SU1320223A1 - Device for identification of microorganisms - Google Patents
Device for identification of microorganisms Download PDFInfo
- Publication number
- SU1320223A1 SU1320223A1 SU843799234A SU3799234A SU1320223A1 SU 1320223 A1 SU1320223 A1 SU 1320223A1 SU 843799234 A SU843799234 A SU 843799234A SU 3799234 A SU3799234 A SU 3799234A SU 1320223 A1 SU1320223 A1 SU 1320223A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- cells
- microorganisms
- container
- working panel
- test
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к медицинской технике и предназначаемо дл микробиологии Цель изобретени - стабилизаци влажности при культивации микроорганизмов о Устройство состоит из контейнера 1, в котором установлена рабоча панель 2„ В рабочей панели 2 имеютс чейки 4 Дно чеек выполнено в виде конусов. В контейнере 1 выполнены продольные канавки. Вдоль оси канавок расположены верпш- ны конусов. В чейках 4 стенка контейнера 1 выполнена ступенчатой, что приводит к образованию зазора между крышкой 3 и рабочей панелью 2, Уст- ройство изготавливают из полимерного материала. 3 ил. СО ГО о ю to со ФЦ8.1 The invention relates to medical technology and is intended for microbiology. The purpose of the invention is to stabilize moisture during the cultivation of microorganisms. The device consists of a container 1 in which a working panel 2 is installed. In the working panel 2 there are cells 4 The bottom of the cells is made in the form of cones. In the container 1 there are longitudinal grooves. Vertices of cones are located along the axis of the grooves. In the cells 4, the wall of the container 1 is made stepwise, which leads to the formation of a gap between the lid 3 and the working panel 2, the device is made of a polymeric material. 3 il. SO GO o y to with FT8.1
Description
1132022311320223
Изобретение относитс к микробиологии и предназначено дл .идентификации микроорганизмов.This invention relates to microbiology and is intended for the identification of microorganisms.
Целью изобретени вл етс стабилизаци влажности при культивации , микроорганизмов.The aim of the invention is to stabilize the moisture during cultivation of microorganisms.
На фиг, 1 показано устройство, общий вид; на фиг. 2 - рабоча панель; на фиг; 3 - основание.Fig, 1 shows the device, a general view; in fig. 2 - working panel; in fig; 3 - base.
Устройство состоит из контейнера ю 1 в котором установлена рабоча панель 2, и крьшжи 3. В рабочей панели 2 имеютс чейки 4 дл дифференциальРастБоры дифферен1щапьно-диагнос- тических сред готов т на осисве фосфатных буферов, В качестве основного компонента используют дифференцирующий субстрат; изменение рН среды обнаруживают при помощи индикатора. Например, дл обнаружени уреазы используют в качестве субстрата мочевину , индикатора - бромкрезоловый красный . Соответствующим агентом, определ ющим сероводород, вл етс тиосульфат натри при наличии соли железа . Дл обнаружени декарбоксилаз лизина , орнитина и дигидролазы аргинино-диагностических сред. Дно чеек выполнено в виде конусов 5. В контей- 15 используют лизин, орнитин, арги- нере 1 выполнены продольные канавки ник и индикатор бромтимоловой синий, 6, вдоль оси которых расположены вер- Дл определени ферментации углево- шины конусов 5, Дл поддержани оптимальной влажности в чейках 4 стенка 7 контейнера 1 выполнена ступенча-;го , сорбита) используют соответству- той, что приводит к образованию зазо- ющие субстраты в присутствии индикара между крышкой 5 и рабочей па- тора фенолового красного. Субстрата- нелью 2The device consists of container 1, in which working panel 2 is installed, and screws 3. In working panel 2 there are cells 4 for differential Differential diagnostic diagnostics solutions, they are prepared on the basis of phosphate buffers. A differentiating substrate is used as the main component; the change in pH is detected using an indicator. For example, urea is used as a substrate for detecting urease, bromocresol red is used as an indicator. A suitable hydrogen sulfide scavenger is sodium thiosulfate in the presence of an iron salt. For the detection of lysine decarboxylase, ornithine, and dihydrolase arginine diagnostic media. The bottom of the cells is made in the form of cones 5. The container uses lysine, ornithine, and arginer 1 has longitudinal grooves nick and bromthymol blue indicator 6, along which vertices are located. To determine the fermentation of the carbon cone 5, to maintain optimum the humidity in the cells 4 of the wall 7 of the container 1 is made of stepwise, sorbitol) is used appropriately, which leads to the formation of the zazy substrates in the presence of indicar between the lid 5 and the working patch of phenol red. Substrate 2
Устройство изготавливают из полидов (глюкозы, лактозы, маннита, сахарозы , арабинозы, мальтозы, инози30The device is made from polides (glucose, lactose, mannitol, sucrose, arabinose, maltose, inosi30
ми дл определени дезаминазы вл ютс такие аминокислоты, как фенилаламерного материала путем вакуум-формо- 5 ник и триптофан, а хромогенным -га- вани . Дл изготовлени носител суб- лактозидазным субстратом вл етс ;страта (рабочих панелей 2 с чейками |4 и основани ) используют жёсткую светотехническую поливинилхлоридную пленку белого цвета II группы, S 0,55 мм. Дл изготовлени крышки 3 используют прозрачную винипластовую каландрирова:нную пленку марки КПС, S 0,5-0,7 мм. Субстраты нанос т в центры чеек 4 в виде точки при помо- 35 пипеточным по 0,02 мм в одну из че- щи дозатора пипеточного П1-0,02. Ра- ®к 4 рабочей панели 2„ Подобным же бочую панель 2 с чейками 4 помещают в основание контейнера и закрывают крьщ1кой 3, после чего устройство упаковывают герметично в полиэтилен. - Устройство используют следующим образомрCompounds for the determination of deaminases are amino acids such as phenyl-alumina material by means of a vacuum formulator and tryptophan, while chromogenic material is quenched. For the manufacture of the carrier, the sub-lactosidase substrate is; a stratum (working panels 2 with cells | 4 and base) use a rigid white PVC lighting film of group II, S 0.55 mm. For the manufacture of the cover 3, a transparent vinyl calender calender is used: a film of the type CPS, S 0.5-0.7 mm. Substrates are applied to the centers of the cells 4 as a point with 35 pipettes, 0.02 mm each, into one of the parts of the pipette dispenser P1-0.02. Pa- ® 4 of the working panel 2 “With the same barrel panel 2 with cells 4, they are placed in the base of the container and closed with the cover 3, after which the device is packed tightly in polyethylene. - The device is used as follows
Составные части устройства моют и стерилизуют ультрафиолетом. Ячейки 4 рабочей части панели 2 заполн - 45 Тиомёщают в контейнер, закрывают крыш- ют различными дифференциально-диагно- кой 3, запаивают в полиэтилен и хра- стическими средами в жидком виде, а затем высушивают. Число чеек 4 соответствует количеству тестов, обес- печивающих полную дифференциацию бак- о ганизма с агаровой среды. Используют терий семейства кишечных. ,Цл диффе- только свежие культуры (18-24 ч), ренциагщи предлагаетс использовать Культуры старше 30 ч могут дать лож- следующие тесты: цитрат натри , мало- но-отрицательные результаты. нат натри , цитрат натри с глюкозой. Суспензи микроорганизмов должна лизин, аргинин, орнитин, фенилаланин, j иметь точно видимую мутность и равна.Components of the device are washed and sterilized with ultraviolet light. The cells 4 of the working part of the panel 2 are filled into the container in 45 containers, closed with various differential diagnostics 3, sealed in polyethylene and stored in liquid form, and then dried. The number of cells 4 corresponds to the number of tests ensuring the complete differentiation of bacterium from the agar medium. Use the terium of the intestinal family. , CL difely fresh cultures (18-24 h), renziopschi suggests using cultures older than 30 h. The following tests can give false samples: sodium citrate, few negative results. rub, sodium citrate with glucose. Suspension of microorganisms should lysine, arginine, ornithine, phenylalanine, j have exactly visible turbidity and equal.
0-нитрофенил-р-галактопираноаид и т.д.0-nitrophenyl-p-galactopyranoid, etc.
Пример Готов т смесь реагентов , состо ш;ую из 120 г углевода и 0,85 г фенолового красного, которую раствор ют при нагревании в 1 л фос- . фатного буфера рН 8,0. Приготовленный раствор раскапывают дозаторомExample A reagent mixture is prepared consisting of 120 g of carbohydrate and 0.85 g of phenol red, which is dissolved by heating in 1 liter of phos-. Fat buffer pH 8.0. The prepared solution is excavated with a dispenser.
образом раскапывают и остальные растворы дифференциально-диагнос-гических сред. Так заполн ют все 20 чеек 4 ра- 40 бочей панели 2. После чего панели 2 высушивают в сушильном шкафу в течение 4ч с дальнейшей стер1 шиза- цией ультрафиолетом в течение 1 ч. Затем панель 2 с чейками 4way digging and other solutions of differential-diagnostic media. So, all 20 cells 4 of the working panel 2 are filled. Then the panels 2 are dried in a drying cabinet for 4 hours with further sterilization with ultraviolet for 1 hour. Then the panel 2 with cells 4
н то По мере надобности их используют дл идентификации микроорганизмов. Дл этого готов т суспензию микроор- Then, as needed, they are used to identify microorganisms. For this purpose, a suspension of microorganisms is prepared.
индол, ацетилметилкарбоиил, уреаза, сероводород, глюкоза, /1-галактозида- за, лактоза, маннит, сахароза, ико- зит, сорбит, арабиноза, мальтоза.indole, acetylmethylcarboiyl, urease, hydrogen sulfide, glucose, / 1-galactoside, lactose, mannitol, sucrose, icoit, sorbitol, arabinose, maltose.
по крайней мере, стандарту мутности -500 млн/мл микробных тел дл свежевыделенных культур. У музейных культур могут быть обнаружены более низкиеat least a turbidity standard of -500 ppm / ml microbial cells for freshly isolated cultures. Lower cultures can be found in museum cultures.
РастБоры дифферен1щапьно-диагнос- тических сред готов т на осисве фосфатных буферов, В качестве основного компонента используют дифференцирующий субстрат; изменение рН среды обнаруживают при помощи индикатора. Например, дл обнаружени уреазы используют в качестве субстрата мочевину , индикатора - бромкрезоловый красный . Соответствующим агентом, определ ющим сероводород, вл етс тиосульфат натри при наличии соли железа . Дл обнаружени декарбоксилаз лизина , орнитина и дигидролазы аргини используют лизин, орнитин, арги- ник и индикатор бромтимоловой синий, Дл определени ферментации углево- , сорбита) используют соответству- ющие субстраты в присутствии индикатора фенолового красного. Субстрата- Differential-diagnostic media solutions are prepared on the basis of phosphate buffers. A differentiating substrate is used as the main component; the change in pH is detected using an indicator. For example, urea is used as a substrate for detecting urease, bromocresol red is used as an indicator. A suitable hydrogen sulfide scavenger is sodium thiosulfate in the presence of an iron salt. To detect lysine, ornithine decarboxylase, and arginine dihydrolase, lysine, ornithine, arginine, and bromothymol blue indicator are used. To determine the fermentation of carbon, sorbitol, appropriate substrates are used in the presence of a phenol red indicator. Substrate-
используют лизин, орнитин, арги- ник и индикатор бромтимоловой синий, Дл определени ферментации углево- , сорбита) используют соответству- ющие субстраты в присутствии индикатора фенолового красного. Субстрата- lysine, ornithine, arginic and brominated blue indicator are used. To determine the fermentation of carbon, sorbitol), appropriate substrates are used in the presence of a indicator of phenol red. Substrate-
дов (глюкозы, лактозы, маннита, сахарозы , арабинозы, мальтозы, инози30Dov (glucose, lactose, mannitol, sucrose, arabinose, maltose, inosi30
5 ник и триптофан, а хромогенным -га- лактозидазным субстратом вл етс 35 пипеточным по 0,02 мм в одну из че- ®к 4 рабочей панели 2„ Подобным же 5 nick and tryptophan, and the chromogenic-galactosidase substrate is 35 pipettes, 0.02 mm each in one of the 4 working panels 2 "Similar
0-нитрофенил-р-галактопираноаид и т.д.0-nitrophenyl-p-galactopyranoid, etc.
Пример Готов т смесь реагентов , состо ш;ую из 120 г углевода и 0,85 г фенолового красного, которую раствор ют при нагревании в 1 л фос- фатного буфера рН 8,0. Приготовленный раствор раскапывают дозаторомExample A reagent mixture was prepared consisting of 120 g of carbohydrate and 0.85 g of phenol red, which was dissolved by heating in 1 liter of phosphate buffer pH 8.0. The prepared solution is excavated with a dispenser.
5 ник и триптофан, а хромогенным -га- лактозидазным субстратом вл етс 35 пипеточным по 0,02 мм в одну из че- ®к 4 рабочей панели 2„ Подобным же 5 nick and tryptophan, and the chromogenic-galactosidase substrate is 35 pipettes, 0.02 mm each in one of the 4 working panels 2 "Similar
45 Тиомёщают в контейнер, закрывают крыш кой 3, запаивают в полиэтилен и хра- о ганизма с агаровой среды. Используют только свежие культуры (18-24 ч), Культуры старше 30 ч могут дать лож- но-отрицательные результаты. Суспензи микроорганизмов должна j иметь точно видимую мутность и равна45 Thiomineal in a container, close the lid 3, sealed in polyethylene and the store of ananism from an agar medium. Only fresh cultures (18-24 hours) are used. Cultures older than 30 hours can give false-negative results. Microbial suspension must have exactly visible turbidity and is equal to
образом раскапывают и остальные растворы дифференциально-диагнос-гических сред. Так заполн ют все 20 чеек 4 ра- 40 бочей панели 2. После чего панели 2 высушивают в сушильном шкафу в течение 4ч с дальнейшей стер1 шиза- цией ультрафиолетом в течение 1 ч. Затем панель 2 с чейками 4way digging and other solutions of differential-diagnostic media. So, all 20 cells 4 of the working panel 2 are filled. Then the panels 2 are dried in a drying cabinet for 4 hours with further sterilization with ultraviolet for 1 hour. Then the panel 2 with cells 4
Тиомёщают в контейнер, закрывают крыш- кой 3, запаивают в полиэтилен и хра- ганизма с агаровой среды. Используют только свежие культуры (18-24 ч), Культуры старше 30 ч могут дать лож- но-отрицательные результаты. Суспензи микроорганизмов должна иметь точно видимую мутность и равна.Thickening in a container, closed with a lid 3, sealed in polyethylene and stored with agar medium. Only fresh cultures (18-24 hours) are used. Cultures older than 30 hours can give false-negative results. Suspension of microorganisms must have exactly visible turbidity and equal.
н то По мере надобности их используют дл идентификации микроорганизмов. Дл этого готов т суспензию микроор- Then, as needed, they are used to identify microorganisms. For this purpose, a suspension of microorganisms is prepared.
по крайней мере, стандарту мутности -500 млн/мл микробных тел дл свежевыделенных культур. У музейных культур могут быть обнаружены более низкиеat least a turbidity standard of -500 ppm / ml microbial cells for freshly isolated cultures. Lower cultures can be found in museum cultures.
10ten
f5f5
уровни энзиматической активности, чем у свежих клинических, поэтому готовитс более плотный инокул т, приблизительно равный стандарту мутности 1 млрд/мл микробных клеток. Суспензию готов т в 4 мл стерильного физиологического раствора рН 6,0+0,5,levels of enzymatic activity than in fresh clinical ones, therefore, a more dense inoculum is prepared, approximately equal to the turbidity standard of 1 billion / ml of microbial cells. The suspension is prepared in 4 ml of sterile saline solution pH 6.0 + 0.5,
Инокул ци и инкубирование.Inoculation and incubation.
Вскрьшают упаковку. Регистрируют номер пробы и другую требуемую информацию . Открывают крышку 3 контейнера и располагают его на столе. Вынимают рабочую панель 2 и заливают воду в канавки 6 основани контейнера 1. Вставл ют панель 2 с чейками 4 в основание контейнера 1, Раскапывают пипеткой по 0,15 мл суспензии микроорганизма внутрь каждой реакционной чейки 4, кроме теста на сероводород,2Q где внос т только одну каплю суспензии (0,05 мл). Заливают . чейку 4 с тестом на сероводород 0,1 мл растопленного и достаточно охлажденного (до ) полужидкого агара. Дл соз-рз Дани анаэробных условий покрывают сверху стерильным вазелиновым маслом чейки с тестами; лизин, аргинин, ор- нитин,и сероводород (0,1 мл - 2-3 каШ1и), Закрывают крышку 3 контейнера. Инку- зо бируют 18-24 ч при t , После окончани инкубахщи открывают крышку 3 контейнера и в чейку 4 с тестом на фенилаланиндезаминазу добавл ют 1 кашю 10%-ного FeClj, в чейку с ,ром относительно рабочей панели.Open the packaging. Record sample number and other required information. Open the lid 3 of the container and place it on the table. Take out the working panel 2 and pour water into the grooves 6 of the base of container 1. Insert panel 2 with cells 4 into the base of container 1, Pipette 0.15 ml of the microorganism suspension into each reaction cell 4, except for the hydrogen sulfide test, 2Q where just one drop of the suspension (0.05 ml). Pour over. cell 4 with hydrogen sulfide dough 0.1 ml of melted and sufficiently cooled (to) semi-liquid agar. In order to create anaerobic conditions, anaerobic conditions are covered with sterile vaseline oil over the test cells; lysine, arginine, ornithine, and hydrogen sulfide (0.1 ml - 2-3 h), close the lid 3 of the container. They are incubated for 18-24 h at t. After the end of the incubation, the lid 3 of the container is opened and 1 porridge of 10% FeClj is added to the cell 4 with the phenylalanine deaminase test, and the rum is relative to the working panel.
тестом на ацетилметилкарбинол - 1 лю 6%-ного о -нафтола и затем 1 ка 40%-ного КОН, в чейку с тестом н индолообразование - 1 каплю реакт Эрлиха,Acetylmethylcarbinol test - 1 liter of 6% o-naphthol and then 1 ka of 40% KOH; 1 drop of Ehrlich reaction into a cell with dough n-indole formation,
Чтение реакции.Reading the reaction.
Читают все реакции немедленно положительные или отрицательные с ласно с цветовыми изменени ми, ис ча тест на ацетилметилкарбинол.Read all reactions immediately positive or negative with lacno with color changes, test for acetylmethylcarbinol.
Позвол ют окраситьс тесту на тилметилкарбинол примерно в течен 10 мин, затем читают, реакцию.The test for methylmethyl carbinol is allowed to stain for about 10 minutes, then read the reaction.
Устройство позвол ет достаточн точно идентифицировать бактерии с мейства кишечных до вида, обладае большой скоростью ответа, удобно постановке, экономично, всегда го во к употреблению и не требует за рат бактериологической посуды.The device allows to sufficiently accurately identify the bacteria from the intestinal intestine to the species, has a high response rate, is convenient to install, economically, always in use and does not require the consumption of bacteriological utensils.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU843799234A SU1320223A1 (en) | 1984-10-08 | 1984-10-08 | Device for identification of microorganisms |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU843799234A SU1320223A1 (en) | 1984-10-08 | 1984-10-08 | Device for identification of microorganisms |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1320223A1 true SU1320223A1 (en) | 1987-06-30 |
Family
ID=21141724
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU843799234A SU1320223A1 (en) | 1984-10-08 | 1984-10-08 | Device for identification of microorganisms |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1320223A1 (en) |
-
1984
- 1984-10-08 SU SU843799234A patent/SU1320223A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Патент FR № 2157050, кл. С 12 М 1/00, 1973.. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP1198587B1 (en) | Apparatus and method for detecting, quantifying and characterizing microorganisms | |
US5462860A (en) | Conditioned culture medium for rapid growth and detection of microbes | |
Nord et al. | Evaluation of five test-kits—API, AuxoTab, Enterotube, PathoTec and R/B—for identification of Enterobacteriaceae | |
US5601998A (en) | Culture medium and device for detection and enumeration of enterobacteriaceae | |
JPH0611237B2 (en) | Microbiological test method | |
US4260687A (en) | Diagnostic device | |
CA2250174A1 (en) | Test media and quantitative method for identification and differentiation of biological materials in a test sample | |
CA2383991A1 (en) | Devices and methods for microorganism detection | |
EP0122028A1 (en) | Colorimetric assay for enzymes, diagnostic article therefor and a method for forming such article | |
CA1220051A (en) | Identification of microorganisms by infrared analysis of evolved carbon dioxide | |
EP0927353B1 (en) | Detection of microorganisms | |
JPS6156098A (en) | Detection reagent and method of anti-bacterial active substance | |
US4208480A (en) | Method, reagents and apparatus for the rapid identification of Neisseria gonorrhoeae and Neisseria meningitidis | |
Robinson et al. | Identification of pathogenic Neisseria species with the RapID NH system | |
Niskanen et al. | Comparison of selective media for coagulase-positive enterotoxigenic Staphylococcus aureus | |
SU1320223A1 (en) | Device for identification of microorganisms | |
Grunberg et al. | Efficiency of a multitest system (Enterotube) for rapid identification of Enterobacteriaceae | |
Alfredsson et al. | Use of tartaric acid isomers and citric acid in the biotyping of Salmonella typhimurium | |
Burman et al. | Time-and media-saving testing and identification of microorganisms by multipoint inoculation on undivided agar plates | |
US4532206A (en) | β-Streptococcus selective medium | |
GB2031949A (en) | Identification of microorganisms | |
Henrichsen et al. | An evaluation of the effects of a high concentration of sucrose in blood culture media | |
Steubing | Isolation of an unknown bacterium from soil | |
US7470520B1 (en) | Method for enterobacter identification | |
Kocka et al. | Rapid detection and identification of enteric bacteria from blood cultures |