SU1390242A1 - Method of producing nourseotricin - Google Patents
Method of producing nourseotricin Download PDFInfo
- Publication number
- SU1390242A1 SU1390242A1 SU847773279A SU7773279A SU1390242A1 SU 1390242 A1 SU1390242 A1 SU 1390242A1 SU 847773279 A SU847773279 A SU 847773279A SU 7773279 A SU7773279 A SU 7773279A SU 1390242 A1 SU1390242 A1 SU 1390242A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- antibiotic
- stimulator
- wednesday
- mmol
- nutrient medium
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биотехнологии и касаетс ферментативного получени ноурзеотрицина - антибиотика , относ щегос к группе стреп- тотрицинов. Цель изобретени - снижение расхода стимул тора при сохранении выхода антибиотика. Сущность способа сводитс к тому, что штамм Str. noursei IMET JA3890 вьфащивают в полноценной питательной среде, содержащей стимул тор антибиотико- образовани - азид натри , бренцкате- хин, амиталь, сульфат цинка или 6-аланин. При этом стимул тор можно вводить как до инокул ции питательной среды, так и в процессе культивировани до завершени экспоненциальной фазы роста продуцента. Процесс ферментации ведут в аэробных услови х при 25-30°С в течение 3-10 дней, а целевой продукт выдел ют из фильтрата культуральной жидкости. 4 табл. с S (ЛThis invention relates to biotechnology and is related to the enzymatic production of nourzheothricin, an antibiotic belonging to the group of streptotricins. The purpose of the invention is to reduce the consumption of the stimulator while maintaining the output of the antibiotic. The essence of the method is that the strain Str. Noursei IMET JA3890 is absorbed in a complete nutrient medium containing an antibiotic stimulant — sodium azide, brencatehine, amital, zinc sulfate or 6-alanine. In this case, the stimulator can be introduced both before the inoculation of the nutrient medium and during the cultivation process until the exponential growth phase of the producer is completed. The fermentation process is carried out under aerobic conditions at 25-30 ° C for 3-10 days, and the target product is isolated from the filtrate of the culture fluid. 4 tab. with S (L
Description
со со о го 4 tofrom 4 to 4
I Изобретение относитс к области |биотехнологии и касаетс фермента- тивного получени ноурзеотрицина - антибиотика, относ щегос к группе стрептотрицинов.I The invention relates to the field of biotechnology and is related to the enzymatic production of noorzeotricin, an antibiotic belonging to the group of streptothricins.
Изолированный Брадлером и Трумом (1963-1965) из культуры варианта Streptomyces noursei АТСС 11455 анти- :биотик - ноурзеотрицин in vitro акти- |вен против грамположительньрс и грам- |отрицательных бактерий, а также про- |тив микробактерий, кроме того, про в- ;л ет и противовирусное и тениацидаль- ное действие. Ноурзеотрицин в отношеНИИ химической структуры представл - ;ет собой в основном смесь стрептотри- |цина F и D (Грефе и др., 1974).Isolated by Bradler and Trumm (1963–1965) from the culture of the variant Streptomyces noursei ATCC 11455 anti-: biotic-noorzeotricin in vitro is active against gram-positive and gram-negative bacteria, as well as against microbacteria, moreover, -; lt both antiviral and teniacidal action. With regard to the chemical structure, Nourzheotricin is mainly a mixture of streptothricin F and D (Grefe et al., 1974).
Штамм стрептомицетов, образующий антибиотик ноурзеотрицин, под назва- |нием otreptorayces noursei IMET lA 13890b, хранитс в коллекции штаммов Центрального института микробиологии и экспериментальной терапии АН- ГДР.The streptomycete strain, which forms the antibiotic Nourzeothricin, called otreptorayces noursei IMET LA 13890b, is stored in the collection of strains of the Central Institute of Microbiology and Experimental Therapy AN-GDR.
, преимущественно 26-28°С. Глубинное культивирование дл получени вегетативного посевого материала длитс 24-72 ч, в частности 48 ч, а процесс выращивани главной культуры 72-144 ч.mainly 26-28 ° C. Deep cultivation to obtain vegetative sowing material lasts 24-72 hours, in particular 48 hours, and the main crop grows 72-144 hours.
Выделение антибиотика из отделенного от мицели фильтрата культуры осуществл етс путем адсорбции к соответствующим катионообменникам, например Вофатит СР-300, и последующего элюировани разбавленными кислотами, (Брадлер и Трум, 1963; Грефе и др. 1977..The antibiotic is separated from the culture filtrate separated from the mycelium by adsorption to the corresponding cation exchangers, for example, Vofatite CP-300, and subsequent elution with dilute acids (Bradler and Trum, 1963; Grefe et al. 1977).
На известном питательном субстрате (Ьрадлер и Трум, 1985) штамм Streptomyces noursei IMET lA 3890 b образует лишь незначительные количества ноурзеотрицина (ниже 100 мкг/мл) Добавлением аминоарилкарбоновых кислот , в частности 5-10 мМ о-аминобен- зойной кислоты, в начале выращивани культуры удаетс в известных техниOn a well-known nutrient substrate (Bradler and Trum, 1985), the strain of Streptomyces noursei IMET LA 3890 b forms only insignificant amounts of nerurothiotricin (below 100 µg / ml) by the addition of aminoaryl carboxylic acids, in particular 5-10 mM o-aminobenzoic acid, at the beginning of cultivation cultures are known
Согласно известнь1М способам (Брад- 25 ческих услови х увеличивать выходAccording to limestone methods (Brady-25 conditions to increase the yield
лер и Трум, 1963/1965; Бокер и Трум, 1966; Трефе и др., 1974) культивирование осуществл ют в аэробных услови х . Дп этого лиофилизированный наLehr and Trom, 1963/1965; Boker and Trom, 1966; Trefe et al., 1974) is cultivated under aerobic conditions. Dp this lyophilized on
почве споровый материал этого штамма стрептомицетов пересевают на подход щие агаровые среды. После 6-10-дневного инкубировани при 28-30 С выросший таким образом спорулирующий мице- лиальньй газон используют дл засева жидких стерильных питательных сред, состо щих из источников углерода и In soil, the spore material of this strain of streptomycetes is subcultured on suitable agar media. After 6–10 days incubation at 28–30 ° C, the sporulating mycelial lawn grown in such a way is used to inoculate sterile liquid nutrient media consisting of carbon sources and
азота,а также неорганических солей. nitrogen, as well as inorganic salts.
: В качестве источников углерода можно использовать различные сорта крах- Q вращаетс вторичный обмен в св зиA: Different types of starch can be used as carbon sources. Q. Secondary exchange is rotated due to
мальной муки растительного происхождени , например картофельный крахмал глюкозу и/или глицерин. В качестве источников азота используют, в частности , соевую муку, различные аминокислоты и/или аммонийные соли, В начале ферментации кислотность среды, наиболее благопри тна дл антибио- тикообразовани , находитс в пределах рН 6,0-6,7.vegetable flours, for example, potato starch, glucose and / or glycerin. In particular, soybean flour, various amino acids and / or ammonium salts are used as nitrogen sources. At the beginning of fermentation, the acidity of the medium most favorable for antibiotic formation is in the range of pH 6.0-6.7.
Глубинное культивирование микроорганизма Streptomyces noursei IMET lA 3890 b можно осуществл ть в широ- когорлых колбах или круглых плоскодонных колбах различного содержани на качалке, а также в аэрируемых стерильным воздухом ферментаторах с перемешивающим устройством из коррозионно-стойкого материала при 25ферментации в 5-10 раз (Бокер и Трум, 1966; Трум и Бокер, 1965; Грефе и др., 1974).Deep cultivation of the microorganism Streptomyces noursei IMET lA 3890 b can be carried out in wide-necked flasks or round flat-bottomed flasks of various contents on a rocking chair, as well as in fermenters aerated with sterile air with a corrosion-resistant material mixing device with 25 fermentation 5-10 times (B-5 times) (5-10 times) (B). and Trom, 1966; Trom and Boker, 1965; Grefe et al., 1974).
о-Аминобензойна кислота и/или 0 другие а мин оарилкарбоновые кислоты (Грефе и др., 1974, 1977, 1978, 1979) вызывают специфическое подавление образовани цитохрома а-типа (цито- хромоксидаз), косвенно ингибиру тем как перенос аминокислоты из питательной среды в мицелий, так и окислительное дезаминирование аминокислот в клетках ноурзеотрицино- образовател . За счет этого предот5o-Aminobenzoic acid and / or 0 other a min oarylcarboxylic acids (Grefe et al., 1974, 1977, 1978, 1979) cause a specific suppression of the formation of cytochrome a-type (cytochromoxidases), indirectly inhibiting the transfer of amino acids from the nutrient medium in the mycelium and oxidative deamination of amino acids in the cells of the nerzeotricinogen. Due to this
5five
00
5five
с клеточным изобилием азотных катабо- литов и, кроме того, исключено, что аминокислоты, служащие в качестве предшественников ноурзеотрицина, в значительной степени потреблюютс антибиотикообразователем в фазе его роста. Таким образом, эти аминокислоты лучше доступны дл вторичного обмена в ходе образовани ноурзеотрицина , поскольку дл образовани биомассы используютс преимущественно неорганические источники азота (аммонийный азот).with cellular abundance of nitrogen catabolites and, in addition, it is possible that the amino acids that serve as precursors of noorzeotricin are largely consumed by the antibiotic forcing during its growth phase. Thus, these amino acids are better available for secondary exchange during the formation of noorzeotricin, since predominantly inorganic nitrogen sources (ammonium nitrogen) are used to form biomass.
Ферментативное производство ноурзеотрицина с использованием о-амино- бензойной кислоты позвол ет значительно увеличивать выход антибиотика. Однако необходимое использование больших количеств аминоарилкарбоноEnzymatic production of nourcingotricin using o-aminobenzoic acid significantly increases the yield of the antibiotic. However, the necessary use of large quantities of aminoarylcarbono
вых кислот отрицательно вли ет,на экономичность способа в св зи с затратами на такие добавочные вещества Тепловую стерилизацию и соответственно химическую или радиационную стерилизацию растворов солей водных амино акрилкарбоновых кислот нельз осуществл ть из-за разложени аминоарил карбоновых кислот с образованием TOK сических продуктов превращени , дл необходимого обеззараживани таких растворов остаетс только стерильна фильтраци . Последн , однако, относительно трудоемка. Наличие амино- арилкарбоновЬк кислот в стоках хро- матографических колонок затрудн ет биологическую очистку сточных вод.This is adversely affected by the cost-effectiveness of the method due to the cost of such additional substances. Thermal sterilization and, accordingly, chemical or radiation sterilization of solutions of salts of aqueous amino acrylcarboxylic acids cannot be carried out because of the decomposition of aminoaryl carboxylic acids to form TOK conversion products, for the necessary disinfection of such solutions remains only sterile filtration. Last, however, is relatively time consuming. The presence of amino-arylcarboxylic acids in the effluent of the chromatographic columns makes biological treatment of wastewater difficult.
Цель изобретени - снижение расхода стимул тора при сохранении выхода антибиотика.The purpose of the invention is to reduce the consumption of the stimulator while maintaining the output of the antibiotic.
Способ осуществл етс следующим образом.The method is carried out as follows.
Задача изобретени - создание способа , обеспечивающего промышленное производство ноурзеотрицина без использовани аминоарилкарбоновых кислот .The objective of the invention is the creation of a method that provides industrial production of Nourzeotricin without the use of aminoaryl carboxylic acids.
Добавки ингибиторов дыхательной цепи, например азид натри или другие щелочные азиды, бренккатехин, а также амиталь (этилизоамилбарбитуро- ва кислота), и/или ингибиторов переноса аминокислот в живой клетке, например водорастворимые соли цинка ил бета-аланин, добавл емые в главную культуру в момент засева, оказывают аналогичное способствующее действие на биосинтез ноурзеотрицина, не мен биологических свойств продукта ферментации . Необходимые дл этого концентрации одного из этих веществ лежат в пределах 0,025 - 0,25 ммоль, в основном около 0,15 мм (азида натри ) или О,;5 - 1,75 ммоль, в основном 0,50, до 0,75 ммоль (сульфата цинка илиуЗ-аланина) или 0,05 - 2,0 ммоль, в основном около 0,4, до 1,5 мм (бренцкатехина или ами- тал ) .Supplements of the respiratory chain inhibitors, such as sodium azide or other alkaline azides, brancatechine, and amital (ethylisoamylbarbituric acid), and / or amino acid transfer inhibitors in a living cell, such as water-soluble zinc or beta-alanine salts, are added to the main culture in seeding time, have a similar facilitating effect on the biosynthesis of nerzeotricin, which does not change the biological properties of the fermentation product. The concentrations of one of these substances necessary for this lie in the range of 0.025–0.25 mmol, generally about 0.15 mm (sodium azide) or 0, 5–1.75 mmol, mostly 0.50, to 0.75 mmol (zinc sulphate of yl-iuZ-alanine) or 0.05-2.0 mmol, generally about 0.4, to 1.5 mm (brencatechine or amine).
Дл способа используют следующие ферментационные среды, содержащие,%: среда Во-30 - глюкоза 2,9; соева мука обезжиренна 1,3, хлористый натрий 0,5; карбонат кальци 0,3; водопроводна вода дл получени 100 мл, рН 6,5 (перед стерилизацией)среда ВО-31 - кукурузный крахмал 3,0; глюкоза 0,3; соева мука обезжиренна For the method using the following fermentation medium containing,%: Wednesday In-30 - glucose 2.9; soybean flour, defatted 1.3, sodium chloride 0.5; calcium carbonate 0.3; tap water to obtain 100 ml, pH 6.5 (before sterilization) BO-31 medium - corn starch 3.0; glucose 0,3; soy flour is defatted
5five
0 0
5 five
00
00
5five
00
5five
0,7; нитрат аммони 0,5; сульфат магни кристаллический 0,2; хлористый натрий 0,5; карбонат кальци 0,3; водопроводна вода дл получени 100 МП, рН 6,0 (перед стерилизацией), среда Во-32 - картофельньй крахмал 3,2; глюкоза 2,9; соева мука обезжиренна 1,4; нитрат аммони сульфат магни кристаллический 0,2; хлористый натрий 0,1; карбонат кальци 0,6; водопроводна вода дл получени 100 мл, рН 6,0 (перед стерилизацией ) .0.7; ammonium nitrate 0.5; crystalline magnesium sulfate 0.2; sodium chloride 0.5; calcium carbonate 0.3; tap water to obtain 100 MP, pH 6.0 (before sterilization), medium W-32 — potato starch 3.2; glucose 2,9; Soya flour defatted 1,4; crystalline ammonium nitrate magnesium sulfate 0,2; sodium chloride 0.1; calcium carbonate 0.6; tap water to obtain 100 ml, pH 6.0 (before sterilization).
Эти среды, используемые дл культуры продуцента, обеспечивают гораздо более высокий выход ноурзеотрицина по сравнению с известной ферментационной средой.These media used for the producer culture provide a much higher yield of nourzeotricin as compared with the known fermentation medium.
При наличии азида натри и соответственно других щелочных азидов, бренцкатехина, амитал , сульфата цинка и/или бетааланина, добавл емых в питательную среду отдельно или в смеси в момент засева культуры, ноур- зеотрицинообразование увеличиваетс еще в 2-10 раз.In the presence of sodium azide and, accordingly, other alkaline azides, brencatechol, amytal, zinc sulfate and / or beta alanine, added to the nutrient medium alone or in a mixture at the time of sowing the culture, the neuroteotricin formation increases by another 2-10 times.
Ноурзеотрицин можно выделить из фильтрата культуры путем адсорбции с использованием активированного угл и катионообменников (сильно-.и слабокислы). Предпочтительньм способ основан на адсорбции на щелочной основе слабокислых катионообменных солей. Элюирование адсорбатов провод т водными или спиртовыми растворами минеральных кислот. Из минерало- кисльпс элюатов, получают чистую соль ноурз еотрицина.Naurzeotricin can be isolated from the culture filtrate by adsorption using activated carbon and cation exchangers (strongly-and weakly acidic). The preferred method is based on alkali-based adsorption of weakly acidic cation-exchange salts. Elution of the adsorbates is carried out with aqueous or alcoholic solutions of mineral acids. From the mineral-acid eluates, a pure salt of ecotricin is obtained.
Пример 1. Лиофилизированцые на почве консервированные споры штамма Streptomyces noursei ШЕТ IA 3890b высевают на подход щую агаризованную среду, например среду Эмерсона. Примерно после семидневного инкубировани при 30 С вырезают из мицели- ального газона участки размером. 2 см и засевают ими культуральную среду 1-й стадии вьфащивани следующего состава, %: глюкоза 4,0; соева мука обезжиренна 1,5; 0,03; NaCl 0,5; CaCOj 0,3; водопроводна вода 100 мл; рН 6,5-6,9 (перед стерилизацией ) .Example 1. The soil-dried canals of Streptomyces noursei strain SIX IA 3890b are plated onto a suitable agar medium, such as Emerson's medium. After approximately seven days of incubation at 30 ° C, areas of the size of the mycelial lawn are cut out. 2 cm and cultured them with the culture medium of the 1st stage of enhancement of the following composition,%: glucose 4,0; soy flour defatted 1,5; 0.03; NaCl 0.5; CaCOj 0.3; tap water 100 ml; pH 6.5-6.9 (before sterilization).
Среду в количествах по 50 мп заливают в закупоренные ватной пробкой широкогорлые колбы емкостью 500 мл. Стерилизацию осуществл ют 35-минутным нагреванием до 120 С в автоклаве.The medium in quantities of 50 ml is poured into 500-ml wide-necked flasks with a capacity of 500 ml, sealed with a cotton plug. Sterilization was carried out for 35 minutes by heating to 120 ° C in an autoclave.
Засе нные культуры инкубируют на качалке при в течение 48 ч. 3 мл посевного материала используют дл засева ферментационной среды. The inoculated cultures are incubated on a shaker for 48 hours. 3 ml of inoculum is used to inoculate the fermentation medium.
Дл ферментации используют следующие питательные среды, %: среда Во-30 - глюкоза 2,9; соева мука обезжиренна 1,3; NaCl 0,5; СаСОз водопроводна вода 100 мл; рН 6,5 (перед стерилизацией), среда Во-31 - кукурузный крахмал 3,0; .глюкоза 0,3; соева мука обезжиренна 0,7; 0,5; MgS04 7HpO 0,2; NaCl 0,5; CaCOj 0,3; водопроводна вода 100 мл; рН 6,О (перед стерилизацией ) .For fermentation, the following nutrient media are used,%: B-30 medium - glucose 2.9; soy flour defatted 1,3; NaCl 0.5; SASO3 tap water 100 ml; pH 6.5 (before sterilization), medium B-31 - corn starch 3.0; glucose 0.3; soy flour defatted 0.7; 0.5; MgS04 7HpO 0.2; NaCl 0.5; CaCOj 0.3; tap water 100 ml; pH 6, O (before sterilization).
Ферментационные среды в количествах по 80 мл заливают в закупоренные ватной пробкой широкогорлые колбы емкостью 500 мл и стерилизуют при 120°С в течение 35 мин в автоклаве.Fermentation medium in quantities of 80 ml is poured into 500-ml wide-necked flasks with a capacity of 500 ml and sterilized at 120 ° C for 35 minutes in an autoclave.
К предварительно подготовленной посевной культуре в момент зас.ева прибавл ют стерильно профильтрованны водные нейтральные растворы с оответ- ствующих веществ (максимум 3,0 мл добавки/80 МП среды).At the moment of the inoculation of the pre-prepared seed culture, aqueous neutral solutions with the appropriate substances are added sterile-filtered (maximum 3.0 ml of additive / 80 MP medium).
С помощью восьми полученных выращиванием на качалке 24-часовых культур 2-й стадии засевают 150 л термостерилизованной среды (60 мин при 125°С) описанного состава, залиВ табл. 1 и 2 приведены средние максимальные концентрации ноурзеотри- JQ той в ферментатор из благородной ста- цина, полученные в течение 72-100 ч ли (обща емкость 200 л), оснащенный Using eight 24-hour 2 nd stage cultures obtained by growing on a rocking chair, 150 l of a thermosterilized medium (60 min at 125 ° C) of the described composition are seeded, see Table 1. Tables 1 and 2 show the average maximum concentrations of Nourzeotri-JQ in the noble-grade fermenter obtained during 72-100 h (total capacity 200 l), equipped with
устройствами дл подачи стерильного воздуха и перемешивающим устройством. Культивирование осуществл ют при 26-28 0, скорости работы перемеши- вающего устройства 375 об/мин и коэффициенте аэрации 1 л воздуха и 1 л культуральной жидкости/мин (при нормальном давлении).devices for supplying sterile air and mixing device. The cultivation was carried out at 26-28 0, the speed of the mixing device was 375 rpm and the aeration coefficient was 1 liter of air and 1 liter of culture liquid / min (at normal pressure).
После 20-24 часового инкубировани используют 100 л этой культуры дл засева 600 л ферментационнойAfter 20-24 hours of incubation, 100 l of this culture are used to inoculate 600 l of fermentation.
инкубировани культуры продуцентом при методом диффузии в агар с использованием Bacillus subtilis АТСС 6633 в качестве тест-микроорганизма .incubating the culture with a producer using agar diffusion method using Bacillus subtilis ATCC 6633 as a test microorganism.
П р и м е р 2. Вегетативный посевной материал Str. noursei выращивают, как описано в примере 1. По 10 мл 48-часовой культуральной жидкости используют дл засева 2-й посевной среды. Эта среда имеет такой же состав , как и среда 1-й стадии, и ееPRI mme R 2. Vegetative seed Str. Noursei is grown as described in Example 1. 10 ml of a 48-hour culture fluid are used to inoculate the 2nd inoculum. This medium has the same composition as the 1st stage medium and its
4040
среды. Эта среда заранее простерили- зована 1-часовым нагреванием до 180 Сenvironment. This medium was sterilized beforehand by 1 hour heating to 180 ° C.
среды. Эта среда заранее простерили- зована 1-часовым нагреванием до 180 Сenvironment. This medium was sterilized beforehand by 1 hour heating to 180 ° C.
стерилизуют таким же образом.sterilized in the same way.
Среду в порци х по 400 мл заливают .j. (обща емкость 1000 л; имеютс уст- - .4.«-,. ройства дл перемешивани , подачиMedium in portions of 400 ml is poured over .j. (total capacity is 1000 liters; there are devices - - .4. "-,. equipment for mixing, feeding
стерильного воздуха и регулировани температурного режима).sterile air and temperature control).
Используема дл этого питательна среда Во-32 имеет следующий состав,%: картофельньй крахмал 3,2; глюкоза 2,9; соева мука обезжиренна 1,4; нитрат аммони 0,7; сульфат магни кристаллический 0,2; хлористый натрий 0,1; карбонат кальци 0,6; под- 55 солнечное масло 0,3.; сульфат цинка кристаллический 0,048; водопроводна вода дл получени 100 мл,.рН 5,6в закупоренные ватной пробкой широкогорлые колбы емко.стью 2500 мл. Посевы инкубируют при 29 °С в течение 24 ч на качалке. По 800 мл получаемого та- 1СИМ образом посевного материала 2-й стадии выращивани используют дл засева стерильных ферментационных сред, залитых в количествах по 20 л в заранее термостерилизированные стекл нные ферментаторы емкостью 30 л каждый. Дл этого используют указанные в примере 1 среды Во-30 и Во-31, которые дополнительно содер6 ,1 (перед стерилизацией).The nutrient medium B-32 used for this has the following composition,%: potato starch 3.2; glucose 2,9; Soya flour defatted 1,4; ammonium nitrate 0.7; crystalline magnesium sulfate 0.2; sodium chloride 0.1; calcium carbonate 0.6; under-55 sun oil 0,3; crystalline zinc sulfate 0.048; tap water to obtain 100 ml., .PH 5.6V, corked, wide-necked flasks with a capacity of 2500 ml. Crops are incubated at 29 ° C for 24 h on a rocking chair. 800 ml each of the seed of the 2nd stage of cultivation produced in the 2-nd stage of cultivation is used to inoculate sterile fermentation media, filled in quantities of 20 l in pre-sterilized glass fermenters of 30 l each. For this purpose, the mediums B-30 and B-31 specified in example 1 are used, which are additionally contained 6, 1 (before sterilization).
жат еще 0,3% подсолнечного масла в0.3% more sunflower oil is harvested
качестве пеногасител . Непосредственно после засева добавл ют стерильно профильтрованные водные нейтральные растворы приведенных в табл. 3 веществ (максимум 200 мл добавок/20 л среды).as defoaming agent. Immediately after seeding, sterile-filtered aqueous neutral solutions are given in Table. 3 substances (maximum 200 ml of additives / 20 l of medium).
Ферментационные среды инкубируют в течение 120 ч при 26-28°С и коэффициенте аэрации 20 л воздуха/мин (при. нормальном давлении) при пере- меиивании (440 об/мин). В качестве пеногасител в случае необходимости используют стерильное подсолнечное масло.Fermentation media are incubated for 120 hours at 26–28 ° C and aeration coefficient of 20 liters of air / min (at normal pressure) with stirring (440 rpm). If necessary, sterile sunflower oil is used as a defoaming agent.
Образуемый в процессе ферментации ноурзеотрицин ежедневно определ ют микробиологическим способом, как описано в примере 1.Formed during fermentation, noorzeotricin is determined daily by a microbiological method, as described in Example 1.
Ир им е р 3. Вегетативный посевной материал Str. noursei выращивают таким же образом и с использованием такой же питательной среды, как описано в примерах 1 и 2.Ir im er 3. Vegetative seed Str. Noursei is grown in the same way and using the same nutrient medium as described in examples 1 and 2.
С помощью восьми полученных выращиванием на качалке 24-часовых культур 2-й стадии засевают 150 л термостерилизованной среды (60 мин при 125°С) описанного состава, залитой в ферментатор из благородной ста- ли (обща емкость 200 л), оснащенный Using eight 24-hour 2nd stage cultures obtained by growing on a rocking chair, 150 l of thermosterilized medium (60 min at 125 ° C) of the described composition are inoculated, filled into a fermenter of a noble steel (total capacity 200 l), equipped with
среды. Эта среда заранее простерили- зована 1-часовым нагреванием до 180 Сenvironment. This medium was sterilized beforehand by 1 hour heating to 180 ° C.
6,1 (перед стерилизацией).6.1 (before sterilization).
Сульфат цинка добавл ют в ферментационную среду перед стерилизацией.Zinc sulfate is added to the fermentation medium prior to sterilization.
Культивирование культуры осуществл ют в течение 144 ч при 26-28 С, скорости работы перемешивающего устройства 290 об/мин и коэффициенте аэрации 1 л воздуха и 1 л культураль- ной жидкости/мин (давление 0,14- 0,16 МПа).Cultivation of the culture was carried out for 144 hours at 26–28 ° C, a mixing device operating speed of 290 rpm and aeration coefficient of 1 liter of air and 1 liter of culture fluid / min (pressure 0.14– 0.16 MPa).
Дл пеногашени используют по мере необходимости стерильное водосо- держащее подсолнечное масло. Образуемый в процессе ферментации ноурзеот- рицин ежедневно определ ют микробиологическим способом как описано в примере 1.For defoaming, sterile water-containing sunflower oil is used as necessary. Formed during the fermentation process, nourthothricin is determined daily by the microbiological method as described in Example 1.
Полученные результаты приведены в табл. 4.The results are shown in Table. four.
Дл вьщелени антибиотика 500 л культуральной жидкости с содержанием ноурзеотрицина 4000 мкг/л подкусл ют щавелевой кислотой до значени рНFor the supply of an antibiotic, 500 liters of culture fluid with 4000 mg / l of nerurothiotricin is baked with oxalic acid to a pH value.
Получают 100 г белого ноурзеотрицин-гидрохлори жанием ноурзеотрицина 50100 g of white Nurzeotricin-hydrochlorination of Nourzeotricin 50 are obtained.
30thirty
4,0 и сепарированием отдел ют от твердых веществ. Затем фильтрат нейт- 25 10,0% сульфатной воды, рализуют 30%-ным водным раствором NaOH и вновь сепарируют дл отделени дополнительных продуктов флокул - ции. Дл адсорбции антибиотика нейтрализованный фильтрат культуры фильтруют со скоростью протекани 70 л/ч через колонну, заполненную 70 л Вофа- тита СР-300 (натриева форма). Адсор- бат промывают 50 л деионизированной воды, затем О,1 н. уксусной кислотой до кислотности рН 5,5 протока и еще 15 л воды. Элюирование антибиотика осуществл ют 50 Л 1,0 н. НС1 и затем деионизированной водой, причем элюат принимают раздельно в двух фракци х: фракцию I до перехода элюата в сторону кислых значений, а фракцию II в качестве кислого элюата.4.0 and separated from the solids by separation. The filtrate is then neutralized with 10.0% sulphate water, disinfected with a 30% aqueous solution of NaOH and separated again to separate additional products of flocculation. To adsorb the antibiotic, the neutralized culture filtrate is filtered at a flow rate of 70 l / h through a column filled with 70 l of WoFitatite CP-300 (sodium form). The adsorbate is washed with 50 l of deionized water, then 0, 1 n. acetic acid to the acidity pH 5.5 channel and another 15 liters of water. Elution of the antibiotic is carried out with 50 L 1.0 n. HC1 and then with deionized water, the eluate being taken separately in two fractions: fraction I before the eluate is converted to acidic values, and fraction II as the acidic eluate.
3535
4040
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU847773279A SU1390242A1 (en) | 1980-08-14 | 1984-01-23 | Method of producing nourseotricin |
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DD22332180A DD161182A3 (en) | 1980-08-14 | 1980-08-14 | PROCESS FOR PREPARING AN ANTIBIOTICS OF THE STREPTHOTHRICIN GROUP |
SU847773279A SU1390242A1 (en) | 1980-08-14 | 1984-01-23 | Method of producing nourseotricin |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1390242A1 true SU1390242A1 (en) | 1988-04-23 |
Family
ID=25747695
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU847773279A SU1390242A1 (en) | 1980-08-14 | 1984-01-23 | Method of producing nourseotricin |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1390242A1 (en) |
-
1984
- 1984-01-23 SU SU847773279A patent/SU1390242A1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
FI78469B (en) | FOERFARANDE FOER FRAMSTAELLNING AV N-SUBSTITUERADE 1-DESOXINOJIRIMYCINDERIVAT. | |
EP0055069A1 (en) | Derivatives of actaplanin | |
JPH02196780A (en) | Glycosidase-inhibitor sarbostatin and its manufacture | |
US8119371B2 (en) | Process for the preparation of polymyxin B employing (PAENI) Bacillus polymyxa | |
DE2343963A1 (en) | STICK BACTERIA PEPTIDASE AND METHOD OF PRODUCING IT BY CULTIVATING STICK BACTERIA | |
EP0001709B1 (en) | Deoxynarasin antibiotics, their production and use | |
EP0455772B1 (en) | Process for the preparation of vancomycin | |
SU1390242A1 (en) | Method of producing nourseotricin | |
US3282794A (en) | Method of producing citrulline by bacterial fermentation | |
HU190358B (en) | Process for preparing enduracidin | |
US4770876A (en) | Microbiological production of livestock growth-promoting agent | |
SU673184A3 (en) | Method of producing antibacterial and antioccidiosis substance | |
SI9600120A (en) | New and improved fermentative procedure for the production of clavulanic acid and its salts | |
EP0537897B1 (en) | Method of producing antibiotic A82810 from Actinomadura fibrosa sp. nov. NRRL 18348 and Actinomadura sp. NRRL 18880 | |
SU501680A3 (en) | The method of obtaining antibiotic | |
CS207693B2 (en) | Method of making the antibiotic a 40104 | |
NO155701B (en) | PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF A THERAPEUTIC ACTIVE DERIVATIVE OF TALLYSOMYCIN A OR B | |
KR910000454B1 (en) | Novel microorganism streptomyces sp kccb2 | |
EP0175007B1 (en) | Process for the biotechnological production of l-malic acid | |
KR100446110B1 (en) | Cephalosporin c-producing microorganism having tolerance against high concentration of glycerol | |
HU192388B (en) | Process for preparing nurzeotrycine further obtaining thereof in salt form or in adsorbed state | |
CN110747246A (en) | Method for improving erythromycin fermentation unit | |
SU1423588A1 (en) | Method of producing nourzeotricine | |
KR840000378B1 (en) | Process for preparing"mildiomycin" | |
FR2463618A1 (en) | NOVEL ANTIBIOTIC AMINOGLYCOSIDE AND ITS PRODUCTION |