SU1076054A1 - Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов - Google Patents
Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов Download PDFInfo
- Publication number
- SU1076054A1 SU1076054A1 SU823444164A SU3444164A SU1076054A1 SU 1076054 A1 SU1076054 A1 SU 1076054A1 SU 823444164 A SU823444164 A SU 823444164A SU 3444164 A SU3444164 A SU 3444164A SU 1076054 A1 SU1076054 A1 SU 1076054A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- objects
- freezing
- nitrogen
- culture medium
- organisms
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
СПОСОБ КРИОКОНСЕРВИРОВАНИЯ ЖИВЫХ ОДНОКЛЕТОЧНЫХ ОРГАНИЗМОВ, включающий извлечение консервируемых объектов из среды культивировани , предварительную инкубацию их при 2-3°С в течение 1,5-2 ч, замораживание с использованием жидкого азота, отличающийс тем, что, с целью повыщени жизнеспособности одноклеточных организмов , объекты, подлежащие консервированию , обезвоживают путем повышени концентрации хлористого натри в среде культивировани до 1 -1,2% и инкубации в этой среде в течение 5-30 мин, а замораживание осуществл ют в течение 0,1 - 0,2 с со скоростью
Description
vl
О5
СП 4 Изобретение относитс к криобиологии и может быть использовано дл криоконсервировани различных биологических объектов , в частности свободноживущих одноклеточных животных, при проведении научных исследований, а также в микробиологии и медицине. Известен способ консервировани биологических объектов путем замораживани их в различных хладагентах. При этом объект предварительно обрабатывают крио протекторами, повышающими в зкость их цитоплазмы, а замораживание производ т в хладагенте, например жидком азоте. Замораживание чаще всего провод т путем ступенчатого охлаждени объектов с широким .диапазоном градиента понижени температур от 0,2 град/мин до 1000 град/с 1J. Этот способ позвол ет криоконсервировать только клетки организмов либо низшие организмы, например, соматические клетки, спермии, цисты, бактерии, водоросли и паразитические простейшие. Однако этот способ не пригоден дл консервировани свободноживущих одноклеточных животных, например амеб и инфузорий, так как при его осуществлении животные погибают. Наиболее близким к предлагаемому вл етс способ криоконсервировани амеб, согласно которому живые одноклеточные организмы извлекают из среды культивировани и в течение 0,5-1 ч обрабатывают криопротектором. Затем объекты размещают на подложке, алюминиевой фольге , и подвергают медленному ступенчатому замораживанию в жидком азоте со средним градиентом 1 град/мин либо быстрому замораживанию с градиентом 500 град/ мин 2. Однако после размораживани , т. е. извлечени из хладагента и помещени в среду культивировани при 20°С все амебы погибают в течение 10-20 мин. Гибель консервируемых организмов при осуществлении известных способов вызвана повреждением их структуры в результате внутриклеточной кристаллизации воды, а также большой токсичностью криопротекторов. При этом сокращение продолжительности обработки объектов криопротектором (менее 0,5 ч) ускор ет кристаллообразование при замораживании. Увеличение продолжительности обработки криопротектором. свыше I ч, наоборот, усиливает токсическое действие последнего. Цель изобретени - повышение жизнеспособности одноклеточных организмов. Поставленна цель достигаетс тем, что согласно способу криоконсервировани живых одноклеточных организмов, включающему извлечение консервируемых объектов из среды культивировани , предварительную инкубацию их при 2-3°С в течение 1,5-2 ч, замораживание с использованием жидкого азота, объекты, подлежащие консервированию обезвоживают путем повыщени концентрации хлористого натри в среде культивировани до 1 -1,2% и инкубируют в этой среде в течение 5-30 мин, а замораживание осуществл ют в течение 0,1-0,2 ссо скоростью (3-10) 1 О град/с в смеси жидкого и твердого азота. Пример 1. Предварительна инактиваци объектов путем понижени температуры среды культивировани до 2-3°С и выдерживани их в этих услови х в течение 1,5- 2 ч вл етс наиболее оптимальной дл достижени максимальной выживаемости их, что установлено опытным путем. Повышение концентрации NaCl в среде культивировани и выдерживание в ней объектов необходимо дл обезвоживани и повыщени в зкости их цитоплазмы. Это принципиально сходно с действием криопротектора , но исключает побочный токсический эффект последнего. Режимы повыщени концентрации NaCl (1,0-1,2%) оптимальны . Такое воздействие в течение 5-30 мин, обеспечивает м гкое частичное обезвоживание объектов без гипертонических повреждений. Последующее сверхбыстрое замораживание объектов осуществл ют путем быстрого помещени их в шугообразный азот. Установлено, что оптимальный эффект замораживани достигаетс при скорости помещени объектов в щугообразный азот в пределах 0,1-0,2 с. При этом режиме помещени объектов градиент скорости замораживани составл ет (3-10) 10 град/с. Такой сверхвысокий градиент замораживани обеспечиваетс низкой температурой щугообразного азота (смеси твердой и жидкой его фаз), равной -215°С, котора значительно ниже температуры жидкого азота, равной - 196°С, а также консистенций щугообразного азота. Опытным путем установлено, что оптимальный эффект соохранени жизнеспособности объектов достигаетс только в химически чистом шугообразном азоте при оопределенной его плотности . Дл достижени этого состо ни шугообразного азота давление воздуха в сосуде с жидким азотом понижают до режимов разрежени 1,0-0,1 Па. Разрежение воздуха в сосуде ниже 1,0 Па приводит к затвердению смеси, а выше 0,1. Па - к преобладанию в ней жидкого азота. Необходима плотность щугообразного азота достигаетс при содержании в .смеси твердой фазы азота в пределах 55-60%. При разжижении смеси (менее 55% твердой фазы) происходит вскипание азота вокруг объекта, а при ее уплотнении (свыше 60%) возможны механические повреждени объектов.
После сверхбыстрого замораживани объектов консервирование их в течение необходимых сроков осуществл ют как в шугообразном, так и в жидком азоте.. При хранении шугообразный азот переходит в жидкое состо ние, при этом повышение температур криоконсервировани до -196°С не вли ет на выживаемость объектов.
По истечении необходимых сроков консервировани объекты быстро перенос т во влажную камеру. Скорость переноса дл достижени требуемого градиента размораживани (3-10)- 10 град/с сохран етс равной 0,1-0,2 с. Эти режимы переноса , такие же, как и при замораживании объектов, необходимы дл преодолени процесса рекристаллизации внутриклеточной жидкости при ее переходе в жидкое состо ние.
Опытным путем установлено, что наилучша выживаемость объектов достигаетс при температуре воздуха в камере (25- 27°С), близкой к пределу температурного оптимума их содержани . При таком диапазоне температур и повышенной влажности воздуха в камере (близкой к ) скорость размораживани объектов и услови их перевода в активное состо ние оптимальHfe , чем в обычных комнатных услови х при 18-20°С.
Окончательный перевод объектов в среду культивировани осушествл етс в течение 5-10 с после размораживани . Режим перевода 5-10 с оптимален, так как выдерживание объектов в камере не менее 5 с необходимо дл их температурной акклиматизации к услови м активной жизнеде тельности . Превышение этого срока более 10 с приводит к осушению объектов.
Наиболее удобно осуществл ть перевод объектов в среду культивировани путем добавлени последней в виде капли к объекту , что установлено опытным путем. При этом превышение объема среды культивировани в 2-3 раза по сравнению с объектом вл етс оптимальным дл взаимной стабилизации температур, а также дл достижени минимально .необходимых условий активации объектов в этой среде.
Теоретической основой использовани эффекта витрификации объектов при исполнении нового способа их сверхбыстрого замораживани вл етс следующее.
При быстром погружении объекта в шугоообразный азот выдел емое им тепло расходуетс в основном на плавление твердой фазы смеси. Жидкий азот, получаемый в результате такого расплавлени , в свою очередь охлаждаетс окружающей его шугой . Поэтому он не успевает достичь точки кипени (-196°С) и, соответственно, не образует газового пузыр вокруг объекта. При замораживании объекта в жидком
азоте газовый пузырь, преп тству теплоотдаче , снижает скорость охлаждени объекта по меньшей мере до 1000- 1500 град/с. При погружении объекта в шугообразный азот скорость его охлаждени максимальна и более посто нна по сравнению с ранее достигнутой. Скорость охлаждени зависит только от величины объекта, наход сь в обратной пропорции от нее. Поэтому градиент замораживани (и размораживани ) объекта в шугообразном азоте находитс в пределах (3-10) X X 10 град/с. Этот градиент установлен с помощью установки - комплекса микротермопары , подключенной к осциллографу
5 с фотоприставкой. Сходную величину градиента , близкую к 6- 10 град/с, удалось получить и теплофизичесйими проверочными расчетами. Такие сверхвысокие скорости изменени температуры объекта превышают верхние пределы скорости кристалло0 образовани внутриклеточной воды при прохождении его порога кристаллообразовани , равного -(50-70) °С. Поэтому кристаллообразовани не происходит и вс внутриклеточна жидкость объекта переходит в гелевое состо ние, т. е. происхо5 дит, витрификаци объекта (переход в стекловидное тело). Сходный механизм сверхбыстрого перехода внутриклеточной жидкости из гелевого состо ни в жидкое имеет место и при размораживании объQ екта. Обычного в таких услови х процесса рекристаллизации воды при -(50-70) °С не происходит. Указанные сверхвысокие скорости криоконсервировани могут бцть обеспечены только совокупностью перечисленных операций, производимых в указан5 ной последовательности.
Пример 2. Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов испытывают на лабораторных одноклеточных животных - амебах (Amoeba Proteus) и двух
видах инфузорий (Те1гасЬутепа и Вигsaria ). Массова культура этих животных содержит несколько тыс ч особей и находитс в среде культивировани объемом 25 мл. Часть особей (около 100 штук амеб, бурсарий либо несколько тыс ч тетрахимен) вмес5 те со средой культивировани общим объемом 2 мл отдел ют пипеткой Пастера от массовой культуры и помещают в отдельную емкость, например, бюкс, который помещают в холодильник с температурой 2- 3°С на 1,5-2 ч. В- пределах указанных сроков к среде культивировани с объектами добавл ют охлажденный до -этой же температуры раствор поваренной соли исходной концентрации 2,2-2,5% и объемом 2 мл. Концентрацию поваренной соли
5 в среде культивировани устанавливают в пределах 1,0-1,. В этих услови х объекты выдерживают в течение 5-30 мин в разных сери х опытов. После этого объ
Claims (1)
- СПОСОБ КРИОКОНСЕРВИРОВАНИЯ ЖИВЫХ ОДНОКЛЕТОЧНЫХ ОРГАНИЗМОВ, включающий извлечение консервируемых объектов из среды культивирования, предварительную инкубацию их при 2—3°С в течение 1,5—2 ч, замораживание с использованием жидкого азота, отличающийся тем, что, с целью повышения жизнеспособности одноклеточных организмов, объекты, подлежащие консервированию, обезвоживают путем повышения концентрации хлористого натрия в среде культивирования до 1 —1,2% и инкубации в этой среде в течение 5—30 мин, а замораживание осуществляют в течение 0,1 — 0,2 с со скоростью (3—10) · 103 град/с в смеси жидкого и твердого азота.>
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU823444164A SU1076054A1 (ru) | 1982-05-24 | 1982-05-24 | Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU823444164A SU1076054A1 (ru) | 1982-05-24 | 1982-05-24 | Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1076054A1 true SU1076054A1 (ru) | 1984-02-29 |
Family
ID=21013807
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU823444164A SU1076054A1 (ru) | 1982-05-24 | 1982-05-24 | Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1076054A1 (ru) |
-
1982
- 1982-05-24 SU SU823444164A patent/SU1076054A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
1. Low Temperature Preservation in Medicine and BiologY- Ed. M. J. AshwoodSmith, J. . Farrant, Kent, 1980, p. 4-25. 2. Лозина-Лозинский Л. К., Николаева Т. В. Устойчивость Ашоева proteus к замораживанию под защитой полиэтиленоксида-4000. - «Цитологи , 1980, 22, II, с. 1357-1363 (прототип). * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Gosden | Cryopreservation: a cold look at technology for fertility preservation | |
Stanic et al. | Comparison of protective media and freezing techniques for cryopreservation of human semen | |
Morris | The cryopreservation of Chlorella 1. Interactions of rate of cooling, protective additive and warming rate | |
US4965185A (en) | Method for low-temperature preservation of embryos | |
Sharma et al. | Effect of sperm storage and selection techniques on sperm parameters | |
Morris | Cryopreservation: an introduction to cryopreservation in culture collections | |
US20090029340A1 (en) | Cryoprotective Compositions and Methods of Using Same | |
US3940943A (en) | Multistage freezing system for preservation of biological materials | |
AU750589B2 (en) | Method and apparatus for cryopreservation | |
RU2317703C1 (ru) | Способ криоконсервирования спермы осетровых рыб | |
Curry | Cryopreservation of mammalian semen | |
Hwang et al. | Freezing and viability of Tetrahymena pyriformis in dimethylsulfoxide | |
Hwang et al. | Investigation of ultra-low temperature for fungal cultures. II. Cryoprotection afforded by glycerol and dimethyl sulfoxide to 8 selected fungal cultures | |
Fulton et al. | Preservation of Entamoeba Histolytica at− 79° C. in the Presence of Glycerol | |
US4965186A (en) | Method for low-temperature preservation of spermatozoa | |
MORIGUCHI et al. | Freeze-preservation of dormant pear shoot apices | |
SU1076054A1 (ru) | Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов | |
Stănescu et al. | Freezing of dog’s sperm: a review | |
Hwang | Freezing and storage of nematodes in liquid nitrogen | |
Dupesh et al. | Human Sperm Freezing: Mini Update | |
Duplaix et al. | Effects of type of freeze straw and thaw temperature on the fertilizing capacity of frozen chicken semen | |
Fuller et al. | Cryopreservation for cell banking: current concepts at the turn of the 21st century | |
Nannou et al. | Cryopreservation: Methods, equipment and critical concerns | |
Seki | Importance of cooling versus warming rates in vitrification techniques | |
Duplaix et al. | Effects of prefreeze treatments on the fertilizing capacity of unfrozen and frozen chicken semen: Extender characteristics and dilution method |