SU1076034A1 - Способ выращивани растений томатов @ @ - Google Patents

Способ выращивани растений томатов @ @ Download PDF

Info

Publication number
SU1076034A1
SU1076034A1 SU813393766A SU3393766A SU1076034A1 SU 1076034 A1 SU1076034 A1 SU 1076034A1 SU 813393766 A SU813393766 A SU 813393766A SU 3393766 A SU3393766 A SU 3393766A SU 1076034 A1 SU1076034 A1 SU 1076034A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
medium
regeneration
explants
seedlings
plants
Prior art date
Application number
SU813393766A
Other languages
English (en)
Inventor
Лиана Камиловна Чернова
Геннадий Иванович Седов
Original Assignee
Отдел Генетики Растений Ан Мсср
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Отдел Генетики Растений Ан Мсср filed Critical Отдел Генетики Растений Ан Мсср
Priority to SU813393766A priority Critical patent/SU1076034A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1076034A1 publication Critical patent/SU1076034A1/ru

Links

Landscapes

  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

1. СПОСОБ ВЫРАЙЩВАНИЯ РАСТЕНИЙ ТОМАТОВ IN VITRO, включающий получение эксплантатов, выращивание из них первичного каллуса, культивирование его в среде дл  регенерации ,в услови х, способствующих образованию стеблевых почек и проростков, доращивание полученных стеблевых почек на среде с уменьшенным вдвое содержанием макросолей без гормонов и последующую высадку в грунт, отличающийс  тем, что, с целью ускорени  процесса выращивани  и увеличени  выхода растений, эксплантаты культивируют непосредственно на среде дл  регенерации, при этом культивирование провод т первые 7-10 сут в темноте. 2.Способ по п. 1, отличающийс  тем, что в качестве эксплантата испольэуют листь  проростков . 3.Способ по п. 1, о т л и ч а ющ и и с   тем, что среда дл  регеi нерации представл ет собой модифицированную среду Мурасиге и Скуга, (Л котора  содержит кинетина 4 мг/л, а индолилуксусной кислоты 0,4 мг/л. С

Description

о
оо
4
} зобретение относитс  к сельском хоз йству и может быть использовано g селекции и семеноводстве растений в частности селекции томатов, в исследовани х по генетике: фитопатологии и физиологии растений.
Известен способ размножени  на искусственной питательной среде клевера, согласно которому в качестве исходного материала используют листочки растений с надрезами,по всей плоскости листовой пластинки, которые 2-3 недели инкубируют на агариЗованной питательной среде Гамборга Bj с добавлением нитрата аммони , 2,4-«дихлорфеноксиуксусной кислоты (8-16 мг/л), кинетина (.6-10 мг/л) и нафтилуксусной кислоты (0,1-0,5 мг/л) .при непрерывном освещении люминесцентными лампами с последующей пересадкой на ту же питательную среду, но без нитрата аммони , в которой вышеназванных тр гормона заменены одним бензиламинопурином (0,2-0,8 мг/л). На этой среде они культивируютс  в те же услови х в течение двух-четырех недель до по влени  зеленых стебле .вых почек и проростков., которые Леренос т на агаризованную среду Гамборга Е, разбавленную вдвое без гормонов си.
Известен способ размножени  на искусственных питательных средах растений культурных и диких видов томатов, согласно которому отрезки сем долей, листьев и стеблей стерильных проростков томатов дл  получени  первичного каллуса высаживают на среду Мурасиге и Скуга с высоким содержанием гормонов (ауксина ИУК 16 мг/л , кинетина 4 мг/л, аденина 40 мг/л) и инкубируют при 24-26 0 под лампами дневного света 3-4 над. Затем дл  меристематизации образовавшегос  каллу его перенос т в условий повышенног освещени  (5-10 тыс.люкс и выше) н среду дл  регенерации (6-8 мг/л кинетина и 5-6 мг/л ИУК) либо остал ют на исходной среде. При этом стеблевые почки и проростки образуютс  у 15-25% полученных каллусов. Затем проростки пересаживают на среду дл  корнеобразовани  без гормонов и с пониженным содержанием агар-агара. Регенеранты с корн ми высаживают сначала в вермикулит с питательным раствором Кнопа, а затем (через 5-7 дней) в обычный грунт.
Получение регенерантов по данному способу требует в лучшем случае около 70 дней (всего из тыс чи с лишним каллусов получено 50 растений сорта Бизон 12 растений вида L.peruvianum и Одно растение вида L.hirsutum) С23
Недостатками этого способа  вл ютс  низкие продуктивность и надежность и оольшие временные затраты.
Цель изобретени  - ускорение процесса выращивани .
Поставленна  цель достигаетс  тем, что согласно способу выращивани  растений томатов in vitro эксплантаты культивируют непосредственно на среде дл  регенерации при этом культивирование провод т первые 710 сут в темноте. .Причем в качестве эксплантата используют листь  проростков.
Кроме того, среда дл  регенерации представл ет собой модифицированную среду Мурасиге и Скуга, котора  содержит -канетина 4 мг/л, а индолилуксусной кислоты 0,4 мг/л.
Способ осуществл ют следующим образом.
Материал инкубируют 7-10 сут в полной темноте при 25-27 С и относительной влажности воздуха 95-100% в закрытых прозрачных сосудах. К концу этого периода на утопленной в среде части черешка образуетс  тканевой наплый с этиолированными стеклевыми почками и отдельными проростками до 2/3 мм длиной. Затем сосуды с указанными эксплантатами перевод т в услови  16-часового фотопериода при освещенности 30005000 лк и той же температуре, после чего этиолированные стеблевые почки ,и проростки зеленеют и начинают быстро расти и развиватьс . Обычно у основани  черешка наиболее активно развиваетс  1-3 регенеранта, которые начинают доминировать, подавл   развитие менее развитых регенерантов и неразвившихс  стеблевых почек, достига  через две-три/недели 1-2 см
Размножившеес  у основани  черешк регенеранты и стеблевые почки расчлен ют и рассаживают на агаризованную , разбавленную вдвое среду Мурасиге и Скуга без гормонов дл  доращивани  и укоренени . При тех же температурных услови х и фотопериоде выращивание на данной среде продолжают еще одну-две недели до по влени  у регенерантов 2-,3 листьев и корКей, после чего их пересаживают в почвенно-торф ную смесь с рН 5-6,5 и выращивают в обычных услови х.
В случае необ содимости одновременого получени  большего количества одновозрастных регенерантов ткань со сформировавшимис  стеблевыми почкс1Ми и проростками отдел ют от листа-питател , дроб т на несколько кусочков, пересаживают на исходную среду дл  регенерации.и культивирую в указанных выше услови х фотопернода . При этом в течение 10-15 дн объем этих кусочков и количество
стеблевых почек и проростков можно повторить несколько раз, после чего эксплантаты расчлен ют на отдельные регенеранты и стеблевые почки и высаживают на среду дл  доращйвани  и укоренени . В этом случае добавл етс  определенное количество циклов, что снижает скорость получени  взрослых регенерантов . Однако благодар  размножению меристематических очагов при дроблении и последующем культивировании эксплантатов на среде дл  регенера .ции неограниченно возрастает количество получаемых регенерантов.
Пример 1. Листочки стерильных проростков гибрида М 394хм 504
высаживают на вышеупом нутую среду , дл  регенерации, фиксиру  их вертикально , погружени  среза черешка в среду на 1,5-2 IVIM. Высаг женный материал дел т на две части.
Первую часть (вариант) инкубируют в услови х 16-часового фотопериода, вторую (вариант П) - первые 10 сут инкубируют в полной темноте, а затем также перенос т в услови 
того же фотопериода. Интенсивность регенерации оценивают по 5-балльной шкале.
Результаты, полученные в обоих вариантах опытов представлены в таб. 1 .
Таблица
С первичным действием темноты
В услови х фотопериода
Таким образом, первоначальный темновой период инкубации способствует повышению интенсивности и сокращению сроков регенерации.
Пример 2. На вышеуказанную среду дл  регенерации высаживают листочки стерильных проростков томатов гибрида Мо393хМо504, которые фиксируют вертикально путем погружени  среза черешка в среду на 1,5100
100
Из данных табл. 2 следует, что использс5вание структурно целостного листочка по сравнению с высечкой листа также приводит к повышению, интенсивности и сокращению сроков регенерации.
Пример 3. На среду регенерации высаживают листочки стерильных
5,0
1-2
X
3-4
1,4
2 мм и высечки аналогичных листочков диаметром 0,8 мм помеща  на поверхность среды. Ьба варианта культивируют 10 сут в темноте, а затем перенос т в услови  16-часового фотопериода . Интенсивность регенерации также оценивают в 5-балльной шкале.
Результаты опыта представлены в табл. 2.
Таблица 2
1-2
5,0 2-4 2,8
проростков гибрида Мо393хМо504 и помещают на 10 сут в услови  абсолютной темноты. По истечении темнового периода инкубации материал опыта делили на три части (варианта). Первый вариант перенос т в услови  фотопериода, второй и третий оставл ют еще на 10 сут в темноте, причем
у третьего на среде оставл ют лишь ткань с этиолированными стеблевыми почками и проростками, образующуюс  на срезе черешка, а сам листочек удал ют. По истечении указанного времени второй и третий варианты также перенос т в услови  16-часового фотопериода. Две недели спуст  по п тибалльной шкале оценивают регнерационную способность эксплантато трех.вариантов. Регенерационна  способность эксплантатов первого варианта .5, второго 3,2 и третьего 1,6 балла.. Таким образом-, Оптимальное врем  первичной иикубации в темноте равно приблизительно 10 сут, поскольку увеличение этого времени приводит к существенному понижению регенерационной способности эксплантатов . Удаление листочка от образовавшейс  на срезе черешка ткани с этиолированными стеблевыми почками
. и проростками приводит к еще боль-, шему понижению регенерационной способности эксплантата.
Пример 4. На среду дл  регенерации высаживают листочки стерильных проростков томатов Мо393хМо504, инкубируют 10 сут в темноте, затем перенос т в услови  фотопериода. Спуст  две недели опыт делили на две части (варианты| В первом варианте образовавшиес  D тканевом наплыве на срезе черешка доминирующие регенеранты (1-3 шт) и стеблевые почки (7-10 шт отдел ют,
и высаживают на разбавленную вдвое агаризованную среду Мурасиге и Скуга без гормонов и продолжают инкубировать в тех же услови х. Во втором варианте от основани  черешка отдел ют и высаживают на разбавленную среду Мурасиге и Скуга только доминирующие регенеранты, а тканевый наплыв с оставшимис 
недоразвитыми проростками, стеблевыми почками и листочком-питателем оставл ют на исходной среде и продолжают его культивирование в услови х фотопериода . Спуст  2-3 недели от каждого подвергавшегос  дроблению эксплантата получено в среднем 10 развившихс  регенерантов, а на эксплантатах же второго варианта развились доминирующие регенеранты (1-3 шт. в среднем на эксплантат). Затем операцию отделени  регенерантов повтор ют , после чего эксплантаты продолжают культивироватьс  в тех жеуслови х до образовани  новых регенерантов и т.д.
Таким образом, в первом варианте опыта за 30-40 дней от каждого эксплантата получено в среднем 10 регенерантов , во втором варианте за 45-75 дн-4 регенеранта.
Предлагаемый способ испытан помимо указанных опытов на томатах сортов Новинка Приднестровь  и Ранний-83, мутантах Мо393 и Мо50Ю, диких видах L.hirsutum и Solanum pennellii , а также их гибридах с сортом Новинка Приднестровь  и мутантом МоБОО, вз тыми в качестве материальной формы. Регенерационна  способность Q культурных сортов и мутантов в 1,52 раза ниже, чем дикарей и гибридов, из каждого эксплантата которых получено в среднем 10 регенерантов.
Примен   два типа питательных сред, темновой первоначальный период и систему лист-питатель-ткань с регенерантами в течение 30-40 дней от каждого эксплантата получили 5-10 сформировавшихс  растений-регенерантов , которые будучи высаженными в почвенно-торф ную смесь развивались здоровыми и морфологически не отличались от исходных.

Claims (3)

1. СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ РАСТЕНИЙ ТОМАТОВ IN VITRO, включающий получение эксплантатов, выращивание из них первичного каллуса, культивирование его в среде для регенерации в условиях, способствующих образованию стеблевых почек и проростков, доращивание полученных стеблевых почек на среде с уменьшенным вдвое содержанием макросолей без гормонов и последующую высадку в грунт, отличающийся тем, что, с целью ускорения процесса выращивания и увеличения выхода растений, эксплантаты культивируют непосредственно на среде для регенерации, при этом культивирование проводят первые 7-10 сут в темноте.
2. Способ поп. 1, отличающийся тем, что в качестве эксплантата используют листья пророст ков .
3. Способ по π. 1, о т л и чающий с я тем, что среда для регенерации представляет собой модифицированную среду Мурасиге и Скуга, которая содержит кинетина 4 мг/л, а индолилуксусной кислоты 0,4 мг/л.
SS
SU813393766A 1981-11-12 1981-11-12 Способ выращивани растений томатов @ @ SU1076034A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU813393766A SU1076034A1 (ru) 1981-11-12 1981-11-12 Способ выращивани растений томатов @ @

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU813393766A SU1076034A1 (ru) 1981-11-12 1981-11-12 Способ выращивани растений томатов @ @

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1076034A1 true SU1076034A1 (ru) 1984-02-29

Family

ID=20996498

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU813393766A SU1076034A1 (ru) 1981-11-12 1981-11-12 Способ выращивани растений томатов @ @

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1076034A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0377759A1 (de) * 1988-06-16 1990-07-18 Estonsky Nauchno-Issledovatelsky Institut Zemledelia I Melioratsii Verfahren zur vermehrung und zum pflanzen von kartoffeln

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0377759A1 (de) * 1988-06-16 1990-07-18 Estonsky Nauchno-Issledovatelsky Institut Zemledelia I Melioratsii Verfahren zur vermehrung und zum pflanzen von kartoffeln
EP0377759A4 (en) * 1988-06-16 1991-01-23 Estonian Research Institute Of Agriculture And Land Improvement Method of reproducing and planting potatoes

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Drew Rapid clonal propagation of papaya in vitro from mature field-grown trees
Gardner et al. Development of the young wheat spike: a SEM study of Chinese spring wheat
US5008200A (en) Propagating multiple whole fertile plants from immature leguminous
Eapen et al. Plant regeneration from peduncle segments of oil seed Brassica species: influence of silver nitrate and silver thiosulfate
Mantell et al. Clonal multiplication of Dioscorea alata L. and Dioscorea rotundata Poir. yams by tissue culture
Hussey et al. Plant production in pea (Pisum sativum L. cvs. Puget and Upton) from long-term callus with superficial meristems
US4038778A (en) Tissue culture technique for asexual plant reproduction and a medium for use therewith
WILLIAMS et al. Embryogenesis and plantlet formation in tissue cultures of celery
Munyon et al. Origin of plantlets and callus obtained from chile pepper anther cultures
Kantharajah et al. In vitro micropropagation of Passiflora edulis (purple passionfruit)
Chow et al. Stimulation by sucrose of Narcissus bulbil formation in vitro
Skene et al. In vitro culture of abscissed immature avocado embryos
Dale A method for in vitro storage of Lolium multiflorum Lam
Koevary et al. Tissue Culture Propagation of Head Lettuce1
Dunstan et al. Shoot production from the flower head of Allium cepa L.
Otani et al. Somatic embryogenesis and plant regeneration from Cyclamen persicum Mill. leaf cultures
Trigiano et al. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration in Cornus florida
RU2080780C1 (ru) Способ клонального микроразмножения растений
Harazy et al. In vitro propagation of statice as an aid to breeding
AU609717B2 (en) Plant generation method
Hu Holly (Ilex spp.)
SU1076034A1 (ru) Способ выращивани растений томатов @ @
Pierik et al. Vegetative propagation
Lee et al. In vitro regeneration of plantlets in Fagraea fragrans Roxb.—a tropical tree
John et al. Sitka spruce (Picea sitchensis (Bong.) Carr.)