SU1208511A1 - Method of determining hydrophobic compounds in biological fluids - Google Patents
Method of determining hydrophobic compounds in biological fluids Download PDFInfo
- Publication number
- SU1208511A1 SU1208511A1 SU833671200A SU3671200A SU1208511A1 SU 1208511 A1 SU1208511 A1 SU 1208511A1 SU 833671200 A SU833671200 A SU 833671200A SU 3671200 A SU3671200 A SU 3671200A SU 1208511 A1 SU1208511 A1 SU 1208511A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- biological fluids
- hydrophobic compounds
- luciferase
- determining
- determining hydrophobic
- Prior art date
Links
Description
Изобретение относитс к биохимии и медицине и может быть использовано дл определени гидрофобных соеднений в биологических жидкост х, например, при осуществлении контро™ л за трансформацией и накоплением в организме человека лекарственных средств по накоплению их в -биологи™ ческих жидкост х.The invention relates to biochemistry and medicine and can be used to determine the hydrophobic compounds in biological fluids, for example, when making control of the transformation and accumulation in the human body of drugs for their accumulation in biological fluids.
Цель изобретени - повышение чувствительности определени .The purpose of the invention is to increase the detection sensitivity.
Пример К Сначала получают бактериальную люциферазу следующим образом.Example K First, bacterial luciferase is obtained as follows.
Культуру Photobacterium fischeri № 6 tiry, растущую на твердой среде следующего сост; ава5 вес.%: морска вода 38, пептон ; м со«пептонный бульон 8; агар-агар 2; дистиллированна вода остальное, высеивают в жидкую среду состава,вес.%: 0,75 О,1; ( NH,)jHP04 0,05; 0,G1| пептон 1; NаС1 28; дистиллированна вода остальное, рН 7,4; через 11ч 200 мл культуры стерильно перено с т в ферментер емкостью 10 л с той же самой средой и осуществл ют, ферментацию 9 ч при контроле и поддержании посто нным рН среды (7,0) и уровн растворенного кислорода (10% от насыщени ) при 22 С. По окончании фермен-тации клетки отдел ют от культуральной жидкостиThe culture of Photobacterium fischeri No. 6 tiry, growing on solid medium of the next comp; ava5 wt.%: sea water 38, peptone; m with peptone broth 8; agar-agar 2; distilled water the rest, sown in a liquid medium composition, wt.%: 0,75 O, 1; (NH) jHP04 0.05; 0, G1 | peptone 1; NaC1 28; distilled water else, pH 7.4; after 11 hours, 200 ml of the culture was sterile transferred to a 10 liter fermenter with the same medium and fermented for 9 hours while controlling and maintaining the pH of the medium (7.0) and the level of dissolved oxygen (10% of saturation) constant 22 C. At the end of the fermentation, the cells are separated from the culture fluid.
центрифугированием при 25000 а хby centrifugation at 25,000 x
jj
X 30 мин и разрушают лизисом в калий-натрий - фосфатном буфере 0,02 М, рН 7,0 с дитиотрейтолом с помощью Тритон X-100 в качестве детергента в количестве 0,5% от веса клеток в течение 40 мин при 17°С с последующей обработкой ультразвуком 22 кГц X 2 мин. (3 0,6 А, прибор УДЗ-l). Буфер добавл ют в соотношении 4:1 (объем/вес клеток), Крупные частицы удал ют центрифу-- гированием при 105 000g х 1 ч. За- провод т дробное осаждение белков сульфатом аммони в диапазоне 40--75% от насыщени . Осадок раст- вор ют в 50 МП ./Na - фосфатного буфера Гсостав тот же) , нанос т на колонку с сефадексом Ч 10 дл быстрого диализа, затем активную фракцию нанос т на колонку с сефадексом о -100 дл очистки от балласта низко- и-высокомолекул рных соединений . Полученный препарат люцифеX 30 min and destroy the lysis in potassium-sodium phosphate buffer 0.02 M, pH 7.0 with dithiothreitol using Triton X-100 as a detergent in the amount of 0.5% by weight of the cells for 40 min at 17 ° C followed by sonication 22 kHz x 2 min. (3 0.6 A, device UDZ-l). The buffer is added in a ratio of 4: 1 (volume / weight of the cells). Large particles are removed by centrifugation at 105,000 x 1 h. Fractional precipitation of proteins with ammonium sulfate in the range of 40–75% of saturation is carried out. The precipitate is dissolved in 50 MP ./Na - phosphate buffer (composition is the same), applied to a Sephadex X 10 column for rapid dialysis, then the active fraction is applied to a Sephadex o -100 column to remove low-grade ballast and - high molecular weight compounds. The resulting drug lucife
5five
разы перевод т в летучий буфер - триэтиламин - НС 1 0,01М, рН 8,8 а затем лиофилизируют. Окончательный продукт люцифераза имеет степень очистки в 120 раз по активности с никотинамидадениндинуклеоти- дом и удельную активность 2,010 квант/с мг белка. Он стабилен при хранении при в течение двух лет.The times are converted to volatile buffer triethylamine-HC 1 0.01 M, pH 8.8 and then lyophilized. The final product luciferase has a purification degree 120 times its activity with nicotinamide adenine dinucleotide and a specific activity of 2.010 quantum / s mg protein. It is stable when stored for two years.
У пациента производ т отбор смешанной слюны и определ ют вли ние слюны на ферментативную активность. Измер ют на фотометре интенсивность свечени пробы объемом 1 мл (величинаIn a patient, mixed saliva is sampled and the effect of saliva on the enzymatic activity is determined. The luminescence intensity of a 1 ml sample was measured on a photometer (
а„but"
контроль/,, которую получа0control / which you received0
5five
00
5five
00
5five
ют дббавлением 0,3 мп воды х 0,7 мп 0,02 М калий-натрий-фосфатного буOthey are dbbavleniem 0.3 mp water x 0.7 mp 0.02 M potassium sodium phosphate buO
5five
фера, рН 7,0, содержащего 5 10 М октаналь, 2 IO- М восстановленный никотинамидадениндинулкеотид (НАДН), 5 -10 М флавинмононуклеотид (ФМН) и 0,1 мг/мл люциферазы, Б опытной пробе вместо воды добавл ют 0,3 мл смешанной слюны, величина П , опыт . Пациенту ввод т амино- пирин в дозе 0,15 мг/кг веса и через 2,4, 20 и 24 ч измер ют интенсивность свечени . Величину инги- биторного i эффекта оценивают поPhera, pH 7.0, containing 5 10 M octanal, 2 IO-M reduced nicotinamide adenine dinulkeotide (NADH), 5 -10 M flavin mononucleotide (FMN) and 0.1 mg / ml luciferase, B to the experimental sample instead of water, add 0.3 ml of mixed saliva, the value of P, experience. Aminopirine is administered to the patient at a dose of 0.15 mg / kg of body weight and after 2.4, 20 and 24 hours the luminous intensity is measured. The magnitude of the inhibitory i effect is estimated by
формуле X 100%. Formula X is 100%.
.Данные приведены в табл.1.. The data are given in table.1.
Как видно из табл.1, после приема аминопирина в слюне наблюдаетс накопление лекарства и увеличиваетс ингибирующ й эффект.- За степенью утилизации лекарства можно следить по уменьшению величины ингибирова- ни свечени .As can be seen from Table 1, after taking aminopyrin, accumulation of the drug is observed in the saliva and the inhibitory effect increases. The degree of utilization of the drug can be monitored by reducing the amount of inhibition of luminescence.
Пример2. У пациента производ т отбор смешанной слюны до и после введени 0,5 г/кг веса этазо- ла и измер ют вли ние 0,03 мл смешанной слюны на свечение ферментативной системы, содержащей в 0,02 М калий-натрий-фосфатный буфер , октаналь, 10 МНАДН, 0,02 мг/мл люциферазы и 10 М ФМН (конечный объем пробы 1 мл.Example2. In a patient, mixed saliva is sampled before and after the administration of 0.5 g / kg of ethazol weight, and the effect of 0.03 ml of mixed saliva on the luminescence of the enzyme system containing 0.02 M potassium sodium phosphate buffer is measured. Octanal, 10 MNADH, 0.02 mg / ml luciferase and 10 M FMN (final sample volume 1 ml.
Оценку ингибиторного эффекта провод т как в примере 1.The evaluation of the inhibitory effect is carried out as in Example 1.
Результаты анализа действи лекарства приведены в табл.2.The results of the analysis of the effect of the drug are given in Table 2.
Как видно из табл.2, введение этазола приводит к увеличению инги- бированй ферментативной люминесцентной системы образцами смешаннойAs can be seen from Table 2, the introduction of etazol leads to an increase in the inhibition of the enzymatic luminescent system by samples of mixed
слюны. Из этих данньк видна эффективна трансформаци лекарственного соединени в организме человека .saliva. From these data, effective transformation of the drug compound in the human body is visible.
Приме рЗ.У пациента производ т отбор смешанной слюны до и после введени 0,5 г этазола и измер ют вли ние 0,2 мл смешанной слю-An example of an RHL. A patient takes a sample of mixed saliva before and after the administration of 0.5 g of etazole, and the effect of 0.2 ml of mixed saliva is measured.
l,mVl mV
% ингибирова- ни % inhibition
420420
I, mV % ингибировани I, mV% inhibition
932 177 251 326 484 783 81 73 65 48 16932 177 251 326 484 783 81 73 65 48 16
ВНИИПИ Заказ 284/56VNIIPI Order 284/56
Лишал ПШ Патент, г,Ужгород, ул.Проектна , 4.Lishal PSh Patent, Uzhgorod, Proektna St., 4.
114114
ны на свечение ферментативной системы (конечный объем 1 мп), содержащей 5 октаналь, 5 НДЦН, 0,4 мг/мл люциферазы и 5 10 М ФМН. Оценку ингибиторного эффекта провод т как в примере 1.on the luminescence of the enzyme system (final volume 1 mp) containing 5 octanal, 5 NDCN, 0.4 mg / ml luciferase and 5 10 M FMN. The evaluation of the inhibitory effect is carried out as in Example 1.
Результаты анализа действи эта- зола приведены в табл.3.The results of the analysis of the action of ethanol are given in Table 3.
Таблица 1Table 1
222 285 386 411222,285,386,411
4747
3232
Тираж 778 ПодписноеCirculation 778 Subscription
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU833671200A SU1208511A1 (en) | 1983-12-08 | 1983-12-08 | Method of determining hydrophobic compounds in biological fluids |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU833671200A SU1208511A1 (en) | 1983-12-08 | 1983-12-08 | Method of determining hydrophobic compounds in biological fluids |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1208511A1 true SU1208511A1 (en) | 1986-01-30 |
Family
ID=21092378
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU833671200A SU1208511A1 (en) | 1983-12-08 | 1983-12-08 | Method of determining hydrophobic compounds in biological fluids |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1208511A1 (en) |
-
1983
- 1983-12-08 SU SU833671200A patent/SU1208511A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Высоцкий Е.С., Закорукв В.В., Межевикин В.В., Микробиологи , 1981, т.50, с.985-991.. . * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Mao et al. | Mode of inhibition of herpes simplex virus DNA polymerase by phosphonoacetate | |
Krebs et al. | The effect of citrate on the rotation of the molybdate complexes of malate, citramalate and isocitrate | |
Nigrelli et al. | Some biological characteristics of holothurin | |
US20050164173A1 (en) | Combined treatments and methods for treatment of mycoplasma and mycoplasma-like organism infections | |
Levinson et al. | Effect of antabuse (disulfiram) on Rous sarcoma virus and on eukaryotic cells | |
Chu | Enzymic action of viruses and bacterial products on human red cells | |
Matzanke et al. | Hydroxamate siderophore mediated iron uptake in E. coli: stereospecific recognition of ferric rhodotorulic acid (1) | |
US4264729A (en) | Method and reagent for detecting cancerigenic and anticancerous substances | |
Dittmer et al. | The Inhibition of Microbiological Growth by Allylglycine, Methallylglycine and Crotylglycine1, 2 | |
Dien et al. | Some inhibitory interrelationships among leucine, isoleucine and valine | |
SU1208511A1 (en) | Method of determining hydrophobic compounds in biological fluids | |
Shizuta et al. | Regulation of biodegradative threonine deaminase synthesis in Escherichia coli by cyclic adenosine 3', 5'-monophosphate | |
Iwahara et al. | Some properties of avidin-uncombinable unknown biotin-vitamer produced by Bacillus sp. and its role in biosynthesis of desthiobiotin | |
Maresca et al. | Respiration in the yeast and mycelial phases of Histoplasma capsulatum | |
Miller | Studies on an interaction among serum protein, materials containing intrinsic factor and vitamin B12 | |
RU2315113C2 (en) | Method for diagnosis of sensitivity of mycobacterium tuberculosis to antituberculosis preparations | |
Bellion et al. | Catabolite repression of isocitrate lyase in methylamine-grown Pseudomonas MA: Effect of carbon and nitrogen sources | |
Pogo | Specific inhibition by rifampicin of transcription in human lymphocytes stimulated by phytohemagglutinin | |
McDANIEL et al. | Purification and characterization of phosphoenolpyruvate carboxylase from Plasmodium berghei | |
Rugstad | Kininase production by some microbes | |
Meinhof | Demonstration of typical features of individual Candida albicans strains as a means of studying sources of infection | |
Rosenfeld et al. | Studies on the Metabolism of Leptospira | |
RU2006224C1 (en) | Membrane-stabilization and antioxidant medicinal agent | |
Levin et al. | Comparison of the effects of two lipophilic acids, hexachlorophene and decanoate, on Bacillus subtilis | |
CN114306584B (en) | Application of proteinase K and complex enzyme thereof in preparation of virus inhibitor |