SU1327511A1 - Method of producing collagen peptides containing section of binding with fibronectin - Google Patents
Method of producing collagen peptides containing section of binding with fibronectin Download PDFInfo
- Publication number
- SU1327511A1 SU1327511A1 SU853927840A SU3927840A SU1327511A1 SU 1327511 A1 SU1327511 A1 SU 1327511A1 SU 853927840 A SU853927840 A SU 853927840A SU 3927840 A SU3927840 A SU 3927840A SU 1327511 A1 SU1327511 A1 SU 1327511A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- fibronectin
- buffer solution
- peptides
- collagen
- urea
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Изобрет ние касаетс пептидов, в частности пс лучени коллагеновых пептидов, со;;ер а 1их участок св зывани с фиб1кпи кти 1ом, которые используют в биохимии. Цель - упрощение процесса и повьпиение выхода- целевых продуктов. ПолучеЙие ведут бромциан- фрагментированием коллагена с последующим хроматографированием в определенных услови х, Хроматографирова- ние ведут на сефарозе с иммоболизиро- ванным желатин-св зывающим доменом фибронектином, уравновешенном 0,04- 0,06 М трис-НС1-буферным раствором с рН 7,4-7,6, содержащим 0,1-0,15 М. хлористого натри при скорости тока 150-250 мл/ч и 37-40 С. Затем полон- ку промывают 1-1,5 М мочевиной в урапновешивафщем буферном раст норе, а элюирование коллагеновых пептидов, содержащих участок св зывани с фибронектином , провод т 4-8 М растворами мочевины в указанном выше буферном растворе. Способ позвол ет сократить число стадий с 5 до 2, врем процесса в три раза и повысить выход с 5 до 25%. СО ts9 СПThe invention relates to peptides, in particular, ps lumen of collagen peptides, co ;; ep and 1, their binding site to fibrobot 1, which is used in biochemistry. The goal is to simplify the process and turn out the target products. Brom cyan is obtained by fragmentation of collagen followed by chromatography under certain conditions. Chromatography is carried out on sepharose with an immobolized gelatin-binding domain by fibronectin, equilibrated with 0.04-0.06 M tris-HCl buffer solution with pH 7. 4–7.6, containing 0.1–0.15 M sodium chloride at a flow rate of 150–250 ml / h and 37–40 ° C. Then the whole is washed with 1–1.5 M urea in a weighting buffer. , and elution of collagen peptides containing the fibronectin binding site is carried out with 4-8 M pa in urea in the above buffer solution. The method allows to reduce the number of stages from 5 to 2, the process time is three times and increase the yield from 5 to 25%. SB ts9 sp
Description
11eleven
Изобретение относитс к усовергаен ствованному способу получени колла- геновых пептидов, содержащих участок св зывани с фибронектином, биологически активных соединений, которые наход т применение в биохимии.The invention relates to an improved method for the preparation of collagen peptides containing a fibronectin binding site, biologically active compounds that are used in biochemistry.
Цель изобретени - упрощение процесса коллагеновых пептидов, содержащих участок св зывани с фибронекти- ном, повьшени е выхода целевого продукта .The purpose of the invention is to simplify the process of collagen peptides containing the fibronectin binding site to increase the yield of the target product.
Пример I. Получениеd -СВ 7 бромдианового пептида коллагена.Example I. Preparation of d -CB 7 Bromine Peptide Collagen.
А. Бромциан - фрагментаци целой молекулы коллагена. Раствор 180 мг коллагена из кожи крыс в 8 мл 70%-ной муравьиной кислоты насыщают N., добавл ют 200 мг бромистого циана и полученную смесь инкубируют 5 ч при . Реакционную сМес% обессоливают iicL колонке с биогелем Р-2 (V 100 мл), уравновешенным 0,1 М уксусной кислотой. Скорость тока 45 МП/ч. Фракцию, выход щую с исключающим объемом колонки,.лиофили- зуют и получают 165 мг смеси бром- циановых пептидов коллагена,A. Brom cyan - fragmentation of the whole collagen molecule. A solution of 180 mg of collagen from rats' skin in 8 ml of 70% formic acid is saturated with N., 200 mg of cyan bromide are added and the mixture is incubated for 5 hours at. The reaction with a MoM% is desalted with an iicL column with biogel P-2 (V 100 ml), equilibrated with 0.1 M acetic acid. Current speed 45 MP / h. The fraction leaving the exclusive volume of the column is lyophilized and 165 mg of a mixture of collagen bromine peptides are obtained,
Б. Выделение о 1-СВ7 пептида из смеси бромциановых пептидов коллагена . Полученную смесь бромциановых пептидов коллагена (165 мг) раствор ют в 20 мл 0,05 М трис-НС рН 7,4, с 0,15 М хлористым натрием при нагревании до и раствор перемешивают при 20°С в течение 1 ч с 15 мл сефарозы 4В, содержащей иммобилизованный желатинсв зывающйй домен фиб- ронектина (мол.в. 45000) (содержание домена в адсорбенте 1-2 мг/мл упакованного объема гел ). Затем адсорбен упаковыв.ают в колонку, промывают . уравновещивающим буферным раствором (50 мл), затем тем же раствором, со- держапщм 1 М мочевину (50 мл). Скорость тока 200 мл /ч. d 1-СВ7 пептид элюируют уравновешивающим буферным раствором, содержащим 4 М мочевину Фракцию, содержащую о 1-СБ7 пептид, обессоливают на колонке с биогелем Р-2, уравновещенным 0,1 М уксусной кислотой, и лиофилизуют. ВЫХОДО/1-СВ пептида 7,5 мг-.(25%). Продукт бып электрофоретически гомогенным при электрофорезе в полиакриламидном геле в присутствии додецилсульфата нат ри (мол. в. около 25000).B. Isolation of 1-CB7 peptide from a mixture of collagen bromide peptides. The resulting mixture of bromine cyanic peptides of collagen (165 mg) is dissolved in 20 ml of 0.05 M Tris-HC pH 7.4, with 0.15 M sodium chloride when heated to and the solution is stirred at 20 ° C for 1 h with 15 ml Sepharose 4B containing immobilized gelatin-binding domain of fibronectin (mol 45,000) (the content of the domain in the adsorbent is 1-2 mg / ml of the packaged volume of the gel). Then adsorbed is packaged in a column, washed. equilibration buffer solution (50 ml), then with the same solution containing 1 M urea (50 ml). The flow rate is 200 ml / h. d 1-CB7 peptide is eluted with a balancing buffer solution containing 4 M urea. The fraction containing about 1-СБ7 peptide is desalted on a column with P-2 biogel equilibrated with 0.1 M acetic acid and lyophilized. OUTPUT / 1-CB peptide 7.5 mg -. (25%). The product was electrophoretic homogeneous upon electrophoresis in a polyacrylamide gel in the presence of sodium dodecyl sulfate (mol. Weight about 25,000).
При скорости потока 150 ьш/ч, температуре 37°С получают o I-GB7 пептид с выходом 27%.At a flow rate of 150 b / h, a temperature of 37 ° C, o I-GB7 peptide is obtained with a yield of 27%.
5five
5five
5 0 5 5 0 5
00
II , 2II, 2
П р И М е р 2. Получение насцент- Hbix коллагеновых пептидов, содержапшх участок св зывани с фибропектинон.SECTION 2. Obtaining nascent-Hbix collagen peptides containing the binding site for fibropectinone.
Раствор смеси насцентных Р|„-пепти- дов, полученных в бесклеточной системе биосинтеза белка и меченных Н- пролином (суммарна радиоактивность 1,5-10 распадов/мин), в 3 мл 0,05 М трис-НСI, рН 7,6, с 0,15 М хлористым натрием инкубируют в течение 1 ч при с 3 мл иммобилизованного на се- фароэе 4В желатинсв зывающего домена фибронектина. Адсорбент упаковывают в колонку, промывают 40 мл уравновешивающего буферного раствора до отсутстви радиоактивности в элюатах. Скорость тока 200 мл/ч. Затем колонку , промывают 1 М мочевиной в уравновешивающем буферном растворе (15 мл) и насцентные пептиды, коллагена, содержащие участок св зывани с фибронектином , элюируют В И мочевиной в уравновешивающем буферном растворе. Суммарна радиоактивность полученной фракции (6 мл) - 5-10 распадов/мин. После диализа этой фракции против 0,05 М трис- НС1 буферного раствора, рН 7,6, содержащего 1 М хлористый натрий, провод т анализ целевых насцентных пептидов коллагеназной реакцией .A solution of a mixture of nascent P | „-peptides obtained in a cell-free system of protein biosynthesis and labeled with H-proline (total radioactivity 1.5-10 disintegrations / min) in 3 ml of 0.05 M tris-HCl, pH 7.6 , with 0.15 M sodium chloride, incubated for 1 hour with a 3 ml gelatin-binding fibronectin domain immobilized on separoea 4B. The adsorbent is packed in a column, washed with 40 ml of a balancing buffer solution until no radioactivity is present in the eluates. The flow rate is 200 ml / h. The column is then washed with 1 M urea in a equilibrating buffer solution (15 ml) and nascent peptides, collagen containing a fibronectin binding site, are eluted with B and Urea in a equilibrating buffer solution. The total radioactivity of the obtained fraction (6 ml) is 5-10 disintegrations / min. After dialysis of this fraction against 0.05 M Tris-HC1 buffer solution, pH 7.6, containing 1 M sodium chloride, the target nascent peptides are analyzed by a collagenase reaction.
Аналогичные результаты получены При проведении хроматографии смеси насцентных пептидов при и скорости тока 250 мл/Ч .Similar results were obtained when conducting chromatography of a mixture of nascent peptides at a flow rate of 250 ml / H.
К О,I мл исходных и полученных после хроматографии насцентных пептидов, меченных Н-пролином ( МО распадов/мин), добавл ют 10 мкл раство.ра коллагеназы (1-5 мкг белка), свободной от примеси других проте- иназ. Контрольные пробы не содержат коллагеназу. Пробы инкубируют в течение 90 мин при 37°С, после чего пептиды осаждают равным объемом ,10%-ной трихлоруксусной кислоты с 0,5% таннина. Осадки собирают на фильтры (Millipor), высушивают и определ ют радиоактивность в сцинтил- л ционном счетчике. Расщепление Р„- пептидов рассчитьюают по формуле10 µl of collagenase solution (1-5 µg of protein), free from admixture of other proteases, was added to O, I ml of the n-peptide labeled N-proline (MO disintegration / min) obtained after chromatography. Control samples do not contain collagenase. Samples incubated for 90 min at 37 ° C, after which the peptides are precipitated with an equal volume of 10% trichloroacetic acid with 0.5% tannin. The precipitates are collected on filters (Millipor), dried and the radioactivity is determined in a scintillation counter. The cleavage of P „- peptides is calculated by the formula
.р i-i.p i-i
r,/.-iuu - ,r, / .- iuu -,
где 0„ - радиоактивность опытныхwhere 0 „- radioactivity experienced
проб;samples;
К - радиоактивность контрольных проб.K - radioactivity of control samples.
Согласно полученным данным исходна смесь насцентных Р„-пептидов расщепл лась коллагеназой на 15%, в то врем как насцеитные пептиды, элюиро ванные с а()финного адсорбента 8 М. мочевиной в уравновешивающем буферном растворе, расцепл лись на 90%, Таким образом элюированный с колонки препарат на 90% состоит из нас- центных коллагеновых пептидов, содержащих участок св зывани с фибронек- тином.According to the data obtained, the initial mixture of nascent P? -Peptides was cleaved by collagenase by 15%, while the Nazitite peptides eluted with a () of the finite adsorbent 8 M. from the column, the drug consists of 90% of the collagen peptides containing the fibronectin binding site.
П р и м е р 3. А. Получение жела- тинсв зывающего домена фибронектина.PRI me R 3. A. Obtaining a Fibronectin Desirable Binding Domain.
300 мг лиофилизованного фибронектина из пЛазмы крови человека суспендируют в 60 мл 0,025 М трис-НС буфеного раствора, содержащего 0,5 ммоль ЭДТА и 50 ммоль NaCl (рН 7,0), добавл ют I мг о(-химОтрипсина и смесь инкубируют при перемешивании 1 ч при 37°С. Затем к смеси добавл ют 3 мг ингибитора трипсина из соевых бобов и 1 ммоль фенилметилсульфонилфторида через 10 мин центрифугируют при 10000 об/мин в течение 10 мин, супер натант нанос т на колонку (V 60 мл) с желатин (сефарозой) уравновешенную 0,025 М трис-НС1 буферным раствором с 0,5 ммоль ЭДТА и 50 ммоль NaCl (рН 7,0), колонку промывают тем же буферным раствором до отсутстви поглощени при 280 -ИМ в элюатах и жела тинсв зывающий домен фибронектина элюировали, добавл в буферный раст вор А М мочевину. Соответствующие фракции (л- 60 мл) диализуют против 2л О, М уксусной кислоты. Выход желатинсв зывающего домена после лиофилизации - 25 мг, мол. масса около 45000. При электрофорезе в I2,5%-полиакриламидном гепе е присутствии додрцилсульфоната натри продукт был гомогенен.300 mg of lyophilized fibronectin from a human blood sample are suspended in 60 ml of a 0.025 M Tris-HC buffered solution containing 0.5 mmol of EDTA and 50 mmol of NaCl (pH 7.0), I mg O is added (-chymotrypsin and the mixture is incubated with stirring 1 hour at 37 ° C. Then 3 mg of trypsin inhibitor from soybeans and 1 mmol of phenylmethylsulfonyl fluoride are added to the mixture after 10 minutes, centrifuged at 10,000 rpm for 10 minutes, supernatant applied to a column (60 ml) with gelatin (Sepharose) equilibrated with 0.025 M Tris-HC1 buffer solution with 0.5 mmol EDTA and 50 mmol NaCl (pH 7.0), column rinse with the same buffer solution until no absorption is taken at 280 -IM in the eluates and the fibronectin gelatin-binding domain is eluted by adding uM into the buffer solution A. The corresponding fractions (L-60 ml) are dialyzed against 2L O, M acetic acid. After lyophilization, the gelatin-binding domain is 25 mg, the molar mass is about 45000. During the electrophoresis in I2.5% polyacrylamide hepatitis in the presence of sodium doradyl sulfonate, the product was homogeneous.
Б. Получение адсорбента домен фибронектина (мол. масса 43000) - сефароза 4В.B. Obtaining an adsorbent fibronectin domain (mol. Weight 43,000) - Sepharose 4B.
Лиофилизованный желатинсв зываю- щий домен фибронектина, полученный в п. А (25 мг),раствор ют в 15 мл 0,1 М бикарбонатного буферного раствора , рН 8,4, содержащего 0,15 М NaCl и перемешивают с 15 мл BrCN - активированной сефарозы 4В (активи- рована по стандартной методике с ис- пользованием 2 г BrCN на 10 мл упакованного объема сефарозы) в течение 16 ч при 4 с. Сорбент пррмывают 50 мл того же буферного раствора.The lyophilized gelatin-binding domain of fibronectin obtained in item A (25 mg) is dissolved in 15 ml of 0.1 M bicarbonate buffer solution, pH 8.4, containing 0.15 M NaCl and mixed with 15 ml of BrCN-activated Sepharose 4B (activated by the standard procedure using 2 g of BrCN per 10 ml of packed volume of sepharose) for 16 hours at 4 s. The sorbent is washed with 50 ml of the same buffer solution.
5five
5five
00
5five
7575
S 0 S 0
5 five
0 5 0 5
00
1.1 . 1.1.
50 мл во№1 и перемешивают 2 ч при 20 С с 15 мл 1 М раствора этанолами- на (рН 9 с помощью 6 н. НС1). СЬрбент отдел ют и трижд1 1 промывает по 50 мл О,1 М натрийацетатного буферного раствора с 1 М NaCl, рН 4,5 и.0,1 М иатрийборатного буферного раствора с 1 М NaCl, рН 9. После промывани водой сорбент хран т в виде суспензии в воде в присутствии 0,02% азида натри . Количество присоединенного домена определ ют дифференциальным методом по разности поглощени при . 280 им исходного раствора лиганда и промывных вод после присоедщиени . Сорбент содержал 1,5 мг домена на I мл упакованного объема гел .50 ml of boile number 1 and stirred for 2 hours at 20 ° C with 15 ml of a 1 M solution of ethanolamine (pH 9 with 6N HCl). The syrbent is separated and the trid1 1 is washed with 50 ml of O each, 1 M sodium acetate buffer solution with 1 M NaCl, pH 4.5 and 0.1 M and sodium borate buffer solution with 1 M NaCl, pH 9. After washing with water, the sorbent is stored in as a suspension in water in the presence of 0.02% sodium azide. The amount of attached domain is determined by the differential method by the difference in absorbance at. 280 of the original ligand solution and wash water after addition. The sorbent contained 1.5 mg domain per I ml of the packaged volume of the gel.
Такие параметры хроматографичес- ког о процесса, как геометри колонки или услови последующего обессоли- вани соответствующих фракций не сказываютс на конечных результатах. Обессоливание фракций провод т на колонках с биогелем Р-2, уравновешенных 0,1 М уксусной кислотой, при скорости тока 30-50 мл/ч и объемном соотношении вводимого образца к общему объему колонки 1:5. Те же результаты получены и при использовании дл обессоливапи сефадекса С-25. Что касаетс скорости тока при афинной .хроматографии , то хроматографию денатурированного коллагена и коллагеновых пептидов обычно провод т при. темпера - туре до 40°С и при большой скорости тока из-за склонности этих биополимеров к ренатурации и гелеобразованию. Поэтому скорость тока в описываемом процессе целесообразно поддерживать в интервале 150-250 мл/ч. Выбор уравновешивающего буферного раствора (.0,05 М трис-НС j рН 7,4-7,6 с 0,1- 0,15 NaCl) обусловлен необходимостью создани на колонке оптимальных условий дл взаимодействи иммобилизованного домена с пептидами, содержащими участок св зывани с фибронектином. При использовании 0,04-0,06 М буферов результаты выделени оказываютс практически идентичньми, как и в случае , использовани 0,i-0,15 М концентраций NaCl. Применение концентраций NaCl менее 0,1 М приводит к менее чистым пептидам, содержащим участок св зывани с фибронектином, а более 0,15 М - к элюированию части этих пептидов при промывании колонки урав новешивающим буферным раствором иSuch parameters of the chromatographic process as the geometry of the column or the conditions for the subsequent desalting of the corresponding fractions do not affect the final results. The desalting of the fractions was carried out on columns with biogel P-2, equilibrated with 0.1 M acetic acid, at a flow rate of 30-50 ml / h and a volume ratio of the injected sample to the total column volume of 1: 5. The same results were obtained when using C-25 Sephadex for desalting. As regards the flow rate in affinity chromatography, the chromatography of denatured collagen and collagen peptides is usually carried out at. temperature up to 40 ° С and at high current velocity due to the tendency of these biopolymers to renaturation and gelation. Therefore, it is advisable to maintain the current rate in the described process in the range of 150-250 ml / h. The choice of a balancing buffer solution (.0.05 M Tris-HC j pH 7.4-7.6 with 0.1-0.15 NaCl) is caused by the need to create on the column optimal conditions for the interaction of the immobilized domain with peptides containing the binding site with fibronectin. When using 0.04-0.06 M buffers, the results of the separation are almost identical, as in the case of using 0, i-0.15 M NaCl concentrations. The use of NaCl concentrations less than 0.1 M leads to less pure peptides containing the binding site with fibronectin, and more than 0.15 M to the elution of part of these peptides when washing the column with equilibrating buffer solution and
513513
1 Н мочевиной в том же буфере, что уменьшает выход целевого продукта.1 N urea in the same buffer, which reduces the yield of the target product.
Стади промывани колонки 1 М мочевиной предназначена дл удалени с колонки неспицифически адсорбирр- ванных пептидов, не содержащий участка св зывани с фибронектином. Дл цели использованы растворы мочевины в концентраций.}-1,5 М. При концентрации мочевины меньше 1 М не- специфические пептидь удал ютс не полностью загр зн целевбй продукт при концентрации большей, чем 1,5 М происходит частичное элюироваИие коллагеновых пептидоЬ, содержащих участок св зывани с фибронектином, что снижает выход целевых продуктов. То же относитс и к услови м элюции, поскольку согласно биохимическим данным -В М мочевина эффективно разобщает биоспёцифическое взаимодействие фибронектина и коллагена (желатина) При использовании концентрации мочевины меньшей, чем в описываемом про- цессе возможно вымывание пептидов неспецифически св занных с сорбентом за счет электростатических или гидрофобных взаимодействий. The stage of washing the column with 1 M urea is intended to remove from the column of non-decipically adsorbed peptides that does not contain a fibronectin binding site. Urea solutions in concentrations were used for the purpose.} - 1.5 M. At a concentration of urea below 1 M, the non-specific peptide is not completely removed, the target product is not completely contaminated at a concentration greater than 1.5 M, partial elution of collagen peptides containing the area binding to fibronectin, which reduces the yield of target products. The same applies to the elution conditions, since, according to biochemical data, in U, urea effectively divides the biospecific interaction of fibronectin and collagen (gelatin). When using a urea concentration less than in the described process, it is possible to wash out peptides that are not specifically associated with the sorbent due to electrostatic or hydrophobic interactions.
П р и М е р 4. Раствор бромциано- вых пептидов о 1-цепи коЛлагена (100мг в 12 мл 0,06 М трис-HCl, рН 7,5 с 0,1 М хлористым натрием перемешивают при в течеш е 1ч с 10 мл сефа- розы CL-4B, содержащей иммобилизован- .Ный желатин-св зывающий домен фибро- нектийа (1 мг/мл упакованного объема ), сорбент упаковывают в колонку, промывают уравновешивающим буферным раствором (50 мл), затем тем же раствором , содержащим 1,5 М мочевину (30 мл). Скорость тока 150 мл/ч.Целе- вой о( 1- СВ7 пептид элюируют уравновеPRI and MER 4. A solution of bromine cyanide peptides on the 1-chain of collagen (100 mg in 12 ml of 0.06 M tris-HCl, pH 7.5 with 0.1 M sodium chloride is stirred at 10 h ml of CL-4B Sepharium containing immobilized. A new gelatin-binding domain of fibronectine (1 mg / ml of packaged volume), the sorbent is packed in a column, washed with a balancing buffer solution (50 ml), then with the same solution containing 1.5 M urea (30 ml). The flow rate is 150 ml / h. Targeted o (1- CB7 peptide is eluted in equilibrium
Составитель В.Волкова Редактор Т.Герасимова Техред И.ВересCompiled by V. Volkov Editor T. Gerasimov Tehred I. Veres
Заказ 3392Order 3392
Тираж 348ПодписноеCirculation 348 Subscription
ВНИИПИ Государственного комитета СССРVNIIPI USSR State Committee
по делам изобретений и открытий 113035, Москва, Ж-35, PayllIc a наб., д. 4/5for inventions and discoveries 113035, Moscow, Zh-35, PayllIc a nab. d. 4/5
Производственно-полиг рафическое предпри тие, г. Ужгород;, ул. 11р1Н ктп ,Production and polygraphic enterprise, Uzhgorod ;, st. 11p1N ktp,
ss
оabout
7575
Q sQ s
00
3535
00
116116
шивающим буферным раствором, содержа- ЩУ1М 6М мочевину. Соответствующую фракцию обессоливают на колонке с биогелем Р-2 уравновешенным О, М уксусной кислотой, лиофилизируют. Выход о(1-СВ7 пептида 4,4 мг (24,5%) i Продукт идентичен с 1-СВ7 пептиду, полученному в примере 1 . Sivusa buffer solution containing SCHU1M 6M urea. The corresponding fraction is desalted on a column with biogel R-2, balanced with O, M acetic acid, lyophilized. Output about (1-CB7 peptide 4.4 mg (24.5%) i) The product is identical with the 1-CB7 peptide obtained in Example 1.
Описываемый способ получени нас- . центных пептидов, содержащих участок св зывани с фибронектином, позвол ет сократить число стадий с 5 до 2 врем проведени процесса сокращаетс в три раза, выход увеличивй- етс в п ть раз (с 5% до 25%).The described method of obtaining us-. Centrifugal peptides containing the fibronectin binding site reduce the number of stages from 5 to 2, the process time is reduced three times, and the yield is increased five times (from 5% to 25%).
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU853927840A SU1327511A1 (en) | 1985-07-12 | 1985-07-12 | Method of producing collagen peptides containing section of binding with fibronectin |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU853927840A SU1327511A1 (en) | 1985-07-12 | 1985-07-12 | Method of producing collagen peptides containing section of binding with fibronectin |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1327511A1 true SU1327511A1 (en) | 1988-06-07 |
Family
ID=21188657
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU853927840A SU1327511A1 (en) | 1985-07-12 | 1985-07-12 | Method of producing collagen peptides containing section of binding with fibronectin |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1327511A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD1169Z (en) * | 2016-12-06 | 2018-02-28 | Государственный Медицинский И Фармацевтический Университет "Nicolae Testemitanu" Республики Молдова | Process for producing collagen sponge |
-
1985
- 1985-07-12 SU SU853927840A patent/SU1327511A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
M.Click, P.,Bornstein isolation and characterization of the cyanogen bromide peptides from Я1 and ot 2 chains of human skin collagen. Biochemistry 1970, 9, 24, 4699-4706. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD1169Z (en) * | 2016-12-06 | 2018-02-28 | Государственный Медицинский И Фармацевтический Университет "Nicolae Testemitanu" Республики Молдова | Process for producing collagen sponge |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Holleman et al. | The thrombin-like enzyme from Bothrops atrox snake venom. Properties of the enzyme purified by affinity chromatography on p-aminobenzamidine-substituted agarose. | |
Okayama et al. | Purification of ADP-ribosylated nuclear proteins by covalent chromatography on dihydroxyboryl polyacrylamide beads and their characterization. | |
Yellin et al. | Purification and properties of guinea pig serum asparaginase | |
AU601147B2 (en) | Rubber polymerases and methods for their production and use | |
Hase et al. | The quaternary structure of carp muscle alkaline protease | |
CN104059133A (en) | Mutant protein A with high alkali-resisting characteristic and application thereof | |
Purves et al. | Cleavage of fibrin-derived D-dimer into monomers by endopeptidase from puff adder venom (Bitis arietans) acting at cross-linked sites of the. gamma.-chain. Sequence of carboxy-terminal cyanogen bromide. gamma.-chain fragments | |
Munns et al. | Characterization of antibodies specific for N6-methyladenosine and for 7-methylguanosine | |
NO175260B (en) | Process for producing light plasminogen | |
Snapka et al. | Escherichia coli photoreactivating enzyme: purification and properties | |
YOSHIMOTO et al. | An inhibitor for post-proline cleaving enzyme; distribution and partial purification from porcine pancreas | |
SUMA et al. | Isozymes of S-adenosylmethionine synthetase from rat liver: isolation and characterization | |
Takagi et al. | Polypeptide chain involved in the cross-linking of stabilized bovine fibrin | |
SU1327511A1 (en) | Method of producing collagen peptides containing section of binding with fibronectin | |
Jakubowski et al. | The Plant Aminoacyl‐tRNA Synthetases: Purification and Characterization of Valyl‐tRNA, Tryptophanyl‐tRNA and Seryl‐tRNA Synthetases from Yellow‐Lupin Seeds | |
Nevaldine et al. | Bovine pepsinogen and pepsin. IV. A new method of purification of the pepsin | |
Laidler et al. | Structural and immunochemical characterization of human urine arylsulfatase A purified by affinity chromatography | |
Ramseyer et al. | The use of affinity chromatography in purification of cyclic nucleotide receptor proteins | |
Stoll et al. | Subunit structure of the thermophilic aminopeptidase I from Bacillus stearothermophilus | |
Slobin | Eucaryotic elongation factors Ts is an integral component of rabbit reticulocyte elongation factor 1 | |
US3819605A (en) | Anticoagulant isolation from pit viper using a modified agarose bed and eluting with a benzamidine solution | |
Geisow | An improved method for purifying sialidase. | |
Pacaud | Purification of protease II from Escherichia coli by affinity chromatography and separation of two enzyme species from cells harvested at late log phase | |
US20090093038A1 (en) | Method for the production of pure virally inactivated butyrylcholinesterase | |
Myers et al. | Separation of glomerular basement membrane substances by sodium dodecylsulfate disc gel electrophoresis and gel filtration |