SU1187835A1 - Method of affine chromatography of biologically active substances - Google Patents

Method of affine chromatography of biologically active substances Download PDF

Info

Publication number
SU1187835A1
SU1187835A1 SU833650787A SU3650787A SU1187835A1 SU 1187835 A1 SU1187835 A1 SU 1187835A1 SU 833650787 A SU833650787 A SU 833650787A SU 3650787 A SU3650787 A SU 3650787A SU 1187835 A1 SU1187835 A1 SU 1187835A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
molecular weight
biologically active
active substances
sorbent
chromatographed
Prior art date
Application number
SU833650787A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Михаил Иванович Болезнин
Елена Львовна Моисеева
Владислав Владимирович Смолянинов
Original Assignee
Всесоюзный научно-исследовательский институт прикладной микробиологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный научно-исследовательский институт прикладной микробиологии filed Critical Всесоюзный научно-исследовательский институт прикладной микробиологии
Priority to SU833650787A priority Critical patent/SU1187835A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1187835A1 publication Critical patent/SU1187835A1/en

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

1. СПОСОБ АФФИННОЙ ХРОМАТОГРАФИИ виологачЕски АКТИВНЫХ ввищств отличающийс  тем, что, с целью ускорени  способа, комплекс лиганд-аффинант хроматографируют на сорбенте при, градиенте концентрации соли 0,02-1,5 М. 2. Способ по П.1, отличающийс  тем, что, с целью повьшени  степени чистоты, целевой продукт хроматографируют на сорбенте, у которого молекул рна  масса исключени  равна молекул рной массе лиганда, а нижний предел разрешени  равен молекул рной массе аффинанта.1. METHOD OF AFFINE CHROMATOGRAPHY viologuSkI ACTIVE vizvchstv characterized in that, in order to accelerate the method, the complex ligand-affinant is chromatographed on a sorbent at a salt concentration gradient of 0.02-1.5 M. that, in order to increase the purity, the target product is chromatographed on a sorbent, in which the exclusion molecular weight is equal to the molecular weight of the ligand, and the lower resolution limit is equal to the molecular weight of the affinant.

Description

0000

||

с ооwith oo

О1O1

Изобретение относитс  к биохимии, в частности к способам получени  и ОЧР1СТКИ макромолекул из микробиологического и другого вида сырь .The invention relates to biochemistry, in particular, to methods for the production and EFFICIENCY of macromolecules from microbiological and other types of raw materials.

Целью изобретени   вл етс  ускорение способа, повьппение степени чистоты целевого продукта.The aim of the invention is to accelerate the process by increasing the purity of the target product.

П р и м е р. 1. Колонку 2,5 Я 95см с Сфероиом 1000 (пределы разрешени  по мол.м. дл  белков 800000-5000000) уравновешивали 1,5 л 20 мМ Трис-НС1 буфера, рН 7,5, содержащего 1,5 М КС1 Затем в колонку вводили линейный градиент концентрации КС1 от 1,5 до 0,1 М (160 мл) со скоростью 70 мл/ч. 3 мл раствора альбумина (20 мг) в . 0 мМ Трис-НС1 буфере рН 7,5, содержащем О,1 М КС1 и 60 мг голубого декстрана (мол.м. 2000000), наносили на колонку вслед за градиентом соли и промывали 10 мМ Трис-НС1 буфером, рН 7,5 - 0,1 М КС1. Профиль элюции альбумина показан на фиг.1. Дл  сравнени  показан профиль элюции альбумина , полученный при хроматографии его без голубого декстрана. На фиг.2 показана денситограмма, полученна  после электрофореза альбумина до и после очистки указанным способом.PRI me R. 1. A column of 2.5 I 95 cm with Spheroi 1000 (resolution mol. M. For proteins 800000-5000000) was equilibrated with 1.5 l of 20 mM Tris-HCl buffer, pH 7.5, containing 1.5 M KCl. Then in the column was injected with a linear concentration gradient KC1 from 1.5 to 0.1 M (160 ml) at a rate of 70 ml / h. 3 ml of albumin (20 mg) c. 0 mM Tris-HC1 buffer pH 7.5, containing O, 1 M KCl and 60 mg of blue dextran (mol.m. 2,000,000) were applied onto the column following the salt gradient and washed with 10 mM Tris-HC1 buffer, pH 7.5 - 0.1 M KS1. The albumin elution profile is shown in FIG. For comparison, the elution profile of albumin obtained by chromatography without blue dextran is shown. Figure 2 shows a densitogram obtained after electrophoresis of albumin before and after purification by this method.

Пример 2. Колонку 1,6jf 40 см с Toyopearl - 75Г (пределы разрешени  по мол.м. дл  белков 500000 50000000 ) уравновешивали 0,3 л 0,05 М натрий-ацетатным буфером (рН 4,0), содержащим 1,5 М КС1, со скоростью 60 мл/ч. Затем в колонку вводили градиент концентрации КС1 от 1,5 до 0,05 М (30 мл). 0,8 мл смеси, содержащей 3 мг ДНК тимуса теленка и 3,0 мг ДНКазы 1 в 0,05 М натрий-ацетатном буфере (рН 4,0), наносили на колонку вслед за градиентом соли и промывали 0,05 М натрий-ацетатным буфером (рН 4,0), содержащим 0,05 М КС1. Первой с колонки элюировалась ДНК, затем ДНКаза 1 (2,48 мг) и следом примеси, загр зн ющие препарат фермента.Example 2. A column of 1.6 jf 40 cm with Toyopearl-75G (resolution limits in mol.m. for proteins 500000 50000000) was equilibrated with 0.3 l of 0.05 M sodium acetate buffer (pH 4.0) containing 1.5 M KS1, with a speed of 60 ml / h. Then, a concentration gradient of KCl was introduced into the column from 1.5 to 0.05 M (30 ml). 0.8 ml of a mixture containing 3 mg of calf thymus DNA and 3.0 mg DNase 1 in 0.05 M sodium acetate buffer (pH 4.0) was applied onto the column after a salt gradient and washed with 0.05 M sodium acetate buffer (pH 4.0) containing 0.05 M KCl. DNA was first eluted from the column, then DNase 1 (2.48 mg) and a trace of impurity contaminating the enzyme preparation.

« vНапрабление электродуореза“V

Claims (2)

1. СПОСОБ АФФИННОЙ ХРОМАТОГРАФИИ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ; отличающийся тем, что, с целью ускорения способа, комплекс лиганд-аффинант хроматографируют на сорбенте при, градиенте концентрации соли 0,02-1,5 М.1. METHOD FOR AFFINITY CHROMATOGRAPHY OF BIOLOGICALLY ACTIVE SUBSTANCES; characterized in that, in order to accelerate the method, the ligand-affinity complex is chromatographed on a sorbent at a salt concentration gradient of 0.02-1.5 M. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что, с целью повышения степени чистоты, целевой продукт хроматографируют на сорбенте, у которого молекулярная масса исключения равна молекулярной массе лиганда, а нижний предел разрешения равен молекулярной массе аффинанта.2. The method according to claim 1, characterized in that, in order to increase the degree of purity, the target product is chromatographed on a sorbent in which the molecular weight of exclusion is equal to the molecular weight of the ligand, and the lower limit of resolution is equal to the molecular weight of the affinity. Ф0F0 СЛSL II
SU833650787A 1983-10-10 1983-10-10 Method of affine chromatography of biologically active substances SU1187835A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU833650787A SU1187835A1 (en) 1983-10-10 1983-10-10 Method of affine chromatography of biologically active substances

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU833650787A SU1187835A1 (en) 1983-10-10 1983-10-10 Method of affine chromatography of biologically active substances

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1187835A1 true SU1187835A1 (en) 1985-10-30

Family

ID=21084876

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU833650787A SU1187835A1 (en) 1983-10-10 1983-10-10 Method of affine chromatography of biologically active substances

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1187835A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
J.Biochem., 1982, 91,р. 1411-1417. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4264738A (en) Process for purification of proteolytic enzymes
US4683293A (en) Purification of pichia produced lipophilic proteins
BG60256B1 (en) RECOMBINANT METHOD FOR LYMPHOTOXIN
CA1185178A (en) Method for purifying interferon
JPH04228072A (en) Lipopeptideacylase
IE872714L (en) Purification of recombinant tumor necrosis factor
Morita et al. Crystallization and preliminary X-ray investigation of soybean β-amylase
Parmeggiani et al. Isolation and some properties of the amino acid polymerization factors from Escherichia coli
RU2054044C1 (en) Method of preparing human recombinant gamma-interferon without n-terminal methionine
SU1187835A1 (en) Method of affine chromatography of biologically active substances
AU594047B2 (en) Improvements in or relating to a process for purifying growth hormone-like materials
CA2047685A1 (en) Purified insulin mediators and purification process for same
Pearson et al. Isolation of the alpha and beta subunits of Escherichia coli succinyl coenzyme A synthetase and their recombination into active enzyme.
Henes et al. Simple one-step method for the preparation of highly purified formylmethionine transfer ribonucleic acid and methionine transfer ribonucleic acid from Escherichia coli
US4100028A (en) Method for purification of proteolytic enzymes
Pacaud Purification of protease II from Escherichia coli by affinity chromatography and separation of two enzyme species from cells harvested at late log phase
GB1487269A (en) Enzyme recovery method
Butler et al. The preparation of alcohol dehydrogenase and glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase from baker's yeast
MINATO et al. Crystallization of ribonuclease T1
AU618420B2 (en) A method for the selective cleavage of fusion proteins
RU93031156A (en) METHOD OF PERSONNEL
Brox et al. Inosine-5′-phosphate dehydrogenase of Aerobacter Aerogenes. Studies of tertiary structure
SU787464A1 (en) Method of preparing ribonucleases from aspergillus clavatus
KAWAKAMI et al. Subunit structure and tRNA-binding properties of Bombyx mori Glycyl-tRNA synthetase
KR920000051B1 (en) Method for purification of recombinant & interferon