SU1071306A1 - Method of preparing sorbent for cleaning viral suspensions - Google Patents

Method of preparing sorbent for cleaning viral suspensions Download PDF

Info

Publication number
SU1071306A1
SU1071306A1 SU813359928A SU3359928A SU1071306A1 SU 1071306 A1 SU1071306 A1 SU 1071306A1 SU 813359928 A SU813359928 A SU 813359928A SU 3359928 A SU3359928 A SU 3359928A SU 1071306 A1 SU1071306 A1 SU 1071306A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
virus
sorbent
cleaning
reduce
order
Prior art date
Application number
SU813359928A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Вера Николаевна Борисова
Игорь Владимирович Красильников
Борис Викторович Мчедлишвили
Левон Арутюнович Нахапетян
Леонид Борисович Эльберт
Original Assignee
Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов АМН СССР
Всесоюзный Научно-Исследовательский Биотехнический Институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов АМН СССР, Всесоюзный Научно-Исследовательский Биотехнический Институт filed Critical Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов АМН СССР
Priority to SU813359928A priority Critical patent/SU1071306A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1071306A1 publication Critical patent/SU1071306A1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Abstract

1. СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СОРБЕНТА ДЛЯ ОЧИСТКИ ВИРУСНЫХ СУСПЕНЗИЙ, вклю-1 чающий обработку кремнеземсодержащего материала - змишпрошиприэтоксиашаном и нитри- том натри  в присутствии кислоты, о т л и ч a ю щ ии с   тем, что, с целью снижени  сорбционной способности к вирусам, после обработки смесью нитрита натри  и кислоты, кремнеземсодержгщий А/ териал подвергают взаимодействию с N-винилпирролидоном или его водным раствором в присутствии сол ной кислоты. ; 2. Способ по п. 1, о т л и ч a ю щ и и с   тем, что используют водный раствор N-винилаирролидона с концентрацией  е ниже 30%. 1. METHOD FOR OBTAINING SORBENT FOR CLEANING VIRAL SUSPENSIONS, including treatment of silica-containing material - immiscible, and sodium nitrite in the presence of acid, in order to reduce the sorption capacity of the virus, in order to reduce the sorption capacity of the virus, in order to reduce sorption capacity for the virus, in order to reduce sorption capacity for the virus, after being treated with a mixture of sodium nitrite and acid, the silica-containing A / material is reacted with N-vinyl pyrrolidone or its aqueous solution in the presence of hydrochloric acid. ; 2. The method according to p. 1, about tl and h a y i and with the fact that you use an aqueous solution of N-vinylairrolidone concentration e below 30%.

Description

СОWITH

о аabout a

Изобретение относитс  к способу получени  сорбента дл  очистки вирусных суспензий и может быть использовано при производстве вирусных антигенов и вакцин.The invention relates to a method for the preparation of a sorbent for the purification of viral suspensions and can be used in the production of viral antigens and vaccines.

Известен способ получени  сорбента дл  очис 5 тки вирусных сзп:пензкй, включающий многократную обработку макропористого кремнезема раствором поливинилпирролидона с последующей ермообработкой в течение 24 ч 1.A known method for the preparation of a sorbent for cleansing viral cpd: penzky includes multiple processing of macroporous silica with a solution of polyvinylpyrrolidone followed by heat treatment for 24 hours 1.

Однако известный способ длителен. Недос- )0 таточна  стабильность получаемого сорбента, бусловленна  непро шоЙ св зью кремнезема, риводит к эагр зне}Шю вирусной суспензии одифицирующим агентом.However, the known method is long lasting. Insufficiency of the resulting sorbent, due to the indirect linkage of silica, leads to the aggravation of the virus suspension with the odifferent agent.

Наиболее близкшл к оредпагаемому по тех- tS нической сущности и достигаемому результату вл етс  способ получени  сорбента njrreM поледовательной обработки стеклаJf -аминотризтоксисиланом и смесью нитрита натри  и со ной кислоты {2J.20The closest to the technical essence and the achieved result is the method of obtaining the njrreM sorbent for the superficial treatment of glass Jf-aminotryththoxysilane and a mixture of sodium nitrite and hydrochloric acid {2J.20

Получаемый сорбент с оксипропильш.1ми руппами сорбирует Не только примесные белки из очищаемой вирусной суспензии, но и вирус-: ttbie частицы, что пршодит к снижению выходов вируса.25The resulting sorbent with hydroxypropyl. 1 rups does not only absorb impurity proteins from the viral suspension being purified, but also virus-: ttbie particles, which leads to a decrease in virus yields.25

Цель изобретени  - снижение сорбционной способности к вирусам.The purpose of the invention is to reduce the sorption capacity for viruses.

Поставленна  цель достигаетс  тем, что согласно способу получени  сорбента дл  очистки BHpyctox суспензий, включающему обработку зо кремиеземсодержащего материала -аминопро ; шштриэтоксисиланом и натри  в присутствии кислоты, после обработки смесью BMTpHta натри  и кислоты кремнеземсодержащий материал подвергают взаимодействию с N-виаилпирролидоном или его водным раствором в присутствии сол ной кислоты.This goal is achieved by the fact that according to the method of obtaining a sorbent for the purification of BHpyctox suspensions, including the processing of a cremiezem-containing material, α-aminopro; shstriethoxysilane and sodium in the presence of acid, after treatment with a mixture of BMTpHta sodium and acid, the silica-containing material is reacted with N-viylpyrrolidone or its aqueous solution in the presence of hydrochloric acid.

Используют водньш раствор N-винилпнрролидона с концентрацией не ниже 30%.;A water solution of N-vinylprolidone with a concentration of at least 30% is used;

Кремнеземсодержащий материал с оксипроцильными группами может быть также получен путем обработки оксипропилсиланом в виде триметилсилилового зфира или в виде эфуф  З ссусной кислоты с последующим удалением защитной групш.1.Silica-containing material with hydroxyprocyl groups can also be obtained by treating with hydroxypropylsilane in the form of trimethylsilyl sephira or in the form of efuf3 of sulfuric acid, followed by the removal of the protective group.

Пример 1. К 50 мл стекла МПС-. 2000 В прибавл ют 50 мл 5%-ного раствора, j -аминопрошштриэтоксисилана в ацетоне, перемешивают и выдерживают при 100 течение 6 ч. К модифицированному стеклу при-50 швают 100 мл 0,1 н. раствора сол ной кислоты и порци ми в течение 0,5 ч прибавл ют раствор 2 г шприха натри  в 10 мл воды, перемешивают) еще 2 ч и промьюают водой. Количество оксипропильных групп, определенное по разности 55 исходных и не вступивщнх в реакцию аминоTpymt , составл ет 0,4 мг-зкв/г. Не вступившие в реакщю аминогруппы отсутствуют.Example 1. To 50 ml of glass MPS-. 2000 To add 50 ml of a 5% solution, j-aminoproshtriethoxysilane in acetone, mix and keep at 100 for 6 hours. To a modified glass, 100 ml of 0.1N are heated at -50. A solution of 2 g of a sodium syringe in 10 ml of water is added in portions over a period of 0.5 h. The solution is stirred for another 2 h and washed with water. The amount of hydroxypropyl groups, determined from the difference between the 55 starting and unreacted aminoTpymt reactions, is 0.4 mg-ssv / g. Unreacted amino groups are absent.

К, 30 мл модифицированного стркла МПС-2000 В добавл ют 30 мл Ы-винилпирролидона и 0,1 мл концентрированной сол ной кислоты, перемешивают 2 ч, промывают водой, раствором бикарбоната натри  и снова водой. Контроль отмывани  модифицированного сорбента от не вступивщего в реакцию N-виншширролидона вед}гг по отсутствию поглощени  при 230 нм. Модифицированное стекло высутпивают на воздухе при бСРС. Содержание азота 0,59%. В ИК-спектре имеетс  интенсивна  пОлоса поглощени  при 1650 см (CO-MR).To, 30 ml of the modified MPS-2000 st row, 30 ml of N-vinyl pyrrolidone and 0.1 ml of concentrated hydrochloric acid are added, stirred for 2 hours, washed with water, sodium bicarbonate solution and again with water. Monitoring the washing of the modified sorbent from unreacted N-vinshirrolidone ved} yy by the absence of absorption at 230 nm. Modified glass is discharged in air at bSRC. Nitrogen content is 0.59%. The IR spectrum has an intense absorption band at 1650 cm (CO-MR).

Полученный сорбент внос т в хроматогрэфическую колонку размером 1 х 10 см, которую уравновешивают М г/шс-НС1 буфером с рН 7,8. В колонку ввод т 1 мл алантоисной жидкости, содержащей вирус гриппа А j Техас, и провод т элюирование буфером, подава  его со скоростью 2 МЛ/МИНслг. На выходе колонки собирают фраквдй объемом 1 мл.The resulting sorbent is introduced into a 1 × 10 cm chromatographic column, which is equilibrated with M g / cc-HCl buffer with a pH of 7.8. 1 ml of allantoic fluid containing the A j Texas influenza virus is injected into the column, and elution is carried out with buffer, feeding it at a rate of 2 ML / MINsg. At the outlet of the column, 1 ml frakddy is collected.

В 4 и 5-и фракци х злюата собирают 90% ощаденного вируса гриппа, примесные белки и низкомолекул рные вещества злюируютс  в 6-8-и фракци х элюата. Содержаний примесного белка в очищенной суспензии В1фуса гриппа составл ет 0,01 мл/мл (в исходной алантоисной жидкости 2,5 мг/мл), степень очистки 99,6%. Потери вирусного материала отсутствуют,In the 4th and 5th fractions of the zljuat, 90% of the polluted influenza virus is collected, impurity proteins and low molecular weight substances are zoned in 6-8 fractions of the eluate. The content of the impurity protein in the purified suspension of influenza B1fus is 0.01 ml / ml (in the initial alantoic liquid, 2.5 mg / ml), the purification rate is 99.6%. There is no loss of viral material,

Аналогично провод т ошстку вируса группы А/Виктори /72. Выход вируса 90%, степень очистки от примесных белков 99,2%..Similarly, virus A group / Victory / 72 is carried out. The virus yield is 90%, the degree of purification from impurity proteins is 99.2%.

Испытани  модиф Ицированного носител  показывают , что выход вируса гршша при очистке не зависит от щтамма.Trials of the Modified Enzymatic Carrier show that the release of the hrshrsh virus during cleaning does not depend on the market.

При использовании оксипропилстекла МПС-2000В в аналогичных услови х сорбируемоста вируса гриппа достигает 95%, соответственно шыход вирЗса 5%, Последаоощее промывание колонки 0,1 М Tpuc-UCl буфером с рН 8,6, содержащим 0,5 М MaCJj приводит к десорбции 40% внесенного в колонку вируса. Потери вирусного материала 55%,When using oxypropyl glass MPS-2000B in similar conditions of the flu virus's sorption capacity reaches 95%, respectively, the virus yield is 5%. Sequentially, washing the column with 0.1 M Tpuc-UCl buffer with a pH of 8.6 and containing 0.5 M MaCJj leads to desorption of 40 M % of virus added to the column. Loss of viral material 55%,

Пример 2. При модафицировашга стекла МПС-1000 В в услови х примера 1 получают стекло с содержанием оксипропильных групп 0,26 мг-экв/г.Example 2. When modifying the glass of MPS-1000 V under the conditions of example 1, a glass is obtained with a content of hydroxypropyl groups of 0.26 meq / g.

К 10 мл стекла МПС-1000 В с содержанием оксипропильных групп 0,26 мг экв/г добавл ют 20 мл 50%-ного водного растбора М -винилпирролидона и 0,2 мл концентрированной сол ной кислоты и дайее обработку ведут аналогично примеру 1. Получааот сорбент с содержанием азота 0,4%, который используют дл  выделе1ш  вируса клещевого знцефзжПа из культуральвой суспензии. Дл  этого колонку 0,8x12 см, заполненную полученньпл сорбентом, уравновешивают 0,1 М к ipuc-HCl буфером с рН 8,0. В нее ввод т 1 мл трусво& суспензии и злюируют указанным ,, скорость злюирова3107 ни  2 мл/мин см. В 3 и 4-и фракци х элюата собирают вирус, в 6-8-й фракхщ х элюируютс  вирусные белки. Выход вируса из колонки 95%. Содержание примесного белка в очищенном препарате вируса клещевого энцефалита 0,007 мг/мл (в исходаой суспензии 1,1 мг/мл) степень очистки 99,6%. При использовании оксн ропилстекла в анала; гичных услови х сорбирусмость вирусз клещево4 Го энцефалита 50%. Соответственно выход очи- , щенного вируса состгшл ет половину ot внесен .ного в колонку более жестких услови х (при использовании дл  э юйровани  вируса 0,1 М трис -ИС буфера с рН 8,5, содержащего Oi5 М NaCl ) десорбащ  вируса не наблюдаетс . 1 Пример 3. К 50 мл силохрома С-80 прибавл ют 50 мл 7%-ного раствора гс -аминопрогои1триэток (Лнсйлана в ацетоне и далее процесс ведут как в примере 1, количество оксш1ропильиь1Х групп 0,49 мг-экв/г.2 К, 30 мл модифицированного силохрома С-80 добавл ют 60 мл 30%-ного раствора N-jзиншI6 пирролидона и 0,2 мл концентрированной сол ной кислоты, далее обработку ведут анало гично примеру 1. Получают сорбент с содержанием азота 0,7%, которым загр окают колонку размером 0,8x12 см. Колонку уравновешивают 0,1 М фосфатньпл буфером с рН 8,0 и ввод т в нее 1 мл инактивированной суспензии вируса клещевого жцефалита (иммуногенность 27 ед. ПР . концентраци  белка 870 мкг/мл). Вирус элюирует фосфатным буфером , KOTOpbnti колонка уравновешена, элюат собирают во фракции объемом 1 мл. В 3 и 4-й фракци х элюата собирают очищенный вирус (23 ед. И , концентраци  белка 6 мкг/мл). В 6-8-й фракци х элюируютс  примесные белки. Выход вируса из колонки 85%, степень очистки от белков 99,2%. Таким образом, сорбент, получешп.1Й предложенным способом, позвол ет проводить эффективную очистку вирусных суспензий без потерь вирусного материала с высокой степенью очистки от примесных белков .20 ml of a 50% aqueous solution of M-vinyl pyrrolidone and 0.2 ml of concentrated hydrochloric acid are added to 10 ml of glass MPS-1000 V with the content of hydroxypropyl groups of 0.26 mg eq / g and concentrated treatment is carried out in analogy to Example 1. a sorbent with a nitrogen content of 0.4%, which is used to isolate tick-borne virus infection from a culture suspension. For this, a 0.8 x 12 cm column filled with the resulting sorbent is equilibrated with 0.1 M to ipuc-HCl buffer with a pH of 8.0. A 1 ml bottle & suspensions and zlyuyut specified, the speed of zlyuira-3107 2 ml / min. In the 3 and 4 fractions of the eluate the virus is collected, in the 6-8th fractions of the viral proteins. The output of the virus from the column is 95%. The content of impurity protein in the purified preparation of tick-borne encephalitis virus is 0.007 mg / ml (in the initial suspension of 1.1 mg / ml) the purification rate is 99.6%. When using oxen ropilstekla in anala; Under favorable conditions, the virus is tick-borne encephalitis virus 50%. Accordingly, the yield of the purified virus causes half of the ot. It is added to the column with more stringent conditions (when using 0.1 M Tris-IIS buffer with pH 8.5, containing Oi5 M NaCl for eyuirovania virus) desorption of the virus is not observed . 1 Example 3. To 50 ml of silochrome C-80, add 50 ml of a 7% solution of gc-amino-protona and triethoc (Lansilan in acetone and then proceed as in Example 1, the amount of oxyllope1X groups is 0.49 mg-eq / g.2 K , 30 ml of modified silochrome C-80 are added 60 ml of a 30% aqueous solution of N-jinshI6 pyrrolidone and 0.2 ml of concentrated hydrochloric acid, then the treatment is carried out similarly to Example 1. A sorbent with a nitrogen content of 0.7% is obtained, by which The column is loaded with a size of 0.8x12 cm. The column is equilibrated with 0.1 M phosphate buffer with a pH of 8.0 and injected with 1 ml of inactivated suspension. Tick-borne cephalitis virus (immunogenicity is 27 units of PR. protein concentration 870 µg / ml). The virus is eluted with phosphate buffer, the KOTOpbnti column is balanced, the eluate is collected in a 1 ml fraction. Purified virus is collected in the 3rd and 4th fraction of the eluate (23 units And, the protein concentration is 6 µg / ml. In the 6-8th fraction, impurity proteins are eluted. The virus yield from the column is 85%, the degree of purification from proteins is 99.2%. Thus, the sorbent is prepared by the proposed method , allows for efficient purification of viral suspensions without loss of viral material with a high degree cleaning of impurity proteins.

Claims (2)

1. СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СОРБЕНТА ДЛЯ ОЧИСТКИ ВИРУСНЫХ СУСПЕНЗИЙ, вклю-1 чающий обработку кремнеземсодержащего материала аминопропилтриэтоксисиланом и нитритом натрия в присутствии кислоты, отличают и'й с я тем, что, с целью снижения сорбционной способности к вирусам, после обработки смесью нитрита натрия и кислоты, кремнеземсодержащий материал подвергают взаимодействию с N-винилпирролидоном или его водным раствором в присутствии соляной кислоты.1. METHOD OF PRODUCING SORBENT FOR CLEANING VIRAL SUSPENSIONS, including the treatment of silica-containing material with aminopropyltriethoxysilane and sodium nitrite in the presence of acid, they differ in that, in order to reduce the sorption capacity for viruses, after treatment with a mixture of sodium nitrite , silica-containing material is reacted with N-vinylpyrrolidone or its aqueous solution in the presence of hydrochloric acid. 2. Огособ по π. 1, отличающийся тем, что используют водный раствор N-винилпирролидона с концентрацией не ниже 30%.2. Ogosb by π. 1, characterized in that the use of an aqueous solution of N-vinylpyrrolidone with a concentration of not less than 30%. Ω m SU ,,.,1071306Ω m SU ,,., 1071306
SU813359928A 1981-11-26 1981-11-26 Method of preparing sorbent for cleaning viral suspensions SU1071306A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU813359928A SU1071306A1 (en) 1981-11-26 1981-11-26 Method of preparing sorbent for cleaning viral suspensions

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU813359928A SU1071306A1 (en) 1981-11-26 1981-11-26 Method of preparing sorbent for cleaning viral suspensions

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1071306A1 true SU1071306A1 (en) 1984-02-07

Family

ID=20984598

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU813359928A SU1071306A1 (en) 1981-11-26 1981-11-26 Method of preparing sorbent for cleaning viral suspensions

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1071306A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Молодккна Л. М. и др. Методика модифицировани макропористых кремнеземов поливииклпирролидоном. Труды института им. Пастера Этиологи и специфическа профилактика гртшю. Л., 1979, т. 52, с. 92. 2. Мчед швили Б. В. и др. Жидкоства сиTCffiaii хроматографи вируса гриппа на модифицированных пористых стеклах. Трущы ииститута им. Пастера Убита гри позта вакцина. Л., 1976, т. 47, с. 43-49 (прототип). *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0948601B1 (en) Methods for purifying viruses
US11013794B2 (en) Method for preparing foot-and-mouth disease vaccines
FI60501C (en) FOERFARANDE FOER SELEKTIV SEPARERING AV INTERFERON FRAON INTERFERON-RAOPREPARAT
KR19990036028A (en) Industrial production method of Japanese encephalitis vaccine and vaccine by it
US4725547A (en) Method for purfication of rabic virus
JPS6262153B2 (en)
RU97106349A (en) PRODUCTION AND PRODUCTS OF THROMBINE OF THERAPEUTIC PURITY OF PURITY
CN107254449A (en) A kind of method for mass producing high-purity PRV
CN104371982A (en) Method for purifying slow virus
KR880002586B1 (en) Method for purification of hepatitis b virus surface antigen
CN1028206C (en) Purification of pertussis antigens
JPH0662436B2 (en) Method for producing intravenous immunoglobulin preparation
CN106432432A (en) Chromatographic method for separating and purifying high-purity porcine circovirus Cap proteins
SU1071306A1 (en) Method of preparing sorbent for cleaning viral suspensions
DK175514B1 (en) Process for the Purification of Vitamin K Dependent Blood Coagulation Factors
WO1987006939A1 (en) Process for isolating and purifying p. falciparum cs protein vaccine expressed in recombinant e. coli
CN109134622B (en) Multistep continuous integrated purification method for foot-and-mouth disease virus antigen
CA1179283A (en) SUCROSE MUTASE, IMMOBILISED SUCROSE MUTASE AND THE USE OF THIS IMMOBILISED SUCROSE MUTASE FOR THE PREPARATION OF ISOMALTULOSE (6-0-.alpha.-D- GLUCOPYRANOSIDO-D-FRUCTOSE)
US4071619A (en) Method of producing vaccines
JPH0423751B2 (en)
FR2597344A1 (en) IMPROVEMENT IN THE PROCESS OF PURIFYING PROTEIN ANTIGENS FROM BACTERIA BELONGING TO THE GENUS BORDETELLA, WITH A VIEW TO OBTAINING A CELLULAR VACCINE.
RO113308B1 (en) Process for purifying the hepatitis b virus surface antigen comprising pre s2 peptide
US3197374A (en) Process for the disaggregation and purification of viruses
WO2004003184A1 (en) A method for obtaining purified bacteriophage preparation s
KR102445863B1 (en) High purity lower endotoxin carbohydrate (HPLE) composition, and method for isolation thereof