SU1076054A1 - Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов - Google Patents

Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов Download PDF

Info

Publication number
SU1076054A1
SU1076054A1 SU823444164A SU3444164A SU1076054A1 SU 1076054 A1 SU1076054 A1 SU 1076054A1 SU 823444164 A SU823444164 A SU 823444164A SU 3444164 A SU3444164 A SU 3444164A SU 1076054 A1 SU1076054 A1 SU 1076054A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
objects
freezing
nitrogen
culture medium
organisms
Prior art date
Application number
SU823444164A
Other languages
English (en)
Inventor
Николай Аркадьевич Шубин
Лидия Владимировна Калинина
Original Assignee
Институт Цитологии Ан Ссср
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Цитологии Ан Ссср filed Critical Институт Цитологии Ан Ссср
Priority to SU823444164A priority Critical patent/SU1076054A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1076054A1 publication Critical patent/SU1076054A1/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Abstract

СПОСОБ КРИОКОНСЕРВИРОВАНИЯ ЖИВЫХ ОДНОКЛЕТОЧНЫХ ОРГАНИЗМОВ, включающий извлечение консервируемых объектов из среды культивировани , предварительную инкубацию их при 2-3°С в течение 1,5-2 ч, замораживание с использованием жидкого азота, отличающийс  тем, что, с целью повыщени  жизнеспособности одноклеточных организмов , объекты, подлежащие консервированию , обезвоживают путем повышени  концентрации хлористого натри  в среде культивировани  до 1 -1,2% и инкубации в этой среде в течение 5-30 мин, а замораживание осуществл ют в течение 0,1 - 0,2 с со скоростью

Description

vl
О5
СП 4 Изобретение относитс  к криобиологии и может быть использовано дл  криоконсервировани  различных биологических объектов , в частности свободноживущих одноклеточных животных, при проведении научных исследований, а также в микробиологии и медицине. Известен способ консервировани  биологических объектов путем замораживани  их в различных хладагентах. При этом объект предварительно обрабатывают крио протекторами, повышающими в зкость их цитоплазмы, а замораживание производ т в хладагенте, например жидком азоте. Замораживание чаще всего провод т путем ступенчатого охлаждени  объектов с широким .диапазоном градиента понижени  температур от 0,2 град/мин до 1000 град/с 1J. Этот способ позвол ет криоконсервировать только клетки организмов либо низшие организмы, например, соматические клетки, спермии, цисты, бактерии, водоросли и паразитические простейшие. Однако этот способ не пригоден дл  консервировани  свободноживущих одноклеточных животных, например амеб и инфузорий, так как при его осуществлении животные погибают. Наиболее близким к предлагаемому  вл етс  способ криоконсервировани  амеб, согласно которому живые одноклеточные организмы извлекают из среды культивировани  и в течение 0,5-1 ч обрабатывают криопротектором. Затем объекты размещают на подложке, алюминиевой фольге , и подвергают медленному ступенчатому замораживанию в жидком азоте со средним градиентом 1 град/мин либо быстрому замораживанию с градиентом 500 град/ мин 2. Однако после размораживани , т. е. извлечени  из хладагента и помещени  в среду культивировани  при 20°С все амебы погибают в течение 10-20 мин. Гибель консервируемых организмов при осуществлении известных способов вызвана повреждением их структуры в результате внутриклеточной кристаллизации воды, а также большой токсичностью криопротекторов. При этом сокращение продолжительности обработки объектов криопротектором (менее 0,5 ч) ускор ет кристаллообразование при замораживании. Увеличение продолжительности обработки криопротектором. свыше I ч, наоборот, усиливает токсическое действие последнего. Цель изобретени  - повышение жизнеспособности одноклеточных организмов. Поставленна  цель достигаетс  тем, что согласно способу криоконсервировани  живых одноклеточных организмов, включающему извлечение консервируемых объектов из среды культивировани , предварительную инкубацию их при 2-3°С в течение 1,5-2 ч, замораживание с использованием жидкого азота, объекты, подлежащие консервированию обезвоживают путем повыщени  концентрации хлористого натри  в среде культивировани  до 1 -1,2% и инкубируют в этой среде в течение 5-30 мин, а замораживание осуществл ют в течение 0,1-0,2 ссо скоростью (3-10) 1 О град/с в смеси жидкого и твердого азота. Пример 1. Предварительна  инактиваци  объектов путем понижени  температуры среды культивировани  до 2-3°С и выдерживани  их в этих услови х в течение 1,5- 2 ч  вл етс  наиболее оптимальной дл  достижени  максимальной выживаемости их, что установлено опытным путем. Повышение концентрации NaCl в среде культивировани  и выдерживание в ней объектов необходимо дл  обезвоживани  и повыщени  в зкости их цитоплазмы. Это принципиально сходно с действием криопротектора , но исключает побочный токсический эффект последнего. Режимы повыщени  концентрации NaCl (1,0-1,2%) оптимальны . Такое воздействие в течение 5-30 мин, обеспечивает м гкое частичное обезвоживание объектов без гипертонических повреждений. Последующее сверхбыстрое замораживание объектов осуществл ют путем быстрого помещени  их в шугообразный азот. Установлено, что оптимальный эффект замораживани  достигаетс  при скорости помещени  объектов в щугообразный азот в пределах 0,1-0,2 с. При этом режиме помещени  объектов градиент скорости замораживани  составл ет (3-10) 10 град/с. Такой сверхвысокий градиент замораживани  обеспечиваетс  низкой температурой щугообразного азота (смеси твердой и жидкой его фаз), равной -215°С, котора  значительно ниже температуры жидкого азота, равной - 196°С, а также консистенций щугообразного азота. Опытным путем установлено, что оптимальный эффект соохранени  жизнеспособности объектов достигаетс  только в химически чистом шугообразном азоте при оопределенной его плотности . Дл  достижени  этого состо ни  шугообразного азота давление воздуха в сосуде с жидким азотом понижают до режимов разрежени  1,0-0,1 Па. Разрежение воздуха в сосуде ниже 1,0 Па приводит к затвердению смеси, а выше 0,1. Па - к преобладанию в ней жидкого азота. Необходима  плотность щугообразного азота достигаетс  при содержании в .смеси твердой фазы азота в пределах 55-60%. При разжижении смеси (менее 55% твердой фазы) происходит вскипание азота вокруг объекта, а при ее уплотнении (свыше 60%) возможны механические повреждени  объектов.
После сверхбыстрого замораживани  объектов консервирование их в течение необходимых сроков осуществл ют как в шугообразном, так и в жидком азоте.. При хранении шугообразный азот переходит в жидкое состо ние, при этом повышение температур криоконсервировани  до -196°С не вли ет на выживаемость объектов.
По истечении необходимых сроков консервировани  объекты быстро перенос т во влажную камеру. Скорость переноса дл  достижени  требуемого градиента размораживани  (3-10)- 10 град/с сохран етс  равной 0,1-0,2 с. Эти режимы переноса , такие же, как и при замораживании объектов, необходимы дл  преодолени  процесса рекристаллизации внутриклеточной жидкости при ее переходе в жидкое состо ние.
Опытным путем установлено, что наилучша  выживаемость объектов достигаетс  при температуре воздуха в камере (25- 27°С), близкой к пределу температурного оптимума их содержани . При таком диапазоне температур и повышенной влажности воздуха в камере (близкой к ) скорость размораживани  объектов и услови  их перевода в активное состо ние оптимальHfe , чем в обычных комнатных услови х при 18-20°С.
Окончательный перевод объектов в среду культивировани  осушествл етс  в течение 5-10 с после размораживани . Режим перевода 5-10 с оптимален, так как выдерживание объектов в камере не менее 5 с необходимо дл  их температурной акклиматизации к услови м активной жизнеде тельности . Превышение этого срока более 10 с приводит к осушению объектов.
Наиболее удобно осуществл ть перевод объектов в среду культивировани  путем добавлени  последней в виде капли к объекту , что установлено опытным путем. При этом превышение объема среды культивировани  в 2-3 раза по сравнению с объектом  вл етс  оптимальным дл  взаимной стабилизации температур, а также дл  достижени  минимально .необходимых условий активации объектов в этой среде.
Теоретической основой использовани  эффекта витрификации объектов при исполнении нового способа их сверхбыстрого замораживани   вл етс  следующее.
При быстром погружении объекта в шугоообразный азот выдел емое им тепло расходуетс  в основном на плавление твердой фазы смеси. Жидкий азот, получаемый в результате такого расплавлени , в свою очередь охлаждаетс  окружающей его шугой . Поэтому он не успевает достичь точки кипени  (-196°С) и, соответственно, не образует газового пузыр  вокруг объекта. При замораживании объекта в жидком
азоте газовый пузырь, преп тству  теплоотдаче , снижает скорость охлаждени  объекта по меньшей мере до 1000- 1500 град/с. При погружении объекта в шугообразный азот скорость его охлаждени  максимальна и более посто нна по сравнению с ранее достигнутой. Скорость охлаждени  зависит только от величины объекта, наход сь в обратной пропорции от нее. Поэтому градиент замораживани  (и размораживани ) объекта в шугообразном азоте находитс  в пределах (3-10) X X 10 град/с. Этот градиент установлен с помощью установки - комплекса микротермопары , подключенной к осциллографу
5 с фотоприставкой. Сходную величину градиента , близкую к 6- 10 град/с, удалось получить и теплофизичесйими проверочными расчетами. Такие сверхвысокие скорости изменени  температуры объекта превышают верхние пределы скорости кристалло0 образовани  внутриклеточной воды при прохождении его порога кристаллообразовани , равного -(50-70) °С. Поэтому кристаллообразовани  не происходит и вс  внутриклеточна  жидкость объекта переходит в гелевое состо ние, т. е. происхо5 дит, витрификаци  объекта (переход в стекловидное тело). Сходный механизм сверхбыстрого перехода внутриклеточной жидкости из гелевого состо ни  в жидкое имеет место и при размораживании объQ екта. Обычного в таких услови х процесса рекристаллизации воды при -(50-70) °С не происходит. Указанные сверхвысокие скорости криоконсервировани  могут бцть обеспечены только совокупностью перечисленных операций, производимых в указан5 ной последовательности.
Пример 2. Способ криоконсервировани  живых одноклеточных организмов испытывают на лабораторных одноклеточных животных - амебах (Amoeba Proteus) и двух
видах инфузорий (Те1гасЬутепа и Вигsaria ). Массова  культура этих животных содержит несколько тыс ч особей и находитс  в среде культивировани  объемом 25 мл. Часть особей (около 100 штук амеб, бурсарий либо несколько тыс ч тетрахимен) вмес5 те со средой культивировани  общим объемом 2 мл отдел ют пипеткой Пастера от массовой культуры и помещают в отдельную емкость, например, бюкс, который помещают в холодильник с температурой 2- 3°С на 1,5-2 ч. В- пределах указанных сроков к среде культивировани  с объектами добавл ют охлажденный до -этой же температуры раствор поваренной соли исходной концентрации 2,2-2,5% и объемом 2 мл. Концентрацию поваренной соли
5 в среде культивировани  устанавливают в пределах 1,0-1,. В этих услови х объекты выдерживают в течение 5-30 мин в разных сери х опытов. После этого объ

Claims (1)

  1. СПОСОБ КРИОКОНСЕРВИРОВАНИЯ ЖИВЫХ ОДНОКЛЕТОЧНЫХ ОРГАНИЗМОВ, включающий извлечение консервируемых объектов из среды культивирования, предварительную инкубацию их при 2—3°С в течение 1,5—2 ч, замораживание с использованием жидкого азота, отличающийся тем, что, с целью повышения жизнеспособности одноклеточных организмов, объекты, подлежащие консервированию, обезвоживают путем повышения концентрации хлористого натрия в среде культивирования до 1 —1,2% и инкубации в этой среде в течение 5—30 мин, а замораживание осуществляют в течение 0,1 — 0,2 с со скоростью (3—10) · 103 град/с в смеси жидкого и твердого азота.
    >
SU823444164A 1982-05-24 1982-05-24 Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов SU1076054A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823444164A SU1076054A1 (ru) 1982-05-24 1982-05-24 Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823444164A SU1076054A1 (ru) 1982-05-24 1982-05-24 Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1076054A1 true SU1076054A1 (ru) 1984-02-29

Family

ID=21013807

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU823444164A SU1076054A1 (ru) 1982-05-24 1982-05-24 Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1076054A1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Low Temperature Preservation in Medicine and BiologY- Ed. M. J. AshwoodSmith, J. . Farrant, Kent, 1980, p. 4-25. 2. Лозина-Лозинский Л. К., Николаева Т. В. Устойчивость Ашоева proteus к замораживанию под защитой полиэтиленоксида-4000. - «Цитологи , 1980, 22, II, с. 1357-1363 (прототип). *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gosden Cryopreservation: a cold look at technology for fertility preservation
Stanic et al. Comparison of protective media and freezing techniques for cryopreservation of human semen
Morris The cryopreservation of Chlorella 1. Interactions of rate of cooling, protective additive and warming rate
US4965185A (en) Method for low-temperature preservation of embryos
Sharma et al. Effect of sperm storage and selection techniques on sperm parameters
Morris Cryopreservation: an introduction to cryopreservation in culture collections
US20090029340A1 (en) Cryoprotective Compositions and Methods of Using Same
US3940943A (en) Multistage freezing system for preservation of biological materials
AU750589B2 (en) Method and apparatus for cryopreservation
RU2317703C1 (ru) Способ криоконсервирования спермы осетровых рыб
Curry Cryopreservation of mammalian semen
Hwang et al. Freezing and viability of Tetrahymena pyriformis in dimethylsulfoxide
Hwang et al. Investigation of ultra-low temperature for fungal cultures. II. Cryoprotection afforded by glycerol and dimethyl sulfoxide to 8 selected fungal cultures
Fulton et al. Preservation of Entamoeba Histolytica at− 79° C. in the Presence of Glycerol
US4965186A (en) Method for low-temperature preservation of spermatozoa
MORIGUCHI et al. Freeze-preservation of dormant pear shoot apices
SU1076054A1 (ru) Способ криоконсервировани живых одноклеточных организмов
Stănescu et al. Freezing of dog’s sperm: a review
Hwang Freezing and storage of nematodes in liquid nitrogen
Dupesh et al. Human Sperm Freezing: Mini Update
Duplaix et al. Effects of type of freeze straw and thaw temperature on the fertilizing capacity of frozen chicken semen
Fuller et al. Cryopreservation for cell banking: current concepts at the turn of the 21st century
Nannou et al. Cryopreservation: Methods, equipment and critical concerns
Seki Importance of cooling versus warming rates in vitrification techniques
Duplaix et al. Effects of prefreeze treatments on the fertilizing capacity of unfrozen and frozen chicken semen: Extender characteristics and dilution method