SU1205913A1 - Method of making immunofermental analysis - Google Patents
Method of making immunofermental analysis Download PDFInfo
- Publication number
- SU1205913A1 SU1205913A1 SU843724704A SU3724704A SU1205913A1 SU 1205913 A1 SU1205913 A1 SU 1205913A1 SU 843724704 A SU843724704 A SU 843724704A SU 3724704 A SU3724704 A SU 3724704A SU 1205913 A1 SU1205913 A1 SU 1205913A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- analysis
- immunofermental
- making
- concentration
- hydrogen peroxide
- Prior art date
Links
Description
Изобретение относитс к медицине и биологической химии, в частности к иммуноферментным способам определени биологически активных веществ в сыворотке крови или другом биоло- гическом материале, и может быть использовано в клиникодиагностических лаборатори х и предпри ти х Мин- медпрома.The invention relates to medicine and biological chemistry, in particular to enzyme immunoassay methods for the determination of biologically active substances in blood serum or other biologic material, and can be used in clinical diagnostic laboratories and enterprises of the Ministry of Medical Industry.
Цель изобретени - повьппение чувс вительности, упрощение и сокращение времени исследовани при детектировании результатов иммуноферментного анализа.The purpose of the invention is to increase the sensitivity, simplify and reduce the time of the study when detecting the results of the ELISA analysis.
Способ осуществл етс следующим образом.The method is carried out as follows.
I Иммуноферментное определение аспарагиназы.I immunoassay determination of asparaginase.
Количественное определение аспарагиназы провод т пр мьм конкурентным методом. В лунки планшетов дл иммунологических реакций внос т по 100 мкл -глобулиновой фракции антител против аспарагиназы, содержащей 0,1 мг/мл белка. Планшеты инкубируют 18 ч при С, затем провод т п тикратную промывку забуферен- ным физиологическим раствором при рН 7,4. В лунки, содержащие иммо- . билизованные антитела . внос т по 150 мкл анализируемой пробы и конью- гата аспарагиназы с пероксидазой, соответствующего 10 мкг/мл нативной, пероксидазы. После трехчасовой инку- бации при 37 С лунки оп ть отмывают физиологическим раствором при рН 7 содержащим неионный детергент (0,05% тритона X - 100). В отмытые лунки внос т по 150 мкл субстратной смеси, содержащей 0,2 ммоль перекиси водорода и 0,75 ммоль йодистого кали , приготовленной в 0,1 М натрий- ацетатном буфере при рН 3,8 с 0,1 М добавкой хлористого кали . После 15-минутной инкубации при комнатной температуре 100 мкл пробы с помощью ;автоматического микродозатора ввод в проточный амперометрический датчиQuantitative determination of asparaginase was carried out using a competitive method. 100 μl of a -globulin fraction of antibodies against asparaginase containing 0.1 mg / ml protein are added to the wells of the plates for immunological reactions. The plates are incubated for 18 hours at C, then they are washed five times with buffered saline at pH 7.4. In the wells containing immo. bilized antibodies. make 150 µl each of the sample to be analyzed and asparaginase conjugate with peroxidase corresponding to 10 µg / ml of native peroxidase. After a three-hour incubation at 37 ° C, the wells are again washed with physiological saline at pH 7 containing non-ionic detergent (0.05% Triton X-100). 150 µl of substrate mixture containing 0.2 mmol of hydrogen peroxide and 0.75 mmol of potassium iodide prepared in 0.1 M sodium acetate buffer at pH 3.8 with 0.1 M potassium chloride is added to the washed wells. After a 15-minute incubation at room temperature, 100 μl of the sample using; an automatic microdosing device; enter into the flow amperometric sensor
В датчике продукт ферментативной реакции - молекул рньй иод, электро восстанавлива сь на поверхности индкаторного электрода, вызывает по влние тока во внещней цепи датчика, величина которого пропорциональна концентрации св занной с твердой фазой пероксидазной метки. Установлено , что линейный участо зависимости катодного тока от конIn the sensor, the product of the enzymatic reaction — pn – iodine molecules, electrically recovering on the surface of the indicator electrode, causes the appearance of a current in the external circuit of the sensor, the value of which is proportional to the concentration associated with the solid phase peroxidase label. It has been established that the linear portion of the dependence of the cathode current on the end
5five
00
0 0
центрации пероксидазы (фермента-маркера ) наблюдаетс в интервале концентраций 1-10 - 1 10 М.- Коэффициент чувствительности около I. IO мкА/ммоль. Число проб, анализируемых с помоп1ью проточного ампер- метрического датчика в 1 ч, равно60-80.peroxidase concentration (marker enzyme) is observed in the concentration range 1-10 - 1 10 M. - Sensitivity factor is about I. IO μA / mmol. The number of samples analyzed with the aid of a flow ampere sensor per hour is 60-80.
Предложенньш способ позвол ет определ ть до 25 нг/мл аспарагиназы (210 М) в сыворотке крови объемом 50 мкл, дает возможность работать в кинетическом режиме и в 3-5 раз снижает врем измерений.The proposed method allows to determine up to 25 ng / ml of asparaginase (210 M) in serum with a volume of 50 µl, makes it possible to work in the kinetic mode and reduces the measurement time by 3-5 times.
Результаты определени аспарагиназы в модельных растворах приведены в табл.IThe results of the determination of asparaginase in model solutions are given in Table I.
П р им е р. Иммуноферментное определение кроличьих антител против вируса Х-картофел .PRI im p Immunoenzyme determination of rabbit antibodies against X-potato virus.
В основу метода положен сэндвич- метод, который осуществлен по следующей схеме. 0,2 мл пробы очищенно- 1РО вируса (100 мкг/мл) внос т в лун- и полистироловых плат, инкубируют 5 при 4°С в течение 18 ч. Отмывают три аза 0,01 М калий-фосфатным буфером при рН 7,4, содержащем 0,05% детер5The method is based on the sandwich method, which is implemented according to the following scheme. 0.2 ml samples of purified 1PO virus (100 µg / ml) are added to the moon and polystyrene plates, incubated with 5 at 4 ° C for 18 hours. Washed three times with 0.01 M potassium phosphate buffer at pH 7, 4, containing 0.05% of detey5
00
5five
00
5five
гента Твин-20. Последовательно ин-- кубируют иммобилизованный препарат с различными разведени ми исследуемой сыворотки при 37°С в течение 1 ч, а затем, с меченой пероксидазой JgG фракцией ослиной антикроличьей сьшо- ротки (5000 нг/мл). Отмывку лунок в процессе анализа провод т 0,01 М калий-фосфатным буфером, содержащим 0,1 М хлористый натрий и 0,05% детергента Твин-20. После отмывки количество сорбированного иммуноферментного комплекса определ ют амперметри- чески. Б лунки добавл ют 150 мкл суб- стр атной смеси, содержащей 0,4 ммоль перекиси водорода и 1,5 ммоль йодистого кали , приготовленной в О,1 М натрий-ацетатном буфере при 4,2 с О,ГМ добавкой хлористого кали .ПослеGenta Twin-20. The immobilized preparation is sequentially injected with various dilutions of the test serum at 37 ° C for 1 h, and then, with the JgG peroxidase-labeled donkey anti-rabbit fraction (5000 ng / ml). During the analysis, the wells were washed with 0.01 M potassium phosphate buffer containing 0.1 M sodium chloride and 0.05% Tween-20 detergent. After washing, the amount of the sorbed immunoassay complex is determined ampermetrically. 150 μl of a substitute mixture containing 0.4 mmol of hydrogen peroxide and 1.5 mmol of potassium iodide prepared in O, 1 M sodium acetate buffer at 4.2 s O, GM with potassium chloride is added to the wells.
.15-минутной инкубации при комнатной температуре 1 ООмкл пробы с помощью автоматического микродозатора ввод т в проточный амперометрический датчик. Результаты, полученные предлагаемым способом,сравнимы по чувствитель ности с даннымиспе :трофотометоичес- кой регистрации и значительно проще.A 15-minute incubation at room temperature. 1 OOmcl of the sample is introduced into the flow-through amperometric sensor using an automatic microbatcher. The results obtained by the proposed method are comparable in sensitivity with the data: trophotometric recording and much simpler.
Сравнительна характеристика электрохимических способов проведени иммуноферментного анализа (ИФА) пред- ставлена в табл. 2.A comparative description of the electrochemical methods for enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) is presented in Table. 2
J + 2е -« 2 J (восстановление)J + 2e - “2 J (recovery)
Двухэлектродна система с гальваническим режимомTwo-electrode system with galvanic mode
Диапазон определ емых концентраций продукта ферментативной реакцииThe range of detectable concentrations of the product of the enzymatic reaction
или 0,5 нг/мл пероксидазыor 0.5 ng / ml peroxidase
Сц I-IO Sc I-IO
Нижний предел опреде- Сн 0,025 мкг/мл лени антигена (антител) (L аспарагиназа)Lower Limit of Determination: 0.025 μg / ml of antigen laziness (antibodies) (L asparaginase)
Врем измерени Measurement time
40 с40 s
Редактор А. КозоризEditor A. Kozoriz
Составитель В. ДроздовCompiled by V. Drozdov
Техред М.Надь Корректор С. ШекмарTehred M.Nad Corrector S. Shekmar
Заказ 8583/7ТиражПодписноеOrder 8583/7 Circulation Subscription
ВНИШ1И Государственного комитета СССРVNISH1I USSR State Committee
по делам изобретений и открытий 113035, Москва, Д-35, Раушска наб., д. А/5for inventions and discoveries 113035, Moscow, D-35, Raushsk nab., d. A / 5
Лилиал ППП Патент, г. Ужгород, ул. Проектна , 4Lilial PPP Patent, Uzhgorod, st. Project, 4
Таблица 1Table 1
НАДН- НАД +2е +Н (окисление)NADH-NAD + 2e + H (oxidation)
Трехэлектродна система с наложенным потенциалом +0,75В.отн. Ag/AgClThree-electrode system with a superimposed potential of + 0.75V. Ag / AgCl
8,7- Ю - 1,75-1б моль/л (по НАДН)8.7- Yu - 1.75-1b mol / l (according to NADH)
CH 2,5 мкг/мл (фенитоий)CH 2.5 µg / ml (phenytoy)
180 с .180 s.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU843724704A SU1205913A1 (en) | 1984-04-13 | 1984-04-13 | Method of making immunofermental analysis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU843724704A SU1205913A1 (en) | 1984-04-13 | 1984-04-13 | Method of making immunofermental analysis |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1205913A1 true SU1205913A1 (en) | 1986-01-23 |
Family
ID=21112851
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU843724704A SU1205913A1 (en) | 1984-04-13 | 1984-04-13 | Method of making immunofermental analysis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1205913A1 (en) |
-
1984
- 1984-04-13 SU SU843724704A patent/SU1205913A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Clin Chem. 28,9, p.1848-1851 * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Siedel et al. | Reagent for the enzymatic determination of serum total cholesterol with improved lipolytic efficiency. | |
CA1160566A (en) | Immunological determination method | |
Sun et al. | Electrochemical detection for horseradish peroxidase-based enzyme immunoassay using p-aminophenol as substrate and its application in detection of plant virus | |
JP2529677B2 (en) | Novel assay using fibrinogen as reagent | |
MXPA94006538A (en) | Immunoassayo de complementacion enzimaticaelectroquim | |
EP0256851A2 (en) | Electrochemical assay for haemoglobin | |
JPS61240163A (en) | Method of testing cis-diol or glycocylated hemoglobin and reagent for test used for said method | |
EP0235153A1 (en) | Method for biochemical assay. | |
EP0455225B1 (en) | Method for measuring the percentage of glycation of a particular protein | |
CN102735849A (en) | Enzymatic chemiluminescence immunoassay method for human heart-type fatty acid binding protein and reagent kit | |
Solsky et al. | Ion-selective electrodes in biomedical analysis | |
Kurtinaitiene et al. | Amperometric immunosensor for diagnosis of BLV infection | |
Wehmeyer et al. | Liquid chromatography with electrochemical detection of phenol and NADH for enzyme immunoassay | |
US20060134608A1 (en) | Chemically amplified electrochemical detection of affinity reaction | |
SU1205913A1 (en) | Method of making immunofermental analysis | |
Shihabi et al. | Hemoglobin A2 quantification by capillary zone electrophoresis | |
Kayamori et al. | Enzymatic method for assaying calcium in serum and urine with porcine pancreatic alpha-amylase | |
CN109100519A (en) | Determining islet cell antibody kit and preparation method thereof | |
USRE39047E1 (en) | Luminescence by reacting an acridinium ester with superoxide | |
Sittampalam et al. | Enzyme immunoassays with electrochemical detection | |
JP3180415B2 (en) | New electrochemical measurement method | |
JP2543630B2 (en) | Measuring method of glycation ratio of specific protein | |
Toyoda et al. | Measurement of creatine kinase isoenzyme MB in serum with immunoseparation and electrochemical detection | |
Kirchhof et al. | Control of anticoagulant therapy with a chromogenic substrate | |
Carter et al. | Evaluation of a new enzymatic kit for serum triglycerides. |