SE456245B - Enzympreparation innehallande krillhyaluronidas - Google Patents

Enzympreparation innehallande krillhyaluronidas

Info

Publication number
SE456245B
SE456245B SE8603051A SE8603051A SE456245B SE 456245 B SE456245 B SE 456245B SE 8603051 A SE8603051 A SE 8603051A SE 8603051 A SE8603051 A SE 8603051A SE 456245 B SE456245 B SE 456245B
Authority
SE
Sweden
Prior art keywords
hyaluronidase
enzyme
activity
gel
beta
Prior art date
Application number
SE8603051A
Other languages
English (en)
Other versions
SE8603051D0 (sv
SE8603051L (sv
Inventor
O B E Karlstam
Original Assignee
Pharmacia Ab
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Pharmacia Ab filed Critical Pharmacia Ab
Priority to SE8603051A priority Critical patent/SE456245B/sv
Publication of SE8603051D0 publication Critical patent/SE8603051D0/sv
Priority to EP87850203A priority patent/EP0257003B1/en
Priority to DE87850203T priority patent/DE3787773D1/de
Priority to AT87850203T priority patent/ATE95836T1/de
Priority to US07/065,591 priority patent/US4904594A/en
Priority to JP62170825A priority patent/JPS6324885A/ja
Publication of SE8603051L publication Critical patent/SE8603051L/sv
Publication of SE456245B publication Critical patent/SE456245B/sv

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405Glucanases
    • C12N9/2408Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/947Microorganisms using protozoa

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Description

456 245 I samband med uppfinningen är hyaluronsyra den viktigaste glykosaminoglykanen. Den består av repeterande enheter av disackariden: (1 -> 4)-g-beta-D-glukopyranosyluronsyra- (1 -> 3)-2-acetamid-2-decxy-beta-D-glukopyranos.
Definitionsmässigt är hyaluronidas ett enzym med förmåga att bryta ner kolhydratkedjan i hyaluronsyra till kortare fragment, företrädesvis tetrasackarider. Fragmentering till enkla mono- eller disackaridenheter är dock ej utesluten.
Det är föredraget att använda termen hyaluronidas för enzymer med preferens för hyaluronsyra, även om det före- kommer att termen användes för andra hyaluronsyraspjälkande enzym med preferens för andra GAG. Ett hyaluronidas skall alltså ha förmåga att spjälka någon av hyaluronsyrans glykosidbindningar, d v s vara antingen ett glukuronidas (såsom beta-(1,3)-glukuronidas med frisättning av glukuronysylgrupper) eller ett hexosaminidas (såsom beta-(1,4)-glukosaminidas med frisättning av amíderade glukosaminylgrupper). Glukuronidaser och hexosaminidaser kan vara av endo- eller exotyp. Det är känt att hyaluronidas kan verka på i huvudsak tvà olika sätt. Antingen sker en hydro- lytisk spjälkning (hydrolas, exempelvis testikelhyaluronidas) eller också sker spjälkningen som en eliminationsreaktion (eliminas, exempelvis bakteriellt hyaluronidas från Streptomyces).
För en översikt över hyaluronidaser se Meyer K et al (9).
Hyaluronidas har använts inom ett stort antal olika applika- tionsomràden och finns kommersiellt tillgängligt från ett flertal olika fabrikanter. De olika applikationsomràdena har som gemensam nämnare att man vill påverka hyaluronsyraomsätt- ningen i ett givet hyaluronsyrainnehållande system och kan vara antingen in vivo eller också in vitro. In vivo har enzymet föreslagits vid olika terapeutiska behandlingar.
Sålunda har man föreslagit att använda enzymet tillsammans med läkemedel, varvid hyaluronidaset ökar läkemedlets spridning i en vävnad (hyaluronidas kallas även 456 245 för 'spreading factor'). I samband med terapi anses enzymet även ha positiva effekter på 1) hjärtinfarkter (5), 2) retinala funktionen (14) och 3) i kombination med cytostatika vid behandling av cancertumörer (1). In vitro har man använt enzymet för att depolymerisera hyaluronsyra, t ex i ett cellfritt system, eller för att stimulera hyaluronsyra- syntetas i t ex cellodlingssammanhang (11).
Någon tillfredsställande råvarukälla för hyaluronidas har inte funnits. Enzymet har huvudsakligen erhållits från bovina testiklar, bakterier och blodiglar. Dessa ràvarors innehåll av hyaluronidas har varit relativt lågt, varför priset på hyaluronidaspreparationer med acceptabel renhet för bruk in vivo varit högt. Ett behov av billiga och bättre hyaluronidaspreparationer finnes.
Uppfinningens hyaluronidaspreparationer kännetecknas av att de innehåller hyaluronidas som finns i de inledningsvis nämnda skaldjuren. Förutom från krill kan krillhyaluronidas potentiellt även isoleras från odlingsmedier för celler vilka med rekombinant-teknik förmåtts att producera enzymet.
Våra hittills utförda studier av krillhyaluronidaser har en molvikt på 8 x 104, såsom 80 000 1 3 000 dalton och ett pH-optimum 4,5 - 6,0. De kan ha ett pI (isoelektrisk punkt) i pH-intervallet 4 - 6 med eventuell förekomst av isoenzymer.
De kan vara glykoprotein med Con A-bindande förmåga (d v s ha terminala monosackaridrester med alfa-D-mannopyranosid- eller alfa-D-glykopyranosidstruktur). Den hittills funna enzymaktiviteten tyder på att krillhyaluronidas uppvisar endoglukuronidasaktivitet d v s är ett endoglukuronidas. Det kan inte uteslutas att kommande studier kommer att visa att krillhyaluronidaser även kan ha andra specificiteter som möjliggör att de effektivt kan bryta ner hyaluronsyra.
Uppfinningens hyaluronidaspreparationer uppvisar en hyaluronidasaktivitet på mer än 20, 50 eller 100 U/mg protein från råvarukällan (d v s krillprotein). Det är _ .-. I .- -e-. ' ,,,_._____,, .__ L-. ... 456 245 möjligt att framställa preparationer med aktiviteter över 250 U/mg protein från råvarukällan. Aktiviteterna ovan skall vara mätta enligt den metod som anges i exemplifieringen.
Prepareringen av uppfinningens hyaluronidaser kan ske genom att man extraherar färsk eller färskfrusen krill som homo- geniserats. Extraktionen bör ske med ett vattenhaltigt medium såsom vatten. Från det erhållna extraktet kan man sedan isolera enzymet ifråga genom att utnyttja separa- tionsmetoder som bygger på de tidigare nämnda egenskaperna hos krillhyaluronidaser. Man kan utnyttja kromatografiska metoder som_affinítets-, gel- och jonbyteskromatografi, HPLC, FPLC, kromatofokusering etc eller preparativ elektro- fores. Även dialys och ultra- och membranfiltrering är potentiellt användbara. Extraktionen och homogeniseringen ovan utföres med fördel i kyla under eller nära +4 °C. Det är även fördelaktigt att avlägsna lipider från det erhållna vattenextraktet (råextrakt) genom att extrahera detta med ett lipidlösande lösningsmedel innan råextraktet renas ytterligare. Isolering av krillhyaluronidas framgår ytter- ligare av exemplifieringen.
Kríllhyaluronidaserna enligt uppfinningen kan potentiellt användas på för hyaluronidaser gängse sätt. Se ovan.
I en preparation enligt uppfinningen kan isolerade krill- hyaluronidaser föreligga i frystorkad form, såsom frys- eller spraytorkad form. Den kan även föreligga blandad med, löst i eller på annat sätt inkorporerad i olika för ända- målet lämpliga vehiklar såsom vatten (t ex fysiologisk koksaltlösning) etc.
Uppfinningen framgår av bifogade patentkrav som ingår som en del i beskrivningen. 456 245 Uppfinningen skall nu åskàdliggöras med det vetenskapliga arbete som möjliggjort densamma. Exemplifieringen tjänar inte till att på något sätt begränsa uppfinningen, utan det förutsättes att ett stort antal variationer inom ramen för uppfinningen finnes. ššzsšililsaëslašel Material Bovint testikelhyaluronidas, 5-sulfosalicylsyra (S-2130), fenoftalein glukuronsyra (P-0376), laminarin (L-9634). metyl alfa-D-mannopyranosid (M-6882) var från SIGMA (USA). Hyaluron- syra (Healonø) var från Pharmacia AB (Sverige). Ultrafiltre- ringscell och membraner (YM10) var fràn Amicon Corp (USA).
Tris-hydroxymetyl-aminometan (TRIS), 3,5-dinitrosalicylsyra, kalium-natrium tartrat (C4H406KNa'4H20), cetylpyridiniumklorid monohydrat var från Merck (USA). Con A Sepharoseø, Superoseø 6 prep grade, Agarose A, Polyakrylamid Gradientgeler (PAA 4/30), Gel Filtration Kit, Isoelectric focusing Calibration Kit (pH 3 - 10) och Pharmalyteo (pH 3 e 10) var fràn Pharmacia AB (Sverige). Kromatografi- och elektroforesutrustning erhàllen från Pharmacia AB var K 16/20 och K 16/100 kolonner, envägs- monitor (UV-1), spänningsaggregat för elektrofores (EPS S00/400), gelelektrofores apparatur (GE-4), elektrofores- aggregat för konstant spänning (ECPS 3000/150), Volthour- integrator (VH-1), spänningsaggregat för avfärgning (DPS), gelavfärgningsapparat (GD-4), Superoseø HR 10/30 kolonn och Mono Q HR 5/5 anjonbyteskolonn ansluten till FPLC~system.
Metoder A- EEÉEEEÉEEEÉES-ëX_EÉE§EEëëE-ÉEÉE_ëEill Krill, Euphausia superba, fångad under den antarktiska sommaren och omedelbart frusen och lagrad vid ca 456 245 « -20 - -40 °C placeras i +4 °C. När krillen är nästan tinad blandas 100 g av den med 200 ml anjoniserat vatten. Blandningen homogeniseras och centrifugeras därefter till klarhet. Överfasen (extraktet) dekanteras och filtreras. Filtratet behandlas sedan med tredubbla volymen av ett lipidlösande lösningsmedel. Efter fasseparation tas vattenfasen till vara och användes enligt B. Arbetet utfördes i kylrum vid ca +4 °C.
Affinitetskromatogrgfi på Con A Segargâgf Kommersiellt tillgänglig Con A Sepharose° tvättades med buffert (20 mn Tnxs-Hcl, pa 7,5, 1 mn Mn2+, 1 mm Mg2+, 1 mM Ca2+, 1 M NaCl) och packades i en K 16/20 kolonn till en höjd av 15,5 cm vilket svarade mot en bäddvolym på omkring 31 ml. Kolonnen ekvilibrerades sedan med den nyss nämnda bufferten vid rumstemperatur. 15 - 30 ml råextrakt från A med samma saltstyrka som bufferten applicerades pâ kolonnen och eluerades med 200 ml buffert enligt ovan (ca 6 bäddvolymer) med en flödes- hastighet på 13 ml/h. Därefter skedde desorption med hjälp av buffert innehållande 5 t (w/v) metyl-alfa-D- mannopyranosid. Elueringen följdes kontinuerligt vid 280 nm till dess att inget Uv-adsorberande material kunde påvisas i eluenten. De uppsamlade fraktionerna (2 ml/fraktion) bestämdes med avseende på hyaluronidas- aktivitet och de aktiva fraktionerna sammanslogs och koncentrerades med hjälp av ett Amicon-filter (YM 10). êsèšilëæssias Ungefärligen 4 ml (ca 2 % av bäddvolymen) av det erhållna koncentratet från B applicerades vid +4 OC i kylrum på en Superoseø 6 prep grade kolonn K 16/100 (1,6 cm x 100 cm) jämviktad med buffert S0 mM TRIS-HCl pH 7,5). Kolonnen eluerades med samma buffert och i; -_,_.f.-',. «~ 456 245 flödeshastigheten 12 ml/h. Elueringen följdes spektro~ fotometriskt vid 280 nm. De erhållna fraktionerna (2 ml/fraktion) bestämdes med avseende på hyaluronidas- aktivitet och fraktionerna med aktivitet sammanslogs. ÉÉQQ De sammanslagna fraktionerna från steg C :enades ytterligare på en stark anjonbytarkolonn (Mono Q HR 5/5) jämviktad vid rumstemperatur med samma buffert som i steg C. 4 ml av de sammanslagna fraktionerna från steg C applicerades pà kolonnen och proteinerna eluera- des med en stegvis gradient av NaCl från 0 - 0,18 M, 0,18 - 0,34 M, 0,34 - 1,0 M. Fraktionerna (1 ml/fraktion) bestämdes med avseende på hyaluronidas-, beta-glukuronidas- och endo(1,3)-beta-D-glukanasaktivitet. De aktiva fraktionerna svarande mot respektive enzym sammanslogs var för sig. äsëëëfßæèaa-sy-ëzsšeaeeiësësësixissë En enkel plaquemetod enligt Richman et al (12) användes för att bestämma hyaluronidasaktivitet. I korthet innebär den att hyaluronsyra (Healon°) inkorporerades i en 1,5 % (w/v) agarosgel. Från brunnar upptagna i gelen tilläts enzymet diffundera ut i gelen under 20 timmar vid 37 GC. Den odigererade hyaluronsyran fälldes sedan genom att cetylpyridiniumklorid tillsattes, varvid efter cirka 30 minuter klara cirklar uppkom runt respektive brunn. Cirklarnas diameter var proportionella mot logaritmen av koncentrationen av den till respektive brunn satta enzymlösningen. Testikelhyaluronidas användes som referens för att få en standardkurva.
Bestämning utfördes på de sammanslagna fraktionerna från respektive steg A - D ovan. 45§ 245 _ 3 _ Bestämning av beta-glukuronidas Denna aktivitet bestämdes enligt en metod beskriven av Fishman et al (4). En serie rör fylldes med 0,8 ml 0,1 M NaAc pH 4,5 + 0,1 ml fenolftalein mono-beta- glukuronsyra pH 7,6 och inkuberades under 5 minuter vid 37 OC. Vid bestämda tidsintervall sattes till varje rör 0,1 ml enzymlösning från steg D ovan och till blankprovet 0,1 ml destillerat vatten. Rören inkuberades i 30 minuter vid 37 OC. Enzymreaktionen stoppades genom addering av 5,0 ml 0,2 É glycin, 0,2 M Na0H, varefter rören kyldes och UV-adsorptionen lästes vid rumstemperatur vid 540 nm. Antalet /umol frisatt fenolftalein beräknades med hjälp av standardkurva. En unit (U) enzym klyver en /umol fenolftalein mono-beta-glukuronsyra per minut vid 37 °c och ps 4,5. êssëëfßainstsznzaêelllâlzësafulzzslelsëaëë Denna enzymaktivitet bestämdes enligt en metod beskriven av Turkiewicz et al (13). Substratet som användes var laminarin vilket består av beta-D-glukosrester huvudsak- ligen sammanbundna via 1,3-bindningar. Enzymaktiviteten uttrycks som /umol frisatt glukos per minut. Den frisatta glukosen mättes med 3,5-dinitrosalicylsyra såsom beskrivits av Bernfeld (2). 0,5 ml enzymlösning från steg D ovan buffrad med Na-fosfat (10 mM pH 6,2) inkuberades med 0,5 ml substratlösning (1 mg laminarin/ml i fosfatbufferten) under 10 minuter vid 50 OC. 1,0 ml 3,5-dinitrosalicylsyra reagens adderades omedelbart därefter, och rören sattes i ett kokande vattenbad för att värmas under 5 minuter. Slutligen kyldes proven och 8,0 ml destillerat vatten tillsattes. Absorbansen lästes omgående vid 540 nm. Antalet /umol frisatt glukos beräknades från en standardkurva och enzymaktivi- teten uttrycktes som unit (/umol/tidsenhet). m 456 245 §s§$ëæa¿§s-ë!_e:9se¿a Proteinkoncentrationerna i olika enzympreparationer bestämdes enligt Lowry et al (8) med hjälp av BSA som referensprotein. glektrofores pà gradientgel av polyakrylamid (g-PAG§l Elektroforesbufferten var 40 mM TRIS-HCl, 20 mM NaAc, 2 mM EDTA, pH 8,4. Provsammansättningen var: 56 /ul koncentrerat protein, 15 /ul 50 % (w/v) sukros och 5 /ul 0,1 % (w/v) bromfenolblått. 15 - 30 /ul av provberedningen (40 /ug protein) applicerades på preekvilibrerad gel (70 V i 1 timme). Elektrofores- betingelserna var 150 V (35 mA/gel) i 20 minuter (”run in") följt av 100 V (25 mA/gel) i ca 5 timmar. Proteinerna fixerades med hjälp av elektrofores vid 24 V under 30 min i isopropanol/ättikssyralösning (25 % resp 10 % (v/v)). Gelerna infärgades med 0,2 % (w/v) Coomassie brilliant blue i metanol/ättikssyralösning (25 % resp 10 % (v/v)) under 2 timmar. Avfärgning utfördes under 45 minuter i samma lösning, fast utan färgämne. šëeeè§ë§s¿§ë_š9ëe§e:;es_lš§El Gjutning av geler och fokuseringsbetingelser skedde enligt tillverkaren (10). En 1 mm tjock polyakrylamidgel (5 % (w/v) akrylamid totalt och 3 % tvärbindare), innehållande Pharmalytew pH 3 - 10 gjöts. Elektrodlös- ningarna bestod av 0,1 M svavelsyra (anod) och l M NaOH (katod). Innan provpàsättning prefokuserades gelen under 500 Vh vid konstant spänning 30 W. 20 /ul av koncentrerad och avsaltad slutpool fràn steg D inne; hållande 50 /ug protein applicerades pà gelen. Fokuse- ringen fick fortgå i 5 000 Vh (3,5 h) vid konstant spänning på 30 W (Vmax = 2 500 V). Efter fokuseringen 456 245 _10.. fixerades proteinerna och Pharmalyte° avlägsnades med 5 % (w/v) 5-sulfosalicylsyra och 10 % (w/v) triklorättik- syra under 60 minuter. Gelen tvättades sedan under 30 min med en avfärgningslösning bestående av 30 8 (v/v) metanol och 10 % (v/v) ättiksyra. Proteinfärgningen utfördes med 0,2 % (wlv) Coomassie brilliant blue upplöst i avfärgningslösningen. Vid avfärgningen skedde många byten av tvättlösningar.
Hyaluronidasaktivitet mätt med zymogram En substratgel gjöts genom att blanda 2 ml Healon° (10 mg/ml), 3 ml Na-citratbuffert (pH 5,3, 0,15 M NaCl, 0,02 % NaN3) och 5 ml 2 % agarose A. Blandningen upp- hettades under omröring i'ca 2 minuter, varefter den hälldes på en 8 x 8 cmz Gel Bond film. g-PAGE utfördes som ovan. Omedelbart efter det att elektroforesen var avslutad inkuberades gelen under 15 minuter med citrat- bufferten. Elektrofores- och substratgelen vända mot varandra placerades sedan på en glasplatta. Den erhållna trelagrade "sandwichen" placerades i en fuktkammare där den fick stå vid 37 OC i 24 timmar. Odigererad hyaluron- syra fälldes sedan med cetylpyridiniumklorid.
För IEF hälldes substratlösningen direkt på IEF-gelen efter elektrofokusering. Plattan placerades i en fuktkammare och fick sedan stå vid 37 OC i 24 timmar.
Den odigererade hyaluronsyran fälldes enligt ovan. ÉQEÉEYÄYÉÉÉÉPÉÉÉÉEBÅEQ Molekylvikter bestämdes med hjälp av gelfiltrering på en Superoseo 12 HR 10/30 kolonn ansluten till ett FPLC-system. Kolonnen var jämviktad med 50 mM TRIS-Hcl pH 7,5 innehållande 0,15 M NaCl, ferritin (440 000), aldolas (158 000), BSA (67 000), ovalbumin (43 000) och chymotrypsin (25 000) användes som referensproteiner.
Elutionsvolymerna avsatta mot log MW gav en rät linje. n n ¿4ss 245 _ 11 _ M. Bestämning av pH-optimum Hyaluronidasaktiviteten bestämdes i olika substratgeler (se E) i vilka pH justerats till olika värden med en 0,05 M citrat-fosfatlösning.
Resultat och diskussion I steg B renades hyaluronidas med hjälp av affinitetskromato- grafi pà Con A Sepharoseø. Denna adsorbent är känd för att specifikt interagera med glykoproteiner uppvisande terminala alfa-D-glukopyranosid- eller alfa-D~mannopyranosidrester.
Eftersom hyaluronidas, beta-glukuronidas och endo(l,3)-beta-D- glukanas band starkt till kolonnen indikerar detta att dessa enzymer uppvisar någon av dessa terminala sockerrester. De bundna proteinerna desorberades från kolonnen med 5 % metyl alfa-D-mannopyranosid.
I steg C eluerades de tre enzymerna tillsammans. Steget innebar en kraftig rening från andra proteiner.
I steg D kunde de tre enzymaktiviteterna separeras från varandra genom jonbyteskromatograri på Mono Q. Tre protein- toppar erhölls vilka betecknades med I, II och III (I eluerades först och III sist). Fraktionerna för respektive topp analyserades enligt ovan med avseende på hyaluronidas-, beta-glukuronidas- och endo(1,3)-beta-D-glukanasaktivitet.
Toppen III innehöll hög hyaluronidasaktivitet vilken var omöjlig att påvisa i topparna I och II. Beta-glukuronidas- aktiviteten var associerad med toppen I, under det att endo(1,3)-beta-D-glukanasaktiviteten fanns i topp II och till viss del i topp III.
Det isolerade hyaluronidaset studerades ytterligare med avseende pà renhet, isoelektrisk punkt, pH-optima och molekylvikt. 456 245 , 4 -12- 1 I G-PAGE visade toppen III ett huvudprotein som var lätt förorenat av ett mindre antal andra komponenter. Ett hyaluron- syrazymogram på separationsgelen visade att huvudbandet var associerat med hyaluronidasaktivíteten.
Isoelektrofokuseringsmönstret i kombination med hyaluronsyra- zymogram demonstrerade hög enzymaktivitet i pH-omrâdet 4 - 6. Aktiviteten var associerad med flera band vilket kan indikera förekomst av isoenzymer. pH-optimum för hyaluronidasaktiviteten bestämdes till intervallet pH 4,5 - 6.
Tabell 1: Bestämning av pH-optimum Eg Cirkel diameter (mm) 3,0 0 3,7 5 4,3 8,0 4,7 9,0 5'3 9'0 pH-optimum 6,0 9,0 7 0 7,0 \ Molvikten för hyaluronidas befanns vara 80 000 dalton (1 3 000 dalton).
För beta-glukuronidas och endo(1,3)-beta-D-glukanas bestämdes molvikterna till 70 000 respektive 80 000 dalton.
Specifik aktivitet och utbyte följdes för hyaluronidas under de olika reningsstegen. _ .:,.-;- . 456 245 e 13 - Tabell 2: Rening av hyaluronidas Steg Protein Hyaluronidas aktivitet Renhxnnad Ira/ml total U/mg total z mg units Ráextrakt 45 1 350 3,4 4 650 100 1 üx1A~ kztnatografï 10 48 25 1 230 26 7,5 Superoseø 6 gelfiltrering 1,1 14 102 1 446 31 30 FTEC MONO Q jonbytare 0,22 3,7 295 1 085 23 87 Endohexosaminidasaktivitet mätt enligt Linker (7) kunde ej påvisa nâgra frisatta mängder av N-acetylglukosamin vilket indikerar att vårt studerade hyaluronidas skulle kunna vara ett endoglukuronidas.
Referenslista 1. Baumgartner G et al Hyaluronidase as supplement to cytostatic therapy.
J Exp Clin Cancer Res 4, (1985) s 3 2. Bernfeld P Amylases, X and ß Methods in Enzymol vol 1 (1955) s 149 - 158 3. Chen C-S et al Polysaccharidase and glycosidase activities of Antarctic krill (EuEhausia sugerba).
J Food Biochem 5 (1981) p 63 - 68 ~ -'-' m 456 245 - 10. ll.
Fishman W et al Application of an improved glucuronidase assay method for the study of human blood -glucuronidase J Biol Chem 173 (1948) s 449 - 56.
Flint E J et al Effect of GL enzyme (A highly purified form of hyaluronidase) on mortality after myocardial infarction.
Lancet, April 17 (1982) s 871 - 74.
Hellgren L, Mohr V och Vincent J Enzyme compositions for cleaning, the use thereof and preparation of the composition.
EP-A-107,634 Linker A Bergmeyer Methods of enzymatic analysis, third edition vol IV, enzymes 2, s 257 - 261 Lowry O H et al Protein measurement with the Folin phenol reagent.
J Biol Chem 193 (1951) s 265 - 275 Meyer et al Hyaluronidases The enzymes (1960) s 447 - 460 Pharmacia Fine Chemicals Isoelectric focusing, principles and methods.
Philipson L H et al Effect of hyaluronidase treatment of intact cells on hyaluronate synthetase activity.
Biochemistry 24 (1985) s 7899 - 7906 12. 13. 14. 456 245 _ 15 _ Richman P G et al A convenient plate assay for the quantitation of hyaluronidase in Hzmenogtera venoms.
Anal Biochem 109 (1980) s 376 - 381 Turkiewicz M et al Purification and partial characterization of an endo-(1,3)-beta-D-glucanase from Eughausia sugerba Dana (Antarctic Krill).
Polar Biol 4 (1985) s 203 - 211 Winkler B 5 et al Hyaluronidase and retinal function.
,Arch Ophtalmol 103 (1985) s 1743 - 46.

Claims (1)

1. l 456 245 _16- Patentkrav
1. Glykosaminoglykandegraderande enzympreparation k ä n n e t e c k n a d a v att den innehåller krillhyaluronídas med en molvikt på 8 x 104 dalton och ett pH-optimum i intervallet 4,5 - 6 och att den uppvisar en hyaluronidasaktivitet på mer än 20 U per mg protein från rávarukällan.
SE8603051A 1986-07-09 1986-07-09 Enzympreparation innehallande krillhyaluronidas SE456245B (sv)

Priority Applications (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SE8603051A SE456245B (sv) 1986-07-09 1986-07-09 Enzympreparation innehallande krillhyaluronidas
EP87850203A EP0257003B1 (en) 1986-07-09 1987-06-22 An enzyme preparation capable of degrading glycosaminoglycan, and a method for producing said preparation
DE87850203T DE3787773D1 (de) 1986-07-09 1987-06-22 Zum Abbau von Glycosaminoglycan fähige Enzymzusammensetzung und Verfahren zur Herstellung dieser Zusammensetzung.
AT87850203T ATE95836T1 (de) 1986-07-09 1987-06-22 Zum abbau von glycosaminoglycan faehige enzymzusammensetzung und verfahren zur herstellung dieser zusammensetzung.
US07/065,591 US4904594A (en) 1986-07-09 1987-06-23 Enzyme preparation capable of degrading glycosamino-glycan, and a method for producing said preparation
JP62170825A JPS6324885A (ja) 1986-07-09 1987-07-08 グリコサミノグリカンを分解できる酵素製剤及び該酵素製剤の製造方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SE8603051A SE456245B (sv) 1986-07-09 1986-07-09 Enzympreparation innehallande krillhyaluronidas

Publications (3)

Publication Number Publication Date
SE8603051D0 SE8603051D0 (sv) 1986-07-09
SE8603051L SE8603051L (sv) 1988-01-10
SE456245B true SE456245B (sv) 1988-09-19

Family

ID=20365076

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SE8603051A SE456245B (sv) 1986-07-09 1986-07-09 Enzympreparation innehallande krillhyaluronidas

Country Status (6)

Country Link
US (1) US4904594A (sv)
EP (1) EP0257003B1 (sv)
JP (1) JPS6324885A (sv)
AT (1) ATE95836T1 (sv)
DE (1) DE3787773D1 (sv)
SE (1) SE456245B (sv)

Families Citing this family (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NO164844C (no) * 1988-10-24 1990-11-21 Norsk Hydro As Fremgangsmaate ved utvinning av enzymer fra krepsdyr.
CA2071898A1 (en) * 1989-10-27 1991-04-28 Diane M. Snow Inhibition of cell growth by keratan sulfate, chondroitin sulfate, dermatan sulfate and other glycans
JPH05728A (ja) * 1991-06-25 1993-01-08 Hightech Seiko Kk トレイ・チエンジヤー装置におけるトレイ供給方法およびトレイ・チエンジヤー装置
US7947270B2 (en) * 1992-05-22 2011-05-24 Arcimboldo Ab Removing dental plaque with krill enzymes
GB2293824B (en) * 1994-10-04 1998-11-18 Ashok Meluttukez Krishnapillai Extraction and purification of hyaluronidase from crustacean waste
DE19501378A1 (de) * 1995-01-18 1996-08-08 Heinz Dieter Cullmann Behandlung von Herz-Kreislauf-Erkrankungen
US5747027A (en) * 1995-04-07 1998-05-05 The Regents Of The University Of California BH55 hyaluronidase
US6610292B2 (en) 1995-11-22 2003-08-26 Ista Pharmaceuticals, Inc. Use of hyaluronidase in the manufacture of an ophthalmic preparation for liquefying vitreous humor in the treatment of eye disorders
US5866120A (en) * 1995-11-22 1999-02-02 Advanced Corneal Systems, Inc. Method for accelerating clearance of hemorrhagic blood from the vitreous humor with hyaluronidase
CA2323199A1 (en) * 1998-03-09 1999-09-16 Ista Pharmaceuticals, Inc. Use of corneal hardening agents in enzyme orthokeratology
CA2491555C (en) * 2002-07-10 2012-09-11 Massachusetts Institute Of Technology Solid-phase and solution-phase synthesis of glycosylphosphatidylinositol glycans
MXPA03011987A (es) 2003-12-19 2005-06-23 Osio Sancho Alberto Metodo para el tratamiento de la presbicia induciendo cambios en el poder y fisiologia corneal.
KR102114111B1 (ko) 2012-08-10 2020-05-25 오시오 코포레이션 디/비/에이 율리아 헬스 안과적 상태 치료시의 컨택트 렌즈 사용

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6033474B2 (ja) * 1978-05-11 1985-08-02 藤沢薬品工業株式会社 新規なヒアルロニダ−ゼbmp−8231およびその製造法
US4410531A (en) * 1980-12-08 1983-10-18 Biorex Laboratories Limited Enzyme derived from hyaluronidase
SE454566B (sv) * 1984-04-24 1988-05-16 Lars G I Hellgren Farmaceutisk komposition innehallande en verksam mengd av vattenlosliga proteinaser som extraherats fran ett vattenlevande djur valt av ordningen euphausiaceae eller slektet mallotus

Also Published As

Publication number Publication date
DE3787773D1 (de) 1993-11-18
EP0257003A3 (en) 1990-02-28
EP0257003A2 (en) 1988-02-24
EP0257003B1 (en) 1993-10-13
SE8603051D0 (sv) 1986-07-09
JPS6324885A (ja) 1988-02-02
US4904594A (en) 1990-02-27
ATE95836T1 (de) 1993-10-15
SE8603051L (sv) 1988-01-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ghuysen et al. Structure of the cell wall of Staphylococcus aureus, strain Copenhagen. I. Preparation of fragments by enzymatic hydrolysis
Kaplan et al. Phosphohexosyl components of a lysosomal enzyme are recognized by pinocytosis receptors on human fibroblasts.
English et al. A cell wall-degrading endopolygalacturonase secreted by Colletotrichum lindemuthianum
Bielicki et al. Human liver iduronate-2-sulphatase. Purification, characterization and catalytic properties
Fan et al. Isolation and characterization of two cyanogenic β-glucosidases from flax seeds
SE456245B (sv) Enzympreparation innehallande krillhyaluronidas
Freeman et al. Human liver sulphamate sulphohydrolase. Determinations of native protein and subunit M r values and influence of substrate agylcone structure on catalytic properties
Myers et al. Partial purification and some properties of a cellulase from Helix pomatia
HIMENO et al. β-Glucuronidase of bovine liver purification, properties, carbohydrate composition
Bernier et al. The turnip lysozyme
Slomiany et al. Glycosulfatase activity of Helicobacter pylori toward gastric mucin
Heuermann et al. Purification and characterization of a sialidase from Clostridium chauvoei NC08596
Freeman et al. Human liver N-acetylglucosamine-6-sulphate sulphatase. Catalytic properties
Neiderhiser et al. The purification and properties of the glycoproteins of pig gallbladder bile
Roggentin et al. Purification and characterization of sialidase from Clostridium sordellii G12
Gao et al. A highly selective ginsenoside Rb1-hydrolyzing β-D-glucosidase from Cladosporium fulvum
Dijkerman et al. The role of the cellulolytic high molecular mass (HMM) complex of the anaerobic fungus Piromyces sp. strain E2 in the hydrolysis of microcrystalline cellulose
Coleman et al. Characterization of a fungal glycoprotein that elicits a defence response in French bean
ITOH et al. Purification and characterization of α-galactosidase from watermelon
Uda et al. Purification and Characterization of β-N-Acetylhexosaminidase from the Ascidian, Halocynthia roretzi
BEYDEMİR et al. Purification of glucose 6-phosphate dehydrogenase from goose erythrocytes and kinetic properties
Karlstam et al. Purification and partial characterization of a novel hyaluronic acid-degrading enzyme from Antarctic krill (Euphausia superba)
D'ANIELLO et al. The purification and characterization of α-l-fucosidase from the hepatopancreas of Octopus vulgaris
Tanaka et al. Purification and characterization of a sialidase from Bacteroides fragilis SBT3182
Günata et al. Hydrolysis of monoterpenyl-β-D-glucosides by cloned β-glucosidases from Bacillus polymyxa

Legal Events

Date Code Title Description
NUG Patent has lapsed

Ref document number: 8603051-7

Effective date: 19920210

Format of ref document f/p: F