SU1283251A2 - Method of indicating contamination of environment objects with chemical substances - Google Patents

Method of indicating contamination of environment objects with chemical substances Download PDF

Info

Publication number
SU1283251A2
SU1283251A2 SU843794999A SU3794999A SU1283251A2 SU 1283251 A2 SU1283251 A2 SU 1283251A2 SU 843794999 A SU843794999 A SU 843794999A SU 3794999 A SU3794999 A SU 3794999A SU 1283251 A2 SU1283251 A2 SU 1283251A2
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
microorganisms
test culture
polyvinyl alcohol
suspension
sample
Prior art date
Application number
SU843794999A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Анатолий Васильевич Пожаров
Нина Ивановна Папутская
Юрий Николаевич Титаренко
Original Assignee
Ленинградский электротехнический институт им.В.И.Ульянова (Ленина)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ленинградский электротехнический институт им.В.И.Ульянова (Ленина) filed Critical Ленинградский электротехнический институт им.В.И.Ульянова (Ленина)
Priority to SU843794999A priority Critical patent/SU1283251A2/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1283251A2 publication Critical patent/SU1283251A2/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к способу индикации загр знени  объектов окружающей среды химическими веществами, может использоватьс  в области промышленной и санитарной гигиены и  вл етс  усовершенствованием известного способа по авт.св. № 1010128. Цель изобретени  - повьшение точности ин-. дикации загр знений, котора  достигаетс  предварительным смешиванием тест-культуры микроорганизмов с 5%-ным водным раствором поливинилового спирта в массовом соотношении взвеси микроорганизмов и раствора поливинилового спирта 1:(0,004-0,01) соответственно . Повышение точности индикации обеспечиваетс  увеличением в зкости жидкости, в которой взвешены микроорганизмы , что дает возможность, наслаивать анализируемую пробу на тест- культуру без их механического перемешивани  и стабилизировать градиент концентрации индицируемой пробы. 3 табл.,1 ил. (ЛThe invention relates to a method for indicating the pollution of environmental objects by chemicals, can be used in the field of industrial and sanitary hygiene, and is an improvement of the known method according to the author. No. 1010128. The purpose of the invention is to increase accuracy. soil dosing, which is achieved by preliminary mixing the test culture of microorganisms with a 5% aqueous solution of polyvinyl alcohol in a mass ratio of the suspension of microorganisms and a solution of polyvinyl alcohol 1: (0.004-0.01), respectively. Improving the accuracy of the indication is provided by increasing the viscosity of the liquid in which the microorganisms are suspended, which makes it possible to layer the analyzed sample on the test culture without mechanical mixing and to stabilize the concentration gradient of the displayed sample. 3 tab., 1 Il. (L

Description

tctc

0000

со to елco to eat

кto

11281128

Изобретение относитс  к охране окружающей среды, а именно к области промьшшенной и санитарной гигиены, и  вл етс  дополнительным к основному авт. св. № 1010128.The invention relates to environmental protection, in particular to the field of industrial and sanitary hygiene, and is additional to the basic author. St. No. 1010128.

Известен способ индикации загр знени  объектов окружающей среды химическими веществами путем воздействи  пробой на тест-культуру микроорганизмов с последующем контролем измене- НИИ в культуре, заключающийс  во введении пробы в один конец прот женной кюветы, содержащей взвесь микроорганизмов , про вл юищх эффект хемотаксиса к индицируемым веществам, изме- рении перераспределени  концентрации микроорганизмов вдоль кюветы и по разности концентрации микроорганизмов вдоль кюветы в контролируемых участках - определении степени загр зне- ни . Перераспределение микроорганиз- ;мов по иовете измер ют фотометричес- ким методом,There is a known method of indicating the contamination of environmental objects with chemical substances by exposing a sample to a test culture of microorganisms with subsequent monitoring of the change in the culture, which consists in introducing a sample at one end of a stretched cuvette containing a suspension of microorganisms, showing a chemotaxis effect on displayable substances , measuring the redistribution of the concentration of microorganisms along the cuvette and the difference in the concentration of microorganisms along the cuvette in controlled areas — determining the degree of contamination zneeni. The redistribution of microorganisms on the planet is measured by photometric method,

Цель изобретени  - повышение точности индикации- загр знений.The purpose of the invention is to improve the accuracy of indication of contamination.

Сущность изобретени  заключаетс  в том, что взвесь тест-культуры микроорганизмов предварительно смешива- ют с 5%-ным водным раствором поливинилового спирта в соотношении масс взвеси микроорганизмов и раствора поливинилового спирта 1:(0,004-0,01) соответственно. При этом повышаетс  в зкость жидкости, в которой взвешены микроорганизмы, что дает возможность наслаивать анализируемую пробу на тест-культуру без их механического перемешивани  и стабилизировать градиент концентрации индицируемой пробы,The essence of the invention is that the suspension of the test-culture of microorganisms is pre-mixed with a 5% aqueous solution of polyvinyl alcohol in the mass ratio of the suspension of microorganisms and the solution of polyvinyl alcohol 1: (0.004-0.01), respectively. This increases the viscosity of the fluid in which the microorganisms are weighed, which makes it possible to layer the analyzed sample on the test culture without mechanical mixing and to stabilize the concentration gradient of the indicated sample,

На чертеже представлена структурна  схема установки дл  реализации способа.The drawing shows an installation diagram for implementing the method.

Установка содержит источник излучени  1, гибкие световоды 2, две кюве1Ъ1 3 и 4, в нилших зонах которых содержитс  тест-культура 5, взвешенна  в лмДкости,индифферентной дл  микроорганизмов, в смеси с 5%-ным водным раствором поливинилового спирта . Кювета 3 (опытна ) в верхней зоне содержит индицируемую пробу 6, кювета 4 (контрольна ) - контрольную пробу 7, Контролируемые зоны 8 наход тс  в кюветах. Схема содержит фотоприемники 9 и измерительное устройство 10,The installation contains a radiation source 1, flexible fibers 2, two cuveys 3 and 4, in the thin zones of which the test culture 5 is contained, weighed in lmDkost, indifferent to microorganisms, mixed with a 5% aqueous solution of polyvinyl alcohol. The cuvette 3 (experimental) in the upper zone contains the displayed sample 6, the cuvette 4 (control) - the control sample 7, the controlled zones 8 are in the cuvettes. The scheme contains the photodetectors 9 and the measuring device 10,

Взвесь тест-культуры 5 микроорганизмов (МО) (фиг.1) известной концентрации с выраженным хемотаксисом к индицируемому веществу смешивают с водным раствором поливинилового спирта (ПВС) при массовых соотношени х тест-культуры 5 и раствора поливинилового спирта 1:(0,004-0,010 Тест-культуру 5 внос т в контрольную и опытную кюветы 4 и 3. Поверх тест- культуры 3 в кювету 3 наслаивают пробу 6- (исследуемую на загр знитель), в кюветы 4 - контрольную пробу 7, Присутствие ПВС в тест-культуре 5 МО позвол ет пробу наслаивать на тест- культуру МО без перемешивани , т.е. в кюветах имеют два жидких обособленных сло , причем нижний - это тест-культура МО, верхний - проба. Граница между двум  сло ми жидкостей обусловленна  разной их в зкостью, сохран етс  стабильной в течение всего измерени  и, как показала экспериментальна  проверка, в течение нескольких часов. В то же врем  эта граница не преп тствует миграции клеток тест-культуры в предпочтительном дл  них направлении: клетки МО перемещаютс  в верхнюю зону кюветы, если дтроба не содержит токсиканта, в присутствии токсиканта концентраци  клеток МО в верхней контролируемой зоне будет тем меньше, чем токсиканта больше .A suspension of a test culture of 5 microorganisms (MO) (Fig. 1) of a known concentration with a pronounced chemotaxis to the displayed substance is mixed with an aqueous solution of polyvinyl alcohol (PVA) at a mass ratio of test culture 5 and a solution of polyvinyl alcohol 1: (0.004-0.010 Test -culture 5 is introduced into the control and experimental cuvettes 4 and 3. Above the test culture 3, the sample 6 is layered in the cuvette 3 (tested for the contaminant), the control sample 7, the PVA test in the MO 5 test culture allows em sample layered on the test culture MO without mixing, i.e., in the cuvettes, there are two liquid isolated layers, the lower one being the test culture MO, the upper one being the sample. The boundary between the two layers of liquids due to their different viscosity remains stable throughout the measurement and, as shown by the experimental verification, within a few hours. At the same time, this border does not prevent the test culture cells from migrating in their preferred direction: MO cells move to the upper cell area, if the drum does not contain a toxicant, in the presence of a toxicant, the MO cell concentration in erhney controlled area will be smaller than the toxicant more.

Прераспределение клеток МО в кюветах под действием токсиканта (хёмо- таксическую реакцию) измер ют фотометрически на установке (фиг.1). Световые потоки от источника 1 через световоды 2 подвод тс  к контролируемым зонам 8 в верхних зонах кювет 3 и 4. Излучение от кювет через другую пару световодов 2 подаетс  на фотоприемники 9. Сигналы фотоприемников измер ют устройством 10. Результатом измерений  вл етс  разность показаний Д1, контрольной (I ) и опытной (ijji ) кювет. Разность д1 тем больше, чем больше токсиканта в пробе.The redistribution of MO cells in the cuvettes under the action of a toxicant (chemo-toxic reaction) is measured photometrically at the facility (Fig. 1). The light fluxes from the source 1 through the optical fibers 2 are supplied to the monitored zones 8 in the upper zones of the cuvette 3 and 4. The radiation from the cuvette through another pair of optical fibers 2 is fed to the photodetectors 9. The signals of the photodetectors are measured by the device 10. control (I) and experimental (ijji) ditch. The difference d1 is greater, the more toxicant in the sample.

Введение во взвесь тест-культуры раствора ПВС в указанных соотношени х не вызывает гибели клеток, не уменьшает их подвижности, не вли ет на рост и размножение в течение нескольких суток. В то же врем  введение раствора ПВС позвол ет стабилизировать градиент концентрации токсиканта в кювете с тест-культурой МО, что дает возможность снизить разброс данных, уменьшив таким образом относительную погрешность индикации с 46% по известному способу до 16% по предлагаемому.Introduction to the suspension of the test culture of the PVA solution in the indicated ratios does not cause cell death, does not reduce their mobility, and does not affect growth and reproduction for several days. At the same time, the introduction of the PVA solution allows stabilizing the toxicant concentration gradient in the cell with the MO test culture, which makes it possible to reduce the spread of data, thus reducing the relative indication error from 46% by a known method to 16% by the proposed method.

В табл,1 и 2 приведены сравнительные данные точности индикации сульфата меди по предлагаемому и известному способу соответственно.Tables 1 and 2 give comparative data on the accuracy of copper sulfate indication of the proposed and known methods, respectively.

В табл.3 приведены данные зависимости точности от концентрации ПВС по предлагаемому способу (в условных единицах - у.е.).Table 3 presents the data according to the accuracy of the concentration of PVA in the proposed method (in conventional units - cu).

Таблица 1Table 1

6-106-10

-9-9

427502 751616427502 751616

6-106-10

-7-7

127502 375±28 15127502 375 ± 28 15

Таблица 2table 2

Как видно из табл.1 и 2, дл  предлагаемого способа и известного концентраци  клеток в зоне пробы., содержащей токсикант, уменьшаетс  с увеличением концентрации токсиканта.As can be seen from Tables 1 and 2, for the proposed method and the known concentration of cells in the sample zone containing the toxicant, decreases with increasing concentration of the toxicant.

Таким образом, предлагаемый и. из- вестньй способы имеют одинаковый ха- рактер зайисимости д1 от концентрации токсиканта.Thus, the proposed and. The known methods have the same character of the dependence of d1 on the concentration of the toxicant.

Из табл.1 и 2 ввдно, что относительна  погрешность по предлагаемому способу составл ет 15-16% при оптимальном роотношении масс взвеси тест- культуры и ПВС, равном 1:0,07; по изFrom Tables 1 and 2, the relative error of the proposed method is 15-16% with an optimal ratio of the weight of the suspension of the test culture and PVA, equal to 1: 0.07; by of

5five

00

5five

00

вестному способу относительна  погрешность составл ет 43-46%, Уменьшение концентрации ПВС во взвеси тест- культуры приводит к увеличению относительной погрешности до 27-31% (соотношение 1:0,004). Дальнейшее уменьшение концентрации ПВС сопроволздает- с  и дальнейшим увеличением относительной погрешности до уровн  ее по известному способу.To a known method, the relative error is 43–46%. A decrease in the concentration of PVA in the suspension of the test culture leads to an increase in the relative error to 27–31% (1: 0.004 ratio). A further decrease in the concentration of PVA is accompanied by a further increase in the relative error to the level according to a known method.

Пример 1. Провод т индикацию токсиканта - сульфата меди. Испытует- мые концентрации сульфата меди готов т в среде Лозина-Лозинского следующего состава, г/л: NaCl О,1 КС10,01Example 1. Toxicant — copper sulfate — is indicated. Test concentrations of copper sulfate were prepared in Lozin-Lozinsky medium of the following composition, g / l: NaCl O, 1 KC10.01

MgSO 0,01 CaClj 0,01 NaHCGj 0,02 В качестве тест-культуры используют Paramecium caudatum. Тест-культуру Paramecium caudatum выращивают по методике 2, отмывают от дрожжей средой Лозина-Лозинского на центрифуге (3000 об/мин, 5 мин). Используют тест-культуру с концентрацией 3000 клеток в 1 мл среды Лозина-Лозинского .MgSO 0.01 CaClj 0.01 NaHCGj 0.02 Paramecium caudatum is used as a test culture. The test culture of Paramecium caudatum is grown according to method 2, washed from the yeast with Lozina-Lozinsky medium in a centrifuge (3000 rpm, 5 min). A test culture with a concentration of 3000 cells in 1 ml of Lozin-Lozinsky medium is used.

Готов т 5%-ный раствор ПВС. Делают навеску порошка ПВС. 5 г. Внос т ее в 95 (95 мл) среды Лозина-Лозинского ( Рсреды г/МП 1,00015, поэтомуA 5% PVA solution is prepared. Make a sample of PVA powder. 5 g. Put it in 95 (95 ml) of Lozin-Lozinsky medium (Scattering ratio g / MP 1,00015, therefore

можно весовые единицы заменить объемными ) .weight units can be replaced by bulk).

Оставл ют ПВС дл  набухани  в жидкости на сутки, а затем, так как ПВС раствор етс  только в гор чей воде , нагревают его на вод ной бане при температуре кипени  в течение Двух часов. Получают прозрачный раствор ПВС, который используют в течение недели.PVA is left to swell in the liquid for a day, and then, since PVA is dissolved only in hot water, it is heated in a water bath at the boiling point for two hours. Get a clear solution of PVA, which is used for a week.

5%-ный раствор ПВС, плотнасть которого была определена экспериментально и составл ла 1,03 г/мл, добавл ли во взвесь тест-культуры МО по объему. Правомерность весовогоA 5% solution of PVA, the density of which was determined experimentally and was 1.03 g / ml, was added to the MO suspension of the test culture by volume. Legitimacy weight

дозировани  с помощью объемных мер, калиброванных по воде, обусловлена малой погрешностью (3%) и широким рабочим диапазоном концентрации ПВС .(4-10 г ПВС на 1 л взвеси МО).dosing with the help of volumetric measures calibrated by water is caused by a small error (3%) and a wide working range of the concentration of PVA.

Тест-культуру МО перемешивают с 5%-ным раствором ПВС. Дл  того в 4,3 мл взвеси Paramecium caudatum внос т 0,7 мл 5%-ного раствора ПВС (массовое соотношение 1:0,007). Пе-The test culture MO mixed with 5% solution of PVA. For 4.3 ml of Paramecium caudatum suspension, 0.7 ml of 5% PVA solution is added (mass ratio 1: 0.007). Pe-

ремешивают, По 2 мл ввод т в контрольную и опытную кюветы. Размеры кюветы 40 10 10 мм. Сверху на тест-культуру наслаивают пробу. В контрольную кювету - среду Лозина-Лозинского, в опытную - раствор CuSO в той же среде с концентрацией 6-10 моль/л. Объем пробы - 2 мл. Дл  измерени  концентрации клеток используют установку (фиг,1). Измерение производ т по схеме на фиг.1, либо дискретно дл  вы снени  динамики хемотаксичес- кого процесса, либо через 30 мин по завершении перераспределени  клеток. В качестве источника излучени  исполь зуют лампу накаливани  (Р 18 Вт), световой поток от лампы подаетс  к кюветам 3 и 4 по гибким световодам 2. Излучение от кювет подаетс  по другой паре световодов на фотоприемное устройство 9 и измер етс  измерительным устройством 10. Получают выходные сигналы: IStir. 2 ml each is introduced into the control and experimental cuvettes. Sizes of a ditch are 40 10 10 mm. A sample is layered on top of the test culture. In the control cuvette - Lozin-Lozinsky medium, in the experimental one - CuSO solution in the same medium with a concentration of 6-10 mol / l. The sample volume is 2 ml. A setup is used to measure cell concentration (Fig. 1). The measurement is carried out according to the scheme in FIG. 1, either discretely to determine the dynamics of the chemotactic process, or 30 minutes after the completion of cell redistribution. An incandescent lamp (P 18 W) is used as a radiation source, the luminous flux from the lamp is supplied to cuvettes 3 and 4 through flexible fibers 2. Radiation from the cuvette is fed through another pair of optical fibers to the photodetector 9 and measured by measuring device 10. signals: I

к to

он he

ul, которыеul which

характеризуют концентрацию клеток в контролируемых зонах контрольной кюКак видно из приведенных примеров и табл.З, точность индикации выше всего при соотношении взвес; микроорганизмов и поливинилов.ого спирта, равном 1:0,007. Уменьшение точности индикации при соотношении 1:0,004 объ сн етс  тем, что в зкость жидкости нижнего сло  приближаетс  к в зкости наслаиваемой жидкости, и ввесcharacterize the concentration of cells in the controlled areas of the control kuKak can be seen from the above examples and table. 3, the accuracy of the display is highest with a suspension ratio; microorganisms and polyvinyl alcohol, equal to 1: 0.007. The decrease in display accuracy at a ratio of 1: 0.004 is due to the fact that the viscosity of the liquid of the lower layer approaches the viscosity of the layered liquid, and the weight of

веты, опытной и их разность соответственно . Результаты измерени  даны в табл.1. Относительна  погрешность измерени  при данном соотношении тест-культуры и ПВС составила 15%.experienced, and their difference respectively. The measurement results are given in Table 1. The relative measurement error at a given ratio of test culture and PVA was 15%.

Параллельно производилась индикаци  сульфата меди по известному способу . Данные приведены в табл.2. Погрешность известного способа составила 43%.In parallel, an indication of copper sulfate was carried out by a known method. The data are given in table 2. The error of the known method was 43%.

Пример 2. При сохранении всех условий первого примера изменено массовое соотношение взвеси микроорганизмов и поливинилового спирта на следующее: 1:0,004. Относительна  погрешность в этом случае составила 27% (табл.З).Example 2. While maintaining all the conditions of the first example, the mass ratio of the suspension of microorganisms and polyvinyl alcohol is changed to the following: 1: 0.004. The relative error in this case was 27% (Table 3).

Пример 3. При сохранении всех условий первого примера измене- но соотношение взвеси микроорганизмов и поливинилового спирта на следующие: 1:0,01. Относительна  погрешность в этом случае составила 15% (табл.З).Example 3. While maintaining all the conditions of the first example, the ratio of the suspension of microorganisms and polyvinyl alcohol is changed to the following: 1: 0.01. The relative error in this case was 15% (Table 3).

Таблица 3Table 3

ти пробу без ее перемешивани  с нижним слоем становитс  затруднительно, а перемешивание слоев жидкости приводит к нарушению стабилизации гра- диента концентрации и уменьшение точ-- ности индикации по хемотаксической .i реакции. При увеличении соотношени  до 1:0,01 клетки микроорганизмов тест-культуры не полностью)мигрируютThese samples without mixing with the lower layer become difficult, and mixing of the liquid layers disrupts the stabilization of the concentration gradient and decreases the accuracy of the indication by chemotactic .i reaction. With an increase in the ratio to 1: 0.01, the microorganism cells of the test culture do not fully migrate

Claims (1)

8 Формула изобретени 8 claims Способ индикации загр знени  объектов окружающей среды химическими веществами по авт.св. № 1010128, отличающийс  тем, что, с целью повьппени  точности индикации, взвесь тест-культуры микроорганизмов предвари гельно смешивают с 5%-ным водным раствором поливинилового спирта в соотношении масс.взвеси микроорганизмов и раствора поливинилового спирта 1:(0,004-0,01) соответственно,The method of indicating the pollution of environmental objects by chemicals according to author. No. 1010128, characterized in that, in order to demonstrate the accuracy of the indication, a suspension of the test culture of microorganisms is preliminarily mixed with a 5% aqueous solution of polyvinyl alcohol in a mass ratio of the suspension of microorganisms and a solution of polyvinyl alcohol 1: (0.004-0.01) respectively, Редактор А.ГулькоEditor A.Gulko Техред Л.СердажоваTehred L. Serdazhova Кор ПодCor Pod 7372/22 Тираж 5007372/22 Circulation 500 ВНИИПИ Государственного комитета СССРVNIIPI USSR State Committee по делам изобретений и открытий 113035, Москва, Ж-35, Раушска  наб., д. 4/5for inventions and discoveries 113035, Moscow, Zh-35, Raushsk nab., 4/5 Производственно-полиграфическое предпри тие, г.Ужгород, ул. Проектна , 4Production and printing company, Uzhgorod, st. Project, 4 Корректор С.Шекмар ПодписноеProofreader S.Shekmar Subscription
SU843794999A 1984-10-01 1984-10-01 Method of indicating contamination of environment objects with chemical substances SU1283251A2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU843794999A SU1283251A2 (en) 1984-10-01 1984-10-01 Method of indicating contamination of environment objects with chemical substances

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU843794999A SU1283251A2 (en) 1984-10-01 1984-10-01 Method of indicating contamination of environment objects with chemical substances

Related Parent Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU1010128 Addition

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1283251A2 true SU1283251A2 (en) 1987-01-15

Family

ID=21140129

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU843794999A SU1283251A2 (en) 1984-10-01 1984-10-01 Method of indicating contamination of environment objects with chemical substances

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1283251A2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103778335A (en) * 2014-01-22 2014-05-07 中国环境科学研究院 Chemical industrial park particular pollutant monitoring method based on fuzzy comprehensive evaluation

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Авторское свидетельство СССР № 1Q10128, кл. С 12 О 1/00, 1981. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103778335A (en) * 2014-01-22 2014-05-07 中国环境科学研究院 Chemical industrial park particular pollutant monitoring method based on fuzzy comprehensive evaluation
CN103778335B (en) * 2014-01-22 2018-01-02 中国环境科学研究院 A kind of chemical industrial park characteristic contamination monitoring method based on fuzzy comprehensive evoluation

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Talbot et al. Fluorescent monitoring of SDS gel electrophoresis
Degn et al. Measurement of steady-state values of respiration rate and oxidation levels of respiratory pigments at low oxygen tensions. A new technique
Walsby et al. Changes in buoyancy of a planktonic blue-green alga in response to light intensity
EP0093116B1 (en) Method of quantitatively assaying microorganisms or substances affecting the growth thereof
Mateo et al. Molecular order and fluidity of the plasma membrane of human platelets from time-resolved fluorescence depolarization
JPS6036959A (en) Method and agent for rapidly removing turbidity in biological liquid completely
Cattolico et al. Rapid filter method for the microfluorometric analysis of DNA
Sipior et al. Phase fluorometric optical carbon dioxide gas sensor for fermentation off‐gas monitoring
Inchiosa Direct biuret determination of total protein in tissue homogenates
SU1283251A2 (en) Method of indicating contamination of environment objects with chemical substances
EP1036334B1 (en) Ion detector consisting of particles with target and indicator ionophores distributed therein
Palumbo et al. A nonincinerative rate-sensing method for the determination of iodine in iodoproteins
Kruse Measurement of plankton O~ 2 respiration in gas-tight plastic bags
Coppella et al. Practical considerations in the measurement of culture fluorescence
JPH0582901B2 (en)
JPS6193958A (en) Quantitative determination of endotoxin
CN207689508U (en) Microfluidic control CSTR reactions and detection system
Zwarenstein Orthotolidine hydrochloride test for blood in urine
Kamata et al. Rayleigh ratio for benzene and its temperature dependence.
US3923459A (en) Process for the determination of bilirubin in fluids
Byrjalsen et al. Immunoturbidimetry of serum C-reactive protein in low concentration of polyethylene glycol
CN101036058A (en) Methods for measuring chloride channel conductivity
Roberts Jr Bioassay procedures for marine phytoplankton with special reference to chlorine
US3293147A (en) Measuring the presence of enzyme reactions
GARWIN et al. Two colorimetric assays for iodine in foods