SU1076034A1 - Способ выращивани растений томатов @ @ - Google Patents
Способ выращивани растений томатов @ @ Download PDFInfo
- Publication number
- SU1076034A1 SU1076034A1 SU813393766A SU3393766A SU1076034A1 SU 1076034 A1 SU1076034 A1 SU 1076034A1 SU 813393766 A SU813393766 A SU 813393766A SU 3393766 A SU3393766 A SU 3393766A SU 1076034 A1 SU1076034 A1 SU 1076034A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- medium
- regeneration
- explants
- seedlings
- plants
- Prior art date
Links
Landscapes
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
1. СПОСОБ ВЫРАЙЩВАНИЯ РАСТЕНИЙ ТОМАТОВ IN VITRO, включающий получение эксплантатов, выращивание из них первичного каллуса, культивирование его в среде дл регенерации ,в услови х, способствующих образованию стеблевых почек и проростков, доращивание полученных стеблевых почек на среде с уменьшенным вдвое содержанием макросолей без гормонов и последующую высадку в грунт, отличающийс тем, что, с целью ускорени процесса выращивани и увеличени выхода растений, эксплантаты культивируют непосредственно на среде дл регенерации, при этом культивирование провод т первые 7-10 сут в темноте. 2.Способ по п. 1, отличающийс тем, что в качестве эксплантата испольэуют листь проростков . 3.Способ по п. 1, о т л и ч а ющ и и с тем, что среда дл регеi нерации представл ет собой модифицированную среду Мурасиге и Скуга, (Л котора содержит кинетина 4 мг/л, а индолилуксусной кислоты 0,4 мг/л. С
Description
о
оо
4
} зобретение относитс к сельском хоз йству и может быть использовано g селекции и семеноводстве растений в частности селекции томатов, в исследовани х по генетике: фитопатологии и физиологии растений.
Известен способ размножени на искусственной питательной среде клевера, согласно которому в качестве исходного материала используют листочки растений с надрезами,по всей плоскости листовой пластинки, которые 2-3 недели инкубируют на агариЗованной питательной среде Гамборга Bj с добавлением нитрата аммони , 2,4-«дихлорфеноксиуксусной кислоты (8-16 мг/л), кинетина (.6-10 мг/л) и нафтилуксусной кислоты (0,1-0,5 мг/л) .при непрерывном освещении люминесцентными лампами с последующей пересадкой на ту же питательную среду, но без нитрата аммони , в которой вышеназванных тр гормона заменены одним бензиламинопурином (0,2-0,8 мг/л). На этой среде они культивируютс в те же услови х в течение двух-четырех недель до по влени зеленых стебле .вых почек и проростков., которые Леренос т на агаризованную среду Гамборга Е, разбавленную вдвое без гормонов си.
Известен способ размножени на искусственных питательных средах растений культурных и диких видов томатов, согласно которому отрезки сем долей, листьев и стеблей стерильных проростков томатов дл получени первичного каллуса высаживают на среду Мурасиге и Скуга с высоким содержанием гормонов (ауксина ИУК 16 мг/л , кинетина 4 мг/л, аденина 40 мг/л) и инкубируют при 24-26 0 под лампами дневного света 3-4 над. Затем дл меристематизации образовавшегос каллу его перенос т в условий повышенног освещени (5-10 тыс.люкс и выше) н среду дл регенерации (6-8 мг/л кинетина и 5-6 мг/л ИУК) либо остал ют на исходной среде. При этом стеблевые почки и проростки образуютс у 15-25% полученных каллусов. Затем проростки пересаживают на среду дл корнеобразовани без гормонов и с пониженным содержанием агар-агара. Регенеранты с корн ми высаживают сначала в вермикулит с питательным раствором Кнопа, а затем (через 5-7 дней) в обычный грунт.
Получение регенерантов по данному способу требует в лучшем случае около 70 дней (всего из тыс чи с лишним каллусов получено 50 растений сорта Бизон 12 растений вида L.peruvianum и Одно растение вида L.hirsutum) С23
Недостатками этого способа вл ютс низкие продуктивность и надежность и оольшие временные затраты.
Цель изобретени - ускорение процесса выращивани .
Поставленна цель достигаетс тем, что согласно способу выращивани растений томатов in vitro эксплантаты культивируют непосредственно на среде дл регенерации при этом культивирование провод т первые 710 сут в темноте. .Причем в качестве эксплантата используют листь проростков.
Кроме того, среда дл регенерации представл ет собой модифицированную среду Мурасиге и Скуга, котора содержит -канетина 4 мг/л, а индолилуксусной кислоты 0,4 мг/л.
Способ осуществл ют следующим образом.
Материал инкубируют 7-10 сут в полной темноте при 25-27 С и относительной влажности воздуха 95-100% в закрытых прозрачных сосудах. К концу этого периода на утопленной в среде части черешка образуетс тканевой наплый с этиолированными стеклевыми почками и отдельными проростками до 2/3 мм длиной. Затем сосуды с указанными эксплантатами перевод т в услови 16-часового фотопериода при освещенности 30005000 лк и той же температуре, после чего этиолированные стеблевые почки ,и проростки зеленеют и начинают быстро расти и развиватьс . Обычно у основани черешка наиболее активно развиваетс 1-3 регенеранта, которые начинают доминировать, подавл развитие менее развитых регенерантов и неразвившихс стеблевых почек, достига через две-три/недели 1-2 см
Размножившеес у основани черешк регенеранты и стеблевые почки расчлен ют и рассаживают на агаризованную , разбавленную вдвое среду Мурасиге и Скуга без гормонов дл доращивани и укоренени . При тех же температурных услови х и фотопериоде выращивание на данной среде продолжают еще одну-две недели до по влени у регенерантов 2-,3 листьев и корКей, после чего их пересаживают в почвенно-торф ную смесь с рН 5-6,5 и выращивают в обычных услови х.
В случае необ содимости одновременого получени большего количества одновозрастных регенерантов ткань со сформировавшимис стеблевыми почкс1Ми и проростками отдел ют от листа-питател , дроб т на несколько кусочков, пересаживают на исходную среду дл регенерации.и культивирую в указанных выше услови х фотопернода . При этом в течение 10-15 дн объем этих кусочков и количество
стеблевых почек и проростков можно повторить несколько раз, после чего эксплантаты расчлен ют на отдельные регенеранты и стеблевые почки и высаживают на среду дл доращйвани и укоренени . В этом случае добавл етс определенное количество циклов, что снижает скорость получени взрослых регенерантов . Однако благодар размножению меристематических очагов при дроблении и последующем культивировании эксплантатов на среде дл регенера .ции неограниченно возрастает количество получаемых регенерантов.
Пример 1. Листочки стерильных проростков гибрида М 394хм 504
высаживают на вышеупом нутую среду , дл регенерации, фиксиру их вертикально , погружени среза черешка в среду на 1,5-2 IVIM. Высаг женный материал дел т на две части.
Первую часть (вариант) инкубируют в услови х 16-часового фотопериода, вторую (вариант П) - первые 10 сут инкубируют в полной темноте, а затем также перенос т в услови
того же фотопериода. Интенсивность регенерации оценивают по 5-балльной шкале.
Результаты, полученные в обоих вариантах опытов представлены в таб. 1 .
Таблица
С первичным действием темноты
В услови х фотопериода
Таким образом, первоначальный темновой период инкубации способствует повышению интенсивности и сокращению сроков регенерации.
Пример 2. На вышеуказанную среду дл регенерации высаживают листочки стерильных проростков томатов гибрида Мо393хМо504, которые фиксируют вертикально путем погружени среза черешка в среду на 1,5100
100
Из данных табл. 2 следует, что использс5вание структурно целостного листочка по сравнению с высечкой листа также приводит к повышению, интенсивности и сокращению сроков регенерации.
Пример 3. На среду регенерации высаживают листочки стерильных
5,0
1-2
X
3-4
1,4
2 мм и высечки аналогичных листочков диаметром 0,8 мм помеща на поверхность среды. Ьба варианта культивируют 10 сут в темноте, а затем перенос т в услови 16-часового фотопериода . Интенсивность регенерации также оценивают в 5-балльной шкале.
Результаты опыта представлены в табл. 2.
Таблица 2
1-2
5,0 2-4 2,8
проростков гибрида Мо393хМо504 и помещают на 10 сут в услови абсолютной темноты. По истечении темнового периода инкубации материал опыта делили на три части (варианта). Первый вариант перенос т в услови фотопериода, второй и третий оставл ют еще на 10 сут в темноте, причем
у третьего на среде оставл ют лишь ткань с этиолированными стеблевыми почками и проростками, образующуюс на срезе черешка, а сам листочек удал ют. По истечении указанного времени второй и третий варианты также перенос т в услови 16-часового фотопериода. Две недели спуст по п тибалльной шкале оценивают регнерационную способность эксплантато трех.вариантов. Регенерационна способность эксплантатов первого варианта .5, второго 3,2 и третьего 1,6 балла.. Таким образом-, Оптимальное врем первичной иикубации в темноте равно приблизительно 10 сут, поскольку увеличение этого времени приводит к существенному понижению регенерационной способности эксплантатов . Удаление листочка от образовавшейс на срезе черешка ткани с этиолированными стеблевыми почками
. и проростками приводит к еще боль-, шему понижению регенерационной способности эксплантата.
Пример 4. На среду дл регенерации высаживают листочки стерильных проростков томатов Мо393хМо504, инкубируют 10 сут в темноте, затем перенос т в услови фотопериода. Спуст две недели опыт делили на две части (варианты| В первом варианте образовавшиес D тканевом наплыве на срезе черешка доминирующие регенеранты (1-3 шт) и стеблевые почки (7-10 шт отдел ют,
и высаживают на разбавленную вдвое агаризованную среду Мурасиге и Скуга без гормонов и продолжают инкубировать в тех же услови х. Во втором варианте от основани черешка отдел ют и высаживают на разбавленную среду Мурасиге и Скуга только доминирующие регенеранты, а тканевый наплыв с оставшимис
недоразвитыми проростками, стеблевыми почками и листочком-питателем оставл ют на исходной среде и продолжают его культивирование в услови х фотопериода . Спуст 2-3 недели от каждого подвергавшегос дроблению эксплантата получено в среднем 10 развившихс регенерантов, а на эксплантатах же второго варианта развились доминирующие регенеранты (1-3 шт. в среднем на эксплантат). Затем операцию отделени регенерантов повтор ют , после чего эксплантаты продолжают культивироватьс в тех жеуслови х до образовани новых регенерантов и т.д.
Таким образом, в первом варианте опыта за 30-40 дней от каждого эксплантата получено в среднем 10 регенерантов , во втором варианте за 45-75 дн-4 регенеранта.
Предлагаемый способ испытан помимо указанных опытов на томатах сортов Новинка Приднестровь и Ранний-83, мутантах Мо393 и Мо50Ю, диких видах L.hirsutum и Solanum pennellii , а также их гибридах с сортом Новинка Приднестровь и мутантом МоБОО, вз тыми в качестве материальной формы. Регенерационна способность Q культурных сортов и мутантов в 1,52 раза ниже, чем дикарей и гибридов, из каждого эксплантата которых получено в среднем 10 регенерантов.
Примен два типа питательных сред, темновой первоначальный период и систему лист-питатель-ткань с регенерантами в течение 30-40 дней от каждого эксплантата получили 5-10 сформировавшихс растений-регенерантов , которые будучи высаженными в почвенно-торф ную смесь развивались здоровыми и морфологически не отличались от исходных.
Claims (3)
1. СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ РАСТЕНИЙ ТОМАТОВ IN VITRO, включающий получение эксплантатов, выращивание из них первичного каллуса, культивирование его в среде для регенерации в условиях, способствующих образованию стеблевых почек и проростков, доращивание полученных стеблевых почек на среде с уменьшенным вдвое содержанием макросолей без гормонов и последующую высадку в грунт, отличающийся тем, что, с целью ускорения процесса выращивания и увеличения выхода растений, эксплантаты культивируют непосредственно на среде для регенерации, при этом культивирование проводят первые 7-10 сут в темноте.
2. Способ поп. 1, отличающийся тем, что в качестве эксплантата используют листья пророст ков .
3. Способ по π. 1, о т л и чающий с я тем, что среда для регенерации представляет собой модифицированную среду Мурасиге и Скуга, которая содержит кинетина 4 мг/л, а индолилуксусной кислоты 0,4 мг/л.
SS
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU813393766A SU1076034A1 (ru) | 1981-11-12 | 1981-11-12 | Способ выращивани растений томатов @ @ |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU813393766A SU1076034A1 (ru) | 1981-11-12 | 1981-11-12 | Способ выращивани растений томатов @ @ |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1076034A1 true SU1076034A1 (ru) | 1984-02-29 |
Family
ID=20996498
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU813393766A SU1076034A1 (ru) | 1981-11-12 | 1981-11-12 | Способ выращивани растений томатов @ @ |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1076034A1 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0377759A1 (de) * | 1988-06-16 | 1990-07-18 | Estonsky Nauchno-Issledovatelsky Institut Zemledelia I Melioratsii | Verfahren zur vermehrung und zum pflanzen von kartoffeln |
-
1981
- 1981-11-12 SU SU813393766A patent/SU1076034A1/ru active
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0377759A1 (de) * | 1988-06-16 | 1990-07-18 | Estonsky Nauchno-Issledovatelsky Institut Zemledelia I Melioratsii | Verfahren zur vermehrung und zum pflanzen von kartoffeln |
EP0377759A4 (en) * | 1988-06-16 | 1991-01-23 | Estonian Research Institute Of Agriculture And Land Improvement | Method of reproducing and planting potatoes |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Drew | Rapid clonal propagation of papaya in vitro from mature field-grown trees | |
Gardner et al. | Development of the young wheat spike: a SEM study of Chinese spring wheat | |
US5008200A (en) | Propagating multiple whole fertile plants from immature leguminous | |
Eapen et al. | Plant regeneration from peduncle segments of oil seed Brassica species: influence of silver nitrate and silver thiosulfate | |
Mantell et al. | Clonal multiplication of Dioscorea alata L. and Dioscorea rotundata Poir. yams by tissue culture | |
Hussey et al. | Plant production in pea (Pisum sativum L. cvs. Puget and Upton) from long-term callus with superficial meristems | |
US4038778A (en) | Tissue culture technique for asexual plant reproduction and a medium for use therewith | |
WILLIAMS et al. | Embryogenesis and plantlet formation in tissue cultures of celery | |
Munyon et al. | Origin of plantlets and callus obtained from chile pepper anther cultures | |
Kantharajah et al. | In vitro micropropagation of Passiflora edulis (purple passionfruit) | |
Chow et al. | Stimulation by sucrose of Narcissus bulbil formation in vitro | |
Skene et al. | In vitro culture of abscissed immature avocado embryos | |
Dale | A method for in vitro storage of Lolium multiflorum Lam | |
Koevary et al. | Tissue Culture Propagation of Head Lettuce1 | |
Dunstan et al. | Shoot production from the flower head of Allium cepa L. | |
Otani et al. | Somatic embryogenesis and plant regeneration from Cyclamen persicum Mill. leaf cultures | |
Trigiano et al. | Somatic embryogenesis and plantlet regeneration in Cornus florida | |
RU2080780C1 (ru) | Способ клонального микроразмножения растений | |
Harazy et al. | In vitro propagation of statice as an aid to breeding | |
AU609717B2 (en) | Plant generation method | |
Hu | Holly (Ilex spp.) | |
SU1076034A1 (ru) | Способ выращивани растений томатов @ @ | |
Pierik et al. | Vegetative propagation | |
Lee et al. | In vitro regeneration of plantlets in Fagraea fragrans Roxb.—a tropical tree | |
John et al. | Sitka spruce (Picea sitchensis (Bong.) Carr.) |