SU1301406A1 - Liposomal vesicula for directional transport of biologically active substances - Google Patents
Liposomal vesicula for directional transport of biologically active substances Download PDFInfo
- Publication number
- SU1301406A1 SU1301406A1 SU843827789A SU3827789A SU1301406A1 SU 1301406 A1 SU1301406 A1 SU 1301406A1 SU 843827789 A SU843827789 A SU 843827789A SU 3827789 A SU3827789 A SU 3827789A SU 1301406 A1 SU1301406 A1 SU 1301406A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- lipid
- fibronectin
- liposomes
- capture
- nmol
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/127—Liposomes
- A61K9/1271—Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes, liposomes coated with polymers
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к медицине , в частности.к экспериментальной фармакологии, и может быть использовано дл транспорта лекарств .в области мишени. Целью изобретени вл етс повьшение степени селективного поглощени везикул макрофагами. Оболочка липосомштьной везикулы 1 состоит из фосфолипидов 2 и фибронек- тина, модифицированного производными жирных кислот или фосфолипидов, причем поверхностный белковый слой оболочки образован белковыми част ми 3 молекул модифицированного фибро- нектина, а гидрофобные части молекул (образованные модификатором) встроены в оболочку. 1 ил., 6 табл. р (Л с со 4 о О5 This invention relates to medicine, in particular, to experimental pharmacology, and can be used to transport drugs in the target area. The aim of the invention is to increase the degree of selective absorption of vesicles by macrophages. The shell of liposomal vesicle 1 consists of phospholipids 2 and fibronectin modified by derivatives of fatty acids or phospholipids, the surface protein layer of the shell is formed by protein parts of 3 molecules of the modified fibronectin, and the hydrophobic parts of the molecules (formed by the modifier) are embedded in the shell. 1 dw., 6 tab. p (L with with 4 about O5
Description
fOfO
Изобретение относитс к медицине, в частности к экспериментальной фармакологии , и может быть использовано дл транспорта лекарств в области мишени ,The invention relates to medicine, in particular to experimental pharmacology, and can be used for the transport of drugs in the target area.
Цель изобретени - повышение степени селективного поглощени везикул макрофагами.The purpose of the invention is to increase the degree of selective absorption of vesicles by macrophages.
На чертеже изображена липо гомаль- на везикула.The drawing shows the lipo-homogeneous vesicle.
Оболочка липосомальной везикулы 1 состоит из фосфолипидов 2 и фибронек- тина, модифицированного дитиодипро- пионил-фосфатидилэтаноламином, причем поверхностный белковый слой оболочки образован белковыми част ми 3 молекул модифицированного фибронек- тина, а гидрофобные части молекул, образованные модификатором 4, встроены в оболочку,20The shell of liposomal vesicle 1 consists of phospholipids 2 and fibronectin modified with dithiodipropionyl phosphatidyl ethanolamine, the surface protein layer of the shell is formed by the protein parts of 3 molecules of the modified fibronectin, and the hydrophobic parts of the molecules formed by modifier 4 are embedded in the shell, 20
Таким образом, существенными признаками; предлагаемой липосомальной везикулы вл ютс наличие конструктивных элементов - оболочка везикулы содержит специфический внещний поверх- ностный слой, сформированный молекулами модифицированного фибронектина; материалы, т.е. вещества, из которых состо т элементы везикулы - фосфоли13014062Thus, the essential features; The proposed liposomal vesicles are the presence of structural elements — the vesicle shell contains a specific outer surface layer formed by molecules of modified fibronectin; materials, i.e. substances that make up the elements of the vesicles - phospholi13014062
пидный состав оболочки, фибронектин, модифицированный производными фосфолипидов (каждую из молекул которого можно условно разделить на белковуюthe individual composition of the shell, fibronectin, modified phospholipid derivatives (each of the molecules of which can be divided into protein
1515
5 часть, образуемую остатком собствен- но фибронектина, и гидрофобную часть, образуемую модификатором)j св зь между элементами объекта, характеризующа с тем, тo одной своей частью (гидрофобной) молекулы модифицированного фибронектина встроены в фосфолипидную оболочку везикулы, а другой (белковой), экспонированной на поверхности оболочки, образуют поверхностный белковый слой.5, the part formed by the residue of fibronectin itself, and the hydrophobic part formed by the modifier) j is the bond between the elements of the object, characterized by one part of the (hydrophobic) modified fibronectin molecule embedded in the phospholipid shell of the vesicles, and the other (protein), exposed on the surface of the shell, form a surface protein layer.
Схема модификации фибронектина может быть условно выражена следующим образом (в качестве модификатора использован дитиодипропионил-фос- фатидилэтаноламин - ДТДП-ФЭ),The fibronectin modification scheme can be conditionally expressed as follows (dithiodipropionylphosphatidylethanolamine - DTDP-FE was used as a modifier),
I.ДТДП-ФЭ активируют в водной среде водорастворимым карбодиимидом (рН 3,5),I.DTPP-FE is activated in an aqueous medium with a water-soluble carbodiimide (pH 3.5),
II,К активированному ДТДП-ФЭ добавл ют фибронектин в боратном буфере (рН 8,5). В результате аминогруппы фибронектина модифицируютс остатками ДТДП-ФЭ.II, fibronectin in borate buffer (pH 8.5) is added to activated DTDP-PE. As a result, the amino groups of fibronectin are modified by DTDP-FE residues.
карбодиимидcarbodiimide
рН 3,5pH 3.5
НпNp
. .
0-Cч- Protein0-Csh Protein
ОABOUT
рН 8;5 ФиёронвнтинpH 8; 5 Fiyoronvntin
чаcha
Цель изобретени достигаетс совокупностью указанных вьппе признаков , относ щихс как к составу, так и строению объекта. При этом структура и строение липосомальной оболочки вл ютс не менее существенным признаком, чем состав исходных компонентов , поскольку именно наличие поверхностного белкового сло обуславливает эффективность поглощени везикул макрофагами,The purpose of the invention is achieved by a combination of the above indications relating both to the composition and the structure of the object. At the same time, the structure and structure of the liposomal membrane are no less significant a sign than the composition of the initial components, since it is the presence of the surface protein layer that determines the efficiency of the absorption of vesicles by macrophages,
Липосомальные везикулы получают следующим образом.Liposomal vesicles were prepared as follows.
часть, образуемую остатком собствен- но фибронектина, и гидрофобную часть, образуемую модификатором)j св зь между элементами объекта, характеризующа с тем, тo одной своей частью (гидрофобной) молекулы модифицированного фибронектина встроены в фосфолипидную оболочку везикулы, а другой (белковой), экспонированной на поверхности оболочки, образуют поверхностный белковый слой.the part formed by the residue of fibronectin itself, and the hydrophobic part formed by the modifier) j is the bond between the elements of the object, which is characterized by one part of the (hydrophobic) modified fibronectin molecule embedded in the phospholipid shell of the vesicles and the other (protein) exposed on the surface of the shell, form a surface protein layer.
Схема модификации фибронектина может быть условно выражена следующим образом (в качестве модификатора использован дитиодипропионил-фос- фатидилэтаноламин - ДТДП-ФЭ),The fibronectin modification scheme can be conditionally expressed as follows (dithiodipropionylphosphatidylethanolamine - DTDP-FE was used as a modifier),
I.ДТДП-ФЭ активируют в водной среде водорастворимым карбодиимидом (рН 3,5),I.DTPP-FE is activated in an aqueous medium with a water-soluble carbodiimide (pH 3.5),
II,К активированному ДТДП-ФЭ добавл ют фибронектин в боратном буфере (рН 8,5). В результате аминогруппы фибронектина модифицируютс остатками ДТДП-ФЭ.II, fibronectin in borate buffer (pH 8.5) is added to activated DTDP-PE. As a result, the amino groups of fibronectin are modified by DTDP-FE residues.
, , ,,
. (П. (P
;5 ;five
Белкада часть молекулыBelkada part of the molecule
-Protein-Т Н-Protein-T N
Гидро(ри6на часть молекулыHydro (ris6na part of the molecule
сwith
6 р6 r
МодисрыццроВанныи (риВронектинModisrytsroBanny (rVronectin
Модификаци фибронектина. Дл св зывани фибронектина с липосомами использована предварительна гидро5Q фобна модификаци молекул белка ди- тиодипропионил-фосфатидилэтаноламином . Дл этого 1 мг последнего раствор ют в 100 мл-диметилсульфоксида и добавл ют 1 мл 0,15 М Nacl, После .Modification of fibronectin. For the binding of fibronectin with liposomes, a preliminary hydro5Q phobic modification of the protein molecules of dithiodipropionyl phosphatidyl ethanolamine was used. For this, 1 mg of the latter is dissolved in 100 ml of dimethyl sulfoxide and 1 ml of 0.15 M NaCl is added, followed by.
5 энергичного встр хивани к полученному раствору добавл ют 2 мг 1-этил- 3-(3-диметиламинопропил)карбодиимид (рН 3,5). Через 10 мин добавл ют 2 мг фибронектина, растворенного вWith 5 vigorous shaking, 2 mg of 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide (pH 3.5) was added to the resulting solution. After 10 minutes, 2 mg of fibronectin dissolved in
31303130
0,7 мл 0,1 М боратного буфера (рН 8,5).0.7 ml 0.1 M borate buffer (pH 8.5).
Липосомы готов т из ичного лецитина , общих фосфолипидов и ганглиози- дов печени и холестерина методом обращенных фаз, соотношение фосфолипи- да и холестерина 7:3. Дл регистрации захвата в лицосомальную мембрану встраивают необменивающуюс мртку холестерил 14-С-олеат (фирма Amers- ham). Количество фосфолипидов оценивают по содержанию . Белок измер ют по методу Лоури.Liposomes are prepared from egg lecithin, total phospholipids and gangliosides of the liver and cholesterol by the method of reversed phases, the ratio of phospholipid and cholesterol is 7: 3. For registration of capture, non-exchanging cholesteryl 14-C-oleate (Amersham company) is inserted into the face-somal membrane. The number of phospholipids assessed by content. Protein is measured by the method of Lowry.
Опыт 1, 5 мг лецитина и 1,44 мг холестерина раствор ют в хлорофо1)ме и упаривают на роторном испарителе до получени пленки. Полученную пленку раствор ют в 3 мл диэтилового эфира и добавл ют 1,6 мг модифицирован- кого фибронектина в 1 мл боратного буфера. Полученный раствор обрабатывают ультразвуком. После удалени из раствора на роторном испарителе эфира получают однослойные липосомы, что контролируетс электронной микроскопией .Experience 1, 5 mg of lecithin and 1.44 mg of cholesterol are dissolved in chloroform and evaporated on a rotary evaporator to form a film. The resulting film was dissolved in 3 ml of diethyl ether and 1.6 mg of modified fibronectin in 1 ml of borate buffer was added. The resulting solution is treated with ultrasound. After removal of the ether from the solution on a rotary evaporator, monolayer liposomes are obtained, which is monitored by electron microscopy.
ноос-( CO-TSH-ш -о-р-оnoos- (CO-TSH-w-o-r-o
о about
....
в тех же концентраци х и при том же времени инкубации.in the same concentrations and at the same incubation time.
О п ы т 5. 1 мг фибронектина в 20 мг/мл хелатном буфере (1 мл), содержащем 0,15 М NaCf и 0,1 М Na,,,HPO рН 8,0, смешивают с 10 мл 10%-ного раствора пальмитоилхлорида в ацето- не при 4°С, Через 1 ч осадок пальмитиновой кислоты отцентрифугирывают (12000, 15 мин) и отбрасывают, добавл ют равный объем раствора липи- дов (концентраци 10 мг/мл) в том же буфере. Инкубируют 30 мин и диализуют 18 ч против такого же буфера , не содержащего хелата.About 5. 5. mg of fibronectin in 20 mg / ml chelate buffer (1 ml) containing 0.15 M NaCf and 0.1 M Na ,,, HPO pH 8.0, is mixed with 10 ml of 10% a solution of palmitoyl chloride in acetone at 4 ° C. After 1 hour, the palmitic acid precipitate is centrifuged (12,000, 15 minutes) and discarded, an equal volume of lipid solution (concentration 10 mg / ml) in the same buffer is added. Incubate for 30 minutes and dialyze for 18 hours against the same buffer that does not contain chelate.
При этом самопроизвольно из смешанных мицелл липид - детергент - белок образуютс липосомы,в мембрану которых встроен фибронектин.In addition, liposomes - detergent - protein are formed spontaneously from mixed micelles liposomes, the membrane of which contains fibronectin.
За структурой образующихс комплексов фибронектин - липосома можно следить методом электронной микроскоThe structure of the resulting fibronectin-liposome complexes can be monitored by electron microscopy.
ПИИ.FDI.
Несв завшийс белок может быть легко и быстро отделен от липосом флотацией в ступенчатом фиколла илиUnbound protein can be easily and quickly separated from liposomes by flotation in a stepped ficoll or
6464
О п ы т 2. Получают фибронектин, модифицированный ДТДП-ФЭ. Смешивают его с равным объемом предварительно сформированных липосом (концентратEXAMPLE 2. Fibronectin modified with DTDP-FE is obtained. Mix it with an equal volume of preformed liposomes (concentrate
ци липида 3 мг/мл) и инкубируют 20 ч. .qip lipid 3 mg / ml) and incubated for 20 hours.
При этом фибронектин встраиваетс своими гидрофобными остатками в мембрану уже готовых липосом за счет гидрофобного взаимодействи остатковIn this case, fibronectin is incorporated by its hydrophobic residues into the membrane of already prepared liposomes due to the hydrophobic interaction of the residues.
фосфолипида в молекуле белка с липид- ной мембраной.phospholipid in a protein molecule with a lipid membrane.
О п ы т 3, Провод т аналогично опьп у 2, но фибронектин смешивают сEXAMPLE 3 Conducted in a manner similar to that of 2, but fibronectin is mixed with
раствором липида (концентраци 5 мг/мл) в детергенте (2 % хелат, 0,15 М NaCf, 10 мМ , рН 7,-4) и диализуют 18 ч против буфера, не содержащего детергента. При этом образуютс липосомы,содержащие молекулы фибронектина на мембране л-ипо- сом, причем остаток фосфолипида белка встраиваетс в мембрану липосомы. О п ы т 4, Провод т аналогичноa solution of lipid (concentration of 5 mg / ml) in detergent (2% chelate, 0.15 M NaCf, 10 mM, pH 7, -4) and dialyzed for 18 h against a buffer that does not contain detergent. Liposomes are formed that contain fibronectin molecules on the i-iposome membrane, and the protein phospholipid residue is inserted into the liposome membrane. EXAMPLE 4, Conducted Similarly
опыту 2, но вместо ДТДП-ФЭ используют глутарил-ФЭ.Experience 2, but glutaryl-PE is used instead of DTDP-FE.
ОABOUT
-о-р-о-o-oo
....
4040
4545
„„
5050
гель-фильтрацией в центрифуге на се- фарезе CL 4В.gel filtration in a centrifuge at separase CL 4B.
Используют трансформированные макрофаги мьшш линии 1774. На монослой клеток (7 10 ) в лунке нанос т алик- воту липосом и инкубируют при 1 ч. После удалени во флаконы с сцинтилл ционной жидкостью ЖС-8 подсчитывают на счетчике RACKBETA 1215 (фирма L КБ).Transformed macrophages of line 1774 are used. A monolayer of cells (7 10) in the well is coated with aliquots of liposomes and incubated for 1 hour. After being removed into JS-8 scintillation liquid, they are counted on a RACKBETA 1215 counter (L KB).
Дл определени эндоцитоза липосом макрофагами клетки преинкубиру- ют 40 мин гликолитическим ингибитором эндоцитоза - йодацетамидом (100 мкмоль).To determine the endocytosis of liposomes by macrophages, cells are incubated for 40 min by a glycolytic endocytosis inhibitor, iodine acetamide (100 µmol).
Пример 1. Сравнивают св зывание и эндоцитоз макрофагами (7 10 клеток) липосом из лецитина без фибронектина и покрытых фиброиектином. Содержание липида 1,5 мг/мл и фибронектина 0,7 мг/мл. Данные приведены в табл. 1 и 2.Example 1: Binding and endocytosis of macrophages (7 x 10 cells) of liposomes from lecithin without fibronectin and coated with fibroectin are compared. The lipid content is 1.5 mg / ml and fibronectin 0.7 mg / ml. The data are given in table. 1 and 2.
П р и М е р 2. Сравнивают св зывание и эндоцитоз макрофагами липосом из фосфолипидов и ганглиозидовPR e and M e p 2. Compare the binding and endocytosis of liposome macrophages from phospholipids and gangliosides
513513
печени. Содержание липида 1,5 мг/мл, ганглиозидов, фибронектина 0,7 мг/мл Данные приведены в табл, 3 и А,the liver. The content of the lipid 1.5 mg / ml, gangliosides, fibronectin 0.7 mg / ml The data are given in table, 3 and A,
П р и м е р 3, Проверка специфического взаимодействи макрофагов с липосомами, содержащими фибронектин, по сравнению с липосомами, содержащими бычий сывороточный альбумин.Example 3: Checking the specific interaction of macrophages with liposomes containing fibronectin, compared with liposomes containing bovine serum albumin.
Приготовл ют липосомы, содержащие лецитин:холестерин (1:1), в которые встроены через гидрофобную ножку фибронектин и бычий сывороточный альбумин (БСА). Весовое соотношение компонентов то же, что в примере 1, количество альбумина эквивалентно содержанию ФН.Liposomes containing lecithin: cholesterol (1: 1) are prepared in which fibronectin and bovine serum albumin (BSA) are inserted through the hydrophobic stem. The weight ratio of the components is the same as in example 1, the amount of albumin is equivalent to the content of TN.
В табл.5 дано количество липосом св завшихс с клетками макрофагов линии 1774 (распадов/мин С-холесте- рино-олеата, св занного с липосомами)Table 5 gives the number of liposomes bound to the macrophage cell line 1774 (disintegrations / min of C-cholesterol-oleate associated with liposomes)
Исследуетс кинетика св зывани с макрофагами липосом, полученных на основе лецитина и лецитина с фибро- нектином.The kinetics of binding to macrophages of liposomes derived from lecithin and lecithin from fibronectin is investigated.
В табл,6 приведены данные о св -, зывшши липосом из лецитина и лецитина с фибронектином с макрофагами 1774 в зависимости от времени инкубации .Table 6 shows data on the binding of liposomes from lecithin and lecithin with fibronectin with macrophages 1774, depending on the incubation time.
ЛецитинLecithin
0,74±0,180.74 ± 0.18
Примеч ание: После гомогенизации липосон поNote: After homogenizing liposon by
размеру ( 4f),size (4f),
Лецитин 0,37±0,02 Лецитин + фибронектинLecithin 0.37 ± 0.02 Lecithin + Fibronectin
2,74±0,422.74 ± 0.42
1406614066
Таким образом, фибронектин повышает фагоцитоз липосом макрофагами до 20 раз.Thus, fibronectin increases the phagocytosis of liposomes by macrophages up to 20 times.
Использование изобретени -обеспе- 5 чивает высокую степень захвата липосом макрофагами, стимул цию фагоцитоза липосом макрофагами, возможност применени липосомальных везикул дл транспорта БАБ,The use of the invention ensures a high degree of capture of liposomes by macrophages, stimulation of phagocytosis of liposomes by macrophages, the possibility of using liposomal vesicles for transporting BAB,
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU843827789A SU1301406A1 (en) | 1984-12-19 | 1984-12-19 | Liposomal vesicula for directional transport of biologically active substances |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU843827789A SU1301406A1 (en) | 1984-12-19 | 1984-12-19 | Liposomal vesicula for directional transport of biologically active substances |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1301406A1 true SU1301406A1 (en) | 1987-04-07 |
Family
ID=21152498
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU843827789A SU1301406A1 (en) | 1984-12-19 | 1984-12-19 | Liposomal vesicula for directional transport of biologically active substances |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1301406A1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0650722A2 (en) * | 1989-04-19 | 1995-05-03 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Invasive particles with protein coating |
CN110721109A (en) * | 2019-10-21 | 2020-01-24 | 暨南大学 | Preparation method of protein liposome FNL and application thereof in cosmetics |
-
1984
- 1984-12-19 SU SU843827789A patent/SU1301406A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
V.P.Torchilin et.al. Coating liposcmes with protein decreases their capture by macrophages. - F.EBS Letters, 1980, V. Ill, № 1, p.184 - 188. * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0650722A2 (en) * | 1989-04-19 | 1995-05-03 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Invasive particles with protein coating |
EP0650722A3 (en) * | 1989-04-19 | 1996-04-24 | Univ Leland Stanford Junior | Invasive particles with protein coating. |
CN110721109A (en) * | 2019-10-21 | 2020-01-24 | 暨南大学 | Preparation method of protein liposome FNL and application thereof in cosmetics |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Kragh-Hansen et al. | The mechanism of detergent solubilization of liposomes and protein-containing membranes | |
Zwaal et al. | Blood cell membranes and haemostasis | |
Stamatatos et al. | Interactions of cationic lipid vesicles with negatively charged phospholipid vesicles and biological membranes | |
Daleke et al. | Incorporation and translocation of aminophospholipids in human erythrocytes | |
Gad et al. | Polycation-induced fusion of negatively-charged vesicles | |
Moscho et al. | Rapid preparation of giant unilamellar vesicles. | |
US7371404B2 (en) | Amphoteric liposomes and their use | |
US6706861B2 (en) | Reconstitution of purified membrane proteins into preformed liposomes | |
Speelmans et al. | The interaction of the anti-cancer drug cisplatin with phospholipids is specific for negatively charged phospholipids and takes place at low chloride ion concentration | |
EP0036277B1 (en) | Covalently bonded liposome-protein-compositions and method of producing them | |
Sunamoto et al. | Synthesis and characterization of 1, 2-dimyristoylamido-1, 2-deoxyphosphatidylcholine as an artificial boundary lipid | |
Bradley et al. | C1q binding to liposomes is surface charge dependent and is inhibited by peptides consisting of residues 14–26 of the human C1qA chain in a sequence independent manner | |
Eriksson et al. | The effect of the lipid composition on the partition of liposomes in aqueous two-phase systems | |
Stremmel | Mechanism of hepatic fatty acid uptake | |
SU1301406A1 (en) | Liposomal vesicula for directional transport of biologically active substances | |
Williams et al. | Phospholipids, liquids crystals and cell membranes | |
GB2140822A (en) | Transformation of plant cells | |
Cabantchik et al. | Reconstitution of membrane transport systems | |
Verhallen et al. | Adrenocorticotropic hormone (ACTH)-lipid interactions. Implication for involvement of amphipathic helix formation | |
Wilschut et al. | Calcium-induced fusion of phospholipid vesicles containing free fatty acids: modulation by transmembrane pH-gradients | |
JP2003513901A (en) | Method for encapsulating protein or peptide in liposome, liposome prepared by this method and use thereof | |
Sood et al. | Interaction of kidney (Na+− K+)-ATPase with phospholipid model membrane systems | |
Eriksson | Hydrophobic affinity partition of liposomes in aqueous two-phase systems | |
Kerek | Interactions of Inorganic Mercury and Inorganic Cadmium with Biomimetic and Complex Biological Membranes and their Influence on Membrane Packing and Size | |
JP2597927B2 (en) | Phospholipid derivatives and liposomes using the same |