SU1380212A1 - Method of obtaining l-phenylalanine - Google Patents

Method of obtaining l-phenylalanine Download PDF

Info

Publication number
SU1380212A1
SU1380212A1 SU864083581A SU4083581A SU1380212A1 SU 1380212 A1 SU1380212 A1 SU 1380212A1 SU 864083581 A SU864083581 A SU 864083581A SU 4083581 A SU4083581 A SU 4083581A SU 1380212 A1 SU1380212 A1 SU 1380212A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
vkpm
phenylalanine
strain
tyrosine
resistant
Prior art date
Application number
SU864083581A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Г.А. Великжанина
Т.А. Ямпольская
Н.И. Жданова
Т.А. Бачина
Н.А. Васильева
А.К. Соколов
Е.Р. Рошаль
А.Ф. Шолин
Е.А. Тимохина
Original Assignee
Всесоюзный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов filed Critical Всесоюзный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов
Priority to SU864083581A priority Critical patent/SU1380212A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1380212A1 publication Critical patent/SU1380212A1/en

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к микробиологической про1Ф1тленности и касаетс  получени  незаменимой at iHOкислоты фенилаланина, котора  при™ мен етс  э медицине, а также может служить исходш 1м продуктом при син тезе аспартама-пептида, нспользуемо го в качестве интенсивного подсластител  в пищевой промьшшенности. Целью изобретени   вл етс  повышение выхода Ь-фенилаланииа и сокращение времени ферментации. Способ заключаетс  и использовании в качестве продуцентов L-фенилаланина новых штаммов Bacillus subtilis ВКПМ В-3549 ИЛИ BJOM В-3550, или ВКПМ B-3S51,- или ВКПМ В-3552, устойчивык к р-фторфеиилаланину и D-тирозину. Штамм ВКПМ В-3552. устойчив еще и к гидроксаматам феннлаланнна и тирозина/ а штамм ВКПМ В-3556 - к /з-тианнд- аланину. fflтaм &l накапливают в среде от 8,6 до 13 г/л Ь-фенилапанина. 2 табл. . с (О сThe invention relates to the microbiological propriety of the body and relates to the preparation of irreplaceable at iHO acids of phenylalanine, which varies with e medicine, and can also serve as a source for the synthesis of aspartame-peptide, used as an intensive sweetener in the food industry. The aim of the invention is to increase the yield of b-phenylalania and reduce the fermentation time. The method also consists in using L-phenylalanine producers of new Bacillus subtilis strains VKPM B-3549 OR BJOM B-3550, or VKPM B-3S51, or VKPM B-3552, which is resistant to p-fluorophenyl alanine and D-tyrosine. Strain VKPM B-3552. it is also resistant to fennlanann and tyrosine hydroxamates / and the VKPM B-3556 strain - k / z-tiannd-alanine. ffltam & l accumulate in the medium from 8.6 to 13 g / l of L-phenylapanine. 2 tab. . with (About with

Description

соwith

0000

toto

ЖоJo

1чЭ1HE

Изобретение относитс  к микро™ биологической промышленности и каса етс  способа получени  незаменимой аминокислоты Ь-фенилаланина, который примен етс  в медицине, а также может служить исходным продуктом при си ттезе аспартама-пептида, используемого в качестве интенсивного подсластител  в пищевой промыгален ности.The invention relates to the micro ™ biological industry and relates to the method of obtaining the essential amino acid b-phenylalanine, which is used in medicine, and can also serve as the initial product in the aspartame-peptide synthesis, which is used as an intensive sweetener in the food industry.

Целью изобретени   вл етс  повышение выхода Ь-фенилаланииа и ускорение процесса.The aim of the invention is to increase the yield of b-phenylalanium and to accelerate the process.

Способ заключаетс  в применении новых штаммов Bacillus subtilis, полученных с помбщыо генетической трансформации, мутагенеза и отбора мутантов, устойчивых к анйлогам ароматических аминокислот а также к антибиотику митомицину С.The method consists in the application of new strains of Bacillus subtilis, obtained with the genetic transformation, mutagenesis and selection of mutants that are resistant to analogs of aromatic amino acids as well as to the antibiotic mitomycin C.

В качестве исходного штамма служит штамм Вас. subtilifi 92А - продуцент , триптофана, ,из которого получен продуцент фенйлаланина генетическими методами на основе общности путей синте а ароматических а1чинокислот и того, что у продуцента триптофана в процессе селекции уже созданы оп ределенные предпосылки и дли сверх синтеза фенйлаланина. Исходный штамм 924 трансформируют хромосомной ДНК донорного штамма Вас. subtilie 39, в составе которой имеетс  дефектный ген trp. Е, кодирующий первый фермент в пути синтеза триптофана и ген аго Н, который кодирует высокоактивный изофермент хоризматмутазу, отсутствующую у продуцента трипто фана. В результате получают трансформанты , требуюп1ие дл  роста трип- тофан и имеющие BijicoKHri уровень активности хоризматмутазы. Среди них после проверки на способность продуцировать фенилаланин отбирают трансформант , накапливающий 3 г/л этой аминокислоть, из которого путе селекции получают мутант, устойчивый к 0,5 мкг/мл мито1У ицина С и вы делающий 5 г/л фенйлаланина. След:/ю щие этапы отбора заключаютс  в последовательном получении (после воздействи  на клетки нитрозогуани- дина) мутантов, устойчивык к аналогам ароматических амин 7кислот р фторфенилаланину (рФФ) в концентра ции 9 мг/мл, Д-тирозину (ДТ) 0,075 мг/мл, гидрокса мату тирозина (ГТ) 1 мг/мл, гидроксамату фенил- The initial strain is the strain you. subtilifi 92A is a producer of tryptophan, from which the fenylalanine producer is obtained by genetic methods based on the generality of synthetic routes to synthesized chlorine acids and the fact that the tryptophan producer has already created certain prerequisites in the selection process for the synthesis of fenylalanine. The original strain 924 transform the chromosomal DNA of the donor strain You. subtilie 39, which contains a defective trp gene. E, encoding the first enzyme in the tryptophan synthesis pathway and the Ago H gene, which encodes the highly active isoenzyme chorismatmutase, which is absent from the producer of tryptophan. As a result, transformants are obtained that require tryptophan for growth and have a bijicoKHri level of activity of chorium matmutase. Among them, after testing for the ability to produce phenylalanine, a transformant is selected that accumulates 3 g / l of this amino acid, from which a mutant resistant to 0.5 μg / ml of mitochloride C and producing 5 g / l of phenylalanine is obtained by selection. Next: The selection stages consist in the sequential preparation (after exposure of nitrosoguanidine) of mutants, which are resistant to aromatic analogs of amino acids 7 of p fluorothenylalanine (rFF) at a concentration of 9 mg / ml, D-tyrosine (DT) 0.075 mg / ml, tyrosine hydroxate mat (GT) 1 mg / ml, phenyl hydroxamate

10ten

1515

2020

2525

30thirty

3535

4040

4545

5050

5555

аланина (ГФ) 0,5 мг/мл, -тиеиил аланину (TEA) 7,5 мг/мл, В результате на разных этапах селекции получают штаммы Вас. subfilis ВНИИге нетика П, ВНИИгенетика 33, ВНИЙге- нетика , От штамма Вас, subti- lis ВНИИгенетика II получен спонтанный ревертант к триптофаннезависимо- сти прототрофный штамм ВНИИгенетиЛа 19п.alanine (GF) 0.5 mg / ml, -tiyiyl alanine (TEA) 7.5 mg / ml. As a result, you are obtained at different stages of selection. subfilis VNIIGetika P, VNIIGenetika 33, VNIIGetika, From the strain You, subtilis VNIIgenetika II, a spontaneous revertant to tryptophane-independent Prototrophic strain VNIgenetil 19p was obtained.

Перечисленные новые штаммы-продуценты ЬтфеНилапанина - Вас. subti- lis ВНИИгенетика II, Вас. subttlis ВНИИгенетика 33, Вас. subtilie ВНИИ- генетика I-II, Вас, subtilis ВНИИгенетика 19п хран тс  во Всесоюзном музее промышленных микроорганизмов (ВКПМ) и имеют регистрационные номе- .ра В-3549, В-3552, В-3550 и В-355 соответственно.The listed new producer strains of Nephe Nilapanin are you. subtiLis Vniigenetika II, you. subttlis VNIIgenetika 33, you. subtilie All-Russian Research Institute of Genetics I-II, Vas, subtilis All-Union Research Institute of Genetics 19p is stored in the All-Union Museum of Industrial Microorganisms (VKPM) and has registration numbers B-3549, B-3552, B-3550 and B-355, respectively.

Штаммы имеют следующие культураль- но-морфологическую и физиолого-био- химическую характеристики.The strains have the following cultural-morphological and physiological-biochemical characteristics.

Основные характерН ики новых штаммов Вас. subtilis соответствуют таксономическому описанию этого вида микроорганизмов (Стейниер Р. и др. Мир микробов, т. 3, с. 184, МИР, 1979).The main characteristics of new strains of you. subtilis correspond to the taxonomic description of this type of microorganisms (Steinier R. and others. The world of microbes, vol. 3, p. 184, MIR, 1979).

Йтаммьт Вас. subtil is ВКПМ В-3549, ВКПМ В-3550, ВКПМ В-3551 и ВКПМ В-3552  вл ютс  грамположительными спорообразующими палочками размером (2,5-4,5) 0,7 мкм. Размер спор (1,0- 1,2) (0,6-0,7) мкм.Ytammyt you. subtil is VKPM B-3549, VKPM B-3550, VKPM B-3551 and VKPM B-3552 are gram-positive spore-forming rods (2.5-4.5) 0.7 microns in size. The size of the dispute (1.0-1.2) (0.6-0.7) microns.

М со-пептонный агар. Колонии после 24 ч инкубации при 37 С достигают 4-6 мм в диаметре, сплошные, круглые , с изрезанным краем, поверхность гладка ,M so-peptone agar. Colonies after 24 hours of incubation at 37 ° C reach 4-6 mm in diameter, solid, round, with a rugged edge, the surface is smooth,

Агаризованна  среда Спицайзена с 100 мкг/мл триптофана и 0 мкг/мл аденина. Колонии после 48 ч инкубации при 37 С имеют I мм в диаметре, поверхность гладка , блест ща .Spicizen agar medium with 100 μg / ml tryptophan and 0 μg / ml adenine. Colonies after 48 hours of incubation at 37 ° C have I mm in diameter, the surface is smooth and shiny.

Отношение к источникам углерода: используют глюкозу, сахарозу, м,альто- зу, маннозу, майнит, глицерин, ацетат .Relation to carbon sources: use glucose, sucrose, m, altose, mannose, minit, glycerin, acetate.

Отношение к источникам азота: ассимилируют мочевину и соли аммони .Attitude to nitrogen sources: assimilate urea and ammonium salts.

Не растут на молоке, желатину разжижают слабо, хорошо растут на крахмале.They do not grow on milk, they are thinned to gelatin, they grow well on starch.

Отношение к аналогам аминокислот; все штаммы устойчивы к р-фтор- фенилаланину (рФФ) и Д-тирозину (ДТ), штамм ВКПМ В-3552 устойчив еще кRelation to amino acid analogues; all strains are resistant to p-fluorophenylalanine (rpp) and D-tyrosine (DT), the VKPM B-3552 strain is resistant to

гидроксаматам фенилаланина (ГФ) н тирозина (ГТ), штаьт BKIIM В- 3550 устойчив еще и к /j-тиенилаланииу (TEA).Phenylalanine (GF) n-tyrosine hydroxamate (GT), BKIIM B-3550 stata is also resistant to / j-thienylalanium (TEA).

Потребность в факторах роста: рост всех штаммов стимулируе.тс  аде- кином, штаммы ВКПМ В-3549, В-3550 и требуют дл  роста трипто фан, штамм ВКПМ В-2551 не требует дл  роста триптофан. Отличительные признаки штаммов представлены в табл. 1 .The need for growth factors: the growth of all strains is stimulated. Adequine, VKPM B-3549, B-3550 strains and require a trypto fan for growth, the VKPM B-2551 strain does not require tryptophan for growth. The distinctive features of the strains are presented in table. one .

В общем виде способ получени  L-фенилаланика осуществл ют следую- ци.м образом, К.петки новых штаммов продуцентав Вас. subtilis ВКПМ В-3549, , В--3551 и В-3552 выращивают в течение I сут на ага- ризованной среде Хоттингера, пересевают в колбы со стерильной питательной средой, содержащей источники углерода, азота, ростовых веществ и необходимь е минеральные соли, и культивируют в течение 18-24 ч на качалк при 220 об/мин и 28-37 с.In a general way, the method of obtaining L-phenylalanic is carried out in the following way, the Q. chains of new strains are produced by you. subtilis VKPM B-3549, B - 3551 and B-3552 are grown for 1 day on Hottinger's agar medium, subcultured into flasks with a sterile nutrient medium containing sources of carbon, nitrogen, growth substances and necessary mineral salts, and cultured for 18–24 h on a rocking chair at 220 rpm and 28–37 s.

Получен 1Ый посевной материал внос т . в колбы или ферментеры со стерильной питательной средой, содержащей источники углерода, азота, ростовых веществ и минеральные соли. В качестве источника углерода используют сахарозу или содержащие ее субстраты , например, технический сахар, в качестве источника азота - мочевину или соли аммони , в качестве ростовых веществ - триптофан и кукурузный экстракт Ферментацию осуществл ют в течение 46-72 ч в услови х аэрации, при 28-37 С, рН 6-8, в Колбах на качалке или в ферментере, при расходе продуваемого через культур ал ьнуто жидкость воздуха 400 мл/мин скорости вращени  мешалки 1000 об/мин В результате в культуральной жидкости накапливаетс  до 13 г/л L-фенилала- нинаReceived the first seed introduced. in flasks or fermenters with a sterile nutrient medium containing sources of carbon, nitrogen, growth substances and mineral salts. Sucrose or substrates containing it are used as a carbon source, for example, technical sugar, urea or ammonium salts as a nitrogen source, tryptophan and corn extract as growth substances. Fermentation is carried out for 46-72 hours under aeration conditions. 28-37 ° C, pH 6-8, in Flasks on a rocking chair or in a fermenter, at an flow rate of 400 ml / min. Of air flow through the culture liquid of an agitator rotation speed of 1000 rpm. As a result, up to 13 g / l of culture fluid accumulates. -phenylalanine

Определение содержани  фенйлала- нина в культуральной жидкости провод т с помощью бумажной или тонко- алойной хроматогр афии в системах растворителей бутанол;уксусна  кис- лотагвода (40s10:23) и изопропанол: аммиак (7s3) соответственно.The determination of fenilalanine in the culture liquid is carried out using paper or fine-scale chromatography in solvent systems butanol, acetic acid (40–10 23) and isopropanol: ammonia (7s3), respectively.

Выделение L-феиилаланина из культуральной жидкости осуществл ют путем его селективной сорбции на слабоосновном анионите с последующей десорбцией водой и повторной де0Isolation of L-feiylalanine from the culture fluid is carried out by selective sorption on a weakly basic anion exchanger, followed by desorption with water and repeated

5five

00

5five

00

5five

00

5five

00

5five

сорбцией из водного элюата на сульФ(к катионите в П-форме (авт. св. СССР № 749889). Элюирование Ь-фени.чалани- на и сульфокатионита гор чим водип- этаиольным раствором -лммиака получить в ысококонцентриропанный раствор выдел емой аминокислоты, из которого последн   кристаллизуетс  по мере охлаждени  раствора и нейтрализации аммиака кислотой.by sorption from a water eluate onto sulfate (to the cation exchanger in the P-form (ed. St. USSR No. 749889). Elution of b-phenychalanine and sulfonic cation exchanger with hot water and ethiol solution of l-ammonia in a highly concentrated solution of secreted amino acid, from the latter crystallizes as the solution cools and the ammonia is neutralized with acid.

Выделение L-фенилаланина по описанной схеме обеспечивает выход фе- нплаланина до 60-80%. Содержание основного вещества в хроматографичес- ,ки однородном продукте составл ет не менее 95%. Дополнительна  перекристаллизаци  позвол ет полу(Ить Препараты фенилзланина с содержанием осиовного вещества не менее 99%.Isolation of L-phenylalanine according to the described scheme provides phenlalanine output up to 60-80%. The content of the basic substance in the chromatographic homogeneous product is not less than 95%. Additional recrystallization allows the floor (It Phenylzlanine preparations with an axial content of at least 99%.

Пример 1. Культуру штамма Вас. subtilis ВКШЧ В-35А9 пыращивают в течение 18 ч npti на  гари о- ванной среде Хоттингера. Затем петлей засевают колбы объемом 250 мл, содержащего 10-30 мл nocepHofi среды. Состав посевной среды, г/ : сахароза; кукурузньй экстракт 10; К.рНР04 1,4; КН2Р040,6, триптофан 0,1, RO- допроводна  вода до 1 л, рИ до стерилизации 7,2-7,5, после стерилизации 7,0-7,2. Посевну среду стерилизуют в автоклаве при 0,8 атм в течение 30 мин,. После посева колбы устанавливают на круговую качалку (220 об/мин) и инкубируют при в течение 18ч. Готовый посевной материал внос т в количест-ве 5Z (по объему) в колбы емкостью 2000 мп с 75 мл ферментационной среды. Состав ферментационной среды, г/л: сахароза I00;. кукурузный экстракт 30,К2НР04 ,4; КН.РО 0,6; NaCl 0,5; MgF;04l,0, мочевина 5,0, триптофан 0,1, водопроводна  юда до 1 л, рН среды 7,2. Мочевину добавл ют перед засевом в готовую среду в виде 40%-ного раствора, простерили- зованного при 0,5 атм в течении 30 мин. После засева колбы устанавливают на качалку. Через 72 ч роста культуры при 30°С в культуральной х идкости накапливаетс  iO г/л 1..-фе- нил ланина.Example 1. The culture of the strain you. subtilis HCSP B-35A9 is sprayed for 18 h npti on hottinger hot medium. A loop is then seeded with 250 ml flasks containing 10-30 ml of nocepHofi medium. The composition of the sowing medium, g /: sucrose; corn extract 10; K. pN04 1.4; KH2P040.6, tryptophan 0.1, RO- doprovodnaya water up to 1 l, pI before sterilization 7.2-7.5, after sterilization 7.0-7.2. Sowing medium is sterilized in an autoclave at 0.8 atm for 30 minutes. After seeding, the flasks are placed on a circular rocking chair (220 rpm) and incubated for 18 hours. The finished seed is introduced in a quantity of 5Z (by volume) into flasks with a capacity of 2,000 mp with 75 ml of fermentation medium. The composition of the fermentation medium, g / l: sucrose I00 ;. corn extract 30, K2HP04, 4; KNORO 0.6; NaCl 0.5; MgF; 04l, 0, urea 5.0, tryptophan 0.1, water supply up to 1 l, pH 7.2. Before urea, urea is added to the prepared medium in the form of a 40% aqueous solution, sterilized at 0.5 atm for 30 minutes. After seeding, the flasks are placed on a rocking chair. After 72 hours of culture growth at 30 ° C, iO g / l 1 ..- phenyl lanine accumulates in the culture fluid.

С целью вьщелени  Ь-фенила17ан 1на л полученного ферментацио 1ного раствора пропускают через колонку с 0,4 л слабоосновного анионита . По окончании сорбции колонкуIn order to isolate b-phenyl17an 1 to 1 liter of the resulting fermentation solution, it is passed through a column with 0.4 liters of weakly basic anion exchange resin. At the end of the sorption column

npoNn-inatC T л воды, поело чего, подсоединив к выходу колонки с колонку с Of07 л супьфокйтиокита в Н-форме, пропускают воду уже через систему из двук колонок. После прохожде1ш  9 л воды колонки рлзъедий ют, Ь фенилалании, перешед™ ший с анионита ИА--1р на г атиоиит КУ-2- 8, элюируют раствором .аммиака в 50%-ном водном эталоне при , пропуска  злюэнт через колон ку с . Фракцию выход щего раствора; , содержащего Ь-феимлапэнин в концентрации более 8,0 г/л, обрабатывают уксусной кислотой до рН 6,0 и охлаждают. Выпавшие кристаплы L- фенилалапина отфильтровывают, вают этанолом и высушивают, В ре- лультате получают 6,07 г кристаллического продукта с ссздержаиием Ь-фе- нилаланина 97% (выход 59,8%). Доиз- |злечег ие целевого продукта из маточ™ ика и низкокондентрированнык ий аммиачного элюата по описанной tMiue схеме (предварительно нейтрализуют аммиак уксусной кислотой и отгон ют этанол) позвол ет получить до по л ни тел Е но г кристаплическо : о продукта (содержание основного вещества 95%), с учетом которого общий выход кристаллического Ь-фе™ иилапанина составл ет 74,,6%,npoNn-inatC T l of water, which ate by connecting to the outlet of the column from the column with Of07 l of supofthioxyte in the H-form, let the water through the system from two columns. After passing through 9 l of water, the columns of the liquid are yed, bphenylalanium, transferred from the anion exchanger IА - 1p to g atoioit KU-2-8, and eluted with an ammonia solution in 50% aqueous standard, skipping zyuent through column c. Fraction of effluent solution; containing b-feimlapenin in a concentration of more than 8.0 g / l, is treated with acetic acid to pH 6.0 and cooled. The precipitated Kristaples of L-phenyl-alapine are filtered off, watered with ethanol and dried. As a result, 6.07 g of crystalline product is obtained with a quench of L-phenylalanine of 97% (yield: 59.8%). The final product from the mother liquor and low-concentration ammonium eluate according to the described tMiue scheme (preliminarily neutralizes ammonia with acetic acid and distilled ethanol) allows to obtain to the content of E but cristoply: about the product (content of the basic substance) 95%), taking into account that the overall yield of crystalline L-fe ™ yilapanine is 74,, 6%,

.Пример 2, Вырапсчвание ПО севного материала и культивирование штамма Вас, subtilis ВКГМ провод т, как в примере I, но ферментационна  среда содержит 130 г/л сахарозы. Через 72 ч в культуральной Жидкости накапливаетс  11,3 г/л фе иилаланина, Вьщеленне феиилаланина нз I л культуральной жидкости осу ществл ют, , В результате получают 7f8 г кристалли ческого продукта с содержарГнем фе нилаланина 96%, Выход кристаПлииес- кого фенилаланина 66,,,3%.. Example 2, Breeding of the seed material and cultivation of the Bac, subtilis VKGM strain was carried out as in Example I, but the fermentation medium contains 130 g / l sucrose. After 72 hours, 11.3 g / l of feilanalanin, vsheleni feiilalanin ns I l of the culture fluid are accumulated in the culture liquid, and, as a result, 7f8 g of the crystalline product with phenylalanine content of 96% is obtained. ,, 3%.

Пример 3, Выращивание по™ севного материала и культивирйванне штамма Вас. subtilis ВКПН B-355I осуществл ют9 как в примгре I, Отлн чием  вл етс  то что посевна  н ферментационна  среды ие содержат триптофана, Через 72 ч куль- гурапьной жидкости накапливаетс  9,1 г/л фени-паланикй. Вы,целенне фе чилаланина из культураль ой лаадкос- ти осуществл ют, кз.к в примере 1 ,Example 3, Cultivation according to ™ of seed material and cultured strain Vas. subtilis VKPN B-355I is carried out9 as in primri I, the difference is that the seed fermentation medium does not contain tryptophan. After 72 hours of culture liquid, 9.1 g / l of pheny-palanic accumulates. You, the goal of fechalalanin from the culture of a ladder, are carried out, kz.k in example 1,

00

5five

00

00

5five

5five

Выход кристаллического продукта 69,5%, содержание феиилап нина 96%. Пример Л. Посевной материал штаммув-продуцр.нтов фен лаланина Вас, subtilis ВКПМ В-3549, В-3550, В-3551 и В-3552 выращивают, как в примере 1 . Готовь м посевным материалом каждого п тамма (20 мл) засева™ ют 400 мл ферментационной среды того же состава, что и в примере . Дл  штамма ВКИН B-355i среды не содержат триптофана. Культивирование ведут в лабораторных ферментерах емкостью 600 мл при , расходе продуваемого через культурапьную жидкость воздуха 400 мл в 1 мин, скорости вршцени  мешалки 1000o6/N H, Культивирование заканчиваютs как только из питательной среды исчерпываетс  сахар, Результаты показаны в табл. 2. Выделение.фенилаланина провод т , как в примере I, Выход кристаллического проду кта 77%, содержание феиилаланина 98%.The yield of the crystalline product is 69.5%, the content of the feilipanine is 96%. Example L. The seed material strain-producers. Fen lalanin you, subtilis VKPM B-3549, B-3550, B-3551 and B-3552 are grown as in example 1. Prepare seeds of each p tamm (20 ml) and inoculate 400 ml of fermentation medium of the same composition as in the example. For strain VKIN B-355i, the media do not contain tryptophan. Cultivation is carried out in laboratory fermenters with a capacity of 600 ml with an air flow rate of 400 ml per minute, the speed of the stirrer is 1000 ° 6 / N H, Cultivation ends as soon as sugar is exhausted from the nutrient medium. The results are shown in Table. 2. Isolation of phenylalanine is carried out as in Example I, the yield of the crystalline product is 77%, the content of feiylalanine is 98%.

Пример 5. Посевной материал штамма Вас. subtilis ВЮШ В-3550 выращивают, как в примере Готовым посевным материалом (20 мл) засевают 400 мл ферментационной среды того же состава, что и в примере 1, с тем отличием что концентраци  сахара в среде уменьшена до вместо мочевинь5 внесено 0,5% серExample 5. The seed material strain you. subtilis VUSH B-3550 is grown as in the example. 400 ml of the fermentation medium of the same composition as in example 1 is inoculated with the inoculated seed (20 ml), with the difference that the sugar concentration in the medium is reduced to 0.5% sulfur instead of ureas5

нокислого аммони .ammonium sulfate.

1one

КультиБИрованне ведут в лабораторном ферментере, оснащенном системой .автоматического рН-статирова- нйЯ} при 30°С5 расходе продуваемого через культуральную жидкость возду- ка 400 МП/мин, скорости вращени  мешалки 1000 об/мин о Значение рН куль туральной жидкости поддерживают на уровне ,1. В ходе культивировани  в ферментер по сигналу датчика рН добавл ют смесь 40%-ного раствора сахарозы и 25%-ного раствора амм ака в соотношении 0:1 по объе- . Продолжитепьность культивирова- НИИ 58 ч„ Уровень накоплени  фенил- штанина составл ет lljl г/л.Cultivating is carried out in a laboratory fermenter equipped with an automatic pH-setting system} at 30 ° C5 flow rate of air blown through the culture fluid 400 MP / min, the rotation speed of the stirrer is 1000 rpm. The pH value of the culture liquid is maintained at one. During cultivation, a mixture of 40% sucrose solution and 25% ammonia aka solution in a ratio of 0: 1 by volume is added to the fermenter according to the pH sensor signal. Cultivation duration of the research institute is 58 hours. The accumulation level of the phenyl-leg is equal to llj g / l.

Выделение фенилаланина ведут, как в примере 1. Выход кристаллического продукта 70%, содержание фенил- йланина 98%,Isolation of phenylalanine is carried out as in Example 1. The yield of the crystalline product is 70%, the content of phenyl-alanine is 98%,

Предлагаемый способ отличаетс  от прототипа более высоким уровнем образовани  фенилаланина - до I3 г/л (у прототипа 2,88 г/л), более корот- КИМ сроком ферментации - 46-72 ч (У прототипа 96 ч), на простых по составу средах, содержащих сахарозу , источники азота (мочевииа или соли аммони ), минеральные соли, а в качестве источника ростовых веществ - кукурузный экстракт и трир- 1тофан, если используемый щтамм нуж- даегс  в этой аминокислоте. При выделении фенилаланина из ферментацйон rtoro раствора выход составл ет 60- 80% кристаллического продукта.The proposed method differs from the prototype by a higher level of formation of phenylalanine - up to I3 g / l (the prototype has 2.88 g / l), a shorter KIM with a fermentation period of 46-72 hours (the prototype has 96 hours). containing sucrose, nitrogen sources (urea or ammonium salts), mineral salts, and as a source of growth substances - corn extract and tri-1-tofan, if the substance used is in need of this amino acid. With the release of phenylalanine from the fermentation solution rtoro, the yield is 60-80% of the crystalline product.

В-3549 В-3552B-3549 B-3552

В-3550 В-3551B-3550 B-3551

р-фторфенилаланин; Д-тирозин; гидроксамат фенилаланина; гидроксамат тирозина; /S -тиешшаланинp-fluorophenylalanine; D-tyrosine; phenylalanine hydroxamate; tyrosine hydroxamate; / S tishalshanin

Таблица 2table 2

ПоказательIndicator

Claims (1)

Формула изобретениInvention Formula Способ получени  L-фенилалапина, включающий выращивание продуцирующих его штаммов Bacillus subtilis в услови х аэрации на питательной среде, содержащей источники углерода , азота, минеральные соли и ростовые вещества, до максимального н коплени  целевого продукта с последующим его вьщелеиием, отличающийс  тем, что, с целью повышени  выхода целевого продукта и ускорени  процесса, в качестве продуцентов используют ВКПМ В-3549 или ВКПМ В-3550, или ВКПМ В-3551, или ВКПМ В-3552.A method of producing L-phenyl-lapine, which involves growing the Bacillus subtilis strains producing it under aeration conditions on a nutrient medium containing carbon, nitrogen, mineral salts and growth substances, up to the maximum accumulation of the target product, followed by In order to increase the yield of the target product and accelerate the process, VKPM B-3549 or VKPM B-3550, or VKPM B-3551, or VKPM B-3552 are used as producers. ТаблицаTable Нуждаетс Needs Нуждаетс Needs Нуждаетс Needs Не нуждаетс Does not need Штамм Вас. subtilis ВКПМStrain you. subtilis VKPM В-355||В-3550 В-3549|В-3552B-355 || B-3550 B-3549 | B-3552
SU864083581A 1986-06-30 1986-06-30 Method of obtaining l-phenylalanine SU1380212A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864083581A SU1380212A1 (en) 1986-06-30 1986-06-30 Method of obtaining l-phenylalanine

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864083581A SU1380212A1 (en) 1986-06-30 1986-06-30 Method of obtaining l-phenylalanine

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1380212A1 true SU1380212A1 (en) 1991-12-07

Family

ID=21243666

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU864083581A SU1380212A1 (en) 1986-06-30 1986-06-30 Method of obtaining l-phenylalanine

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1380212A1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2209248C2 (en) Method for preparing l-methionine, strain of bacterium escherichia coli vkpm b-8125 as producer of l-methionine
SU1435159A3 (en) Method of producing l-carnitine
CN1318599C (en) Composition containing organic nitrogen and its fertilizer containing said composition
JPH0549489A (en) Method for producing l-phenylalanine by fermentation method
JP3008565B2 (en) Method for producing L-glutamic acid by fermentation method
JPS6115695A (en) Preparation of l-isoleucine by fermentation method
JP3717970B2 (en) Method for producing L-isoleucine by fermentation
JP2011147459A (en) Novel bacterial strain, method of preparing the same and use thereof in fermentation process for l-lysine production
SU1719433A1 (en) Method of l-alanine preparation
SU1380212A1 (en) Method of obtaining l-phenylalanine
US6984512B1 (en) Bacterial strains, methods of preparing the same and use thereof in fermentation processes for L-lysine production
SU974817A1 (en) Method of producing l-treonin
RU2202607C2 (en) Strain of bacterium methylophilus methylotrophus as producer of l-phenylalanine (variants), method of l-phenylalanine preparing
Takebe et al. Breeding of bialaphos producing strains from a biochemical engineering viewpoint
SU908092A1 (en) Method of obtaining riboflavin
SU1412288A1 (en) Strain of bacteria brevibacterium flavum producent l-serine
SU1693056A1 (en) Strain of bacteria bacillus subtilis - a producer of l-phenylalnine
JPS61128897A (en) Production of l-phenylalanine by fermentation method
SU583641A1 (en) Method of obtaining l-leucine
SU1541257A1 (en) Method of producing i-tryptophan
KR0168719B1 (en) Preparation process of l-threonine by fermentation
JPS58158193A (en) Preparation of l-phenylalanine by fermentation process
EP0187525A2 (en) Process for producing L-serine
SU1206306A1 (en) Pseudomonas species m 35 strain - producer of l-tryptophan on ethanol
SU1206305A1 (en) Method of producing isoleicine