I Изобретение относитс к медицине а именно к области микроскопических исследованиУ паренхиматоаньпс органо в частности печени. Известен способ приготовлени гистологического препарата ткани паренхиматозных органов, в частное ти ткани миокарда,включающий фиксацию биоптата в осмиевой кислоте, приготовление срезов и их окрашивание 2 Однако данный способ не позвол ет приготовить.гистологический препарат ткани печени. Наиболее близким к предлагаемому по технической сущности вл етс способ приготовлени гистологического препарата ткани печени, включающий фиксацию биоптата в раство-. pax формалина, последующее приготов ление срезов и их окрашивание в гематоксилин - эозин . Однако известный способ не позво л ет четко дифференцировать паренхи му от стромы, что затрудн ет проведение цитоспектроскопических исследований при изучении структуры печени. Цель изобретени - четка дифференцировка паренхимы от стромы Поставленна цель достигаетс согласно способу приготовлени гист логического препарата ткани печени включающему фиксацию биоптата в ра ворах формалина,последующее приготовление срезов и их окрашивание , тем, что фиксацию провод т в. течение А5-48 ч, при А-6°С, а окрашивание ведут при 18-24 С в течение 20-30 мин в смеси, содержащей о(,-нафтил ацетат, прочньй синий Б, ацетон и фосфатн буфер рН 7,27 ,4 при следующих соотношени х компонентов , вес.%: о(,-Нафтил ацетат 20-45 Прочный синий Б 20-45 Ацетон0,3-0,7 Фосфатный буфер Остальное Способ осуществл ют следукмцим об разом. Биоптат ткани печени фиксируют 10-12Z-HOM нейтральном формалине в 45-48 ч при . Далее биоптат гфомывают водой в течение 10 мин, приготавливают замороженные срезы на криомикротоме, которые окрашивают при 18-24 С в течение 20-30 м в смеси, содержащей в6 -нафтил. аце31 тат, прочный синий Б, ацетон и фосфатный буфер рН 7,2-7,4 при следующих соотношени х компонентов,вес.%: ct-Нафтил ацетат 20-45 Прочный синий Б 20-45 Ацетон0,3-0,7 Фосфатный буфер Остальное Фиксаци биоптата в 10-12%-ном растворе формалине в меньше 45 и больше 48 ч при температурах меньше 4 и больше 6 С не,позвол ет получить четкую дифференцировку паренхимы от стромы,что видно из таблицы , где приведены показатели опти- ческого поглощени стромы и паренхимы печени интактного золотистого хом ка через различное врем после экспозиции образцов ткани в 1012%-ном нейтральном формалине при -6 С (в условных единицах оптической плотности). Окрашивание при температурах меньше 18 и больше в течение времени меньше 20 и больше 30 мин также приводит к менее четкой дифференцировке паренхимы от стромы за счет полной илактивации вы вл емь х красителем эстераз, имеющей место при этих режимах обработки. Пример 1. У наркотизированного животного вскрьшали брюшную полость, удал ли печень и из каждой доли ее вырезали кусочки, которые помещали в 10-12%-ный нейтральньй формалин на 45 ч, предварительно охлажденньй до 4 С, после чего промывали кусочки в дистиллированной воде 10 мин, изготовл ли на микротоме замороженные ере зы. Срезы наклеивали белком на сухие обезжиренные предметные стекла и окрашивали при температуре 8°С в течение 20 мин в смеси, содержащей С-нафтил ацетат, прочный синий Б,ацетон и фосфатньй буфер рН 7,2-7,4 при следующих соотношени х компонентов, nof 7 . /о . ot-Нафтил ацетат20 Прочный синий Б20 Ацетон0,3 Фосфатный буфер Остальное Соотношение стромы и паренхимы в печени у интактного животного, в частности золотистого хом ка, проводитс при планиметрии на микровидеомате на тестовой площади, равной. 19200 мк, прин той за 100%, и равно 0,096710,01.. . Пример 2.У наркотизированного животного (золотистого хом ка). инвазированного эписторхозом, вскры вали брюшную полость, удал ли печен которую помещали в 10-12%-ный нейтральный формалин на 48 ч, предварительно охлажденный до , после чего промывали кусочки в дистиллиро ванной воде 10 мин, изготавливали замороженные срезы, которые окрашивали при 24®С в течение ЗП мин в смеси, содержащей cL -нафтил ацетат, прочный синий Б,ацетон и фосфатньй буфер рН 7,2-7,4 при следующих соотношени х компонентов, вес.%: сС-Пафтил ацетат 45 Прочный синий Б 45 АцетонО,7 Фосфатный буфер Остально Соотношение стромы и паренхимы у золотистого хом ка при описторхозе 1,1iO,13. Специфичность и достоверность маркировани стромы и паренхимы обусловлены избирательным маркированием этцх структур. Интенсивна окраска паренхге атозного компонента ткани св зана с вы влением в нем неспецифических эстераз. Четка дифференцировка паренхимы от стромы позвол ет проводить количественныеисследовани с помощью телевизионного планиметра Микровидеомат и цитоспектрофотометра, что повышает точность определени различных патологических состо ний. Строма Паренхима Врем экспозиции в формалине , ч 24,71 0,71,2±0,12 24,11 0,50,71± 0,06 17,810,9О 15,1tO,90,5tO,1I The invention relates to medicine, namely to the field of microscopic examination of the parenchymatous organ in particular the liver. A known method of preparing a histological preparation of tissue of parenchymal organs, in particular, of myocardial tissue, including fixation of the biopsy material in osmic acid, preparation of sections and their staining 2 However, this method does not allow preparing a histological preparation of liver tissue. The closest to the proposed technical essence is a method of preparing a histological preparation of liver tissue, including fixing the biopsy in solution. pax formalin, the subsequent preparation of sections and their staining in hematoxylin – eosin. However, the known method does not allow a clear differentiation of the parenchyma from the stroma, which makes it difficult to carry out cytospectroscopic studies in the study of the structure of the liver. The purpose of the invention is to clearly differentiate the parenchyma from the stroma. The goal is achieved according to the method of preparing a histological preparation of the liver tissue, including fixation of the biopsy material in formalin solutions, subsequent preparation of sections and their staining, by fixing in. A5-48 hours, at A-6 ° C, and staining is carried out at 18-24 ° C for 20-30 minutes in a mixture containing o (, - naphthyl acetate, strong blue B, acetone and phosphate buffer pH 7.27 , 4 in the following ratios of components, wt.%: O (, - Naphthyl acetate 20-45 Durable blue B 20-45 Acetone 0.3-0.7 Phosphate buffer Else The method is carried out by following the procedure. A biopsy of the liver tissue is fixed 10- 12Z-HOM neutral formalin at 45-48 hours at. Next, the biopsy is washed with water for 10 minutes, frozen sections are prepared on a cryomicrotome, which are stained at 18-24 ° C for 20-30 m in mixture, B6-naphthyl acetone, tough blue B, acetone and phosphate buffer pH 7.2-7.4 with the following ratios of components, wt%: ct-Naphthyl acetate 20-45 Durable blue B 20-45 Acetone 0.3 -0.7 Phosphate buffer Else Biopsy fixation in 10-12% formalin solution in less than 45 and more than 48 hours at temperatures less than 4 and more than 6 C does not allow for a clear differentiation of the parenchyma from the stroma, as can be seen from the table, where The optical absorption parameters of the stroma and the liver parenchyma of the intact golden hamster are shown at various times after exposure. tissue samples in 1012% neutral formalin at -6 ° C (in arbitrary units of optical density). Staining at temperatures less than 18 and more for a time less than 20 and more than 30 minutes also leads to less distinct differentiation of the parenchyma from the stroma due to complete deactivation revealing esterase dye that occurs during these treatment modes. Example 1. In the anesthetized animal, the abdominal cavity was opened, the liver was removed, and slices were cut out from each lobe, which were placed in 10-12% neutral formalin for 45 hours, cooled to 4 ° C, and then washed in distilled water 10 min, frozen ereas were made on the microtome. Sections were glued with protein onto dry defatted slides and stained at 8 ° C for 20 minutes in a mixture containing C-naphthyl acetate, strong blue B, acetone and phosphate buffer pH 7.2-7.4 at the following ratios of components, nof 7. /about . ot-Naphthyl acetate20 Durable blue B20 Acetone0.3 Phosphate buffer Else The ratio of stroma and parenchyma in the liver of an intact animal, in particular a golden hamster, is carried out with a planimetry on a microvideomat on a test area equal to. 19200 µm, taken as 100%, and equal to 0.096710.01 ... Example 2. In anesthetized animal (golden homa ka). an abdominal cavity infested with an epistorchosis, the livers were removed and placed in 10–12% neutral formalin for 48 h, pre-cooled to, after which the pieces were washed in distilled water for 10 min, frozen sections were prepared and stained at 24® C for ZP min in a mixture containing cL-naphthyl acetate, strong blue B, acetone and phosphate buffer pH 7.2-7.4 at the following ratios of components, wt.%: CC-Paftil acetate 45 Durable blue B 45 Acetone O , 7 Phosphate buffer Rest of the ratio of the stroma and parenchyma in golden homo ka with opisthorchosis 1,1iO, 13. The specificity and reliability of the labeling of the stroma and parenchyma is due to the selective labeling of these structures. The intense coloring of the parenchyx of the atotic component of the tissue is associated with the detection of nonspecific esterases in it. The clear differentiation of the parenchyma from the stroma allows quantitative studies using a MicroVideotomator television and a cytospectrophotometer, which improves the accuracy of determining various pathological conditions. Stroma Parenchyma Exposure time in formalin, h 24.71 0.71.2 ± 0.12 24.11 0.50.71 ± 0.06 17.810.9 O 15.1 tO, 90.5 tO, 1