ft 2, and o, -components are dialyzed against 0.1 M acetic acid and lyophilized. The total protein yield of 50.2% (od | chain - 9.52 mg, - 18.4 mg, / J „- 7.76 mg, - 22.5 mg oi., + / B„ - 12, 09 mg).
Лиофилизованные ,- или /3, - фрагменты (по 180 мг) раствор ют в 40 мл 70% меравьиной кислоты и инкубируют 4 ч при 37 С под азотом с 0,5 г BrCN. Затем смесь ввод т на колонку с сефадексом С-25 (1,8 х X 60 см), уравновешенным 0,1 М уксусной кислотой. Скорость тока 45 мл/ч. Фракцию, выход щую с исключающим объемом колонки, лиофилизуют и получают 165 мг смеси бромциановьгх пептидов odi -цепи коллагена. Получено 7,5 мг oi 1 СВ7-пептида коллагенаLyophilized, - or / 3, - fragments (180 mg each) are dissolved in 40 ml of 70% merabic acid and incubated for 4 hours at 37 ° C under nitrogen with 0.5 g of BrCN. The mixture is then introduced onto a Sephadex C-25 column (1.8 x X 60 cm), equilibrated with 0.1 M acetic acid. The flow rate is 45 ml / h. The fraction exiting the column exclusion volume is lyophilized and 165 mg of a mixture of bromine cyanogen odi-collagen peptides are obtained. Obtained 7.5 mg oi 1 CB7 peptide collagen
Лиофилизованный oL 1СВ7-пептид коллагена (20 мг) раствор ют в 10мл 0,1 М NaHCOj, рН 8,4, содержащего 0,15 М NaCl, добавл ют 10 мл бром- циан-активированной сефарозы 4В иLyophilized collagen oL 1CB7 peptide (20 mg) was dissolved in 10 ml of 0.1 M NaHCOj, pH 8.4, containing 0.15 M NaCl, 10 ml of bromine cyan-activated Sepharose 4B and
00
5five
0 5 0 0 5 0
5 0 50
5 .. five ..
5five
суспензию перемешивают в течение 16 ч при 4 С. Затем сорбент промывают 50 мл того же буфера, 50 мл воды и перемешивают 2 ч при 20 С с- 10 мл 1 М раствора этаноламина, оттитрованного 6 н. НС1 до рН 9. Сорбент отдел ют и промывают по 50 мл 0,1 М натрий-ацетатного буфера с 1 М NaCl, рН 4,5 и 0,1 М натрий-борат- ного буфера с 1 М NaCl, рН 9,0 (операцию повтор ют трижды). Затем сорбент промывают водой и хран т в виде суспензии в воде при 4 с в присутствии 0,02% азида натри .the suspension is stirred for 16 hours at 4 ° C. Then the sorbent is washed with 50 ml of the same buffer, 50 ml of water and stirred for 2 hours at 20 ° C with 10 ml of 1 M solution of ethanolamine, titrated with 6N. HC1 to pH 9. The sorbent is separated and washed with 50 ml of 0.1 M sodium acetate buffer with 1 M NaCl, pH 4.5 and 0.1 M sodium borate buffer with 1 M NaCl, pH 9.0 (operation is repeated three times). The sorbent is then washed with water and stored as a suspension in water at 4 s in the presence of 0.02% sodium azide.
Количество присоединенного od, 1СВ7- пептида определ ют по содержанию ок- сипролина в гидролизате аликвоты адсорбента.The amount of added od, 1CB7 peptide is determined by the content of hydroxypropin in the hydrolyzate of an aliquot of the adsorbent.
Примеры 2-9. Аналогично получают адсорбенты на основе сефа- розы 4В или CL-4B, сферона 1000 и тойопала HW-65 с oi, - и о Цеп ми, и /3,2 -компонентами, oi 1СВ8- бромциановым пептидом и желатином.Examples 2-9. Similarly, adsorbents based on sephrosis 4B or CL-4B, spheron 1000, and toyopal HW-65 with oi, and on chains, and / 3,2 components, oi ICC8-bromine cyan peptide and gelatin, are obtained.
Свойства полученных сорбентов представлены в таблице.The properties of the resulting sorbents are presented in the table.
Пример 10. Кбг силикагел МСА-750 добавл ют 35 мл толуола и 2,5 мл 3-(2,3-эпоксипропокси)пропил- триметоксисилана, вакуумируют на роторном испарителе 5 мин и кип т т при перемешивании 10 ч при 110 С. Сорбент промывают на фильтре 70 мл толуола, 140 мл ацетона и высушивают. К полученному продукту добавл ют 167 мл 0,1 Н.НС1 в ацетоне и перемешивают 2 ч при 20 с. Сорбент промывают 100 мл воды до рН 7 промывных вод и сушат в вакууме при 80°С.Example 10. A cluster of silica gel ACA-750 is added with 35 ml of toluene and 2.5 ml of 3- (2,3-epoxypropoxy) propyltrimethoxysilane, evacuated with a rotary evaporator for 5 minutes and boiled under stirring for 10 hours at 110 C. Sorbent washed on the filter with 70 ml of toluene, 140 ml of acetone and dried. To the resulting product were added 167 ml of 0.1N.HCl in acetone and stirred for 2 hours at 20 seconds. The sorbent is washed with 100 ml of water to pH 7 of the wash water and dried in vacuum at 80 ° C.
Полученный сорбент суспендируют в растворе 0,256 г периодата натри в 200 мл воды и перемешивают в течение 1 ч при 20°С. Затем сорбент промывают 300 мл воды и перемешивают в течение 16 ч при 20°С с раствором 100 мг оС, -цепи в 50 мл воды, после чего продукт промывают 100 мл воды, суспендируют в 50 мл 0,1 М бикарбо- натного буфера, рН 8,5, добавл ют 0,05 г бромгидрида натри и перемешивают в течение 1 ч при 20°С. Полученный адсорбент промывают 50 мл 0,1 М натрий-ацетатного буфера, рН 4,5, содержащего 1 М NaCl, и 50 мл 0,1 М натрий-боратного буфера, рН 9,0, содержащего 1 М NaCl (операцию повтор ют трижды). Затем сорбент промывают водой и хран т при 4 С.The resulting sorbent is suspended in a solution of 0.256 g of periodate sodium in 200 ml of water and stirred for 1 hour at 20 ° C. Then the sorbent is washed with 300 ml of water and stirred for 16 hours at 20 ° C with a solution of 100 mg of C, -chain in 50 ml of water, after which the product is washed with 100 ml of water, suspended in 50 ml of 0.1 M bicarbonate buffer, pH 8.5, add 0.05 g sodium bromide and stir for 1 h at 20 ° C. The resulting adsorbent is washed with 50 ml of 0.1 M sodium acetate buffer, pH 4.5, containing 1 M NaCl, and 50 ml of 0.1 M sodium borate buffer, pH 9.0, containing 1 M NaCl (the operation is repeated three times ). Then the sorbent is washed with water and stored at 4 ° C.
3U197173U19717
Свойства адсорбента приведены вAdsorbent properties are given in
10 а10 a
таблице.the table.
Пример 11. (Хроматографи фибронектина плазмы крови человека на адсорбентах, содержащих фрагменты молекулы коллагена) .Example 11. (Human plasma plasma fibronectin chromatography on adsorbents containing collagen molecule fragments).
Инкубируют 1 ч при 20 С раствор плазмы крови человека (лиофилизован- ную плазму из 60 мл крови раствор ют в 30 мл 0,05 М трис-буфера, рН7,4, с 0,15 М NaCl, 0,5 мМ PMSF и 0,02% азида натри ) с 10 мл oi, -сефаро- зы 4В. Затем адсорбент упаковывают в силиконизированную стекл нную колонку , которую промывают тем же буферным раствором до отсутстви поглощени при 280 нм в элюате. После этого колонку промывают уравновешивающим буферным раствором, содержащи 1 М мочевину (50 мл), и вымывают фиб ронектин тем же буфером с 4 М мочевиной (14 мл). В заключение колонку промывают тем же буфером с 8 М мочевиной . Функции анализируют по поглощению при 280 нм. Фракции, содержащи фибронектин, диализуют против 0,1 М уксусной кислоты и лиофилизуют. Выхо фибронектина 17 мг (94,4%). Чистота полученного препарата подтверждена . данными электрофореза в полиакрила- мидном геле в присутствии додецил- сульфата натри .A solution of human blood plasma is incubated for 1 h at 20 ° C (lyophilized plasma from 60 ml of blood is dissolved in 30 ml of 0.05 M Tris buffer, pH 7.4, with 0.15 M NaCl, 0.5 mM PMSF and 0 , 02% sodium azide) with 10 ml oi, -sepharose 4B. The adsorbent is then packaged in a siliconized glass column, which is washed with the same buffer until absorbed at 280 nm in the eluate. After this, the column is washed with a equilibrating buffer solution containing 1 M urea (50 ml) and the fibrinectin is washed out with the same buffer with 4 M urea (14 ml). In conclusion, the column is washed with the same buffer with 8 M urea. Functions analyzed by absorption at 280 nm. The fractions containing fibronectin are dialyzed against 0.1 M acetic acid and lyophilized. Exit fibronectin 17 mg (94.4%). The purity of the resulting product is confirmed. polyacrylamide gel electrophoresis data in the presence of sodium dodecyl sulfate.
Пример 12. (Хроматографи коллагеназы из культуральной среды фибробластов кожи человека на о(,1СВ7-сефарозе) .Example 12. (Chromatography of collagenase from the culture medium of human skin fibroblasts on o (1CB7-sepharose).
А. Коллагеназу выдел ют из 5 л среды осаждением сульфатом аммони (60% насьпцени ). В случае бессыворо- точной среды осаждение провод т в присутствии сывороточного альбумина в концентрации 0,5%. Осадок отдел ют центрифугированием, раствор ют в 0,01 М трис-HCl буфере, рН 7,5, содержанием 0,001 М CaCl2, и после диализа против этого же буфера раствор , содержащий 300 мг белка, ввод т на колонку с КМ-целлюлозой, уравновешенной тем же буфером, Элюцию коллагеназы провод т градиентом NaCl (,3 М) в 0,01 М трис-НС буфере , рН 7,5, с 0,001 М CaCl2Co ско- ростью тока 0,1 мл/мин. Степень очистки на стадии ионообменной хроматографии - 30 раз. Полученный препарат коллагеназы используют далее дл аффинной хроматографии. Коллагеназную активность определ ют по гидролизу с -коллагена.A. Collagenase is isolated from 5 L of medium by precipitation with ammonium sulfate (60% of our stage). In the case of a fermentation free medium, precipitation is carried out in the presence of serum albumin at a concentration of 0.5%. The precipitate was separated by centrifugation, dissolved in 0.01 M Tris-HCl buffer, pH 7.5, content of 0.001 M CaCl2, and after dialysis against the same buffer, a solution containing 300 mg of protein was injected onto a KM-cellulose column, equilibrated with the same buffer, the elution of collagenase was carried out with a NaCl gradient (3 M) in 0.01 M tris-HC buffer, pH 7.5, with 0.001 M CaCl2Co current rate 0.1 ml / min. The degree of purification at the stage of ion-exchange chromatography is 30 times. The resulting collagenase preparation is further used for affinity chromatography. Collagenase activity is determined by hydrolysis of c-collagen.
Б. Сорбент об1СВ7-сефароза (5 мл упакованного объема) инкубируют 1 ч при 4°С с раствором 10 мг препарата коллагеназы, полученной в п.А, вB. Sorbent ob1CB7-sepharose (5 ml of packaged volume) is incubated for 1 hour at 4 ° C with a solution of 10 mg of the collagenase preparation obtained in item A in
10 мл 0,05 М трис-НС буфера, рН7,4, содержащего 0,1 М NaCl, 0,001 М СаСЦ, 0,005 М PMSF и 0,05% Brij 35.10 ml of 0.05 M Tris-HC buffer, pH 7.4, containing 0.1 M NaCl, 0.001 M CaSC, 0.005 M PMSF and 0.05% Brij 35.
Затем сорбент упаковывают в колонку (1,2 X 4 см), которую промывают при 4 С по 25 нп буфера А, буфера А с 1 М NaCl, 0,05 М натрий-ацетатного буфера , рН 5,2, содержащего 0,2 М NaCl,Then the sorbent is packaged in a column (1.2 X 4 cm), which is washed at 4 C with 25 np of buffer A, buffer A with 1 M NaCl, 0.05 M sodium acetate buffer, pH 5.2, containing 0.2 M NaCl,
0,001 CaClj, 0,005 М PMSF и 0,05% Brij 3. Хроматографию провод т при скорости тока 20 мл/ч, объем фракций - 1 мл. Фракции анализируют по поглощению при 280 нм и по коллагеназной активности. Коллагенолитичес- ка активность распредел лась в двух фракци х, элюированных буфером А, содержащим 1 М NaCl, и натрий-ацетатным буфером. Выход по активности 40%,0.001 CaClj, 0.005 M PMSF and 0.05% Brij 3. Chromatography was carried out at a flow rate of 20 ml / h, the volume of the fractions was 1 ml. Fractions analyzed by absorption at 280 nm and collagenase activity. Collagenolytic activity was distributed in two fractions eluted with buffer A containing 1 M NaCl and sodium acetate buffer. The output activity 40%,
степень очистки 10 раз.cleaning degree 10 times.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864143143A SU1419717A1 (en) | 1986-09-29 | 1986-09-29 | Method of producing biospecific adsorbents for extracting fibronectin and colagenoses |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864143143A SU1419717A1 (en) | 1986-09-29 | 1986-09-29 | Method of producing biospecific adsorbents for extracting fibronectin and colagenoses |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1419717A1 true SU1419717A1 (en) | 1988-08-30 |
Family
ID=21265998
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU864143143A SU1419717A1 (en) | 1986-09-29 | 1986-09-29 | Method of producing biospecific adsorbents for extracting fibronectin and colagenoses |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1419717A1 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5354461A (en) * | 1991-02-20 | 1994-10-11 | Eisai Co., Ltd. | Packings combining protein to a support via a spacer |
US5480542A (en) * | 1991-02-20 | 1996-01-02 | Eisai Co., Ltd. | Packings combining protein to a support via a spacer |
AT403963B (en) * | 1996-12-18 | 1998-07-27 | Immuno Ag | Method for quantifying and determining the functionality of collagen-binding proteins |
-
1986
- 1986-09-29 SU SU864143143A patent/SU1419717A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Туркова Я. Аффинна хроматографи . М.: Мир, 1970, с. 319. Engvall Е., Ruoslahti Е. Binding of soluble form of fibroblast surface protein, fibroneetin, to collagen. Int. J. Cancer. 1977. v. 20, p. 1-5. * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5354461A (en) * | 1991-02-20 | 1994-10-11 | Eisai Co., Ltd. | Packings combining protein to a support via a spacer |
US5480542A (en) * | 1991-02-20 | 1996-01-02 | Eisai Co., Ltd. | Packings combining protein to a support via a spacer |
AT403963B (en) * | 1996-12-18 | 1998-07-27 | Immuno Ag | Method for quantifying and determining the functionality of collagen-binding proteins |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Miletich et al. | The synthesis of sulfated dextran beads for isolation of human plasma coagulation factors II, IX, and X | |
US3920625A (en) | Isolation of coagulation factors from biological material using cross linked sulfated, sulfonated carbohydrates | |
CA1334042C (en) | Process for the preparation of a material for affinity chromatography | |
US3842061A (en) | Method for isolation of antithrombin from animal tissue materials by adsorption on sulfated carbohydrate gel | |
Vogt et al. | A new function of the activated third component of complement: binding to C5, an essential step for C5 activation | |
US4138287A (en) | Purifying and isolating method for hepatitis virus to use in preparing vaccine | |
US4381346A (en) | Isolation of plasminogen activators useful as therapeutic and diagnostic agents | |
EP0220719A2 (en) | Cyclodextrin absorbing material and its use | |
US4119774A (en) | Heparin purification method | |
US5639857A (en) | Ultrapurification of factor IX and other vitamin k-dependent proteins | |
EP0137356B1 (en) | Covalently bound heparin - antithrombin-iii complex, method for its preparation and its use for treating thromboembolism | |
JPS5832591B2 (en) | Purification method of urokinase | |
DK147408B (en) | PROCEDURE FOR THE EXTRACTION OF THROMBINIC ENZYMES FROM HOSE POISTS OR HOSE POISON FRACTIONS | |
US5055557A (en) | Ultrapurification of factor IX and other vitamin K-dependent proteins | |
SU1419717A1 (en) | Method of producing biospecific adsorbents for extracting fibronectin and colagenoses | |
Nevaldine et al. | Bovine pepsinogen and pepsin. IV. A new method of purification of the pepsin | |
CA1252744A (en) | Ultrapurification of factor ix and other vitamin k- dependent proteins | |
US4302384A (en) | Purification of gammaglobulin derivative | |
USRE32271E (en) | Isolation of plasminogen activators useful as therapeutic and diagnostic agents | |
US3819605A (en) | Anticoagulant isolation from pit viper using a modified agarose bed and eluting with a benzamidine solution | |
US20090093038A1 (en) | Method for the production of pure virally inactivated butyrylcholinesterase | |
JPH0114240B2 (en) | ||
SU644796A1 (en) | Method of purifying proteolytic ferments | |
Einarsson et al. | Coupling of proteins and other amines to Sepharose by bromine oxidation and reductive amination | |
US4030977A (en) | Method for purification of physiologically active substance using enzyme-enzyme inhibitor system |