SU1041568A1 - Reagent for detecting adenosine-5-triphosphate - Google Patents

Reagent for detecting adenosine-5-triphosphate Download PDF

Info

Publication number
SU1041568A1
SU1041568A1 SU823400251A SU3400251A SU1041568A1 SU 1041568 A1 SU1041568 A1 SU 1041568A1 SU 823400251 A SU823400251 A SU 823400251A SU 3400251 A SU3400251 A SU 3400251A SU 1041568 A1 SU1041568 A1 SU 1041568A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
reagent
immobilized
luciferase
atp
luciferin
Prior art date
Application number
SU823400251A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Наталья Николаевна Угарова
Любовь Юльевна Бровко
Екатерина Игоревна Беляева
Илья Васильевич Березин
Original Assignee
Московский Ордена Ленина,Ордена Октябрьской Революции И Ордена Трудового Красного Знамени Государственный Университет Им.М.В.Ломоносова
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Московский Ордена Ленина,Ордена Октябрьской Революции И Ордена Трудового Красного Знамени Государственный Университет Им.М.В.Ломоносова filed Critical Московский Ордена Ленина,Ордена Октябрьской Революции И Ордена Трудового Красного Знамени Государственный Университет Им.М.В.Ломоносова
Priority to SU823400251A priority Critical patent/SU1041568A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1041568A1 publication Critical patent/SU1041568A1/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Изобретение относитс  к биохимии и касаетс  состава дл  количественного определени  аденозин-5 -трифос фата (АТФ) на основеиммобилизованн люциферазы светл ков. АТФ  вл етс  одним из наиболее важных метаболитов, количественное определение которого йеобходимо дл  целей медицинской диагностик и дл  анализа загр знений окружающе среды. Известен реагент основе двухкомпонентной ферментной системы, включ ющей фосфоглицераткиназу и глицерал дегидфосфатазу. Определение АТФ ведетс  пектрофотометрически по скорости накоплени  никотинамидадениндинуклеотида (.НАД). Чувствительност анализа не превышает 1-50 мкМ . Наиболее близким к предлагаемому  вл етс  реагент на основе раствори мой люциферазы, выделенной из светл ков, содержащий люциферин, ацетат магни , буфер смесь имидазола и у сусной кислоты, стабилизатор - смес этилендиаминтетраацетата натри  (ЭД и ацетилцистеина, бычий сывороточный альбумин, воду при следующем соотношении компонентов, мас.: Люцифераза светл ков 0,002 Люциферин 0,013 Ацетат магни  0, БЫЧИЙ сывороточный альбумин0,3-3 Имидазол0,68 Уксусна  кислота 0,13 Этилендиаминтётраацетат натри  . 0,03 Ацетилцистеин 9,24 Вода , детальмое 2.. Анализ основан на регистрации интенсивности биолюминесценции, воз никающей при ферментативном окислении кислородом воздуха люциферина в присутствии АТФ и солей магни . Интенсиа ость свечени  пропорциональна концентрации АТФ в анализируемом образце. Достоинством метода  вл етс  возможность определени  АТФ в присутствии других метаболитов (спе цифичность) , а также высока  чувствительность анализа (10м), значительно превышающа  чувствительнос достигаемую другими методами. Приведенна  композици  позвол ет получить свечение, которое, достигнув максимума, остаетс  посто нным в течение нескольких минут. Устойчивость свечени  во времени обеспечивает высокую точность определени  и создает предпосылки дл  автоматизации анализа. Недостатком состава  вл етс  его невысока  стабильность. В лйофи- .лизованном состо нии при реагент в течение недели полностью тер ет свою ферментативную активность. Поэтому дл  достижени  предельной чувствительности -определени  необходимо использовать свежеприготовленный раствор реагента и перед каждым измерением заново строить калибровочный график: концентраци  АТФ- интенсивность свечени . Это приводит jHe только к усложнению метода, но и значительным потер м дефицитного фермента. Цель изобретени  - повышение стабильности реагента дл  определени  АТФ. Поставленна .цель достигаетс  тем, что реагент, дл  определени  аденозин-5-трифосфата, включающий люциферазу, выделенную из светл ков, люциферин, соль магни , буфер, стабилизатор и воду содержит люциферазу светл ков, иммобилизованную на полисахаридном носителе.в качестве буфера - смесь трис-(оксиметил)-аминог . метана и уксусной кислоты, в качестве стабилизатора - смесь этилендиаминтетраацетата натри  с дитиотреитолом , в. качестве соли магни  сульфат магни , при следующем соотношении компонентов,, мае.: Иммобилизованна  На.-, полисахарид ом носи-,. .. теле люцифёраза р ОЬ7-0,б70 Люциферин 0,002-0,0.15 Сульфат магни  -.р,48-0,72 Уксусна  кислота 0,02-0,04 . трис-(Оксиметил) ,-аминометан 0,08-0,16; Этилендиаминтетраацетат натри  0,03-0,06 Дитиотреитол 0,05-0,1 Вода.Остальное В отличие от состава, прин того за прототип, предлагаемый реагент . содержит люциферазу светл ков, иммобилизованную ковалентно на нерастворимом полиСахаридном носителе. Удельна  активность препарата иммобилизованной люциферазы должна быть в пределах 3 за 1 мг препарата иммобилизованного ферменна (Е - международна  единица актив-. ности, 1 Е - количество фермента которое катализирует превращение 1 мкмоль субстрата в 1 мин). При активности меньше ЗЮ Е/мг уменьша етс  чувствительность анализа. Препарат с активностью более 10 Е/мг использовать.нецелесообразно из-за непроизводительного расхода фермента при приготовлении иммобилизованного препарата. Кроме того, использование фермента с активностью выше на 1 мг иммобилизованного фермента не приводит к повышению чувствительности определени . В качестве буфера вместо имидазолацетата предлагаемый состав включает трис-(оксиметил)-аминоме тан - ацетатный буфер, а вместо /стабилизирующей смеси этилендиаминтетраацетата (ЭДТА) и ацетилцистеин смесь ЭДТА с дитиотреитолом, Допол .нительное стабилизирующее вли ние оказывает и вводимый в смесь сульфа магни  за счет повышени  ионной силы . Реагент получают добавлением к к центрированной суспензии иммобилизованной люциферазы в трис-(оксиметил )-аминометан-ац-етатном буфере ра воров люциферина, сульфата магни , ЭДТА, дитиотреитола в том же буфере ,. . Реагент обладает повышенной стабильностью . Период его полуинакти-вации .при 0-50 дней. В лиофили зованном состо нии реагент хранитс  при 4®С без значительной потери фер ментативной активности в течение года. Стабильность полученного сост ва в несколько раз превышает стабил ность индивидуального препарата иммобилизованной люциферазы. Наблюдаемый эффект  вл етс  следствием совместного присутстви  в составе реагента иммобилизованного фермента, смеси ЭДТА с дитиртреи лом, трис-(оксиметил)-- аминометан-ац татного буфера и сульфата магни . При этом смесь ЭДТА с дитиотреитоло не оказывает заметного стабилизирующего вли ни  на растворимый фермент . Предел обнаружени  АТФ с использованием предлагаемого реагента . П р и м е р 1. Приготовление реагента дл  определени  АТФ на основ люциферазы, иммобилизованной на сефарозе, ультрадексе, ультрагеле, активированных бромцианом. а.К 2 мл суспензии люциферазы, иммобилизованной ковалентно на ультрагеле по известному методу с концентрацией 10 мг/мл и активностью на 1 мг препарата иммобилизованного фермента;в 0,01 М трис-(оксиметил )-аминометан-ацетатном буфере , содержащем 1 мМ ЭДТА и 0,5 мг/мл дитиотреитола, добавл ют 4 мл раствора люциферина с концентрацией 0,5 мМ и 2 мл 50 мМ раствора сульфата магни  в том же буфере. Получают реагент при следующем соотношении компонентов, мас.%: Иммобилизованна  люцифераза светл -ков0 ,067 Люциферин0,002 Сульфат магни  0, трис-(Оксиметил)-амииометан Этиленди аминтетраацетат натри 0,03 Уксусна  кислота 0,02 Дитиотреитол 0,05 Вода. Остальное б.К h мл суспензии люциферазы, иммобилизованной ковалентно на ультрадексе , с концентрацией 10 мг/мл и активностью 6-10 Е на 1 мг иммобилизованного фермента в 0,015 М трис- (оксиметил)-аминометан-ацетатном буфере, содержащем 1,5 мМ ЭДТА и 0,7 мг/мл дитиотреитола, добавл ют k мл раствора люциферина с концентрацией 1,6 мМ и 22 мл 67 мМ раствора сульфата магни  в том же буфере. Получают реагент, имеющий следующий состав, мас.%: Иммобилизованна  люцифераза светл ков 0,13 Люциферино, 006 Сульфат магни  0,60 трис-(Оксиметил)-аминометан 0,12 Этилендиаминтетраацетат натри  . Уксусна  кислота - 0,03 Дитиотреитол 0,07 Вода. Остальное в.К 20 мл суспензии люциферазы, иммобилизованной ковалентно на сефарозе , с концентрацией 10 мг/мл и активностью 10 Е на 1 мг иммобилизованного фермента, в 0,02 М трис -(оксиметил)-аминометан-ацетатном буфере, содержащем 2 мМ ЭДТА иThis invention relates to biochemistry and relates to a composition for the quantitative determination of adenosine-5-triphosphate (ATP) based on the immobilized bright luciferase. ATP is one of the most important metabolites, the quantitative determination of which is necessary for the purposes of medical diagnostics and for the analysis of environmental pollutants. A reagent is known based on a two-component enzyme system including phosphoglycerate kinase and glyceral dehydrophosphatase. The determination of ATP is carried out spectrophotometrically by the rate of accumulation of nicotinamide adenine dinucleotide (NAD). Sensitivity analysis does not exceed 1-50 microns. The closest to the present invention is a soluble luciferase-based reagent isolated from light-colored, containing luciferin, magnesium acetate, a buffer mixture of imidazole and acetic acid, the stabilizer is a mixture of sodium ethylenediaminetetraacetate (ED and acetylcysteine, bovine serum albumin, water in the following ratio Components, wt .: Luciferase, light coarse 0.002 Luciferin, 0.013 Magnesium acetate 0, OBS whey albumin, 0.3-3 Imidazole, 0.68 Acetic acid, 0.13 Ethylene diamine tetraacetate sodium 0.03 Acetylcysteine 9.24 Water, detail 2 .. Analysis It is based on recording the intensity of bioluminescence that occurs during enzymatic oxidation of luciferin by oxygen in the presence of ATP and magnesium salts. The intensity of the glow is proportional to the ATP concentration in the sample being analyzed. The dignity of the method is the ability to determine ATP in the presence of other metabolites (specificity), as well as high The sensitivity of the assay (10 m) is much higher than that achieved by other methods. The above composition allows a luminescence to be obtained which, having reached a maximum, remains constant for several minutes. The stability of luminescence in time provides high accuracy of determination and creates prerequisites for automating the analysis. The disadvantage of the composition is its low stability. In the lyophilized state with the reagent completely lost its enzymatic activity during the week. Therefore, in order to achieve the ultimate sensitivity of the determination, it is necessary to use a freshly prepared reagent solution and to rebuild the calibration graph before each measurement: ATP concentration — luminous intensity. This leads to jHe only to the complication of the method, but also to significant losses of the deficient enzyme. The purpose of the invention is to increase the stability of the reagent for the determination of ATP. The target is achieved by the fact that a reagent for the determination of adenosine 5-triphosphate, including luciferase, isolated from brightons, luciferin, magnesium salt, buffer, stabilizer, and water contains bright luciferase immobilized on a polysaccharide carrier. The mixture is a buffer Tris- (hydroxymethyl) -aminog. methane and acetic acid, as a stabilizer - a mixture of sodium ethylenediaminetetraacetate with dithiothreitol, c. As a salt, magnesium sulfate is magnesium, with the following ratio of components, May .: Immobilized Na.-, polysaccharide ohm-, .. the body of luciferaz OO7-0, b70 Luciferin 0.002-0.0.15 Magnesium sulphate -.r, 48-0.72 Acetic acid 0.02-0.04. Tris- (Oxymethyl), -aminomethane 0.08-0.16; Ethylene diamine tetraacetate sodium 0.03-0.06 Dithiothreitol 0.05-0.1 Water. Remaining Unlike the composition adopted as the prototype, the proposed reagent. contains luciferase svetov, immobilized covalently on an insoluble poly-saccharide carrier. The specific activity of the drug immobilized luciferase should be within 3 per 1 mg of the preparation of immobilized enzyme (E is the international unit of activity, 1 E is the amount of enzyme that catalyzes the conversion of 1 µmol of substrate per 1 minute). When the activity is less than S / S / mg, the sensitivity of the assay is reduced. A preparation with an activity of more than 10 U / mg should not be used. It is impractical because of the unproductive consumption of the enzyme in the preparation of the immobilized preparation. In addition, the use of an enzyme with an activity higher than 1 mg of immobilized enzyme does not lead to an increase in the detection sensitivity. As a buffer instead of an imidazole acetate, the proposed composition includes a tris- (oxymethyl) -aminome tan-acetate buffer, and instead of a stabilizing mixture of ethylene diamine tetraacetate (EDTA) and acetylcysteine a mixture of EDTA with dithiothreitol, an additional stabilizing effect is also introduced into the mixture of sulfate magnesium by increasing ionic strength. The reagent is obtained by adding immobilized luciferase in tris- (oxymethyl) -aminomethan-etatate buffer to luciferin, magnesium sulfate, EDTA, dithiothreitol in the same buffer to the centered suspension. . The reagent has increased stability. The period of his semi-incarnation. For 0-50 days. In the lyophilized state, the reagent is stored at 4 ° C without significant loss of enzymatic activity during the year. The stability of the obtained composition is several times higher than the stability of an individual preparation of immobilized luciferase. The observed effect is a result of co-presence in the reagent composition of the immobilized enzyme, a mixture of EDTA with ditertreyl, tris (oxymethyl) - aminomethane-ac buffer and magnesium sulfate. At the same time, the mixture of EDTA with dithiothreitolo does not have a noticeable stabilizing effect on the soluble enzyme. The limit of detection of ATP using the proposed reagent. Example 1: Preparation of a reagent for the determination of ATP on luciferase bases immobilized on sepharose, ultradex, ultragel, activated with cyan bromine. a. To 2 ml of a luciferase suspension immobilized covalently on ultragel by a known method with a concentration of 10 mg / ml and activity per 1 mg of the preparation of immobilized enzyme; in 0.01 M tris- (oxymethyl) -aminomethane-acetate buffer containing 1 mM EDTA and 0.5 mg / ml dithiothreitol, 4 ml of luciferin solution with a concentration of 0.5 mM and 2 ml of 50 mM magnesium sulfate solution in the same buffer are added. The reagent is obtained in the following ratio, wt%: Immobilized luciferase is light 0,867 luciferin 0,002 Magnesium sulphate 0, tris (Oxymethyl) amiomethane Ethylenedia amine tetraacetate sodium 0.03 Acetic acid 0.02 Dithiothreitol 0.05 Water. The rest is B. To h ml of a luciferase suspension immobilized covalently on ultradex, with a concentration of 10 mg / ml and an activity of 6-10 U per 1 mg of immobilized enzyme in 0.015 M tris- (oxymethyl) -aminomethane-acetate buffer containing 1.5 mM EDTA and 0.7 mg / ml dithiothreitol, k ml of luciferin solution with a concentration of 1.6 mm and 22 ml of a 67 mm solution of magnesium sulfate in the same buffer are added. A reagent is obtained having the following composition, in wt%: The immobilized luciferase is light 0.13 Luciferino, 006 Magnesium sulfate 0.60 tris (Oxymethyl) aminomethane 0.12 Ethylene diamine tetraacetate. Acetic acid - 0.03 Dithiothreitol 0.07 Water. The rest is. To a 20 ml suspension of luciferase, immobilized covalently on Sepharose, with a concentration of 10 mg / ml and an activity of 10 U per 1 mg of the immobilized enzyme, in 0.02 M tris - (oxymethyl) -aminomethane-acetate buffer containing 2 mM EDTA and

1 мг/мл дитиотреитола, добавл ют «мл раствора люциферина с концентрацией 3,9 мМ и 6 мл 0,3 М раствора сульфата магни  в том же буфере. Получают реагент, имеющий следующий состав, масД:1 mg / ml dithiothreitol, a "ml of luciferin solution with a concentration of 3.9 mmol and 6 ml of a 0.3 M solution of magnesium sulfate in the same buffer is added. Get reagent having the following composition, masd:

Иммобилизованна  люцифераза светл ков 0,67 Люциферин0,015Immobilized luciferase svetov 0,67 Luciferin 0,015

Сульфат магни  0,72 трис-(Оксиметил)-аминометан0 ,16Magnesium sulfate 0.72 Tris- (Oxymethyl) -aminomethan0, 16

Этилендиаминтетраацетат натри  О,Об Уксусна  кислота О.,04 Дитиотреитол0,,1Ethylene diamine tetraacetate O, O Acetic acid O., 04 Dithiothreitol 0,, 1

ВодаОстальноеWaterEverything

П р и м ер 2. Приготовление, рёагента дл  определени  АТФ на основе люциферазы, иммобилизованной на целлофановой пленке.Example 2. Preparation of the agent for determining ATP based on luciferase immobilized on a cellophane film.

К 1,0 мл 0,02 М трие-(оксиметил)-аминометан-ацетатного буфера,, содержащего 2 мМ ЭДТА и 1 мг/мл дитиотреитола , добавл ют 0,2 мл раствора люциферина с концентрацией 1,5 мМ и 0,2мл 0,М раствора сульфата магни  в том же буфере. В полученный раствор опускают целлюлоз ную пленку с . иммобилизованной на ней известным методом з люциферазой массой 7 мг и площадью 25 мм с активностью на 1 мг иммобилизованного ферментам Получают следующий состав реагента, мас.: Иммобилизованна  люцифераза светл ков 0,5 Люциферин0,006To 1.0 ml of 0.02 M trie- (oxymethyl) -aminomethane-acetate buffer containing 2 mM EDTA and 1 mg / ml dithiothreitol, add 0.2 ml of luciferin solution with a concentration of 1.5 mM and 0.2 ml 0, M solution of magnesium sulfate in the same buffer. A cellulose film is immersed in the resulting solution. immobilized on it by a known method of luciferase weighing 7 mg and an area of 25 mm with activity per 1 mg of immobilized enzymes. The following reagent composition is obtained, wt .: Immobilized luciferase light 0.5 Luciferin .006

Сульфат магни  0,69 трис-(Оксиметил)-аминометан 0,16 Этилендиаминтетраацетат натри  0,06 Уксусна  кислота 0,0 Дитиотреитол 0,1 ВодаОстальноеMagnesium sulfate 0.69 Tris- (Oxymethyl) -aminomethane 0.16 Ethylene diamine tetraacetate sodium 0.06 Acetic acid 0.0 Dithiothreitol 0.1 Water Remaining

Изменение площади вз той целлюлозной пленки позвол ет варьировать содержание фермента в прелах, приведенных в формуле изобретени .Changing the area of the pulp film taken makes it possible to vary the content of the enzyme in the fines described in the claims.

.Примерз. Испытание стабильности реагента..Primerz. Reagent stability test.

В таблице указаны значени  пери.ода полуинактивации реагента, в том числе в лиофилизованном состо нии. Дл  сравнени  приводитс  аналогичный показатель дл  известного реагента на основе растворимой Люциферазы светл ков и индивидуального препарата люциферазы, иммобилизованной на сефарозе. Дл  оценки периода полуинактивации определ етс  изменение уровн  ферментативной активности образца по интенсивности свечени , возникающего при добавлении в образец стандартного количества АТФ (пример k). Цифры, указанные в нижеследующей таблице, показывают, ЧТО стабильность предлагаемого реагента по крайней мере в 25 раз превышает стабильность состава - прототипа и в 2,5 раза превышает стабильность индивидуального препарата иммобилизованной люциферазы.The table indicates the values of the period of semi-inactivation of the reagent, including in the lyophilized state. For comparison, a similar indicator is given for a known reagent based on soluble luciferase and an individual luciferase preparation immobilized on sepharose. To estimate the half-inactivation period, the change in the level of the enzymatic activity of the sample is determined from the intensity of luminescence that occurs when a standard amount of ATP is added to the sample (example k). The numbers in the table below show that the stability of the proposed reagent is at least 25 times greater than the stability of the composition of the prototype and 2.5 times greater than the stability of the individual preparation of immobilized luciferase.

ЦОCO

150150

-50 -50

150 50 150 50150 50 150 50

22

30 2030 20

При м е р k. Методика опредет лени  АТФ.Example k. The technique will determine laziness ATP.

1, мл реагента, полученного как описано в примере 1 или 2, ввод т в цилиндрическую кювету объемом 3 мл и диаметром 1 см, которую затем помещают в кюветное отделение люминометра и регистрируют фоновый сигнал.. Затем с помощью шприца быстро ввод т 0,5 мл раствора АТФ с известной концентрацией, не прерыва  регистрации свечени . Разность между величиной сигнала интенсивности биолюминесценции в присутствии и в отсутствие АТФ  вл етс  величиной , пропорциональной концентрации АТФ. Опыты повтор ют дл  растворов АТФ с концентраци ми АТФ1, ml of reagent, prepared as described in Example 1 or 2, is injected into a 3 ml cylindrical cuvette with a diameter of 1 cm, which is then placed in the cuvette compartment of the luminometer and the background signal is recorded. Then, 0.5 ml of ATP solution with a known concentration, without interrupting the registration of the glow. The difference between the magnitude of the bioluminescence intensity signal in the presence and in the absence of ATP is a value proportional to the concentration of ATP. The experiments are repeated for ATP solutions with ATP concentrations.

s том же диапазоне, в котором предполагаетс  проводить измерени . Пр ма  пропорциональность между интенсивностью биолюминесценции и концентрацией АТФ наблюдаетс  в диапазоне от 10М до 10% АТФ, На основе полученных данных стро т график зависимости интенсивности биолюминесценции от концентрации АТФ. При работе с образцами с концентрацией АТФ рекомендуетс  предпочтительно использовать реагент, описанный в примере 1а или 2, 8 концентрацией 10 - реагент, описанный в примере 16, с концентрацией АТФ 10г-10 м - реагент, описанный в примере 1в. Концентрацию АТФ в неизвестном образце определ ют по,интенсивности свечени , возникающего при добавлении 6,5 мл неизвестного s the same range in which measurements are intended to be made. The direct proportionality between the intensity of bioluminescence and the ATP concentration is observed in the range from 10M to 10% of ATP. Based on the data obtained, a graph of the dependence of the bioluminescence intensity on the ATP concentration is plotted. When working with samples with an ATP concentration, it is recommended to use the reagent described in example 1a or 2, 8 at a concentration of 10 - the reagent described in example 16, with an ATP concentration of 10g-10 m - the reagent described in example 1c. The concentration of ATP in an unknown sample is determined by the intensity of luminescence that occurs when adding 6.5 ml of unknown

образца АТФ к 1,А.мл реагента, использу  калибровочный график, полученный , как описано выше. Предел обнаружени  концентрации АТФ указанным методом составл ет .,ATP sample to 1, A. ml reagent, using a calibration graph, obtained as described above. The detection limit of the ATP concentration by this method is.

Предлагаемый реагент дл  определени  АТФ может быть использован в научных цел х дл  изучени  процессов , св занных с превращени ми АТФ, а также в цел х медицинской диагнос тики. С помощью этого препарата по уровню креатинфосфокиназы в крови можно проводить раннюю диагностику инфаркта миокарда и р да других заболеваний , экспресс-анализ на чувствительность микроорганизмов к антибиотикам . Определение уровн  АТФ 8 водоемах позвол ет будить об их биологической продуктивности и уровне загр зненности.The proposed reagent for the determination of ATP can be used for scientific purposes to study the processes associated with the transformation of ATP, as well as for the purpose of medical diagnostics. With the help of this drug, by the level of creatine phosphokinase in the blood, it is possible to carry out an early diagnosis of myocardial infarction and a number of other diseases, a rapid analysis of the sensitivity of microorganisms to antibiotics. The determination of the level of ATP 8 reservoirs allows one to wake up about their biological productivity and level of contamination.

Claims (1)

1. РЕАГЕНТ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ' АДЕНОЗИН-51 2 3-ТРИФОСФАТА, включающий люциферазу, выделенную из светляков, люциферин, соль магния, буфер, стабилизатор и воду, о т л и ч а ю- щ и й с я тем, что, с целью повышения стабильности, он содержит люциферазу, иммобилизованную на полисахаридном носителе, в качестве буфера - смесь трис-(оксиметил)-аминомётана и уксусной кислоты, в качестве стабилизатора -смесь этилен диаминтетраацетата натрия с дитиотреитолом, в качестве соли магния сульфат магния, при следующем соотношении компонентов, мас.%:1. REAGENT FOR THE DETERMINATION of 'Adenosine-5 1 2 3 -TRIPHOSPHATE, including luciferase isolated from fireflies, luciferin, a magnesium salt, a buffer, a stabilizer and water, due to the fact that, in order to increase stability, it contains luciferase immobilized on a polysaccharide carrier, as a buffer - a mixture of tris (oxymethyl) -aminomethane and acetic acid, as a stabilizer - a mixture of sodium ethylene diamine tetraacetate with dithiothreitol, as magnesium salt of magnesium sulfate, in the following the ratio of components, wt.%: Иммобилизованная на полисахаридном носителе люцифераза Люциферин Сульфат магния Уксусная кислота трис-(Оксиметил)-аминометан Этиленди аминтетраацетат натрия Дитиотреитол Вода 2. Реагент по п. чающийся тем, жит люциферазу, иммобилизованную 'на полисахаридном носителе, активированном бромцианом, с удельной активностью (3*КГ4-! ’ 105) Е/мг.Luciferase immobilized on a polysaccharide carrier Luciferin Magnesium sulfate Acetic acid tris- (Oxymethyl) aminomethane Ethylene di sodium aminotetraacetate Dithiothreitol Water 2. The reagent according to which live luciferase immobilized on a polysaccharide 3 4 -! '10 5 ) U / mg. 0,067-0,6700,067-0,670 0,002-0,015 0,48-0,72 0,02-0,040.002-0.015 0.48-0.72 0.02-0.04 0,08-0,16 0.08-0.16 1,1, 0,03-0,06 0,05-0,1 Остальное о т л и что он содёрг0.03-0.06 0.05-0.1 The rest is about t l and what it contains SU „„1041568SU „„ 1041568 II II
SU823400251A 1982-02-22 1982-02-22 Reagent for detecting adenosine-5-triphosphate SU1041568A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823400251A SU1041568A1 (en) 1982-02-22 1982-02-22 Reagent for detecting adenosine-5-triphosphate

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823400251A SU1041568A1 (en) 1982-02-22 1982-02-22 Reagent for detecting adenosine-5-triphosphate

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1041568A1 true SU1041568A1 (en) 1983-09-15

Family

ID=20998661

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU823400251A SU1041568A1 (en) 1982-02-22 1982-02-22 Reagent for detecting adenosine-5-triphosphate

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1041568A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1989002929A1 (en) * 1987-09-23 1989-04-06 Life Science International Ab Luminometric assay of cellular atp

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1989002929A1 (en) * 1987-09-23 1989-04-06 Life Science International Ab Luminometric assay of cellular atp

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2054674C1 (en) Method of potassium ion concentration assay in biological material
Prescott et al. Modified methods for the determination of carbamyl aspartate
EP0553234B2 (en) Luciferase compositions and methods
Guilbault Use of enzymes in analytical chemistry
EP0794260B1 (en) Bioluminescence reagent and method for quantitative determination of adenosine phosphate ester using the reagent
JPS5886083A (en) Stabilizing agent for glycerol-3-phosphoric acid oxidase
SU641884A3 (en) Reagent for determining triglycerides
Jablonski et al. Properties and uses of immobilized light-emitting enzyme systems from Beneckea harveyi.
Fossati et al. A step forward in enzymatic measurement of creatinine
CN111944872A (en) Reagent combination, reagent or kit for measuring creatinine content
US5525481A (en) Enzymatic Reagents for ethanol assay containing diamino compounds
Volpe et al. A bienzyme electrochemical probe for flow injection analysis of okadaic acid based on protein phosphatase-2A inhibition: an optimization study
Racek et al. Biosensor for lactate determination in biological fluids. I. Construction and properties of the biosensor
US4042462A (en) Creatine phosphokinase determination method
SU1041568A1 (en) Reagent for detecting adenosine-5-triphosphate
Rosalki A simple colorimetric method for the determination of serum alpha-hydroxybutyric dehydrogenase activity
Campanella et al. Determination of inorganic phosphate in drug formulations and biological fluids using a plant tissue electrode
US4247633A (en) Reagent for colorimetric determination of creative phosphokinase
US4347313A (en) Analytical determination of lipase
Girotti et al. Bioluminescent flow-sensing device for the determination of magnesium (II)
Björkhem et al. A simple, fully enzymic bioluminescent assay for triglycerides in serum.
SU1317027A1 (en) Method of quantitative determination of adenine nucleotides
Ugarova et al. Bioluminescent assay of creatine kinase activity using immobilized firefly extract
IE47123B1 (en) Analytical device
RU2164241C2 (en) Reagent for adenosine 5'-triphosphate assay