SU1001900A1 - Method of culturing horned cattle underskin gadfly stage larvae - Google Patents

Method of culturing horned cattle underskin gadfly stage larvae Download PDF

Info

Publication number
SU1001900A1
SU1001900A1 SU803252955A SU3252955A SU1001900A1 SU 1001900 A1 SU1001900 A1 SU 1001900A1 SU 803252955 A SU803252955 A SU 803252955A SU 3252955 A SU3252955 A SU 3252955A SU 1001900 A1 SU1001900 A1 SU 1001900A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
larvae
nutrient medium
cattle
gadfly
culturing
Prior art date
Application number
SU803252955A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Михаил Николаевич Евстафьев
Original Assignee
Всесоюзный научно-исследовательский институт ветеринарной энтомологии и арахнологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный научно-исследовательский институт ветеринарной энтомологии и арахнологии filed Critical Всесоюзный научно-исследовательский институт ветеринарной энтомологии и арахнологии
Priority to SU803252955A priority Critical patent/SU1001900A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1001900A1 publication Critical patent/SU1001900A1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Изобретение относится к'Ъбласти' ветеринарной паразитологии и может быть использовано для испытания инсектицидов , получения йммупрепара-* j тов и диагностикумов.The invention relates to the 'area' of veterinary parasitology and can be used to test insecticides, obtain ymmuprepa- * j tov and diagnosticums.

Известен способ культивирования личинок подкожных оводов в увлажненном песке [1] .A known method of cultivating larvae of subcutaneous gadfly in wet sand [1].

При этом способе взрослые особи jq оводов выращиваются без питательной среды.With this method, adult jq gadflies are grown without a nutrient medium.

Известен способ культивирования личинок III стадии Hypoderma lineatum в питательной среде [2] , по которому личинок извлекают из желваков, помещают в узкий стеклянный сосуд, содержащий 1/4 часть сыворотки жрови животных. Сыворотку крови меняют ежедневно. Личинки выживают в течение 10 дней.A known method of culturing stage III larvae of Hypoderma lineatum in a nutrient medium [2], in which the larvae are removed from the nodules, placed in a narrow glass vessel containing 1/4 of the serum of animal rations. Blood serum is changed daily. Larvae survive for 10 days.

Недостатки этого метода заключаются в том, что личинки, находясь в вертикальном положении упираются в дно сосуда ротовыми отверстиями, что *6 затрудняет их питание. Отсутствие циркуляции питательной среды и незначительное количество вызывают необходимость частой замены ее. Использование одной сыворотки крови животных очень дорого, кроме того, последняя недостаточно усваивается личинками.The disadvantages of this method are that the larvae, being in a vertical position, abut mouth holes in the bottom of the vessel, which * 6 complicates their nutrition. The lack of circulation of the nutrient medium and an insignificant amount necessitate the frequent replacement of it. The use of animal blood serum is very expensive, in addition, the latter is not sufficiently absorbed by the larvae.

Цель изобретения - получение высококонцентрированной продукции жизнедеятельности личинок в питательной среде.The purpose of the invention is to obtain highly concentrated products of the vital activity of larvae in a nutrient medium.

Цель достигается тем, что личинки оводов III стадии развития помещают в отдельную ячейку, сверху покрывают гидрофильным материалом и помещают в питательную среду, состоящую из 3/4 частей жидкости Рингер-Локка, 1/4 части инактивированной сыворотки крови крупного рогатого скота и антибиотиков . Личинок собирают в апреле-мае на тушах и шкурах животных. Отбирают личинки только серо-коричневого цвета, чтобы при культивировании они не смогли перейти в следующую стадию развития.The goal is achieved by the fact that the larvae of gadflies of the III stage of development are placed in a separate cell, covered with hydrophilic material on top and placed in a nutrient medium consisting of 3/4 parts of Ringer-Lock fluid, 1/4 of inactivated serum of cattle and antibiotics. Larvae are collected in April-May on carcasses and animal skins. Only gray-brown larvae are selected, so that during cultivation they could not go to the next stage of development.

При культивировании личинок создают условия, приближенные к организму животного, для чего их помещают в садок с ячейками для каждой личинки, сверху покрывают поролоном, что препятствует высыханию непогруженных частей личинок. В питательную среду добавляют антибиотики. Ежедневно производят циркуляцию питательной среды, которую меняют через 7-10 дней.During the cultivation of the larvae, conditions are created that are close to the animal’s body, for which they are placed in a cage with cells for each larva, they are covered with foam rubber on top, which prevents drying of the unloaded parts of the larvae. Antibiotics are added to the culture medium. A nutrient medium is circulated daily, which is changed after 7-10 days.

Пример. Личинки III стадии Hypoderma bovis и Н. lineatum серокоричневого цвета собирают на шкурах и тушах животных, обмывают физиологическим раствором и помещают в садок для культивирования. Садок 5 представляет собой четырехугольную стеклянную банку размером 15'15*20 см. Внутри банки на подставке на высоте 12 см от дна устанавливают плексигласовую пластинку размером 14· 13 см, Ю которая содержит 48 ячеек. С нижней стороны ячейки пропиливают с таким расчетом, чтобы было свободное сообщение с внутренней полостью банки и чтобы личинки не выпадали (ширина 15 2 мм). С верхней стороны плексигласовую пластинку покрывают поролоном толщиной 8 мм. Напротив каждой луночки в поролоне делают отверстие, которое у основания равно диаметру лун-20 ки (15 мм), а к вершине конусообразно сужается и на выходе достигает 5 мм. В центре плексигласовой пластинки проделывают отверстие диаметром 15 мм для вставления вала смеси- 25 теля. Снаружи банку закрывают крышкой, в середине которой имеется квадратное отверстие размером 5 · 5 мм, заклеенное капроновой сеткой. Оно необходимо для свободного доступа jq воздуха.Example. Larvae of the III stage Hypoderma bovis and N. lineatum of gray-brown color are collected on animal skins and carcasses, washed with saline and placed in a cage for cultivation. Cage 5 is a quadrangular glass jar measuring 15'15 * 20 cm. Inside the jar, on a stand 12 cm from the bottom, a Plexiglas plate 14 × 13 cm in size is installed, which contains 48 cells. The cells are sawn from the bottom side so that there is free communication with the internal cavity of the can and that the larvae do not fall out (width 15 2 mm). On the upper side, the Plexiglas plate is coated with 8 mm thick foam rubber. Opposite each hole in the foam, a hole is made that at the base is equal to the diameter of the moon-20 ki (15 mm), and tapers to the apex conically and reaches 5 mm at the exit. A hole with a diameter of 15 mm is made in the center of the Plexiglas plate to insert the mixer shaft. Outside, the jar is covered with a lid, in the middle of which there is a square hole measuring 5 · 5 mm, sealed with a nylon mesh. It is necessary for free access jq air.

В садок наливают питательную среду ( 4 части жидкости Рингер-Локка, одна часть инактивированной сыворотки крови, Взятой у здорового крупного рогатого скота и по 25 тыс. ед. 3 стрептомицина и пенициллина на 100 мл среды) до тех пор, пока не скроется плексигласовая пластинка.A nutrient medium is poured into the cage (4 parts of Ringer-Locke fluid, one part of inactivated blood serum taken from healthy cattle and 25 thousand units of 3 streptomycin and penicillin per 100 ml of medium) until the plexiglass plate is hidden .

Садок с личинками помещают в термостат при 31° С и относительной влаж-40 ности 85%. Периодически ежесуточно в течение 7 суток вынимают из термостата банку, снимают крышку и поролон, вставляют в отверстие гибкий вал смесителя и проводят смешиваниа питатель45 ной среды в течение 5 мин при 700 об/мин. Одновременно следят за состоянием личинок. Погибших выбрасывают, на их место помещают новых, которых берут из запасного садка. Че- 50 рез 7 дней питательную среду меняют. Использованные питательные среды и часть личинок применяют для изготовления иммунопрепарата. Спустя 14-18, даже 28 дней оставшуюся часть личиной переносят в грунт, где зарывают на глубину 3-5 см. Там они окукливаются, и через 16-24 дня появляются взрослые особи оводов. Предлагаемый метод культивирования личинок подкожных оводов крупного рогатого скота позволяет одновременно с выращива* нием взрослых особей оводов получать продукты жизнедеятельности(питательная среда)для приготовления иммунопре парата, Применение метода позволяет выращивать личинок в условиях, приближенных к организму животного, умень шает в три раза количество применяемой сыворотки крови крупного рогатого скота, .увеличивает продолжительность жизни личинок с 10 до 28 дней.A cage with larvae was placed in a thermostat at 31 ° C and a relative humidity of 40%. Periodically daily for 7 days, remove the jar from the thermostat, remove the lid and foam, insert the flexible shaft of the mixer into the hole and mix the nutrient medium for 5 min at 700 rpm. At the same time monitor the state of the larvae. The dead are thrown out, in their place are placed new ones, which are taken from the spare cage. After 50 days, the nutrient medium is changed. Used nutrient media and part of the larvae are used for the manufacture of an immunologic preparation. After 14-18, even 28 days, the remainder of the mask is transferred to the ground, where it is buried to a depth of 3-5 cm. There they pupate, and after 16-24 days adult gadflies appear. The proposed method for cultivating larvae of hypodermic gadfly cattle allows simultaneously with the cultivation of adult gadfly individuals to obtain vital products (nutrient medium) for the preparation of an immunopreparation. The application of the method allows the cultivation of larvae under conditions close to the animal’s body, which reduces the amount used by three times serum of cattle, increases the life expectancy of larvae from 10 to 28 days.

Claims (3)

Формула изобретенияClaim 1. Способ культивирования личинок III стадии подкожных оводов крупного рогатого скота, включающий сбор личинок, культивирование их в питательной среде из сыворотки крови крупного рогатого скота, отличающийся тем, что, с целью увеличения выхода продукта жизнедеятельности личинок, улучшения качества продукте! и повышения производительности труда, личинку помещают в отдельную ячейку, сверху покрывают гидрофильным материалом и помещают в питательную среду, состоящую из 3/4 частей жидкости Рингер-Локка, 1/4 части инактивированной сыворотки крови крупного рогатого скота и антибиотиков,1. A method of culturing stage III larvae of subcutaneous cattle gadfly, including collecting larvae, cultivating them in a nutrient medium from cattle blood serum, characterized in that, in order to increase the yield of larvae, improve product quality! and increase labor productivity, the larva is placed in a separate cell, covered with a hydrophilic material on top and placed in a nutrient medium consisting of 3/4 parts of Ringer-Lock fluid, 1/4 of inactivated serum of cattle and antibiotics, 2. Способ поп. 1, отличающий с я тем, что питательную среду меняют через 7-10 дней.2. The method of pop. 1, characterized in that the nutrient medium is changed after 7-10 days. 3. Способ поп. 1, отличающийся тем, что ежедневно производят циркуляцию питательной среды..3. The method of pop. 1, characterized in that daily produce a circulation of the nutrient medium ..
SU803252955A 1980-12-12 1980-12-12 Method of culturing horned cattle underskin gadfly stage larvae SU1001900A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU803252955A SU1001900A1 (en) 1980-12-12 1980-12-12 Method of culturing horned cattle underskin gadfly stage larvae

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU803252955A SU1001900A1 (en) 1980-12-12 1980-12-12 Method of culturing horned cattle underskin gadfly stage larvae

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1001900A1 true SU1001900A1 (en) 1983-03-07

Family

ID=20944865

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU803252955A SU1001900A1 (en) 1980-12-12 1980-12-12 Method of culturing horned cattle underskin gadfly stage larvae

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1001900A1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR860000897B1 (en) Producing method of human erythropoietin
DE69815151T2 (en) PRODUCTION OF MEAT ON INDUSTRIAL SCALE FROM IN VITRO CELL CULTURES
KR860001588B1 (en) Process for the production of human epidermal growth factor
CN102317445B (en) The freezing and storing method of cell, artificial cell construct or three-dimensional complex tissue assembly
Cherbas The induction of an injury reaction in cultured haemocytes from saturniid pupae
Wolff et al. Melanin pigmentation: an in vivo model for studies of melanosome kinetics within keratinocytes
Mazur et al. A description of the complete metamorphosis of the sea urchin Lytechinus variegatus cultured in synthetic sea water
SU1001900A1 (en) Method of culturing horned cattle underskin gadfly stage larvae
Dietz et al. Caste determination in honey bees. I. The significance of moisture in larval food
Stirewalt et al. Collection of a secreted protease from the preacetabular glands of cercariae of Schistosoma mansoni
Kakinuma DEVELOPMENT OF A SOYPHOZOAN, DACTYLOMETRA PACIFICA GOETTE
KR860001576B1 (en) Process for the production of human multiplication-stimulating activity
Moloney et al. The simple laboratory maintenance of a highly productive Schistosoma japonicum life cycle
ASHIZAWA et al. Effects of proximity of spermatozoa to cultured cells on the survival of fowl spermatozoa in vitro
PL165525B1 (en) Method of obtaining active substance for an acaricide
RU2788843C1 (en) Method for cultivation of synanthropic fly larvae
CN109699591A (en) A kind of detachable frame of plastic and its cultural method applied to cultured insect
KR20210017731A (en) Incubation and test device of 3-dimentional cell organoid treated with bioadhesive
SU1105163A1 (en) Method of obtaining helmenths of strongiloids kind
SU1247419A1 (en) Method for reversion of tuberculosis l-form microbacteria
SU542510A1 (en) Method for determining demyelinating properties of biological material
Saxena et al. Growth, longevity, and reproduction of Empoasca devastans on okra fruit for laboratory rearing
Pinkel Successful Cultivation of Spleen Fragments in Organ Culture.
Woynárovich et al. Experiments in the artificial incubation of Lucioperca Sandra Cuv. et Val. Eggs
Beckett Histochemical observations on Aedes aegypti infected with larvae of Brugia malayi