SU1253553A1 - Method of separating live helminths from frogs - Google Patents

Method of separating live helminths from frogs Download PDF

Info

Publication number
SU1253553A1
SU1253553A1 SU853891828A SU3891828A SU1253553A1 SU 1253553 A1 SU1253553 A1 SU 1253553A1 SU 853891828 A SU853891828 A SU 853891828A SU 3891828 A SU3891828 A SU 3891828A SU 1253553 A1 SU1253553 A1 SU 1253553A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
hours
solution
nitrate
helminths
urea
Prior art date
Application number
SU853891828A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Николай Федорович Запорожец
Жанна Николаевна Запорожец
Владимир Павлович Стасюк
Вячеслав Иванович Попов
Original Assignee
Винницкий Филиал Украинской Ордена Трудового Красного Знамени Сельскохозяйственной Академии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Винницкий Филиал Украинской Ордена Трудового Красного Знамени Сельскохозяйственной Академии filed Critical Винницкий Филиал Украинской Ордена Трудового Красного Знамени Сельскохозяйственной Академии
Priority to SU853891828A priority Critical patent/SU1253553A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1253553A1 publication Critical patent/SU1253553A1/en

Links

Description

.  .

Изобретение относитс  к биологии а именно к зоологии, и может быть использовано в учебно-методической и научно-исследовательской работе в период проведени  лабораторных зан тий студентов и учащихс  по курсам биологии, зоологии, физиологии, паразитологии, фармакологии и другим дисциплинам, а также дл  диагностических целей и в террариумах дл  дегельминтизации л гушек.The invention relates to biology, namely, zoology, and can be used in educational and methodological and research work during the laboratory studies of students and students in biology, zoology, physiology, parasitology, pharmacology and other disciplines, as well as for diagnostic targets and in terrariums for deworming l bushings.

Цель изобретени  - сохранение жизнеспособности л гушек.The purpose of the invention is to preserve the viability of the flakes.

Сущность изобретени  состоит в следующем,The essence of the invention is as follows.

В сосуд емкостью 3 л наливают 1 л дистиллированной воды. В воду после взвешивани  добавл ют один из химических реагентов; нитрат кали  или нитрат натри , или нитрат кальци , или нитрат аммони  (например, О,1 г нитрата кали , что создает концентращио соли 1:10000). Содержимое сосуда перемешивают до растворени  соли. Затем взвешивают 0,05 г кристаллической мочевины и ее внос т в только что приготовленный раствор и после перемешивани  получают 0,005%-ный раствор мочевины в растворе нитрата кали . В приготовленный двухкомпонентньш раствор помещают л гушек любого вида. Сосуд закрывают крьпикой, в которой предварительно сделаны отверсти  диаметром 1 см дл  доступа воздуха. В растворе л гушки выдерживают 72- 120 ч. После истечени  этого времен крышку с сосуда снимают и удал ют л гушки. Содержимое банки сливают в другой сосуд, например кювету; раствору дают отсто тьс  5 мин, при этом выделенные л гушками гельминты оседают на дно. Их учет и сбор провод т общеприн тыми методами, после чего используют на лабораторных зан ти х студентов или учащихс  или с научными цел ми. Л гушки возвращаю в террариум.In a vessel with a capacity of 3 liters pour 1 liter of distilled water. After weighing, add one of the chemical reagents; potassium nitrate or sodium nitrate, or calcium nitrate, or ammonium nitrate (for example, O, 1 g of potassium nitrate, which creates a 1: 10,000 concentrated salt). The contents of the vessel are stirred until the salt is dissolved. Then, 0.05 g of crystalline urea is weighed and introduced into the solution that has just been prepared, and after stirring, a 0.005% solution of urea in a solution of potassium nitrate is obtained. In the prepared two-component solution is placed l of any kind of flakes. The vessel is closed krpika, in which pre-made holes with a diameter of 1 cm for the access of air. In the solution, the cushions are kept for 72-120 hours. After this time has elapsed, the cap from the vessel is removed and the cushions are removed. The contents of the jar are drained into another vessel, such as a cuvette; the solution is allowed to stand for 5 minutes, at the same time the helminths excreted by the cannons are deposited on the bottom. Their accounting and collection are carried out by conventional methods, after which they are used for laboratory studies by students or students or for scientific purposes. A gushki return to the terrarium.

Дл  отработки режимов выполнени  способа были приготовлены растворы различных концентраций, представленные в таблице.To work out the modes of the method, solutions of various concentrations were prepared, presented in the table.

II

В результате проведенных экспериментальных исследований установили, что наиболее эффективными  вл ютс  0,005-0,007%-ные растворы мочевины в растворах нитрата кали  (1:8000- 10000) или в растворах нитрата нат5: S532As a result of experimental studies, it was found that the most effective are 0.005-0.007% solutions of urea in solutions of potassium nitrate (1: 8000-10000) or in solutions of nitrate nat5: S532

ри  (1:10000-12000), или в раство- pax нитрата кальци  (1:12000-14000), или в растворах нитрата аммони  (1:13000-15000), причем активное(1: 10,000–12,000), or in solutions of calcium nitrate (1: 12,000–14,000), or in solutions of ammonium nitrate (1: 13,000–15,000), with active

5 выделение гельминтов наблюдаетс  через 72-120 ч после помещени  л гушек в растворы. С концентраци ми, вьгкод щими за пределы изложенных вьше, применение растворов мочевины5, the excretion of helminths is observed 72–120 hours after placing the hens in the solutions. With concentrations that exceed the limits outlined above, the use of urea solutions

10 в растворах солей нитратов не сопровождалось по:1ожительным эффектом. Применение растворов мочевины или растворов солей нитратов в указанных пределах,но не сочетанно,10 in nitrate salt solutions was not accompanied by: a positive effect. The use of urea solutions or solutions of nitrate salts within the specified limits, but not combined,

15 а раздельно, также не сопровождаетс  положительным эффектом.15 a separately, is also not accompanied by a positive effect.

Пример 1. Известными спосо-. бами готов т в стекл нной банке емкостью 3 л раствор нитрата кали Example 1. Known methods. Bami is prepared in a 3 l glass jar with a potassium nitrate solution.

20 при концентрации 1:8000. В этот же раствор добавл ют 0,05 г мочевины. В банку помещают 5 прудовых л гушек. В другую банку (контрольную) с 1 л дистиллированной воды указанных20 at a concentration of 1: 8000. To the same solution, 0.05 g of urea is added. In the jar is placed 5 pond l meatballs. In another jar (control) with 1 l of distilled water specified

25 химических реагентов не внос т, но помещают 5 таких же л гушек. Банки закрывают капроновыми крышками (в каждой имеетс  по 1 отверстию диаметром 1 см) и содержат при 18 С.25 chemical reagents are not added, but 5 of them are placed. The cans are covered with capron caps (each has 1 hole with a diameter of 1 cm) and are kept at 18 C.

30 Ведут наблюдени . Через 72 ч от начала опыта л гушки удал ют из банки, раствор сливают в кювету, провод т учет и сбор гельминтов. Затем раствор с кюветы выливают в сосуд и туда же30 Conducted. After 72 hours from the start of the experiment, the dried eggs are removed from the can, the solution is drained into a cuvette, and the recording and collection of worms is carried out. Then the solution from the cuvette is poured into the vessel and there too

35 помещают л гушек. Эту процедуру повтор ют через 96 и 120 ч. Через 72 ч из кишечника л гушки вьщелилс  1 гельминт, через 96 ч - 3 и через 120 ч - 2. В контрольном сосуде гель Q минты не обнаружены.35 put l dryers. This procedure is repeated after 96 and 120 hours. After 72 hours, 1 helminth expelled from the intestine of the nut, after 96 hours - 3 and after 120 hours - 2. In the control vessel Q gel no minutes were detected.

Пример 2,В стекл нную банку емкостью 3 л наливают 1 л дистиллированной воды, внос т 0,111 г нитрата кали  (раствор 1:9000), раствор ют , добавл ют 0,06 г мочевины, снова пер емедшвают, получают 0,006%-ный раствор мочевины в растворе нитрата кали . В контрольный сосуд наливают такую же воду, реактивов не внос т.Example 2: To a 3 liter glass jar was poured 1 liter of distilled water, 0.111 g of potassium nitrate (solution 1: 9000) was added, dissolved, 0.06 g of urea was added, and again transferred, a 0.006% solution was obtained. urea in a solution of potassium nitrate. The same water is poured into the control vessel, no reagents are added.

50 в оба сосуда помещают по 5 прудовых л гушек, банки закрывают капроновьп ш крьшжами с отверстием и выдерживают до 144 ч. Через каждые 24 ч ведут учет и сбор гельминтов, как изложено50 pond fishes are placed in both vessels, the jars are closed with a cap with holes and kept up to 144 hours. Every 24 hours they keep records and collection of helminths as stated

55 в примере 1. В опытном сосуде через 24 и 48 ч гельминты отсутствовали, через 72 ч их было 2, через 96 ч - 5, через 120 ч - 3 и через 144 ч - О,55 in example 1. In the experimental vessel, there were no worms after 24 and 48 hours, after 72 hours there were 2, after 96 hours - 5, after 120 hours - 3 and after 144 hours - O,

4545

т.е. за период опыта от 5 л гушек было получено 10 гельминтов, а в контроле 0.those. for the period of the experiment, 10 worms were obtained from 5 l of hens, and in control 0.

Пример 3. В контрольный и опытный сосуд наливают по 1 л дистил лированной воды. В опытный сосуд вно с т 0,1 г нитрата кали  и 0,07 г мочевины , после растворени  реагентов (очередность аналогична примеру 1) получают 0,007%-ный раствор мочевины в растворе нитрата кали  (1:10000). В контрольный сосуд реагенты не внос т . Затем в оба сосуда помещают по 5 прудовых л гушек. Учет и сбор гельминтов такой же, как и в примере 1. В опытном растворе быпо через 72, 96 и 120 ч соответственно 1,2 и t гельминтов, а в контроле гельминты отсутствовали.Example 3. One liter of distilled water is poured into the control and experimental vessels. In an experimental vessel with 0.1 g of potassium nitrate and 0.07 g of urea, after dissolving the reagents (as in Example 1), a 0.007% solution of urea in a solution of potassium nitrate (1: 10,000) is obtained. No reagents were added to the control vessel. Then in both vessels placed 5 pond l of meatballs. Accounting and collection of helminths is the same as in example 1. In the test solution, after 72, 96 and 120 hours, respectively, 1.2 and t helminths, and there were no helminths in the control.

Пример 4. В две стекл нные банки наливают по 1 л дистиллированной воды. В опытную банку добавл ют 0,1 г нитрата натри  и 0,05 г мочевины . В контрольный сосуд химические вещества не внос т. В обе банки по- мещают по 5 прудовых л гушек. Банки закрывают капроновыми крышками (в каждой крьшке имеетс  одно отверстие диаметром 1 см) и содержат при 18 С.Example 4. One liter of distilled water is poured into two glass jars. 0.1 g of sodium nitrate and 0.05 g of urea are added to the test jar. Chemicals were not added to the control vessel. 5 pond l of meatballs were placed in both banks. The cans are covered with capron lids (each hole has one hole with a diameter of 1 cm) and is kept at 18 C.

Через 72 ч от начала опыта л гушки из сосудов удал ют и ведут учет иAfter 72 hours from the start of the experiment, the lushies are removed from the vessels and they keep records and

j 10 f5 j 10 f5

20 S 20 s

00

сбор гельминтов. Затем л г-ушек возвращают в соответствующие сосуды и из кювет наливают раствор и воду. Эту операцию повтор ют через 96 и 120 ч от начала опыта. Через 72 ч бьшо собрано 2 гельминта, через 96 ч - 2, через 120 ч - 1, через 144 ч - 0. Б контроле гельминты не были обнаружены.collection of worms. Then l g-ears return to the appropriate vessels and pour the solution and water from the ditch. This operation is repeated 96 and 120 hours from the start of the experiment. After 72 hours, 2 worms were collected, after 96 hours - 2, after 120 hours - 1, after 144 hours - 2 worms were not detected.

Пример 5. Постановка опыта аналогична примеру 4, однако вместо нитрата натри  используют нитрат кальци  в концентрации 1:12000 и 0,005%-ный раствор мочевины. Дальнейший Ход опыта аналогичен изложенному в примере 4. В контрольном сосуде гельминтов не обнаружили, а в опытном растворе получено было 1 через 72 ч, 3 - через 96 ч, 1 через 120 ч и О через 144 ч.Example 5. The experiment was set up as in Example 4; however, instead of sodium nitrate, calcium nitrate was used at a concentration of 1: 12,000 and 0.005% urea solution. The further course of the experiment is similar to that described in example 4. In the control vessel no worms were found, and in the test solution 1 was obtained after 72 hours, 3 after 96 hours, 1 after 120 hours and O after 144 hours.

Пример 6. Постановка опыта аналогична примеру 4, однако вместо нитрата натри  используют нитрат аммони  при концентрации 1:1300 и 0,005%-ный раствор мочевины. Через 24,48,72,96,120 и 144 ч от начала опыта в опытном сосуде обнаружили соответственно 0,0,1,2,2 и О гельминтов , в контроле гельминты не обнаружены .Example 6. The experiment was set up as in Example 4; however, instead of sodium nitrate, ammonium nitrate was used at a concentration of 1: 1300 and 0.005% urea solution. Through 24,48,72,96,120 and 144 h from the beginning of the experiment in the experimental vessel, 0,0,1,2,2 and O helminths were found, respectively, in the control no helminths were found.

Claims (2)

1. СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ ЖИВЫХ ГЕЛЬМИНТОВ ИЗ ЛЯГУШЕК, отличающийся тем, что, с целью сохранения жизнеспособности лягушек, их помещают на 72-120 ч в 0,0050,007%-ный раствор мочевины в растворе нитрата.1. METHOD FOR ISOLATION OF LIVING HELMINTS FROM FROGS, characterized in that, in order to preserve the frogs viability, they are placed for 72-120 hours in a 0.0050.007% urea solution in a nitrate solution. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что из нитратов используют нитрат калия или нитрат натрия, или нитрат кальция, или нитрат аммония в концентрациях соответственно 1:8000-10000; 1:10000-12000; 1:12000-14000; 1:13000-15000. · с $ £ £ сл 00 сл сл 00 1 122. The method according to claim 1, characterized in that the nitrates use potassium nitrate or sodium nitrate, or calcium nitrate, or ammonium nitrate in concentrations respectively 1: 8000-10000; 1: 10000-12000; 1: 12000-14000; 1: 13000-15000. S $ £ £ ss 00 ss ss 00 1 12
SU853891828A 1985-04-30 1985-04-30 Method of separating live helminths from frogs SU1253553A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU853891828A SU1253553A1 (en) 1985-04-30 1985-04-30 Method of separating live helminths from frogs

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU853891828A SU1253553A1 (en) 1985-04-30 1985-04-30 Method of separating live helminths from frogs

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1253553A1 true SU1253553A1 (en) 1986-08-30

Family

ID=21175866

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU853891828A SU1253553A1 (en) 1985-04-30 1985-04-30 Method of separating live helminths from frogs

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1253553A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103719016A (en) * 2013-12-19 2014-04-16 重庆市陈邱雨虎纹蛙养殖场 Cluster balanced group-feeding cultivation method of frogs

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Котельников Г.А. Гельминтологические исследовани животных и окружающей среды. - М.: Колос, 1984, с.94-95. Щербина А.К.Болезни рыб,- Киев: Урожай, 1973, с.206-220.. Ершов B.C. и др. Паразитологи и инвазионные болезни сельскохоз йственных животных. М.: 1959. с.34. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103719016A (en) * 2013-12-19 2014-04-16 重庆市陈邱雨虎纹蛙养殖场 Cluster balanced group-feeding cultivation method of frogs
CN103719016B (en) * 2013-12-19 2015-10-14 重庆市陈邱雨虎纹蛙养殖场 The poly-nourishment maintenance culturing method of batrachia group taxis balance

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Roberts et al. Methods for egg counts and larval cultures for strongyles infesting the gastro-intestinal tract of cattle
Muscatine et al. Symbiosis of hydra and algae. I. Effects of some environmental cations on growth of symbiotic and aposymbiotic hydra
Steele et al. The biology of Gammarus (Crustacea, Amphipoda) in the northwestern Atlantic. VII he duration of embryonic development in five species at various temperatures
WO2016196729A1 (en) Methods and kits for determining sediment and pore water toxicity with dormant and developing zooplankton and other species having a dormant life stage
Renn Bacteria and the phosphorus cycle in the sea
KR100794876B1 (en) Method for producing free swimming Artemia nauplii and packaged cysts for use in that method
SU1253553A1 (en) Method of separating live helminths from frogs
Cutress et al. Development of the Cubomedusae Carybdea marsupialis
Fournier Some implications of nutrient enrichment of different temporal stages of a phytoplankton community
Moore et al. Studies of photo-synthesis in marine algæ.—1. Fixation of carbon and nitrogen from inorganic sources in sea water. 2. Increase of alkalinity of sea water as a measure of photo-synthesis
Anderson Aquatic invertebrates in tolerance investigations from Aristotle to Naumann
Verma et al. Toxicity of distillery wastes to Puntius sophore (HAM.) and Mystus Vittatus (BLOCH)(Pisces, Cyprinidae, Bagridae) Part 3: Bioassay studies and TLm determination
Newell et al. Effect of temperature on the hatching time of Tricorythodes minutus (Ephemeroptera: Tricorythidae)
Olson Timing of developmental events in Artemia salina (L.)(Anostraca)
RU2139047C1 (en) Preparation for diagnosing animal and poultry parasitoses, method of preparation and utilization thereof
Birge et al. The Plankton: Its quantity and chemical composition. I
SU1391557A1 (en) Method of separating immature forms of trematodes from mollusks
Hanson The effects of versene on dividing sea urchin eggs
Finucane et al. Counts of red tide organisms, Gymnodinium breve, and associated oceanographic data from Florida west coast, 1954-57
Quinn et al. The relationship between pond bottom type and growth rate of western painted turtles Chrysemys picta belli in Iowa, a preliminary report
Vivekanandan Effects of the pO2 on swimming activity and food utilization in ophiocephalus striatus
RU2054171C1 (en) Method for primary selection of materials that have projective features
Petrocelli et al. Controlled food-chain transfer of dieldrin residues from phytoplankters to clams
SU381336A1 (en) METHOD FOR ASSESSING THE TOXICITY OF CHEMICAL SUBSTANCES FOR WATER ORGANISMS
SU1430017A1 (en) Method of extracting live snails, helminths and infusoria from common pond snail for laboratory studies