SU1153669A1 - Способ гетерогенного иммуноферментного анализа антигена - Google Patents
Способ гетерогенного иммуноферментного анализа антигена Download PDFInfo
- Publication number
- SU1153669A1 SU1153669A1 SU843697951A SU3697951A SU1153669A1 SU 1153669 A1 SU1153669 A1 SU 1153669A1 SU 843697951 A SU843697951 A SU 843697951A SU 3697951 A SU3697951 A SU 3697951A SU 1153669 A1 SU1153669 A1 SU 1153669A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- antigen
- substrate
- sample
- target
- conjugate
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
СНОСОВ ГЕТЕРОГЕННОГО ИММУНОФЕРМЕНТНОГО АНАЛИЗА АНТИГЕНА, включающий получение коньюгата специфического антитела и фермента, присоединение определ емого антигена из образца и коньюгата к поверхности твердой фазы, проведение реакции с субстратом и определение количества антигена в образце визуальноили колориметрически , отличающийс тем, что, с целью повьшени чувствительности и уменьшени расхода субстрата, в качестве субстрата используют раствор соли пирофосфорной кислоты в концентрации 0,02-1 мМ. (Л
Description
Изобретение относитс к сельскому хоз йству и медицине и может быть использовано дл определени антигенов в биологических и других объектах .
Иммунологический метод анализа с использованием антител, меченных ферментом (иммуноферментный анализ), получает все большее распространение благодар простоте, высокой чувствительности и отсутствию необходимости работы с вредными дл здоровь веществами . Наиболее пшроко используетс метод гетерогенного иммунофермент- g ного анализа, при котором соединение антитела с ферментом (коньюгат) присоедин ют к поверхности твердой фазы Существующие способы гетерогенного иммуноферментного анализа различаютс , главным образом типом фермента, использованного дл получени коньюг та. Известны способы гетерогенного иммуноферментного анализа антигена с применением р-галактозидазы, пероксидазы , каталазы, глюкозоксидазы, амилазы и дЗ, 3-кетостероидизомеразы . Субстраты этих ферментов - сложны органические соединени , нестойкие при хранении. Визуальный анализ резу татов определени при низкой концентрации антигена обычно затруднен из-за невысокой интенсивности окраск или высокой величины фона. Наиболее близким по технической сущности вл етс способ гетерогенно го иммуноферментного анализа антиген включающий получение коньюгата специ фического антитела и фермента, присоединение определ емого антигена из образца и коньюгата к поверхности твердой фазы, проведение реакции с субстратом и определение количества антигена в образце визуально или колориметрически . В качестве субстрата в этом способе используют п-нитрофенилфосфат . Дл получени конвюгата специфического антитела и щелочной фо.сфатазы их смесь обрабатывают глутаровым альдегидом, после чего избыток последне1 О удал ют диализом или гельфильтрацией. Дл присоединени антигена к поверхности твердой фазы в пластмассовый сосуд помещают на не- gg сколько часов раствор специфического антитела, промывают сосуд буферным раствором, а затем помещают в него раствор образца, в котором требуетс
определить содержание антигена. Последний присоедин етс к стенкам сосуда в результате взаимодействи с адсорбированными на них специфическими антителами. Затем в сосуд помещают раствор коньюгата специфического антитела с щелочной фосфатазой, в результате чего коньюгат св зываетс с антигеном в количестве, пропорциональном содержанию последнего в образце . После этого прибавл ют раствор субстрата, п-нитрофенилфрсфата и инкубируют с ним. Продуктом ферментативной реакции вл етс п-нитрофенол. количество которого измер ют колориметрически при 405 нм. При количественном определении используют калибровочный график, который получают, бер вместо образца растворы антигена известной концентрации. Качественно присутствие антигена в образце определ ют визуально по по влению желтой окраски. Однако недостатком способа вл етс невыска чувствительность, что св зано с тем, что продукт реакции, п-нитрофенол, имеет невысокий коэффициент экстинкции (15000 ), и возникающа желта окраска плохо воспринимаетс визуально. Допустимый срок хранени субстрата в растворенном виде составл ет около 1 недели, в твердом виде субстрат заметно разлагаетс даже при хранении при пониженной температуре, что приводит к возрастанию фона. При определении активности щелочной фосфатазы использз т высокую концентрацию субстрата (Ю мМ), что св зано с высоким значением константы Михаэлиса (1-3 мМ), Целью изобретени вл етс повышение чувствительности и уменьшение расхода субстрата. Поставленна цель в способе гетеро- генного иммуноферментного анализа антигена , включающем получение коньюгата специфического антитела и фермента, присоединение определ емого антигена из образца и коньюгата к поверхности твердой фазы, проведение реакции с субстратом и определение количества антигена в образце визуально или колориметрически , достигаетс тем, что в качестве субстрата используют раствор соли пирофосфорной кислоты в концентрации 0,02-1 мМ. Таким образом, сущность изобрете-. ни заключаетс в использовании раствора соли пирофосфорной 5сислоты вместо п-нитрофенилфосфата. Продуктом ферментативной реакции в описываемом способе вл етс ортофосфат дл определени которого используетс цветна реакци , изменение коэффициента, экстинкции дл которой составл ет около 70000 М см , что в 4,6 раз BbiBie, чем дл п-нитрофенола. Поэтому , несмотр на то, что скорость образовани ортофосфата из соли пирофосфорной кислоты равна 40% скорости образовани п-нитрофенола из п-нитрофенилфосфата , измер ема оптическа плотность в описываемом, способе в 1,8 раза вьше. Кроме того измер ема окраска измен етс от бледно-желтой в отсутствии определ емого антигена до рко-синей в его присутствии, что наиболее благопри тно дл визуальной оценки результатов анализа. В сумме эти два фактора значительно увеличивают чувствительность определени , особенно при качественном анализе наличи низких концентрацией определ емого , антигена. Соль пирофосфорной -КИСЛОТЫ, используема в качестве субстрата, устойчива неограниченное врем в твердом состо нии, до 1 года в растворе при °С и до 2 мес цев в растворе- при комнатной температуре. Константа Михаэлиса дл щелочной фосфатазы по пирофосфат-иону составл ет около 15 мкм, по причине чего можно использовать концентрацию соли пирофосфорной кислотыiOO мкм, что в 100 раз меньше чем дл п-нитрофенил- фосфата.
Преимуществом изобретени вл етс также значительно меньша стоимость субстрата, - .
Пример 1, Определение антигена - вируса У картофел ,
Коньюгат антител к вирусу У и щелочной фосфатазы кишок теленка получали обработкой их смеси водным раствором глутарового альдегида в концентрации 0,1 мас,%, В углублени микроплаты дл иммуноферментного анализа последовательно помещали на 1015 ч при 4С по 0,2 мл раствора анTHjen (2 мкг/мл) в карбонатном буфере рН 9,6, исследуемого экстракта или суспензию очищенного вируса У в 0,1-М буфере трис-НС1 рН 7,5, раствора коньюгата (0,3 ед/мл) в 0,1 М буфере трис-НС1 .рН 7,5 с промежуточной промывкой раствором твин-20 (0,1 мас,%)
и водой, прибавл ли 0,2 мл раствора ,3,0, 10H,j,0 в 0,1 М буфере трисНС1 рН 8,5 и инкубировали 15 мин при , Реакцию с субстратом останавливали прибавлением 0,05 мл окрашивающего реагента следующего состава, мас,%: молибдат аммони 1,3, краситель малахитовый зеленый 0,07, твин20 - 0,15, серна кислота 20, остальное - вода. Через 10 мин измер ли оптическую плотность при 630 нм с помощью денситометра,
Дл получени сравнительных данных параллельно производили определение вируса У в образцах известным методом, использу те же препараты антител и коньюгата. Раствор, субстрата содержал 10 мМ п-нитрофенилфосфата , Г М диэтаноламин-НС1 рН 0,8 и 0,5 мМ MgClg, Дл остановки реакции с субстратом прибавл ли 0,05 мл 4 М водного раствора NaOH, Оптическую плотность измер ли при 405 нм.
Данные дл р да известных концентраций вируса У (калибровочные зависимости ) сведены в т,абл, 1,
Таблица
Как видно из табл,1, оптическа плотность, измеренна предлагаемым способом, вьше чем измеренна известным способом. Видно; также, что оптическа плотность в присутствии антигена возрастает с ростом концентрации соли пирофосфорной кислоты. Однако при этом возрастает также величина оптической плотности в отсутствии антигена (фон). При концентрации соли пирофосфорной кислоты 0,02 и 0,1 м оптическа плотность стабильна в течение часа, а при концентрации 1 мМвозрастает на 0,2-0,4 едииицы. Таким образом, оптимальной вл етс концентраци 0,1 мМ. I, При визуальном анализе обнаружено что окраска проб измен етс от бледно-желтой в отсутствии антигена до рко-синей при высокой концентрации антигена. Окра.ска в пробах с оптической плотностью вьппе 0,15 достоверно отличаетс , от окраски фона. В известном способе окраска измен етс от бесцветной до желтой, и окраска проб достоверно отличаетс от окраски фона лишь при оптической плотности выше 1 единицы. При определении содержани вируса У в экстрактах двух образцов листьев картофел следующие ре зультаты, приведенные в табл. 2. Как видно, два способа дают близкие значени . Предлагаемым способом наличие вирусаУ в образце 1 определ етс визуально, тогда как в извест ном способе об зательно использовани денситометра. Таблица2 Пример2. Определение 13 S-глобулина сем н гречихи. Способ осуществл етс согласно примеру 1, использу антитела к 13Sглобулину сем н гречихи и следующие концентрации ингредиентов окрашивающего раствора, мас.%: молибдат аммони 0,3, малахитовый зеленый 0,017, твин-20 -0,04, серна кислота 1 н. Ниже приведены данные,полученные дл р да концентраций 13S-глобулина сем н гречихи. Концентраци 1ЗЗ-глобу- Оптическа лина сем н гречихи, плотность мкг/л О0,06
Claims (1)
- СПОСОБ ГЕТЕРОГЕННОГО ИММУНОФЕРМЕНТНОГО АНАЛИЗА АНТИГЕНА, включающий получение коньюгата специфического антитела и фермента, присоединение определяемого антигена из образца и коньюгата к поверхности твердой фазы, проведение реакции с субстратом и определение количества антигена в образце визуально'или колориметрически, отличающийс я тем, что, с целью повышения чувствительности и уменьшения расхода субстрата, в качестве субстрата используют раствор соли пирофосфорной кислоты в концентрации 0,02-1 мМ.SSU „„ 1153669
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU843697951A SU1153669A1 (ru) | 1984-02-16 | 1984-02-16 | Способ гетерогенного иммуноферментного анализа антигена |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU843697951A SU1153669A1 (ru) | 1984-02-16 | 1984-02-16 | Способ гетерогенного иммуноферментного анализа антигена |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1153669A1 true SU1153669A1 (ru) | 1987-10-30 |
Family
ID=21102514
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU843697951A SU1153669A1 (ru) | 1984-02-16 | 1984-02-16 | Способ гетерогенного иммуноферментного анализа антигена |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1153669A1 (ru) |
-
1984
- 1984-02-16 SU SU843697951A patent/SU1153669A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Дзантиев В.В., Егоров A.M. Современное состо ние и перспективы развити иммуноферментного анализа. Журнал Всесоюзного химического общества им. Д.И.Менделеева, 1982, т. 27, № 4, с. 82-89. ОSullivan M.J., Bridges J.L., Marks V. Enzyme inmunoassay. a review. Ann. Clin. Biochem. 1979, № 16, p. 221-240. Патент CDIA 1 3839153, КЛ. 195-103, 5, 1974, Патент GB № 1597754, КЛ. С 1 В, 1979. Патент US № 4298686, КЛ. 435-7, 198Ь Lommel S.A., McCain А.Н., Morris T.Y. Evaluation of inderect enzyme-linked inmunosorbent assay for the detection of elant viruses. Phytopathology, 1982, V. 72, № 8, p. 1018-1022. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0470652B1 (en) | Method and composition for the determination of sodium ions in fluids | |
Boobis et al. | A simple one-step enzymatic fluorometric method for the determination of glycerol in 20 μl of plasma | |
EP0252747B1 (en) | Use of phenols and anilines to increase the rate of peroxidase catalyzed oxidation of leuco dyes | |
US4517287A (en) | Method and reagent for the enzymatic determination of enzyme substrates | |
US5156947A (en) | Process for reduction of the matrix effect in a fructosamine determination assay | |
EP0215170B1 (en) | Single color reading method for determining fructosamine | |
Fossati et al. | A step forward in enzymatic measurement of creatinine | |
US3087794A (en) | Chemical test for differentiating leucocytes from erythrocytes | |
KINOSHITA et al. | A fluorophotometric determination of serum creatinine and creatine using a creatinineamidohydrolase-creatineamidinohydrolase-sarcosine oxidase-peroxidase system and diacetyldichlorofluorescin | |
SU1153669A1 (ru) | Способ гетерогенного иммуноферментного анализа антигена | |
Rosalki | A simple colorimetric method for the determination of serum alpha-hydroxybutyric dehydrogenase activity | |
EP0200541B1 (en) | Immunochemical method and analytical composition and element for determination of creatine kinase-mb | |
EP0239222B1 (en) | Analytical element containing photosensitive compound and filter layer and method of use | |
Kayamori et al. | Enzymatic method for assaying calcium in serum and urine with porcine pancreatic alpha-amylase | |
Khattab et al. | An ELISA assay for avian serum butyrylcholinesterase: a biomarker for organophosphates | |
Dalal et al. | Laboratory evaluation of a chromogenic amylase method | |
CH651318A5 (de) | Verfahren und reagenz zur bestimmung der peroxidase. | |
US4347313A (en) | Analytical determination of lipase | |
US3990946A (en) | Substrate for the determination of desoxy-ribonuclease | |
O'Neal et al. | An automated, saccharogenic method for determining serum amylase activity | |
US4142938A (en) | Determination of triglycerides and glycerol | |
US4151043A (en) | Enzyme determination method | |
Kamoun et al. | Ultramicromethod for determination of plasma uric acid. | |
SU1158933A1 (ru) | Способ гетерогенного иммуноферментного анализа антигена | |
Stolle et al. | An improved method for the determination of creatine kinase activity in serum |